CN116832147A - Glp1多肽药物冻干闪释片及其制备方法 - Google Patents

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Abstract

本发明提供了GLP1多肽药物冻干闪释片及其制备方法,本发明提供的GLP1多肽药物冻干口崩片包含如下质量百分数的原料:30%~50%GLP1多肽‑mEV原液、0.1%~1.0%表面活性剂、3%~5%骨架剂、1%~3%粘合剂、0.01%~1%助悬剂,余量为水。所述GLP1多肽为载利拉鲁肽和司美格鲁肽其中一种或多种。本发明还提供了GLP1多肽药物冻干闪释片的制备方法,该闪释片采用冷冻干燥技术制备,所得产品装载量大、溶出效果好,利于GLP1多肽的口腔吸收。并且该闪释片的制备方法简便,易于实施。

Description

GLP1多肽药物冻干闪释片及其制备方法
技术领域
本发明涉及药物制剂领域,特别涉及GLP1多肽药物冻干闪释片及其制备方法。
背景技术
胰高血糖素样肽(GLP1)广泛应用于二型糖尿病与重度肥胖治疗,患者长期通过注射给药。尽管创新的GLP1药物不断迭代,目前仍然很难扭转一个痛苦的现实:患者需要终生持续通过注射给药。诺和诺德公司的口服索马鲁肽/司美格鲁肽(Semaglutide)产品上市后,虽然首次实现了GLP1类药物的口服给药,但其口服生物利用度仍然较低(仅1%)。且该药物成本高,患者需要每日服用,经济负担较重。因此,在二型糖尿病与重度肥胖治疗领域,缺少一种可以低成本、高效率口服递送GLP1药物的技术。
牛奶细胞外囊泡(mEV)是一种可从牛奶中大量提取的由磷脂双分子膜形成的生物纳米颗粒。它的天然功能包括从母体(母牛)向后代(牛犊)的胃肠道递送生物活性分子(蛋白质、小核酸等)。已有研究证实mEV可耐受消化道内消化酶、低pH等环境因素的破坏,通过消化道吸收进入血液循环。由于牛奶的广泛食用基础,大多数人群对mEV的长期暴露(通过饮用牛奶)决定了mEV的人体口服应用是安全、可耐受的。因此,mEV近年来作为一种潜在的口服药物递送载体受到较多关注。
此前的技术中,不乏以mEV装载小分子药物的先例。前期研究中,虽然装载GLP1(利拉鲁肽Liraglutide)的mEV经口腔给药后可由舌下静脉丛吸收进入血液循环。但到目前为止,针对装载GLP1的mEV口腔给药与舌下吸收没有成熟的口服固体剂型。一些现有技术中,制备获得的是装载利拉鲁肽的mEV的溶液制剂,然而尽管mEV的溶液稳定性相较于其它类型的细胞外囊泡(EV)有显著提升,但mEV在高浓度溶液中如何保持稳定仍然是一个待解决的技术问题。mEV纳米颗粒的溶液浓度在超过1×1012p/mL后,其聚集、融合、容器壁吸附等问题就凸显出来。另外一些方案中,虽然制备获得了冻干舌下片,但为了维持mEV在冻干过程中的活性,需要添加较大量甘露醇或微晶纤维素,若实现压片则过于紧实从而导致口腔崩解释放困难。并且,冻干粉体积增加过度,在临床拟用剂量下含服困难较大。
适宜的冻干固体制剂的单片溶液体积通常不大,在1毫升以下,而mEV口腔吸收的临床拟用剂量在1013颗粒甚至更高。因此需要一种可达到1×1013p/mL甚至更高浓度的mEV原液浓缩工艺及与之配套的稳定剂配方。
发明内容
有鉴于此,本发明要解决的技术问题在于提供药物浓度高、溶出效率高、利于口腔舌下吸收的GLP1多肽药物冻干闪释片及其制备方法。
本发明提供了GLP1多肽药物冻干口崩片,其包含如下质量百分数的原料:30%~50%GLP1多肽-mEV原液、0.1%~1.0%表面活性剂、3%~5%骨架剂、1%~3%粘合剂、0.01%~1%助悬剂,余量为水;
所述表面活性剂选自泊洛沙姆188。
进一步的,所述骨架剂选自甘露醇、海藻糖中的一种;优选的,所述骨架剂为海藻糖。
进一步的,所述粘合剂选自普鲁兰多糖、明胶中的一种;优选的,所述粘合剂为普鲁兰多糖。
进一步的,所述助悬剂选自普鲁兰多糖、黄原胶中的一种;优选的,所述助悬剂为黄原胶。
进一步的,所述GLP1多肽-mEV原液的制备原料中:每毫克GLP1多肽,加入0~1.2mg辅料和1×1010~1×1013 mEV颗粒。
所述辅料选自多聚赖氨酸,鱼精蛋白,多聚精氨酸,岩藻糖或甘露醇中的一种,优选的,所述辅料为多聚精氨酸。
一些实施例中,本发明提供的GLP1多肽药物冻干口崩片中包含如下质量百分数的原料: 50%GLP1多肽-mEV原液、0.2%表面活性剂、3%骨架剂、2%粘合剂、0.1%助悬剂,余量为水。在本发明实施例中,所述原料的质量分数以冻干前质量计算。
本发明提供的舌下片中,包括表面活性剂在内的辅料例如骨架剂、粘合剂或助悬剂的选择都合理,从而使制得的舌下片具有更优秀的崩解效果和舌下吸收效率。前期实验表明,相对于其他辅料的选择,泊洛沙姆188、海藻糖、普鲁兰多糖、黄原胶的组合更有利于辅助GLP1-mEV更好的维持稳定性、提高口腔中的释放性能和舌下吸收效率。所述GLP1多肽为利拉鲁肽、司美格鲁肽中的一种或多种。
一些实施例中,所述GLP1多肽为利拉鲁肽,所述利拉鲁肽冻干口崩片中包含如下质量百分数的原料:30%~50% 利拉鲁肽-mEV原液、0.1%~1.0% 泊洛沙姆188 、3%~5% 海藻糖、1%~3% 普鲁兰多糖、0.01%~1%黄原胶,余量为水。
具体实施例中,所述利拉鲁肽冻干口崩片中包含如下质量百分数的原料:50% 利拉鲁肽-mEV原液、0.2% 泊洛沙姆188 、3% 海藻糖、2% 普鲁兰多糖、0.1%黄原胶,余量为水。
一些实施例中,所述GLP1多肽为司美格鲁肽,所述司美格鲁肽冻干口崩片中包含如下质量百分数的原料:30%~50% 司美格鲁肽-mEV原液、0.1%~1.0% 泊洛沙姆188 、3%~5%海藻糖、1%~3% 普鲁兰多糖、0.01~1%黄原胶、余量为水。
具体实施例中,所述司美格鲁肽冻干口崩片中包含如下质量百分数的原料:50%司美格鲁肽-mEV原液、0.2% 泊洛沙姆188 、3% 海藻糖、2% 普鲁兰多糖、0.1%黄原胶,余量为水。
本发明还提供了如前所述的GLP1多肽药物冻干口崩片的制备方法,包括如下步骤:
(1)GLP1多肽向mEV的装载,获得GLP1多肽-mEV原液;
(2)GLP1多肽-mEV原液经超滤浓缩后,获得浓缩液,
(3)取表面活性剂、骨架剂、粘合剂、助悬剂、甜味剂和矫味剂混合后,加入浓缩液,得到药液;
(4)将步骤(3)中的药液进行剪切;
(5)将步骤(4)中剪切后的药液进行脱气;
(6)将步骤(5)中脱气后的药液灌装至窝槽中;
(7)将灌装完的药液预冻;
(8)将预冻完成的药品冻干,设定初始温度为-30 ℃,具体冻干过程如下:
冷浸温度:≤-40 ℃;真空控制:≤200 ubar
板层温度:由-30 ℃升至-25 ℃,5分钟;维持-25℃,60分钟;由-25 ℃升至-15℃,10分钟;维持15 ℃,60分钟。由-15 ℃升至-5 ℃,10分钟;维持-5℃,60分钟;由-5 ℃升至10 ℃,25分钟;维持10 ℃,100分钟,由10 ℃升至25 ℃,15分钟;维持25 ℃,60分钟。
进一步的,所述GLP1多肽向mEV的装载包括:
将GLP1多肽溶液与牛奶外泌体溶液混合后进行超声处理,
所述GLP1多肽溶液中,溶剂为含有100 mM NaCl 的20 mM Tris缓冲液,pH值为8.0;
所述牛奶外泌体溶液中,溶剂为含有100 mM NaCl 的20 mM Tris缓冲液,以含有甘氨酸的Na2CO3/NaHCO3缓冲液调节pH值为7.0~10.0;
所述超声处理的条件包括:99%功率, 5℃,超声处理12h。
进一步的,所述GLP1多肽-mEV原液的超滤浓缩包括:
将GLP1多肽-mEV原液以含有PEG3350的PBS缓冲液溶解后,利用截留分子量为750kDa的中空纤维柱,浓缩至体积为原液的1/5(流速为405mL/min)。试验表明,该步骤的超滤浓缩对于提高药物的装载量具有重要的积极意义。本发明对超滤浓缩的参数进行优化,获得最优的效果,从而更进一步的提高装载效果。
进一步的,所述步骤(2)中的剪切在乳化机中;
进一步的,所述步骤(3)中的脱气在乳化机中或脱气瓶中。
进一步的,所述剪切的转速为 100-3000 rpm,所述剪切时间为3-20分钟;优选的,所述乳化机的转速为300 rpm,所述剪切时间为10分钟。
进一步的,所述预冻温度为-60到-80℃;优选的,所述预冻温度为-60℃。
进一步的,所述预冻时间为10-100分钟;优选的,所述预冻时间为30分钟。
本发明提供了一种GLP1多肽药物冻干闪释片,该闪释片采用冷冻干燥技术制备,所得产品装载量大、溶出效果好、舌下吸收效率高。并且该闪释片的制备方法简便,易于实施。
附图说明
图1示无添加剂mEV电镜结果;
图2示0.5% PEG3350添加剂存在下mEV电镜结果;
图3示5% PEG3350添加剂存在下mEV电镜结果;
图4示动物药效试验中血糖浓度检测结果;
图5示动物血药浓度结果;
图6示各组给药后的血糖浓度检测结果;
图7示LRT-mEV与SMT-mEV给药后的血糖浓度检测结果。
具体实施方式
为了能够更清楚地理解本发明的技术内容,特举以下实施例详细说明,其目的仅在于更好理解本发明的内容而非限制本发明的保护范围。本发明实施例中所采用试剂均为市售获得。
实施例1 生产制备装载利拉鲁肽的mEV高浓度原液
目的:将利拉鲁肽(LRT)装载至mEV后,以切向流超滤技术浓缩mEV溶液并保持mEV颗粒数与结构的稳定性。
材料:牛奶外泌体(mEV)的制备参照专利202110097550.X。
方法:
1、 装载:
(1) 化学装载法
a. 共取4个15 mL管,各取总颗粒数7.5E+10个mEV并用20 mM Tris 8.0+100 mMNaCl缓冲液将EV稀释至终体积2 mL。分别用0.1 M Glycine pH 7.0, 0.1 M Na2CO3/NaHCO3pH 9.04,0.1 M Na2CO3/NaHCO3 pH 10.08缓冲液将稀释好的mEV溶液调节pH值至7.0,8.0,9.0,10.0,并用对应pH的缓冲液将所有EV样品定容至终体积6 mL。将不同pH的mEV各等分为15份至每份中EV总颗粒数为5.0E+09,记作mEV溶液。
b. 将配制好的0.5 - 2 mg/mL利拉鲁肽溶液(利拉鲁肽Liraglutide即LRT,溶解于20 mM Tris 8.0+100 mM NaCl缓冲液中),各取100 uL加入到总颗粒数5.0E+09、pH不同的mEV溶液中,颠倒混匀,获得一组LRT-mEV溶液。
c. 向LRT-mEV溶液中,分别加入下列添加剂中的一种:多聚赖氨酸、鱼精蛋白、多聚精氨酸、岩藻糖、甘露醇(终浓度保证LRT:添加剂=1:1)。
d. 各样品置入大型超声清洗机中,设定99%功率,温度为5℃,超声处理时间12h。
e. 将样品经过Capto Core700层析柱处理,去除游离LRT,得到纯化后的LRT-mEV原液样品。
(2) 渗透压刺激装载法
a. 配制50% m/v 蔗糖水溶液,即称取25 g 蔗糖颗粒溶解于50 mL 超纯水中。配制LRT的0.1*PBS溶液,即称取14.10mg粉末溶于1.41 mL 0.1*PBS中,至终浓度10 mg/mL。
b. 配制含有不同蔗糖浓度的mEV溶液(4E+10p/mL),蔗糖浓度分别为:0%,1%,3%,5%,10%,15%,20%,30% (m/v)。
c. 向mEV的蔗糖溶液中加入LRT的0.1*PBS溶液,直至该溶液中蔗糖浓度降至0.2%。
d. 各样品置入大型超声清洗机中,设定99%功率,温度为5℃,超声处理时间12h。
e. 将样品经过Capto Core700层析柱处理,去除游离LRT,得到纯化后的LRT-mEV原液样品。
2、 中空纤维柱切向流超滤浓缩
(3) 实验前处理:
10% m/v PEG3350配制:取60mL 50% PEG3350储液后用水定容至终体积300mL。
将利用前述化学法装载并纯化后的LRT-mEV原液样品(450mL,颗粒浓度1.6E+13p/mL)等分为3份:
a. 一份命名为0% PEG3350-EV,取150mL LRT-mEV原液加入1*PBS定容至终体积400 mL;
b. 一份命名为0.5% PEG3350-EV,取150 mL LRT-mEV原液加入20mL 10% m/vPEG3350后用 PBS定容至终体积400mL,此时PEG3350终浓度为0.5%;
c. 一份命名为5% PEG3350-EV,取150mL LRT-mEV原液加入200mL 10% m/vPEG3350后用PBS定容至终体积400mL,此时PEG3350终浓度为5%。
(4) 中空纤维柱切向流超滤浓缩:
a. 清洗Cytiva AKTA FLUX:使用纯净水以405mL/min的流速将中空纤维柱(MWCO=750kDa)洗净直至滤出液体pH在7.4左右。
b. 开始浓缩,流速405mL/min。
c. 浓缩至20 mL。
d. 加入100mL PBS缓冲液洗滤。
e. 浓缩至20mL并收集浓缩液。
3、 颗粒检测:
使用厦门福流nanoFCM纳米流式仪对所得mEV-LRT产品样品进行颗粒数检测
4、 LRT检测:
使用GLP-1多肽单克隆抗体(ANTIBODYSHOP ABS 046-03/ABS 033-108)检测所得mEV-LRT产品样品中的LRT多肽含量,具体ELISA检测方法参照抗体生产厂家说明书。
5、结果:
(1).化学装载法:
比较mEV在不同pH、添加剂及不同浓度LRT储液条件下经低功率超声后对LRT的单颗粒装载量,pH10条件下mEV对LRT的单颗粒装载量最高,该条件下单个mEV颗粒可装载约3000~20000个LRT多肽分子;整体上,添加多聚精氨酸与不加添加剂条件下mEV对LRT的装载相对最好。且取等体积不同浓度的LRT储液进行装载后,LRT的添加量越高,mEV对LRT的装载量越高。
表1 不同浓度LRT储液、添加剂、及pH条件下mEV对LRT的装载量比较
(2).渗透压刺激装载结果:
比较不同强度渗透压刺激对LRT在mEV中的单颗粒装载量,20% w/v蔗糖浓度下,单个mEV颗粒对LRT的装载量最高,可装载2600个LRT多肽分子;该方法下mEV对LRT的装载效果不及化学装载方法。
表2 不同强度渗透压刺激对LRT在mEV中的单颗粒装载量比较
(3).中空纤维柱切向流超滤浓缩结果
LRT-mEV原液在浓缩前的浓度为6.0E+12p/mL,总颗粒数为2.4E+15p。在0.5%及5%PEG3350存在下经中空纤维柱切向流超滤浓缩后总颗粒数比0% PEG3350高,5% PEG3350条件下颗粒数最高达1.5E+15个,浓度达到7.5E+13p/mL。所得总颗粒数占浓缩前总颗粒数的62.5%,浓度较浓缩前提升12.5倍。电镜结果显示,5% PEG3350存在下,mEV的分散性较好。
表3 mEV在不同浓度PEG3350下的浓缩效果
实施例2 生产制备装载司美格鲁肽的mEV高浓度原液
目的:将司美格鲁肽(SMT)装载至mEV后,以切向流超滤技术浓缩mEV溶液并保持mEV颗粒数与结构的稳定性。
材料:牛奶外泌体(mEV)的制备参照专利202110097550.X。
方法:
1、 装载:具体方法详见“实施例1”
2、 中空纤维柱切向流超滤浓缩 (具体方法详见“实施例1”)
3、 颗粒检测:使用厦门福流nanoFCM纳米流式仪对所得mEV-SMT产品样品进行颗粒数检测
4、 SMT检测:使用LC-MS/MS检测所得mEV-SMT产品样品中的SMT多肽含量,具体检测方法参照文献(DOI: 10.1016/j.jchromb.2023.123688)。
结果:
1. 装载:
利用与LRT装载条件类似的方法(pH10.0, 无添加剂),单个mEV颗粒可装载20000-40000个SMT多肽分子。
表4 SMT在mEV中的单颗粒装载量
装载时SMT与mEV的比例增加,单颗粒装载量提高。但当SMT加料量饱和后,加料量进一步增加无法进一步提升装载量,同时会降低SMT的利用率造成浪费(下表)。实际制剂生产中应同时考虑经济性与装载效率。
表5 SMT与mEV起始比例对装载量的影响
2. 中空纤维柱切向流超滤浓缩结果:
与LRT类似,使用5% PEG3350对mEV-SMT进行浓缩后,浓度较浓缩前提升至少10倍以上,终浓度最高可达8E+13p/mL。
表6 SMT在mEV中的单颗粒装载量
实施例3:制备GLP1多肽-mEV冻干口崩片
一、LRT -mEV冻干口崩片的制备
以利拉鲁肽(LRT)装载至mEV为原料,按照下表的处方进行LRT-mEV冻干口崩片的制备
表7 LRT -mEV冻干口崩片处方(按冻干前质量计算)
(1)称取处方量LRT-mEV、普鲁兰糖、海藻糖、泊洛沙姆188于100ml剪切杯中干混后加入约50%处方量纯净水,搅拌溶解。称取处方量的黄原胶,加剩余处方量的纯净水,搅拌溶解。两者混合。
(2)剪切:采用乳化机进行剪切,转速:300rpm,时间:10分钟。
(3)脱气:将药液转移至125 ml的脱气瓶中,抽真空脱气至无气泡。
(4)灌装:采用移液枪灌装至0.4 ml铝窝中,0.4 g/片。
(5)预冻:将灌装完的铝窝放置-60 ℃的低温冰箱中预冻,预冻时间20分钟,预冻完成后在此冰箱存放至进冻干机。
(6)冻干过程:将预冻完成的样品转至1.7m2冻干机中进行冻干,冻干曲线如下:
进箱温度:-30 ℃;冷阱温度:≤-40 ℃
表8 冻干程序
表9 评测结果
二、SMT -mEV冻干口崩片的制备
以司美格鲁肽(SMT)装载至mEV为原料,按(一)中所述方法及处方进行SMT-mEV冻干口崩片的制备。
表10 评测结果
实施例4:GLP1多肽-mEV冻干闪释片的动物药效试验
目的: 以db/db小鼠随机血糖试验,评价GLP1多肽-mEV冻干口崩片的降血糖效果并检测利拉鲁肽的血药浓度
一、LRT-mEV冻干闪释片药效试验方法:
1、 动物药效试验:
a. 试验分组
表11
b. 给药次数:0h与7h各一次
c. 检测db/db小鼠0点血糖,异氟烷麻醉后舌下给药:
a) A-C组小鼠:将冻干闪释片切成3-6个小片,小心将一小片塞入小鼠舌下,后滴加20uL水溶解药片,分3或6次给药,每次滴加水后间隔10min吸收。
b) 阳性对照组:参照文献方法(doi: 10.1002/cmdc.202100758)将LRT-mEV溶液从db/db小鼠舌下滴入,分3次给药共计90uL,每次滴加后间隔10min吸收。
c) 阴性对照组:未给药。
d. 首次给药后于4h、7h、22h、24h、26h、28h与33h检测一次各组小鼠血糖,每次检测血糖2个重复(试验期间小鼠进食、饮水均不受限制——检测随机血糖)
2、 血药浓度检测
(1) 采血
组A-C与阳性对照组中各9只小鼠于给药后不同时间点(首次给药后4h,22h与33h)进行采血。每组每个时间点处死3只小鼠进行采血。
(2) 血样中利拉鲁肽含量以LC-MS/MS方法进行检测
血样中利拉鲁肽定量检测方法参照文献中报道的操作流程进行(Shiqi Dong,Yuan Gu, Guangli Wei, Duanyun Si, Changxiao Liu , Determination ofliraglutide in rat plasma by a selective liquid chromatographytandem massspectrometry method: Application to a pharmacokinetics study. Chromb(2017),doi:10.1016/j.jchromb.2018.05.020)
结果:
1. 动物药效随机血糖结果
动物药效随机血糖结果显示,阳性对照组小鼠在给药后4h内血糖明显下降,并于7h内显著回升。第二次给药后血糖处于低于基线的水平直至33h恢复至基线水平。闪释片给药组(A-C)在首次给药后7h内血糖无显著下降,但二次给药后血糖出现显著下降,且下降幅度及持续时间与每片所含mEV颗粒数呈正相关关系,且A组小鼠血糖下降幅度大于阳性对照组小鼠。
2. 血药浓度结果
动物血药浓度结果表明,阳性对照组小鼠LRT血药浓度于首次给药后4h达峰并逐渐下降。A-C组小鼠LRT血药浓度于二次给药后达峰(7-22h内)。
上述结果显示LRT-mEV制成的口服冻干闪释片在小鼠口腔中可快速溶解,且LRT可在小鼠舌下高效吸收进入血液循环,实现降糖效果。
二、SMT -mEV冻干闪释片药效试验方法
目的: 以db/db小鼠随机血糖试验,评价SMT-mEV冻干口崩片的降血糖效果,并比较LRT-mEV与SMT-mEV的给药频次差异
方法:
1、动物药效试验1:
a.试验1分组
表12
b.给药次数:口服组0h与7h各一次,皮下注射组0h注射一次
c.检测db/db小鼠血糖及给药方法同前。
2、动物药效试验2
a.试验2分组
表13
b.给药次数:LRT-mEV组Day1-Day7每日给药两次,SMT-mEV组在Day1给药两次,此后不再给药。
c.检测db/db小鼠血糖及给药方法同前。
结果:
1. 动物药效试验1随机血糖结果
动物试验1结果显示口服给予db/db小鼠SMT-mEV闪释片后,小鼠血糖呈明显下降趋势,提示SMT在mEV作用下经口腔吸收。且mEV含量高的制剂(A组)相较于mEV含量低的制剂(B组)起效更快,提示吸收效果更好。
2. 动物药效试验2随机血糖结果
动物试验2结果显示SMT作为第二代长效GLP1药物,SMT-mEV首日口服给药后的药效在db/db小鼠体内可持续5-6天,降血糖效果与每日口服给予LRT-mEV组相似。

Claims (15)

1.GLP1多肽药物冻干口崩片,其特征在于,其包含如下质量百分数的原料:
30%~50%GLP1多肽-mEV原液、0.1%~1.0%表面活性剂、3%~5%骨架剂、1%~3%粘合剂、0.01%~1%助悬剂,余量为水;
所述表面活性剂选自泊洛沙姆188。
2.根据权利要求1所述的GLP1多肽药物冻干口崩片,其特征在于,所述骨架剂选自甘露醇、海藻糖中的一种;优选的,所述骨架剂为海藻糖。
3.根据权利要求1所述的GLP1多肽药物冻干口崩片,其特征在于,所述粘合剂选自明胶、普鲁兰多糖中的一种;优选的,所述粘合剂为普鲁兰多糖。
4.根据权利要求1所述的GLP1多肽药物冻干口崩片,其特征在于,所述助悬剂选自黄原胶、普鲁兰多糖中的一种;优选的,所述助悬剂为黄原胶。
5.根据权利要求1所述的GLP1多肽药物冻干口崩片,其特征在于,所述GLP1多肽-mEV原液的制备原料包括:每毫克GLP1多肽,加入0~1.2mg辅料和1×1010~1×1013 mEV颗粒;
所述辅料选自多聚赖氨酸、鱼精蛋白、多聚精氨酸、岩藻糖或甘露醇中的一种,优选的,所述辅料为多聚精氨酸。
6.根据权利要求1所述的GLP1多肽药物冻干口崩片,其特征在于,所述GLP1多肽为利拉鲁肽。
7.根据权利要求1~6中任一项所述的GLP1多肽药物冻干口崩片,其特征在于,其中包含如下质量百分数的原料:30%~50% 利拉鲁肽-mEV原液、0.1%~1.0% 泊洛沙姆188 、3%~5% 海藻糖、1%~3% 普鲁兰多糖、0.01%~1%黄原胶,余量为水。
8.根据权利要求1所述的GLP1多肽药物冻干口崩片,其特征在于,所述GLP1多肽为司美格鲁肽。
9.根据权利要求1~5或8中任一项所述的GLP1多肽药物冻干口崩片,其特征在于,其中包含如下质量百分数的原料:30%~50% 司美格鲁肽-mEV原液、0.1%~1.0% 泊洛沙姆188 、3%~5% 海藻糖、1%~3% 普鲁兰多糖、0.01~1%黄原胶、余量为水。
10.权利要求1~9任一项所述的GLP1多肽药物冻干口崩片的制备方法,其特征在于,包括如下步骤:
(1)GLP1多肽向mEV的装载,获得GLP1多肽-mEV原液;
(2)GLP1多肽-mEV原液经超滤浓缩后,获得浓缩液,
(3)取表面活性剂、骨架剂、粘合剂、助悬剂、甜味剂和矫味剂混合后,加入浓缩液,得到药液;
(4)将步骤(3)中的药液进行剪切;
(5)将步骤(4)中剪切后的药液进行脱气;
(6)将步骤(5)中脱气后的药液灌装至窝槽中;
(7)将灌装完的药液预冻;
(8)将预冻完成的药品冻干,设定初始温度为-30 ℃,具体冻干过程如下:
冷浸温度:≤-40 ℃;真空控制:≤200 ubar
板层温度:由-30 ℃升至-25 ℃,5分钟;维持-25℃,60分钟;由-25 ℃升至-15 ℃,10分钟;维持15 ℃,60分钟;由-15 ℃升至-5 ℃,10分钟;维持-5℃,60分钟;由-5 ℃升至10℃,25分钟;维持10 ℃,100分钟,由10 ℃升至25 ℃,15分钟;维持25 ℃,60分钟。
11.根据权利要求10所述的制备方法,其特征在于,所述GLP1多肽向mEV的装载包括:
将GLP1多肽溶液与牛奶外泌体溶液混合后进行超声处理,
所述GLP1多肽溶液中,溶剂为含有100 mM NaCl 的20 mM Tris缓冲液,pH值为8.0;
所述牛奶外泌体溶液中,溶剂为含有100 mM NaCl 的20 mM Tris缓冲液,以含有甘氨酸的Na2CO3/NaHCO3缓冲液调节pH值为7.0~10.0;
所述超声处理的条件包括:99%功率, 5℃,超声处理12h。
12.根据权利要求10所述的制备方法,其特征在于,所述GLP1多肽-mEV原液的超滤浓缩包括:
将GLP1多肽-mEV原液以含有PEG3350的PBS缓冲液溶解后,上截留分子量为750kDa的中空纤维柱,流速为405mL/min,浓缩至体积为原液的1/20。
13.根据权利要求10所述的制备方法,其特征在于,所述剪切的转速为 100-3000 rpm,所述剪切时间为 3-20分钟;优选的,所述乳化机的转速为300 rpm,所述剪切时间为 10分钟。
14.根据权利要求10所述的制备方法,其特征在于,所述预冻温度为 -60到-80℃;优选的,所述预冻温度为-60 ℃。
15.根据权利要求10所述的制备方法,其特征在于,所述预冻时间为10-100分钟;优选的,所述预冻时间为30分钟。
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