CN116413106A - 一种骨组织脱钙组合物及制备方法 - Google Patents

一种骨组织脱钙组合物及制备方法 Download PDF

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CN116413106A CN202310401973.5A CN202310401973A CN116413106A CN 116413106 A CN116413106 A CN 116413106A CN 202310401973 A CN202310401973 A CN 202310401973A CN 116413106 A CN116413106 A CN 116413106A
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Abstract

本发明公开了一种骨组织脱钙组合物及制备方法,包括以下原料成分:浓盐酸2‑4份、EDTA4‑6份、有机酸4‑8份、氯化钠4‑8份、甲醛8‑10份、表面活性剂0.1‑0.3份、复合脱钙剂1‑2份、Tris缓冲液6‑12份、PBS 61.6‑68.9份;有机酸包括冰醋酸、甲酸;表面活性剂包括TritonX‑100、CAB35、SDS;复合脱钙剂包括磷酸氢二钠、EDTA‑2Na、钙离子螯合剂。本发明骨组织脱钙组合物中盐酸的加入量比较低,但是脱钙效率良好。使用本发明得到的脱钙产物,不会导致免疫组化抗原破坏,染色效果很好。本发明骨组织脱钙组合物脱钙效率高,脱钙时间较快。

Description

一种骨组织脱钙组合物及制备方法
技术领域
本发明涉及病理检测技术领域,具体涉及一种骨组织脱钙组合物及制备方法。
背景技术
骨组织标本是病理科常见标本之一,骨组织与其他组织相比最大的特点是细胞基质中有大量的钙盐沉积,从而使骨组织成为最坚硬的组织。随着骨及相关组织的医学研究和科学探索的持续深入,对于骨组织的病理鉴定需要日益增加,但是由于骨组织强度、硬度很高,在病理切片过程中不能直接切割,须脱钙软化后才能进行后续的病理检测实验,因此,对于骨组织脱钙的研究需求也在逐渐增大。
目前,已知的脱钙液配方功能较为单一,温和的EDTA脱钙液脱钙时间较长,对于含钙量高、结构坚硬的骨组织,脱钙时间长达一周以上;硝酸、盐酸等酸类脱钙液配方对于骨组织形态的破坏比较大,而且后期相关骨细胞的染色鉴定也存在较大问题。
发明内容
针对现有技术的不足,本发明提供一种骨组织脱钙组合物,该骨组织脱钙组合物与现有技术相比,具有脱钙时间短,可以保持骨组织原有形态、细胞染色效果好等特点。
本发明方案为:
一种骨组织脱钙组合物,按重量份计,包括以下原料成分:
Figure BDA0004180086550000011
所述有机酸包括冰醋酸、甲酸中的至少一种;
所述表面活性剂包括TritonX-100、CAB35、SDS中的至少一种;表面活性剂TritonX-100、SDS、CAB35(椰油酰胺丙基甜菜碱)可以降低细胞膜厚度,改变细胞膜的通透性,一方面可以促使细胞内钙离子、钠离子等离子流出,加快脱钙速率,另一方面,可以使后续的生物学染色更加便捷。
所述复合脱钙剂包括磷酸氢二钠、EDTA-2Na、钙离子螯合剂,磷酸氢二钠、EDTA-2Na、钙离子螯合剂BAPTA的质量比为1:0.7-0.8:0.2-0.3。
磷酸氢二钠、EDTA-2Na、钙离子螯合剂BAPTA对于溶液中的钙、镁离子有着优异的螯合作用,与单一的螯合剂相比,本发明采用复合脱钙剂,螯合效率更高,可以更加快速降低溶液中钙、镁离子的浓度。
所述钙离子螯合剂BAPTA纯度为≥97%,采购于北京百奥莱博科技有限公司。
进一步的,所述表面活性剂为0.15份TritonX-100、0.15份CAB35。
进一步的,所述有机酸为冰醋酸2-4份、甲酸2-4份。
进一步的,所述复合脱钙剂还含有N,N-二乙基癸酰胺。N,N-二乙基癸酰胺可促进各组分快速渗透骨组织,提高脱钙效率。
进一步的,所述复合脱钙剂为磷酸氢二钠、EDTA-2Na、钙离子螯合剂BAPTA和N,N-二乙基癸酰胺按照质量比1:0.7-0.8:0.2-0.3:0.6-1复配而成。
进一步的,所述的骨组织脱钙组合物,按重量份计,包括以下原料成分:
Figure BDA0004180086550000021
所述有机酸为4份冰醋酸和4份甲酸;
所述表面活性剂为0.15份TritonX-100和0.15份CAB35;
所述复合脱钙剂为磷酸氢二钠、EDTA-2Na、钙离子螯合剂BAPTA按照1:0.7:0.3配比复配而成。
进一步的,所述的骨组织脱钙组合物的制备方法,包括以下步骤:
(1)称取PBS,加入Tris缓冲液,开始机械搅拌10min,搅拌机转速300转/min;
(2)依次加入氯化钠、复合脱钙剂,继续搅拌30min,搅拌机转速500转/min;
(3)继续加入EDTA、有机酸、浓盐酸、甲醛、表面活性剂,机械搅拌30min,搅拌机转速300转/min,待完全溶解后,即得骨组织脱钙组合物。
本发明的脱钙机理:盐酸、EDTA、甲酸等与骨组织沉积钙盐发生反应,从而使骨组织中的沉积钙盐形成Ca2+,溶液中的Ca2+浓度逐渐增大,复合脱钙剂与Ca2+发生螯合反应,快速降低溶液中Ca2+浓度,进而促进酸性物质与沉积钙盐进一步反应,如此反复,最终使骨组织达到可以切割的形态。
在本发明中,采用Tris缓冲液和1×PBS缓冲液作为溶剂,并在溶液中加入氯化钠,可以使本发明所述脱钙组合物的渗透压保持均衡,在酸性较强的情况下,仍然能够维持骨组织的环境稳定,与单纯使用去离子水作为溶剂相比,骨组织环境更加稳定、温和,对于细胞形态和细胞核结构有良好的保护作用。
以盐酸与甲酸、冰醋酸复合酸体系作为酸剂,甲酸、冰醋酸等单体有机酸虽然酸性比较弱,与沉积钙盐的反应速率较慢,但具有很强的穿透性,可以进入深层骨组织,为强酸进入打开通道,从而加快整个骨组织的脱钙反应。而且,与现有技术相比,本发明中盐酸的加入量比较低,只有传统盐酸脱钙液的一半左右,但是脱钙效率与传统盐酸脱钙液相当。使用传统盐酸脱钙液会导致免疫组化抗原破坏、HE染色细胞核发红等现象,使用本发明得到的脱钙产物,不会导致免疫组化抗原破坏,HE染色效果很好,而且更加便捷。
在本体系中,复合脱钙剂可以与表面活性剂相互配合,加快细胞内钙离子流出,使后期染色更加便捷;复合脱钙剂与酸体系配合,加快脱钙速率;这是本发明的创新之处。
与现有技术相比,本发明的有益效果是:
本发明骨组织脱钙组合物中盐酸的加入量比较低,只有传统盐酸脱钙液的一半左右,但是脱钙效率与传统盐酸脱钙液相当。
使用本发明得到的脱钙产物,不会导致免疫组化抗原破坏,HE染色效果很好,而且更加便捷。
本发明骨组织脱钙组合物操作简单、价廉、脱钙效率高,脱钙时间较快。
附图说明
图1脱钙液脱钙后的家兔肩胛骨组织横切面HE染色(×100)
图2脱钙液脱钙后周围骨骼肌肌肉(肩胛冈上肌、冈下肌)组织横切面HE染色(×100)
图3脱钙液脱钙后软骨HE染色(×400)
图4脱钙后骨小梁HE染色(×100)
图5脱钙后骨组织韧带和骨骼肌天狼猩红染色(×100)
图6脱钙后组织的III型胶原免疫组化(×100)
图7骨组织脱钙后透明软骨二型胶原免疫组化(×400)
图8脱钙后肩胛骨组织一型胶原免疫组化(×100)
图9脱钙后肩胛骨HE染色(×100)
图10脱钙后骨外软组织HE染色(×100)
具体实施方式
为了使本领域的普通技术人员更好的理解本发明技术内容,下面结合具体实施例对本发明做进一步的描述。
实施例1
骨组织脱钙组合物由以下重量组分原料组成:
Figure BDA0004180086550000041
所述浓盐酸质量分数为36%-38%,分析纯,采购于西陇化学;
所述有机酸为冰醋酸4份、甲酸2份;
所述表面活性剂为TritonX-100;
所述复合脱钙剂为磷酸氢二钠、EDTA-2Na、钙离子螯合剂BAPTA按照质量比1:0.8:0.2配比复配而成;
所述脱钙组合物的制备工艺包括以下步骤:
1.称取PBS,加入Tris缓冲液,开始机械搅拌10min,搅拌机转速300转/min;
2.依次加入氯化钠、复合脱钙剂,继续搅拌30min,搅拌机转速500转/min;
3.继续加入EDTA、有机酸、浓盐酸、甲醛、表面活性剂,机械搅拌30min,搅拌机转速300转/min,待完全溶解后,即得到所需骨组织脱钙组合物。
实施例2
骨组织脱钙组合物由以下重量组分原料组成:
Figure BDA0004180086550000051
所述浓盐酸质量分数为36%-38%,分析纯,采购于西陇化学;
所述有机酸为甲酸;
所述表面活性剂为SDS 0.1份、TritonX-100 0.1份;
所述复合脱钙剂为磷酸氢二钠、EDTA-2Na、钙离子螯合剂BAPTA按照质量比1:0.8:0.2配比复配而成;
所述脱钙组合物的制备工艺包括以下步骤:
1.称取PBS,加入Tris缓冲液,开始机械搅拌10min,搅拌机转速300转/min;
2.依次加入氯化钠、复合脱钙剂,继续搅拌30min,搅拌机转速500转/min;
3.继续加入EDTA、有机酸、浓盐酸、甲醛、表面活性剂,机械搅拌30min,搅拌机转速300转/min,待完全溶解后,即得到所需骨组织脱钙组合物。
实施例3
骨组织脱钙组合物由以下重量组分原料组成:
Figure BDA0004180086550000052
所述浓盐酸质量分数为36%-38%,分析纯,采购于西陇化学;
所述有机酸为冰醋酸;
所述表面活性剂为SDS;
所述复合脱钙剂为磷酸氢二钠、EDTA-2Na、钙离子螯合剂BAPTA按照质量比1:0.8:0.2配比复配而成;
所述脱钙组合物的制备工艺包括以下步骤:
1.称取PBS,加入Tris缓冲液,开始机械搅拌10min,搅拌机转速300转/min;
2.依次加入氯化钠、复合脱钙剂,继续搅拌30min,搅拌机转速500转/min;
3.继续加入EDTA、有机酸、浓盐酸、甲醛、表面活性剂,机械搅拌30min,搅拌机转速300转/min,待完全溶解后,即得到所需骨组织脱钙组合物。
实施例4
骨组织脱钙组合物由以下重量组分原料组成:
Figure BDA0004180086550000061
所述浓盐酸质量分数为36%-38%,分析纯,采购于西陇化学;
所述有机酸为4份冰醋酸、4份甲酸;
所述表面活性剂为0.15份TritonX-100、0.15份CAB35;
所述复合脱钙剂为磷酸氢二钠、EDTA-2Na、钙离子螯合剂BAPTA按照质量比1:0.7:0.3配比复配而成。
所述脱钙组合物的制备工艺包括以下步骤:
1.称取PBS,加入Tris缓冲液,开始机械搅拌10min,搅拌机转速300转/min;
2.依次加入氯化钠、复合脱钙剂,继续搅拌30min,搅拌机转速500转/min;
3.继续加入EDTA、有机酸、浓盐酸、甲醛、表面活性剂,机械搅拌30min,搅拌机转速300转/min,待完全溶解后,即得到所需骨组织脱钙组合物。
实施例5
常规盐酸骨组织脱钙液由以下重量份原料组成:
Figure BDA0004180086550000071
实施例6
常规盐酸骨组织脱钙液由以下重量份原料组成:
EDTA-2Na 10份
甲醛 10份
纯水 80份
上述实施例中,实施例1-4为本发明所述的组织脱钙组合物,实施例5、实施例6为对照脱钙液。
本发明的测试以新西兰大白兔肩胛骨为实验对象,其他动物样本可根据样本的坚硬程度以及组织样本的大小,参考本试验方法进行时间以及用量上的调整。
测试过程包括以下步骤:
1.将待脱钙组织样本放置于4%甲醛PBS的液体中固定10h;
2.将固定好的组织样本放置于本发明所述的脱钙液组合物中进行脱钙,等到骨组织可以钢针扎、刀片切割无阻力,即达到所需的脱钙效果;
3.采用冰冻切片或石蜡切片;
4.采用HE、天狼猩红染色;
5.免疫组化分析;
性能检测结果:
表1不同实施例的脱钙时间
实施例1 实施例2 实施例3 实施例4 实施例5 实施例6
脱钙时间(h) 10 8.5 8 7.5 8 160
注:10次平行试验取平均值
苏木精染液为碱性,主要使细胞核内的染色质与胞质内的核糖体着紫蓝色;伊红为酸性染料,主要使细胞质和细胞外基质中的成分着红色;天狼猩红染色液可将胶原染成红色。
本发明图1-8为采用实施例4所述脱钙组合物进行脱钙后的检测图片,图9、图10为采用实施例5脱钙后的图片。
图1、图2为脱钙液脱钙后的家兔肩胛骨及其周围骨骼肌肌肉(肩胛冈上肌、冈下肌)组织横切面HE染色,如图所示细胞核在苏木素的作用下呈现结构和边缘清晰的蓝紫色,与伊红染色的粉红色呈现鲜明对比组织形态较为清晰。由此可以证明在本发明所述脱钙液快速脱钙后,细胞的酸碱性没有明显破坏,组织结构和纤维走向也保持着较为鲜活的状态。
图3为软骨脱钙后HE染色,从图中可以看到,脱钙后软骨细胞结构清晰,细胞外基质结构完整。
图4为脱钙后骨小梁HE染色,从图中可以看到,网状结构组织完整,细胞结构清晰可见。
图5为脱钙后骨组织韧带和骨骼肌天狼猩红染色,狼猩红染色可将胶原染为红色,从图中可以看到,组织结构清晰,由此可以证明在经过本发明脱钙液处理后,细胞或组织呈现的蛋白没有被破坏。
图6脱钙后组织的III型胶原免疫组化,组织可以与III型胶原抗体特异性结合,使得阳性部分呈现棕色,从图中可以看到,组织结构清晰,经过脱钙后组织依然保有较好的III型胶原的抗体活性。
图7骨组织脱钙后透明软骨Ⅱ型胶原免疫组化,图中细胞核清晰,细胞外基质组织完整,在透明软骨细胞内的Ⅱ型胶原分布清晰,脱钙后组织依然保有较好的Ⅱ型胶原的抗性活性。
图8脱钙后肩胛骨组织I型胶原免疫组化,组织可以与一型胶原抗体特异性结合,使得阳性部分呈现棕色,从图中可以看到,组织结构清晰,经过脱钙后,组织依然保有较好的I型胶原的抗体活性。
图9为快速脱钙后的肩胛骨HE染色,从图中可以看到,细胞核发红,染色效果很差。
图10为快速脱钙后周围组织HE染色,从图中可以看到,组织结构混乱,细胞外基质结构基本被破坏。
实施例7
骨组织脱钙组合物由以下重量组分原料组成:
浓盐酸 3份
EDTA 4份
Figure BDA0004180086550000091
所述浓盐酸质量分数为36%-38%,分析纯,采购于西陇化学;
所述有机酸为冰醋酸4份、甲酸4份;
所述表面活性剂为TritonX-100;
所述复合脱钙剂为磷酸氢二钠、EDTA-2Na、钙离子螯合剂BAPTA按照质量比1:0.7:0.3配比复配而成。
所述脱钙组合物的制备工艺包括以下步骤:
1.称取PBS,加入Tris缓冲液,开始机械搅拌10min,搅拌机转速300转/min;
2.依次加入氯化钠、复合脱钙剂,继续搅拌30min,搅拌机转速500转/min;
3.继续加入EDTA、有机酸、浓盐酸、甲醛、表面活性剂,机械搅拌30min,搅拌机转速300转/min,待完全溶解后,即得到所需骨组织脱钙组合物。
实施例8
骨组织脱钙组合物由以下重量组分原料组成:
Figure BDA0004180086550000092
所述浓盐酸质量分数为36%-38%,分析纯,采购于西陇化学;
所述有机酸为冰醋酸4份、甲酸4份;
所述表面活性剂为CAB35;
所述复合脱钙剂为磷酸氢二钠、EDTA-2Na、钙离子螯合剂BAPTA按照质量比1:0.7:0.3配比复配而成。
所述脱钙组合物的制备工艺包括以下步骤:
1.称取PBS,加入Tris缓冲液,开始机械搅拌10min,搅拌机转速300转/min;
2.依次加入氯化钠、复合脱钙剂,继续搅拌30min,搅拌机转速500转/min;
3.继续加入EDTA、有机酸、浓盐酸、甲醛、表面活性剂,机械搅拌30min,搅拌机转速300转/min,待完全溶解后,即得到所需骨组织脱钙组合物。
实施例9
骨组织脱钙组合物由以下重量组分原料组成:
Figure BDA0004180086550000101
所述浓盐酸质量分数为36%-38%,分析纯,采购于西陇化学;
所述有机酸为冰醋酸4份、甲酸4份;
所述表面活性剂为0.15份TritonX-100、0.15份CAB35;
所述复合脱钙剂为磷酸氢二钠、EDTA-2Na、钙离子螯合剂BAPTA、N,N-二乙基癸酰胺按照质量比1:0.7:0.3:1配比复配而成。
所述脱钙组合物的制备工艺包括以下步骤:
1.称取PBS,加入Tris缓冲液,开始机械搅拌10min,搅拌机转速300转/min;
2.依次加入氯化钠、复合脱钙剂,继续搅拌30min,搅拌机转速500转/min;
3.继续加入EDTA、有机酸、浓盐酸、甲醛、表面活性剂,机械搅拌30min,搅拌机转速300转/min,待完全溶解后,即得到所需骨组织脱钙组合物。
实施例10
骨组织脱钙组合物由以下重量组分原料组成:
Figure BDA0004180086550000102
Figure BDA0004180086550000111
所述浓盐酸质量分数为36%-38%,分析纯,采购于西陇化学;
所述有机酸为冰醋酸4份、甲酸4份;
所述表面活性剂为0.15份TritonX-100、0.15份CAB35;
所述复合脱钙剂为磷酸氢二钠、EDTA-2Na、钙离子螯合剂BAPTA、N,N-二乙基癸酰胺按照质量比1:0.7:0.3:0.6配比复配而成。
所述脱钙组合物的制备工艺包括以下步骤:
1.称取PBS,加入Tris缓冲液,开始机械搅拌10min,搅拌机转速300转/min;
2.依次加入氯化钠、复合脱钙剂,继续搅拌30min,搅拌机转速500转/min;
3.继续加入EDTA、有机酸、浓盐酸、甲醛、表面活性剂,机械搅拌30min,搅拌机转速300转/min,待完全溶解后,即得到所需骨组织脱钙组合物。
统计实施例7~10的脱钙时间,结果如表2所示。
表2不同实施例的脱钙时间
实施例7 实施例8 实施例9 实施例10
脱钙时间(h) 9.5 8.3 5 5
以上实施例7-实施例10脱钙后的染色效果与实施例4相似,但脱钙时间与实施例4相比,有显著差异。对比实施例4、实施例7和实施例8可知,选择TritonX-100和CAB35复配作为表面活性剂,可有效缩短脱钙时间,提高脱钙效率。对比实施例4、实施例9和实施例10可知,复合脱钙剂中添加N,N-二乙基癸酰胺可进一步显著提高脱钙效率,脱钙时间缩短至5h。
以上所述仅为本发明的部分实施例,并不用以限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内,所做的任何修改、等同替换、改进等,均落入本发明的保护范围之内。

Claims (7)

1.一种骨组织脱钙组合物,其特征在于,按重量份计,包括以下原料成分:
Figure FDA0004180086520000011
所述有机酸包括冰醋酸、甲酸中的至少一种;
所述表面活性剂包括TritonX-100、CAB35、SDS中的至少一种;
所述复合脱钙剂包括磷酸氢二钠、EDTA-2Na、钙离子螯合剂BAPTA,磷酸氢二钠、EDTA-2Na、钙离子螯合剂BAPTA质量比为1:0.7-0.8:0.2-0.3。
2.根据权利要求1所述的骨组织脱钙组合物,其特征在于,所述表面活性剂为0.15份TritonX-100、0.15份CAB35。
3.根据权利要求1所述的骨组织脱钙组合物,其特征在于,所述有机酸为冰醋酸2-4份、甲酸2-4份。
4.根据权利要求1所述的骨组织脱钙组合物,其特征在于,所述复合脱钙剂还含有N,N-二乙基癸酰胺。
5.根据权利要求1所述的骨组织脱钙组合物,其特征在于,所述复合脱钙剂为磷酸氢二钠、EDTA-2Na、钙离子螯合剂BAPTA和N,N-二乙基癸酰胺按照1:0.7-0.8:0.2-0.3:0.6-1质量比复配而成。
6.根据权利要求1所述的骨组织脱钙组合物,其特征在于,按重量份计,包括以下原料成分:
Figure FDA0004180086520000012
Figure FDA0004180086520000021
所述有机酸为4份冰醋酸和4份甲酸;
所述表面活性剂为0.15份TritonX-100和0.15份CAB35;
所述复合脱钙剂为磷酸氢二钠、EDTA-2Na、钙离子螯合剂BAPTA按照1:0.7:0.3配比复配而成。
7.权利要求1至权利要求6任一项所述的骨组织脱钙组合物的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)称取PBS,加入Tris缓冲液,开始机械搅拌10min,搅拌机转速300转/min;
(2)依次加入氯化钠、复合脱钙剂,继续搅拌30min,搅拌机转速500转/min;
(3)继续加入EDTA、有机酸、浓盐酸、甲醛、表面活性剂,机械搅拌30min,搅拌机转速300转/min,待完全溶解后,即得骨组织脱钙组合物。
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN117582557A (zh) * 2024-01-19 2024-02-23 四川恒普科技有限公司 脱矿骨纤维及其制备方法
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