CN116606756A - 一株高效好氧反硝化放线菌菌株在微污染水治理中的应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了微生物技术领域的一株高效好氧反硝化放线菌菌株在微污染水治理中的应用，所述放线菌菌株为链霉菌属(Streptomyces phaeofaciens)LST24，所述放线菌菌株(Streptomycesphaeofaciens)LST24的16SrRNA的有效序列长度为1412bp，其序列如序列表所示；本发明实现了好氧反硝化放线菌株LST24在微污染水体治理中的应用具有高效脱氮除碳特性，好氧反硝化放线菌株LST24能有效降低微污染水中的氨氮、硝酸盐、亚硝酸盐和CODMn的含量，在景观水体和水源水库等其他微污染水体的原位治理中具有较大的应用潜力。这对开发脱氮菌剂或污水处理剂具有广阔的应用前景，所述放线菌菌株(Streptomycesphaeofaciens)LST24是从景观水体上覆水中经过富集培养及分离纯化而得到的，所述放线菌菌株(Streptomyces phaeofaciens)LST24是硝酸盐作为唯一氮源生长。
Description
技术领域
本发明涉及微生物技术领域，具体为一株高效好氧反硝化放线菌菌株在微污染水治理中的应用。
背景技术
随着工农业的发展，城乡地表水体受到不同程度的氮污染，水体环境中硝酸盐的存在使水体呈现富营养化，导致水质下降，这对人类健康与生态系统稳定有潜在的风险。在自然水生生态系统中水体通常呈现微污染状态，即污染物(硝酸盐、有机物等)浓度通常低于10mg/L，使用物理和化学方法去除微污染水中的这类污染物往往不具有成本效益。因此，找到一种高效、经济的方法净化微污染水体具有重要意义。目前，传统微生物脱氮技术涉及两个反应：好氧硝化和厌氧反硝化，溶解氧的存在是传统反硝化过程中重要的抑制因素。而好氧反硝化以其耐溶解氧能力强，可以使硝化和反硝化过程在一个生物反应器中进行，且价格适中、效率高、副产物清洁等优点成为目前脱氮研究的热点。放线菌是一种具有降解复杂污染物能力的环境友好型微生物，不仅可以通过无性孢子繁殖，还可以通过菌丝破裂繁殖，对不同环境负荷的适应能力很强。通过分离具有良好脱氮性能的好氧反硝化放线菌菌株，深入研究该菌株的生长特性、脱氮除碳特性及其在微污染水体中脱氮除碳的应用，为开发多样化的高效好氧反硝化生物资源提供新见解，对提高微污染水体的脱氮处理效率和经济性有着重要的理论价值和实际意义。
基于此，本发明设计了一株高效好氧反硝化放线菌菌株在微污染水治理中的应用，以解决上述问题。
发明内容
为解决上述问题，本发明提供如下技术方案：
一株高效好氧反硝化放线菌菌株在微污染水治理中的应用，所述放线菌菌株为链霉菌属(Streptomycesphaeofaciens)LST24，所述放线菌菌株(Streptomycesphaeofaciens)LST24的16SrRNA的有效序列长度为1412bp，其序列如序列表所示。
优选的，所述放线菌菌株(Streptomycesphaeofaciens)LST24是从景观水体上覆水中经过富集培养及分离纯化而得到的。
优选的，所述放线菌菌株(Streptomycesphaeofaciens)LST24是硝酸盐作为唯一氮源生长。
优选的，所述放线菌菌株(Streptomycesphaeofaciens)LST24适用于微污染水体的脱氮除碳。
优选的，所述微污染水体是指污染物浓低于10mg/L(如：CODMn、氨氮、硝态氮、亚硝态氮)的水体。
优选的，所述放线菌菌株(Streptomycesphaeofaciens)LST24是从景观水体上覆水样经富集培养后，依次经高氏一号培养基分离、好氧反硝化筛选后，接种于好氧反硝化液体培养基进行好氧连续培养。
优选的，所述好氧连续培养是利用可溶性淀粉为碳源，其温度为30℃；所述链霉菌属(Streptomycesphaeofaciens)LST24的接种量为好氧反硝化液体培养基体积的1％。
一株高效好氧反硝化放线菌菌株在微污染水治理中的应用，其具体步骤如下：
S1、菌株的获得与性能检测；
富集：在聚碳酸酯膜(0.22μm)上过滤100mL景观水体上覆水样，随后立即将聚碳酸酯膜放置在加入80ppmK2Cr2O7的固体高氏一号培养基上，培养基在30±2℃下用纯培养法培养7天，将所有样品培养三份(n＝3)。
其中：放线菌可以穿透聚碳酸酯膜的孔，从而生长在固体培养基上，而加入的K2Cr2O7会抑制固体培养基上细菌和真菌的竞争生长；
高氏一号固体培养基配方为：0.5g/LKNO3、0.01g/LNaCl、0.01g/LFeSO4、0.5g/LKH2PO4、0.5g/LMgSO4、20g/L琼脂粉、20g/L可溶性淀粉，调节pH为7.2～7.4；
初筛：取富集培养后的高氏一号固体培养基，挑取培养基上颜色、形状和大小一致且干燥的放线菌单菌落分别在高氏一号固体培养基上划线，培养基在30±2℃下用纯培养法培养7天，将所有样品培养三份(n＝3)。一共纯化6-9次后获得多个初筛放线菌纯菌菌落；
复筛：将上述多个初筛纯菌菌落分别接种至高氏一号液体培养基中，在135r/min、30℃条件下培养5天作为种子液。分别将种子液按体积比6％加至反硝化作用检测培养基，在135r/min、30℃条件下震荡培养，于24h和48h检测硝酸盐和总氮的浓度，选取总氮去除效率最大的菌落作为最优菌种，将其命名为菌株LST24，经过送样测序后表明为纯菌株，完成复筛；
S2、菌株的分子生物学鉴定：
复筛中筛选得到的菌株LST24，进行16SrDNA基因序列分析，采用Omega DNA(Biotechnology，USA)试剂盒提取菌株LST24的基因组DNA，并以此为模板扩增16SrDNA，引物：27F(5’-AGTTTGATCMTGGCTCAG-3’)和1492R(5’-GGTTACCTTGTTACGACTT-3’)；
PCR反应体系(25μL)：模板DNA20-50ng/μL，PCRPremix12.5μL，27F(10μM)1μL，1492R(10μM)1μL，ddH2O9.5μL。PCR程序：95℃5min，94℃30s，57℃30s，72℃90s，72℃10min；扩增30个循环。PCR产物的纯化和测序由生工生物工程公司完成，将扩增的序列上传至NCBI，并使用GenBank数据库通过BLAST将获得的基因序列进行同源性序列比对；
菌株LST24的序列长度为1412bp，见图6中的序列表。经过比对，该序列与NCBI数据库的StreptomycesphaeofaciensJCM4814(NCBI登录号：NR041126.1)，相似性高达99.93％，属于链霉菌属(Streptomycessp.)。将其命名为高效好氧反硝化菌株(Streptomycesphaeofaciens)LST24；
S3、菌株好氧反硝化能力测定：
将LST24种子液按1％(体积比)的接种量接种至反硝化液体培养基，30℃，135rpm摇瓶培养48小时。期间每3小时取样测定菌体光密度(OD600)，总氮(TN)，氨氮(NH4+-N)、硝酸盐(NO3--N)、亚硝酸盐(NO2--N)和溶解性有机碳(DOC)的浓度。由图2中a图可知，0～9小时菌株处于迟缓期，9～45小时菌株处于对数期，培养45小时后菌株进入稳定期，菌株的DOC浓度在培养期间逐渐降低，培养48h后，菌株LST24在150mg/L初始DOC培养基中的DOC去除率为91.5％。此外，皮尔逊相关指数证实DOC浓度与细胞生长呈显著负相关(r＝-0.937，P<0.001，n＝17)，说明碳源可以为菌株LST24提供生长和代谢所需的能量和电子供体；由图2中B图可知，菌株培养48小时，硝酸盐去除率为99.12％，总氮去除率为97.18％，过程中无亚硝酸盐以及氨氮的明显积累。以上可见，菌株LST24具有明显的好氧反硝化能力；此外，由图3可知，菌株对环境的适应性较强且菌株的最佳培养条件为：淀粉作为碳源、碳氮比为10、转速为125rpm以及pH值为7的中性环境；
S4、菌株在微污染原水中的应用效果：
将菌株种子液按照5％体积比分别投加至加入景观水体原水和水源水库原水的好氧反应器中，氧气蠕动泵为该反应器提供连续曝气的环境。监测投加菌株LST24种子液后反应器的CODMn、氨氮、硝酸盐、亚硝酸盐和总氮去除情况以及细胞总数和OD600值；
菌株对景观水体原水处理见图4，TN浓度从7.08mg/L降至1.14mg/L，TN去除率为83.62％，CODMn浓度从7.01mg/L降至0.67mg/L，CODMn去除率为90.33％。此外，OD600在复杂的原水环境中呈增长趋势，反应第八天后OD600值达到0.16，反应器中细胞总数增长了9.5倍。
有益效果
与现有技术相比，本发明的有益效果是：
本发明中具有高效脱氮除碳特性的好氧反硝化放线菌株LST24能有效降低微污染水中的氨氮、硝酸盐、亚硝酸盐和CODMn的含量，在景观水体和水源水库等其他微污染水体的原位治理中具有较大的应用潜力。这对开发脱氮菌剂或污水处理剂具有广阔的应用前景。
附图说明
为了更清楚地说明本发明实施例的技术方案，下面将对实施例描述所需要使用的附图作简单地介绍，显而易见地，下面描述中的附图仅仅是本发明的一些实施例，对于本领域普通技术人员来讲，在不付出创造性劳动的前提下，还可以根据这些附图获得其他的附图。
图1为本发明表示菌株LST24的系统发育树示意图；
图2为本发明菌株LST24以硝酸盐为氮源时的生长曲线和总溶解性有机碳（DOC）降解曲线示意图；
图3为本发明菌株 LST24以硝酸盐为唯一氮源时的好氧反硝化性能图；
图4为本发明菌株 LST24以硝酸盐为唯一氮源时在不同碳源、C/N、pH和转速条件下的好氧反硝化性能图；
图5为本发明表示菌株 LST24投加至景观水体原水后污染物去除情况及细胞生长情况；
图6为本发明放线菌菌株序列表示意图；
具体实施方式
下面将结合本发明实施例中的附图，对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述，显然，所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例，基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例，都属于本发明保护的范围。
为了便于理解本发明，下面将参照相关附图对本发明进行更全面的描述。附图中给出了本发明的若干实施例。但是，本发明可以以许多不同的形式来实现，并不限于本文所描述的实施例。相反地，提供这些实施例的目的是使对本发明的公开内容更加透彻全面。
需要说明的是，当元件被称为“固设于”另一个元件，它可以直接在另一个元件上或者也可以存在居中的元件。当一个元件被认为是“连接”另一个元件，它可以是直接连接到另一个元件或者可能同时存在居中元件。本文所使用的术语“垂直的”、“水平的”、“左”、“右”以及类似的表述只是为了说明的目的。
除非另有定义，本文所使用的所有的技术和科学术语与属于本发明的技术领域的技术人员通常理解的含义相同。本文中在本发明的说明书中所使用的术语只是为了描述具体的实施例的目的，不是旨在于限制本发明。本文所使用的术语“及/或”包括一个或多个相关的所列项目的任意的和所有的组合。
请参阅图1-6，本发明提供一种技术方案：
一株高效好氧反硝化放线菌菌株在微污染水治理中的应用，所述放线菌菌株为链霉菌属(Streptomycesphaeofaciens)LST24，所述放线菌菌株(Streptomycesphaeofaciens)LST24的16SrRNA的有效序列长度为1412bp，其序列如序列表所示。
本实施例中，所述放线菌菌株(Streptomycesphaeofaciens)LST24是从景观水体上覆水中经过富集培养及分离纯化而得到的。
本实施例中，所述放线菌菌株(Streptomycesphaeofaciens)LST24是硝酸盐作为唯一氮源生长。
本实施例中，所述放线菌菌株(Streptomycesphaeofaciens)LST24适用于微污染水体的脱氮除碳。
本实施例中，所述微污染水体是指污染物浓低于10mg/L(如：CODMn、氨氮、硝态氮、亚硝态氮)的水体。
本实施例中，所述放线菌菌株(Streptomycesphaeofaciens)LST24是从景观水体上覆水样经富集培养后，依次经高氏一号培养基分离、好氧反硝化筛选后，接种于好氧反硝化液体培养基进行好氧连续培养。
本实施例中，所述好氧连续培养是利用可溶性淀粉为碳源，其温度为30℃；所述链霉菌属(Streptomycesphaeofaciens)LST24的接种量为好氧反硝化液体培养基体积的1％。
一株高效好氧反硝化放线菌菌株在微污染水治理中的应用，其具体步骤如下：
S1、菌株的获得与性能检测；
富集：在聚碳酸酯膜(0.22μm)上过滤100mL景观水体上覆水样，随后立即将聚碳酸酯膜放置在加入80ppmK2Cr2O7的固体高氏一号培养基上，培养基在30±2℃下用纯培养法培养7天，将所有样品培养三份(n＝3)。
其中：放线菌可以穿透聚碳酸酯膜的孔，从而生长在固体培养基上，而加入的K2Cr2O7会抑制固体培养基上细菌和真菌的竞争生长；
高氏一号固体培养基配方为：0.5g/LKNO3、0.01g/LNaCl、0.01g/LFeSO4、0.5g/LKH2PO4、0.5g/LMgSO4、20g/L琼脂粉、20g/L可溶性淀粉，调节pH为7.2～7.4；
初筛：取富集培养后的高氏一号固体培养基，挑取培养基上颜色、形状和大小一致且干燥的放线菌单菌落分别在高氏一号固体培养基上划线，培养基在30±2℃下用纯培养法培养7天，将所有样品培养三份(n＝3)。一共纯化6-9次后获得多个初筛放线菌纯菌菌落；
复筛：将上述多个初筛纯菌菌落分别接种至高氏一号液体培养基中，在135r/min、30℃条件下培养5天作为种子液。分别将种子液按体积比6％加至反硝化作用检测培养基，在135r/min、30℃条件下震荡培养，于24h和48h检测硝酸盐和总氮的浓度，选取总氮去除效率最大的菌落作为最优菌种，将其命名为菌株LST24，经过送样测序后表明为纯菌株，完成复筛；
S2、菌株的分子生物学鉴定：
复筛中筛选得到的菌株LST24，进行16SrDNA基因序列分析，采用Omega DNA(Biotechnology，USA)试剂盒提取菌株LST24的基因组DNA，并以此为模板扩增16SrDNA，引物：27F(5’-AGTTTGATCMTGGCTCAG-3’)和1492R(5’-GGTTACCTTGTTACGACTT-3’)；
PCR反应体系(25μL)：模板DNA20-50ng/μL，PCRPremix12.5μL，27F(10μM)1μL，1492R(10μM)1μL，ddH2O9.5μL。PCR程序：95℃5min，94℃30s，57℃30s，72℃90s，72℃10min；扩增30个循环。PCR产物的纯化和测序由生工生物工程公司完成，将扩增的序列上传至NCBI，并使用GenBank数据库通过BLAST将获得的基因序列进行同源性序列比对；
菌株LST24的序列长度为1412bp，见图6中的序列表。经过比对，该序列与NCBI数据库的StreptomycesphaeofaciensJCM4814(NCBI登录号：NR041126.1)，相似性高达99.93％，属于链霉菌属(Streptomycessp.)。将其命名为高效好氧反硝化菌株(Streptomycesphaeofaciens)LST24；
S3、菌株好氧反硝化能力测定：
将LST24种子液按1％(体积比)的接种量接种至反硝化液体培养基，30℃，135rpm摇瓶培养48小时。期间每3小时取样测定菌体光密度(OD600)，总氮(TN)，氨氮(NH4+-N)、硝酸盐(NO3--N)、亚硝酸盐(NO2--N)和溶解性有机碳(DOC)的浓度。由图2中a图可知，0～9小时菌株处于迟缓期，9～45小时菌株处于对数期，培养45小时后菌株进入稳定期，菌株的DOC浓度在培养期间逐渐降低，培养48h后，菌株LST24在150mg/L初始DOC培养基中的DOC去除率为91.5％。此外，皮尔逊相关指数证实DOC浓度与细胞生长呈显著负相关(r＝-0.937，P<0.001，n＝17)，说明碳源可以为菌株LST24提供生长和代谢所需的能量和电子供体；由图2中B图可知，菌株培养48小时，硝酸盐去除率为99.12％，总氮去除率为97.18％，过程中无亚硝酸盐以及氨氮的明显积累。以上可见，菌株LST24具有明显的好氧反硝化能力；此外，由图3可知，菌株对环境的适应性较强且菌株的最佳培养条件为：淀粉作为碳源、碳氮比为10、转速为125rpm以及pH值为7的中性环境；
S4、菌株在微污染原水中的应用效果：
将菌株种子液按照5％体积比分别投加至加入景观水体原水和水源水库原水的好氧反应器中，氧气蠕动泵为该反应器提供连续曝气的环境。监测投加菌株LST24种子液后反应器的CODMn、氨氮、硝酸盐、亚硝酸盐和总氮去除情况以及细胞总数和OD600值；
菌株对景观水体原水处理见图4，TN浓度从7.08mg/L降至1.14mg/L，TN去除率为83.62％，CODMn浓度从7.01mg/L降至0.67mg/L，CODMn去除率为90.33％。此外，OD600在复杂的原水环境中呈增长趋势，反应第八天后OD600值达到0.16，反应器中细胞总数增长了9.5倍。
在实际应用中，好氧反硝化放线菌菌株LST24，经鉴定为Streptomycesphaeofaciens(NCBI登录号：OM980672)，属于链霉菌属(Streptomycessp.)，具有高效脱氮除碳特性，其中具有高效脱氮除碳特性的好氧反硝化菌株(Streptomycesphaeofaciens)LST24已于2021年12月25日保藏于西安建筑科技大学西北水资源与环境生态教育部重点实验室中，具有高效脱氮除碳特性好氧反硝化放线菌株LST24应用的工艺形式为好氧曝气，即将菌株LST24种子液接种到微污染原水水样中，并对水样进行曝气处理，具有高效脱氮除碳特性的好氧反硝化放线菌株LST24投加量为反应器容积的5％具有高效脱氮除碳特性的好氧反硝化放线菌株LST24能有效降低微污染水中的氨氮、硝酸盐、亚硝酸盐和CODMn的含量，在景观水体和水源水库等其他微污染水体的原位治理中具有较大的应用潜力。这对开发脱氮菌剂或污水处理剂具有广阔的应用前景。
以上所述，仅为本发明较佳的具体实施方式，但本发明的保护范围并不局限于此，任何熟悉本技术领域的技术人员在本发明揭露的技术范围内，根据本发明的技术方案及其发明构思加以等同替换或改变，都应涵盖在本发明的保护范围之内。
Claims (8)
1.一种高效好氧反硝化放线菌菌株，其特征在于：所述放线菌菌株为链霉菌属(Streptomycesphaeofaciens)LST24，所述放线菌菌株(Streptomyces phaeofaciens)LST24的16SrRNA的有效序列长度为1412bp，其序列如序列表所示。
2.根据权利要求1所述的一种高效好氧反硝化放线菌菌株，其特征在于：所述放线菌菌株(Streptomycesphaeofaciens)LST24是从景观水体上覆水中经过富集培养及分离纯化而得到的。
3.根据权利要求1所述的一种高效好氧反硝化放线菌菌株，其特征在于：所述放线菌菌株(Streptomycesphaeofaciens)LST24是硝酸盐作为唯一氮源生长。
4.根据权利要求1所述的一种高效好氧反硝化放线菌菌株，其特征在于：所述放线菌菌株(Streptomycesphaeofaciens)LST24适用于微污染水体的脱氮除碳。
5.根据权利要求1所述的一种高效好氧反硝化放线菌菌株，其特征在于：所述微污染水体是指污染物浓低于10mg/L(如：CODMn、氨氮、硝态氮、亚硝态氮)的水体。
6.根据权利要求1所述的一种高效好氧反硝化放线菌菌株，其特征在于：所述放线菌菌株(Streptomycesphaeofaciens)LST24是从景观水体上覆水样经富集培养后，依次经高氏一号培养基分离、好氧反硝化筛选后，接种于好氧反硝化液体培养基进行好氧连续培养。
7.根据权利要求1所述的一种高效好氧反硝化放线菌菌株，其特征在于：所述好氧连续培养是利用可溶性淀粉为碳源，其温度为30℃；所述链霉菌属(Streptomycesphaeofaciens)LST24的接种量为好氧反硝化液体培养基体积的1％。
8.根据权利要求1-7任一项所述的一株高效好氧反硝化放线菌菌株在微污染水治理中的应用，其具体步骤如下：
S1、菌株的获得与性能检测；
富集：在聚碳酸酯膜(0.22μm)上过滤100mL景观水体上覆水样，随后立即将聚碳酸酯膜放置在加入80ppmK2Cr2O7的固体高氏一号培养基上，培养基在30±2℃下用纯培养法培养7天，将所有样品培养三份(n＝3)。
其中：放线菌可以穿透聚碳酸酯膜的孔，从而生长在固体培养基上，而加入的K2Cr2O7会抑制固体培养基上细菌和真菌的竞争生长；
高氏一号固体培养基配方为：0.5g/LKNO3、0.01g/LNaCl、0.01g/LFeSO4、0.5g/LKH2PO4、0.5g/LMgSO4、20g/L琼脂粉、20g/L可溶性淀粉，调节pH为7.2～7.4；
初筛：取富集培养后的高氏一号固体培养基，挑取培养基上颜色、形状和大小一致且干燥的放线菌单菌落分别在高氏一号固体培养基上划线，培养基在30±2℃下用纯培养法培养7天，将所有样品培养三份(n＝3)。一共纯化6-9次后获得多个初筛放线菌纯菌菌落；
复筛：将上述多个初筛纯菌菌落分别接种至高氏一号液体培养基中，在135r/min、30℃条件下培养5天作为种子液。分别将种子液按体积比6％加至反硝化作用检测培养基，在135r/min、30℃条件下震荡培养，于24h和48h检测硝酸盐和总氮的浓度，选取总氮去除效率最大的菌落作为最优菌种，将其命名为菌株LST24，经过送样测序后表明为纯菌株，完成复筛；
S2、菌株的分子生物学鉴定：
复筛中筛选得到的菌株LST24，进行16SrDNA基因序列分析，采用Omega DNA(Biotechnology，USA)试剂盒提取菌株LST24的基因组DNA，并以此为模板扩增16SrDNA，引物：27F(5’-AGTTTGATCMTGGCTCAG-3’)和1492R(5’-GGTTACCTTGTTACGACTT-3’)；
PCR反应体系(25μL)：模板DNA20-50ng/μL，PCRPremix12.5μL，27F(10μM)1μL，1492R(10μM)1μL，ddH2O9.5μL。PCR程序：95℃5min，94℃30s，57℃30s，72℃90s，72℃10min；扩增30个循环。PCR产物的纯化和测序由生工生物工程公司完成，将扩增的序列上传至NCBI，并使用GenBank数据库通过BLAST将获得的基因序列进行同源性序列比对；
菌株LST24的序列长度为1412bp，见图6中的序列表。经过比对，该序列与NCBI数据库的StreptomycesphaeofaciensJCM4814(NCBI登录号：NR041126.1)，相似性高达99.93％，属于链霉菌属(Streptomycessp.)。将其命名为高效好氧反硝化菌株(Streptomycesphaeofaciens)LST24；
S3、菌株好氧反硝化能力测定：
将LST24种子液按1％(体积比)的接种量接种至反硝化液体培养基，30℃，135rpm摇瓶培养48小时。期间每3小时取样测定菌体光密度(OD600)，总氮(TN)，氨氮(NH4+-N)、硝酸盐(NO3--N)、亚硝酸盐(NO2--N)和溶解性有机碳(DOC)的浓度。由图2中a图可知，0～9小时菌株处于迟缓期，9～45小时菌株处于对数期，培养45小时后菌株进入稳定期，菌株的DOC浓度在培养期间逐渐降低，培养48h后，菌株LST24在150mg/L初始DOC培养基中的DOC去除率为91.5％。此外，皮尔逊相关指数证实DOC浓度与细胞生长呈显著负相关(r＝-0.937，P<0.001，n＝17)，说明碳源可以为菌株LST24提供生长和代谢所需的能量和电子供体；由图2中B图可知，菌株培养48小时，硝酸盐去除率为99.12％，总氮去除率为97.18％，过程中无亚硝酸盐以及氨氮的明显积累。以上可见，菌株LST24具有明显的好氧反硝化能力；此外，由图3可知，菌株对环境的适应性较强且菌株的最佳培养条件为：淀粉作为碳源、碳氮比为10、转速为125rpm以及pH值为7的中性环境；
S4、菌株在微污染原水中的应用效果：
将菌株种子液按照5％体积比分别投加至加入景观水体原水和水源水库原水的好氧反应器中，氧气蠕动泵为该反应器提供连续曝气的环境。监测投加菌株LST24种子液后反应器的CODMn、氨氮、硝酸盐、亚硝酸盐和总氮去除情况以及细胞总数和OD600值；
菌株对景观水体原水处理见图4，TN浓度从7.08mg/L降至1.14mg/L，TN去除率为83.62％，CODMn浓度从7.01mg/L降至0.67mg/L，CODMn去除率为90.33％。此外，OD600在复杂的原水环境中呈增长趋势，反应第八天后OD600值达到0.16，反应器中细胞总数增长了9.5倍。
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Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN117887593A (zh) * | 2024-03-13 | 2024-04-16 | 西安建筑科技大学 | 一种混合营养型反硝化菌Penicillium sp. N8及其应用 |
| CN117887593B (zh) * | 2024-03-13 | 2024-05-31 | 西安建筑科技大学 | 一种混合营养型反硝化菌Penicillium sp.N8及其应用 |
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- 2023-04-03 CN CN202310342441.9A patent/CN116606756A/zh active Pending
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