CN116814528A - 一种培养基及多囊肾类器官培养方法与应用 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种培养基及多囊肾类器官培养方法与应用。本发明以ADPKD患者的肾脏病理囊壁组织为细胞来源,通过RGF培养基构建了多囊肾的3D类器官,该3D类器官具有更好的基因稳定性,能较好地模拟ADPKD在体内的病理特征。为了加强上述3D类器官的囊泡化状态,更好的模拟疾病组织的生理状态,本发明引入Forskolin,并将该类器官应用于药物筛选模型构建。经筛选,GSK2193874能够显著抑制多囊肾类器官的囊泡生长,提示其在制备多囊肾病治疗药物中的潜在应用。上述培养方式应用于ADPKD多囊肾类器官体外培养,有望用于疾病机制研究、药物筛选和矫正后应用临床细胞治疗等。
Description
技术领域
本发明属于多囊肾脏组织类器官培养技术领域,具体涉及Forskolin在多囊肾病疾病模型中的应用、一种培养基及多囊肾类器官培养方法与应用。
背景技术
公开该背景技术部分的信息仅仅旨在增加对本发明的总体背景的理解,而不必然被视为承认或以任何形式暗示该信息构成已经成为本领域一般技术人员所公知的现有技术。
多囊肾病(PKD)是全球发病率最高的单基因遗传病,包括常染色体隐性多囊肾病(ARPKD)和常染色体显性多囊肾病(ADPKD)。ARPKD占PKD的5%,在胚胎期发生存活率低,ADPKD占PKD的95%,在成年后发病,是一种导管器官囊肿形成为特征的全身性疾病。尽管遗传学研究表明ADPKD中85%来自于PKD1基因突变,15%来自于PKD2基因突变。但目前ADPKD的发病机制仍不明确,全球范围缺乏针对多囊肾病的特异性治疗药物,临床治疗机制研究和药物发现困境在于缺乏精准模拟ADPKD的良好模型。
目前,多囊肾的体外模型主要包括动物模型和类器官模型。动物模型以啮齿类动物模型常见,多囊肾的啮齿类动物模型主要包括:①自发遗传多囊肾模型如cpk、pcy、jck、bpk多囊肾小鼠模型及Han:SPRD-cy、PCK多囊肾大鼠模型等,此类模型与人类多囊肾发病机制本质上不同。②化学物质诱导的多囊肾模型,如DPT、NDGA等诱导的大鼠多囊肾模型等,此类模型通过药物诱发多囊表型,无法真实模拟ADPKD遗传疾病的本质特征。③PKD1和PKD2基因敲除多囊肾小鼠模型,但杂合子小鼠多囊肾病变进展缓慢,几乎所有的纯合子小鼠在婴幼儿期死亡无法进行机制研究。因此目前动物模型模拟多囊肾发病乏善可陈。模拟ADPKD的类器官目前主要集中于hiPSCs来源诱导模型。由多囊肾患者来源外周血单个核细胞经基因重编程诱导成保留疾病特性的hiPSCs或将普通hiPSCs通过基因编辑技术敲除PKD1或PKD2基因后得到。但是有以下缺点:(1)诱导分化效率不稳定,批次效应显著;(2)具有非肾脏细胞等脱靶性,有潜在畸胎瘤风险;(3)细胞未成熟更像ARPKD而非ADPKD,不适用于多囊肾等成年发病疾病的模拟。
针对上述研究现状,本发明认为,为了改善目前临床缺乏ADPKD特异性治疗药物的问题,有必要提供一种能够稳定维持ADPKD生理结构的类器官及其作为药筛模型的应用。
发明内容
本发明设计以ADPKD患者肾脏囊肿组织分离细胞为来源,通过体外培养将其诱导为能够稳定表达疾病形态、并且具有良好增殖能力的多囊肾疾病模型。
为了实现该目的,本发明首先提供了一种RGF培养基,用于将ADPKD患者肾脏囊肿组织分离细胞培养为多囊肾3D类器官;进一步的,本发明还设计对上述多囊肾3D类器官进一步诱导培养,通过引入Forskolin构建多囊肾病疾病模型,使其能够充分的呈现多囊肾病的囊肿形态,更加贴近体内病理组织的生理结构。
本发明以上述多囊肾病疾病模型作为药物筛选模型,通过对20种小分子进行筛选,发现GSK2193874在诸多小分子中具有显著的抑制囊泡扩张的效果。该筛选结果也证实了上述药筛模型的优越性,证实了Forskolin在多囊肾3D类器官模型培养中的可行性。
基于上述技术效果,本发明具体提供如下的技术方案:
第一方面,提供一种多囊肾3D类器官体外培养方法,所述方法包括如下步骤:将常染色体显性多囊肾病患者的肾脏病理囊壁组织分离为单体细胞,加入基质胶重悬,使单体细胞聚集成团进行培养,加入RGF培养基培养获得多囊肾3D类器官;所述RGF培养基以Advanced DMEM/F12型培养基作为基础,至少包括如下成分:抗生素、抗氧化剂、谷氨酰胺补充剂、ROCK激酶抑制剂、生长因子、血清替代物、TGF-β抑制剂及维甲酸。
上述培养方法中,所述单体细胞的分离方式可采用本领域常规方法,一种可行的实施方式如下:将所述囊壁组织清理后剪碎,加入含有透明质酸酶和胶原酶Ⅳ的DMEM/F12混合液置于培养箱中消化一段时间,加入DMEM/F12混合液终止消化;向终止消化后的细胞加入红细胞裂解液,水浴破红加入DMEM/F12混合液终止红细胞裂解得到所述单体细胞。
所述RGF培养基的成分如下:90~110units/ml Penicillin-90~110μg/mlStreptomycin Solution;HEPES缓冲液,9~11mM;GlutaMAX,1x;B27,1x;Primocin,0.09~0.11mg/ml;NAC,0.9~1.1mM;EGF,40~60ng/ml;Y27632,9~11μM;A83-01,4~6μM;R-spondin,90~110ng/ml;Retinoic Acid,1~3μM;GDNF,90~110ng/ml;FGF20,90~110ng/ml;各成分在Advanced DMEM/F12中稀释。
本发明验证的一种实施方式中,所述单体细胞加入基质胶重悬后以胶滴接种于培养板中,所述接种胶滴的直径为3~5mm,接种后的培养板依次正置、倒置培养一段时间,使接种细胞更接近球体;向倒置培养完成后的培养板中加入上述RGF培养基,置于CO2培养箱中培养,每隔2~4天更换培养基。
成体细胞具有更好的基因稳定性,上述培养方法以利用常染色体显性多囊肾病(ADPKD)患者的离体组织为来源,分离得到单体细胞培养为多囊肾3D类器官。该培养方式能够显著提高细胞活力,促进单体细胞生长、扩增并自组织为高度复杂的3D类器官结构,并且能够产生多囊空泡形态,很好的模拟了患者病理组织的生物活性,为疾病机制研究、药物筛选和矫正后临床细胞治疗等提供了广阔的应用前景。
为了进一步加速疾病进展,使囊泡变大,变得更加符合体内的多囊肾状态,成为一种多囊肾病疾病模型,增加其作为药筛模型的说服力,本发明向上述RGF培养基中引入cAMP激动剂,加强上述多囊肾3D类器官的囊泡化效果。依据本发明对cAMP激动剂的筛选结果,Forskolin具有对上述成体细胞的促进作用较为显著,可添加至RGF培养基中用于促进多囊肾类器官消化成单细胞后的协同生长以进行药物筛选。
第二方面,提供Forskolin在多囊肾病疾病模型培养中的应用。
上述应用中所称的Forskolin(毛喉素,FORSKOLIN,别名Coleonol)从毛喉鞘蕊花中提取的一种天然产物,CAS号:66575-29-9。
上述应用至少包括以下方式:
(1)将Forskolin用于制备多囊肾病疾病模型培养基;
(2)将Forskolin用于多囊肾3D类器官的体外培养,构建多囊肾病疾病模型。
上述(1)方面所称的培养基,包括上述RGF培养基,还包括一定剂量的Forskolin。
一种具体的实施方式中,所述培养基的成分如下:90~110units/ml Penicillin-90~110μg/ml Streptomycin Solution;HEPES缓冲液,9~11mM;GlutaMAX,1x;B27,1x;Primocin,0.09~0.11mg/ml;NAC,0.9~1.1mM;EGF,40~60ng/ml;Y27632,9~11μM;A83-01,4~6μM;R-spondin,90~110ng/ml;Retinoic Acid,1~3μM;GDNF,90~110ng/ml;FGF20,90~110ng/ml;Forskolin,10uM;各成分在Advanced DMEM/F12中稀释。
第三方面,提供一种多囊肾病疾病模型的构建方法,所述方法包括:将第一方面体外培养方法构建的多囊肾的3D类器官重新消化为单细胞,采用上述多囊肾病疾病模型培养基进行培养。
优选的方案中,所述培养时间为7天。
根据本发明验证,上述培养方法得到的多囊肾病疾病模型能够很好的模拟真实多囊肾病中囊肿组织的生理活性,可作为疾病模型应用于药物筛选领域。在验证上述多囊肾病疾病模型作为药物筛选模型可行性的过程中,本发明还筛选到GSK2193874,对多囊肾组织具有显著的抑制活性,有望应用于多囊肾的临床治疗及相应的药物开发。
第四方面,提供GSK2193874在制备多囊肾病治疗药物中的应用。
以上一个或多个技术方案的有益效果是:
1、考虑到成体细胞的基因稳定性,本发明设计采用分化成熟的多囊肾囊壁组织分离细胞为对象,诱导培养多囊肾的3D类器官;现有研究中,以成体细胞作为培养对象的类器官培养技术较为空白,可借鉴的研究内容很少。发明人在多囊肾3D类器官培养中设计引入cAMP激动剂以提高囊壁组织单体细胞的活力,经筛选,Forskolin能够提高囊肿组织单体细胞的活力,能显著促进PKD多囊肾类器官消化成单细胞后的细胞协同生长,以进行药物筛选。
2、本发明还采用了一种多囊肾3D类器官的体外培养基(RGF培养基)及体外培养方法,该培养基为低生长因子型培养基,生长因子含量较少并且不含有血清,有效降低培养组织污染风险,提高类器官组织应用的稳定性和安全性。
3、本发明通过提取多囊肾患者囊壁组织进行基于成体组织的类器官培养,建立了首个患者来源、高度模拟成体发病过程的ADPKD肾脏类器官模型,为疾病发展和多囊肾药物筛选提供了可能,是国际首例基于多囊肾病人的肾脏成体组织来源的类器官模型。
附图说明
构成本发明的一部分的说明书附图用来提供对本发明的进一步理解,本发明的示意性实施例及其说明用于解释本发明,并不构成对本发明的不当限定。
图1为实施例中PKD类器官培养基的活性成分筛选结果;
图1A为不同梯度浓度的cAMP激动剂培养后生成囊泡直径变化统计结果;
图1B为相同浓度的cAMP激动剂培养后生成囊泡直径变化统计结果;
图2为实施例中两例不同患者的多囊肾类器官培养产物的基因测序鉴定结果模式图;
图3为实施例中多囊肾类器官与正常肾脏类器官生长形态明场对比图;
图3A从左到右依次为正常肾脏类器官培养0-4天的效果图;
图3B从左到右依次为多囊肾类器官培养0-4天的效果图;
图4为实施例中培养产物与体内PKD组织的形态对比图;
图4A为此例多囊肾患者的核磁共振成像;
图4B为大体病理图;
图4C为HE染色图;
图4D为第二次传代后的多囊肾类器官微分干涉差显微镜下图;
图4E为第四次传代后的多囊肾类器官微分干涉差显微镜下图;
图4F为此多囊肾类器官HE染色图;
图5为培养产物透射电镜图;
图5A为PKD类器官透射电子显微镜代表性图像(Scale bars,1μm);
图5B为PKD类器官透射电子显微镜代表性图像局部放大图;
图5C为UB类器官透射电子显微镜代表性图像(Scale bars,1μm);
图5D为UB类器官透射电子显微镜代表性图像局部放大图;
N,nucleus细胞核;TJ,tight junction紧密连接;BB,brush border刷状缘;Mi,mitochondria线粒体;BM,basal membrane基底膜;ER,endoplasmic reticulum内质网;Ci,cilia纤毛;red arrows mark autophagosome红色箭头标记自噬体;
图6为本发明中成体组织来源PKD类器官与人PKD组织,小鼠PKD组织及胚胎和PKD细胞的Upset图;
图7为实施例中的药筛策略图;
图8为20种小分子作用于PKD类器官囊泡扩张的抑制效果图;
图9为GSK2193874对PKD类器官囊泡扩张的抑制效果图;
图9A为GSK2193874干预PKD类器官的光镜变化图;
图9B为GSK2193874对PKD类器官囊泡扩张抑制效果时间变化曲线。
具体实施方式
应该指出,以下详细说明都是例示性的,旨在对本发明提供进一步的说明。除非另有指明,本文使用的所有技术和科学术语具有与本发明所属技术领域的普通技术人员通常理解的相同含义。
需要注意的是,这里所使用的术语仅是为了描述具体实施方式,而非意图限制根据本发明的示例性实施方式。如在这里所使用的,除非上下文另外明确指出,否则单数形式也意图包括复数形式,此外,还应当理解的是,当在本说明书中使用术语“包含”和/或“包括”时,其指明存在特征、步骤、操作、器件、组件和/或它们的组合。
为了使得本领域技术人员能够更加清楚地了解本发明的技术方案,以下将结合具体的实施例详细说明本发明的技术方案。
实施例1
本实施例中提供一种用于多囊肾病类器官培养的RGF培养基及培养方法,从多囊肾病患者的离体组织中分离得到单细胞,采用RGF培养基进培养,所述RGF培养基成分如下:100units/ml Penicillin-100μg/ml Streptomycin Solution;HEPES缓冲液,10mM;GlutaMAX,1×;B27,1×;Primocin,0.1mg/ml;NAC,1mM;EGF,50ng/ml;Y27632,10μM;A83-01,5μM;R-spondin,100ng/ml;Retinoic Acid,2μM;GDNF,100ng/ml;FGF20,100ng/ml;各成分在Advanced DMEM/F12中稀释。
所述单细胞分离步骤如下:取ADPKD患者手术切除多囊肾囊壁组织置于60×16mm培养皿中,用经灭菌消毒后的手术剪尽量去掉多余的血管和结缔组织,用5ml DMEM/F12混合液洗涤三次,吸掉DMEM/F12混合液,剪碎组织,加入5ml DMEM/F12混合液、50ul透明质酸酶和50ul胶原酶Ⅳ,吹打混匀,置于37℃、5%CO2培养箱消化60min,每5-10min充分吹打一次消化物;加入5ml DMEM/F12混合液终止消化,用70um滤网将细胞过滤到50ml离心管中,离心(900r,4℃,5min),去除上清,加入5ml红细胞裂解液,吹打混匀,置于37℃水浴锅破红10min,加入5ml DMEM/F12混合液终止红细胞裂解,吹打混匀,将细胞转移至15ml离心管,离心(900rpm,4℃,5min),弃上清;加入3-4ml DMEM/F12混合液重悬细胞,吹打混匀,离心,弃上清,重复2-3次;将DMEM/F12混合液与Matrigel按1:3比例混合,重悬细胞沉淀,调整细胞浓度,吹打混匀,将细胞混合物以圆形胶滴样滴在细胞悬浮培养6孔板中,胶滴直径为4mm左右,胶滴之间间隔距离适当即可;将细胞孔板正置于37℃、5% CO2培养箱中5min,倒置于37℃、5% CO2培养箱中40min,每孔加入2ml的RGF培养基,置于37℃、5% CO2培养箱中培养;每隔2-4天更换一次培养基。
为了验证上述培养方式获得产物能否模拟真实多囊肾类器官,本实施例针对上述培养产物进行了测序比对、形态比对。其中,测序比对结果如图2、图6所示,ADPKD主要是由于PKD1基因突变导致,通过对多囊肾类器官DNA测序,鉴定类器官中的突变。图2培养产物测序鉴定图表明两例多囊肾患者分别存在PKD1基因的1号外显子和PKD1基因18号外显子存在杂合点突变。图6中将正常肾脏组织、多囊肾组织和多囊肾类器官测序对比,通过RNA测序,表明多囊肾类器官在一定程度上较能模拟多囊肾组织,而与正常肾脏组织有差别。
在微分干涉差显微镜下可以看出,本实施例培养的多囊肾类器官有囊肿生成(图3),培养产物的典型形态与多囊肾组织相似度较高(图4)。根据培养产物的透射电镜图(图5),与正常肾脏UB类器官相比,PKD类器官显示出线粒体结构紊乱和自噬增加,同时通过Upset图(图6)对GEO数据库中的人PKD组织,小鼠PKD组织,本发明的成体来源的PKD类器官,IPS性质细胞来源PKD类器官等比较说明,本发明的成体来源的PKD类器官与人PKD组织最为近似,可作为人类PKD发病的可靠模型。
实施例2
本实施例设计将上述实施例1中培养得到的类器官组织用于药物筛选,为了获得一种生长状况更佳的药物模型,本实施例针对促进PKD类器官培养的活性成分进行筛选,由于cAMP激动剂能够促进PKD类器官的单细胞生长,本实施例中筛选了布环磷腺苷(Bucladesine)、Forskolin、8-溴-环腺苷酸(8-Br-cAMP)三种cAMP激动剂对培养效果进行测试。
首先将上述实施例1中培养得到的多囊肾类器官消化成单细胞后,分别向细胞培养环境添加不同浓度的上述激动剂,在cAMP激动剂中,各浓度下Forskolin和其他化合物对PKD类器官单细胞生长的作用效果如图1所示,与cAMP依赖性囊肿生成一致,在RGF培养基成分中添加cAMP激动剂促进了PKD类器官的单细胞生长,其中10uM Forskolin最有效。
基于上述研究结论,本实施例中,提供又一种PKD疾病模型培养基及培养方法,可作为基于PKD类器官的药筛策略(图7),具体步骤如下:将实施例1中培养得到PKD类器官消化成单细胞后,重新接种到96孔板中,用RGF培养基+10uM Forskolin培养7天,充分促进囊泡扩张,模拟PKD疾病进展状态,然后实施药筛策略。通过将参与PKD发病机制相关通路及文献报道小分子药物进行汇总,制定了一个包含20种小分子的小规模小分子化合物库,应用到PKD类器官中进行药物筛选(图8)。
采用上述药物筛选方式,本实施例提供了GSK2193874作为多囊肾病抑制剂的应用。GSK2193874对PKD类器官的抑制效果如图9所示,可以看出,随着GSK2193874浓度的升高及培养时间的延长,PKD类器官囊泡直接出现了明显的缩小,一方面证实了将PKD类器官应用于药筛策略的可行性,还证实了GSK2193874对多囊肾病的抑制活性。
以上所述仅为本发明的优选实施例而已,并不用于限制本发明,对于本领域的技术人员来说,本发明可以有各种更改和变化。凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
Claims (10)
1.一种多囊肾3D类器官体外培养方法,其特征在于,包括如下步骤:将常染色体显性多囊肾病患者的肾脏病理囊壁组织分离为单体细胞,加入基质胶重悬,使单体细胞聚集成团进行培养,加入RGF培养基培养获得多囊肾3D类器官;所述RGF培养基的成分如下:90~110units/ml Penicillin-90~110μg/ml Streptomycin Solution;HEPES缓冲液,9~11mM;GlutaMAX,1x;B27,1x;Primocin,0.09~0.11mg/ml;NAC,0.9~1.1mM;EGF,40~60ng/ml;Y27632,9~11μM;A83-01,4~6μM;R-spondin,90~110ng/ml;Retinoic Acid,1~3μM;GDNF,90~110ng/ml;FGF20,90~110ng/ml;各成分在Advanced DMEM/F12中稀释。
2.如权利要求1所述多囊肾3D类器官体外培养方法,其特征在于,所述单体细胞的分离方式如下:将所述囊壁组织清理后剪碎,加入含有透明质酸酶和胶原酶Ⅳ的DMEM/F12混合液置于培养箱中消化一段时间,加入DMEM/F12混合液终止消化;向终止消化后的细胞加入红细胞裂解液,水浴破红加入DMEM/F12混合液终止红细胞裂解得到所述单体细胞。
3.如权利要求1所述多囊肾3D类器官体外培养方法,其特征在于,所述单体细胞加入基质胶重悬后以胶滴接种于培养板中,所述接种胶滴的直径为3~5mm,接种后的培养板依次正置、倒置培养一段时间,使接种细胞更接近球体;向倒置培养完成后的培养板中加入上述RGF培养基,置于CO2培养箱中培养,每隔2~4天更换培养基。
4.Forskolin在多囊肾病疾病模型培养中的应用。
5.如权利要求4所述Forskolin在多囊肾病疾病模型培养中的应用,其特征在于,所述应用至少包括以下方式:
(1)将Forskolin用于制备多囊肾病疾病模型培养基;
(2)将Forskolin用于多囊肾3D类器官的体外培养,获得多囊肾病疾病模型。
6.如权利要求5所述Forskolin在多囊肾病疾病模型培养中的应用,其特征在于,(1)方面所称的培养基,包括权利要求1所述的RGF培养基,还包括Forskolin。
7.如权利要求6所述Forskolin在多囊肾病疾病模型培养中的应用,其特征在于,所述培养基的成分如下:90~110units/ml Penicillin-90~110μg/ml StreptomycinSolution;HEPES缓冲液,9~11mM;GlutaMAX,1x;B27,1x;Primocin,0.09~0.11mg/ml;NAC,0.9~1.1mM;EGF,40~60ng/ml;Y27632,9~11μM;A83-01,4~6μM;R-spondin,90~110ng/ml;Retinoic Acid,1~3μM;GDNF,90~110ng/ml;FGF20,90~110ng/ml;Forskolin,10uM;各成分在Advanced DMEM/F12中稀释。
8.一种多囊肾病疾病模型的构建方法,其特征在于,所述方法包括:将权利要求1-3任一项所述体外培养方法构建的多囊肾的3D类器官重新消化为单细胞,采用权利要求6或7中所述的培养基进行培养。
9.如权利要求8所述多囊肾病疾病模型的构建方法,其特征在于,所述培养时间为7天。
10.GSK2193874在制备多囊肾病治疗药物中的潜在应用。
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