CN116334255A - 一种沙门氏菌新型核酸检测试剂盒及其非诊断性检测方法 - Google Patents

一种沙门氏菌新型核酸检测试剂盒及其非诊断性检测方法 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种沙门氏菌新型核酸检测试剂盒及其非诊断性检测方法,所述试剂盒包括反应缓冲液、Bst DNA聚合酶、dNTPs、甜菜碱、石墨化碳纳米管、聚乙二醇甲醚、SYBR Green I、检测引物,所述检测引物序列如SEQ ID NO.1和SEQ ID NO.2所示。与传统检测试剂盒和方法相比,本发明方法具有简便快捷、特异性强、灵敏度高、重复性好的优点,在检测效率与检测成本方面均明显优于现行国标检测方法,适合于批量检测。

Description

一种沙门氏菌新型核酸检测试剂盒及其非诊断性检测方法
技术领域
本发明属于分子生物学检测技术领域,具体涉及一种沙门氏菌核酸检测试剂盒及其非诊断性检测方法。
背景技术
沙门氏菌(Salmonella)是肠杆菌科中最常见的人畜共患病原菌,常寄生于动物和人体肠道内,最早由美国兽医专家Daniel Salmon于1885年首次分离。不论发达国家还是发展中国家,沙门氏菌都是导致人类感染的重要食源性细菌。由沙门氏菌引起的食物中毒是所有细菌性食物中毒中比例最高,危害最广的一种,约占细菌性食物中毒的42.6%-60%。据世界卫生组织估计,每年约有135万人感染沙门氏菌,主要是由于食物污染造成的。沙门氏菌最易传播的来源是,切块的水果,不干净的蔬菜和生食,特别是各种生肉和生鸡蛋是重要的传染源。根据国际惯例,要求对易受沙门氏菌污染的食品进行分类管理,以使大多数食物不含沙门氏菌,从而有效预防沙门氏菌病。
目前国内外对于沙门氏菌的检测标准都是基于传统培养结合血清学分型的方法(如GB/T 4789.4-2008,SN 0170-92,AOAC 967.25-967.28,ISO 6579:2002/Amd 1:2007等),由于上述方法包括前处理、预增菌、选择性增菌、选择性培养、生化鉴定和血清学测试等,过程非常繁琐且费时(5~7天),不能达到及时发现病原、控制传播途经,消除污染源的疫病防控要求。随着科技的发展,以PCR、LAMP等分子生物学方法在沙门氏菌的快速检测中得到逐步应用,但上述方法仍存在诸多缺陷。例如,PCR方法灵敏度相对偏低,检测时间也相对偏长,且为提高检出率通常需要增菌后检测;LAMP方法虽灵敏度大幅提高,检测时间也缩短,但极易发生气溶胶污染,且因引物较多易造成引物二聚体,无法通过琼脂糖凝胶电泳辨别假阳性结果。
基于上述原因,本发明提供一种新型的沙门氏菌核酸检测方法,可有效解决传统PCR和LAMP检测中的缺陷,仅使用一对引物,就可以达到简便快捷、特异性强、灵敏度高、重复性好等优点。
发明内容
本发明针对细菌学检测与传统核酸检测技术在沙门氏菌检测中存在的不足,特别是如何提高检测效率、灵敏度与特异性,提供了一种特异性检测沙门氏菌的新型核酸检测试剂盒及其非诊断性检测方法。
本发明技术方案如下:
本发明提供了一种特异性检测沙门氏菌的新型核酸检测试剂盒及其非诊断性检测方法,所述沙门氏菌的核酸检测试剂盒包括10×反应缓冲液、8000U/μl Bst DNA聚合酶、10mM dNTPs、检测引物、甜菜碱、石墨化碳纳米管、聚乙二醇甲醚、阳性对照和阴性对照;所述检测引物为SEQ ID NO.1的引物和SEQ ID NO.2的引物的组合。
本发明通过使用特别设计的一对检测引物,就可以实现特异性强、灵敏度高的优点。特别需要说明的是,本发明的试剂盒加入石墨化碳纳米管后的扩增条带,有单一的目的特异性条带(如图1所示)。本发明设计是在链交换扩增(使用一对引物进行等温扩增)的基础上改进的(仍使用一对引物,分两步进行扩增)。研究发现,在不加入石墨化碳纳米管的情况下,会出现类似链交换扩增的非特异性扩增现象(如图1所示,出现引物二聚体而特异性条带不清晰等),所以通过加入石墨化碳纳米管等新型纳米材料可以最大限度的提高反应特异性。石墨化碳纳米管对基因扩增的机制不明,据推测由于表面电荷性质,可与单链DNA形成相对稳定的结构,而双链DNA由于双链间氢健作用力更稳定,所以不会石墨化碳纳米管结合。因此,石墨化碳纳米管可以吸附多余未参加反应的引物单链,以防止引物二聚体的产生,有效提高反应特异性。
本发明的试剂盒中加入甜菜碱可帮助DNA聚合酶顺利通过DNA某些复杂二级结构,防止DNA聚合酶从模板DNA中解离。DNA局部区域因含有多个复杂碱基(Py-G-C),会促使DNA聚合酶的停滞,最终导致DNA聚合酶停止有效延伸。而甜菜碱可提高DNA小沟中富含鸟嘌呤和胞嘧啶区域的鸟嘌呤和胞嘧啶的水合作用,影响DNA分子结构,改变DNA灵活性,帮助DNA聚合酶沿着DNA模板延伸。其次,甜菜碱可消除变性温度对碱基的依赖性。浓度依赖性降低高GC含量序列的Tm,并使不同引物的Tm相接近,最终降低DNATm值。此外,甜菜碱溶液可稳定DNA-蛋白复合物。
进一步的,所述阳性对照为沙门氏菌ATCC14028基因组DNA,所述阴性对照为无菌生理盐水
进一步的,所述沙门氏菌试剂盒检测体系的组分为:每25μL反应液中包括10×反应缓冲液2.5μL,Bst DNA聚合酶1μL,dNTPs 3.5μL,10×SYBR Green I 2.5μL,甜菜碱(10mM)1.2μL,聚乙二醇甲醚0.8μL,石墨化碳纳米管溶液(10ng/μL)1.5μL,SAL-F和SAL-R各1.5μL,待检样品DNA 3μL,其余为灭菌生理盐水。
进一步的,所述沙门氏菌检测方法的反应流程为:74℃1秒,60℃1秒,循环总数45。
进一步的,所述10×反应缓冲液含有200mM Tris-HCl,100mM(NH4)2SO4,500mMKCl,20mM MgSO4,1%TritonX-100,pH 8.0~8.8。
进一步的,所述沙门氏菌检测方法的引物序列如SEQ ID NO.1和SEQ ID NO.2所示。
进一步的,所述dNTPs包括dGTP、dCTP、dATP、dTTP,各组分浓度均为2.5mM。
更进一步的,一种使用沙门氏菌检测试剂盒进行非诊断性检测的方法,包括以下步骤:
S1:使用煮沸法或商品化试剂盒提取细菌基因组DNA,得到检测模板。
S2:扩增反应,将10×反应缓冲液、dNTPs、TaqDNA聚合酶、检测引物以及DNA模板加入灭菌反应管中,添加灭菌生理盐水至总体积25μl,同时设置阳性、阴性对照,使用荧光定量PCR仪进行扩增反应;采用3%琼脂糖凝胶电泳对扩增产物进行电泳检测并分析结果。
相比于现有技术,本发明的有益效果为:
本发明根据比较基因组学筛选的沙门氏菌特异基因序列设计引物,具有灵敏度高,特异性强的优点。同时,本发明只需通过一次反应,即可对沙门氏菌进行快速检测,相比传统的细菌学结合血清学分型的检测方法,在检测时间与检测成本方面具有较大优势,适合于批量检测。
附图说明
图1为实施例1中琼脂糖凝胶电泳检测结果。图中:M为Takara 20bp DNALadder(Dye Plus),泳道1为含石墨化碳纳米管体系检测沙门氏菌ATCC14028,泳道2为不含石墨化碳纳米管检测沙门氏菌ATCC14028,泳道3为阴性对照;
图2为实施例3中抗干扰评价实验的检测结果。图中:1为稀释10000倍的沙门氏菌增菌液;2为增菌液的混合物,即沙门氏菌、大肠埃希氏菌、奇异变形杆菌、福氏志贺氏菌和肺炎克雷伯氏菌的增菌液稀释10000倍后,按1:1:1:1:1的比例混合;3为阴性对照;
图3为实施例4中敏感性评价的检测结果。图中:1为6.8×102copies/μl,2为6.8×101copies/μl,3为6.8×100copies/μl,4为6.8×10-1copies/μl,5为6.8×10-2copies/μl,6为阴性对照。
具体实施方式
下面结合实施例和附图对本发明做进一步的说明,以下所述,仅是对本发明的较佳实施例而已,并非对本发明做其他形式的限制,任何熟悉本专业的技术人员可能利用上述揭示的技术内容加以变更为同等变化的等效实施例。凡是未脱离本发明方案内容,依据本发明的技术实质对以下实施例所做的任何简单修改或等同变化,均落在本发明的保护范围内。
实施例1沙门氏菌核酸检测方法的建立
引物的设计:根据GenBank数据库中已知的沙门氏菌DNA序列及其它物种DNA序列,通过分析比对后,筛选出沙门氏菌通用核苷酸序列,在此基础上设计、优选得到用于特异性检测沙门氏菌的引物,如下表所示。
表1沙门氏菌核酸检测引物序列
Figure BDA0003855192460000041
模板制备:将沙门氏菌ATCC14028在营养肉汤培养基中增菌培养,使用商品化的细菌基因组DNA抽提试剂盒提取细菌基因组DNA,作为待检模板。
检测试剂的配制:10×反应缓冲液(其组分包括200mM Tris-HCl,100mM(NH4)2SO4,500mM KCl,20mM MgSO4,1%Triton X-100,pH 8.0~8.8)、dNTPs(包含dGTP、dCTP、dATP、dTTP,各组分浓度均为2.5mM)、Bst DNA聚合酶(8U/μl)、10μM检测引物、0.5μL聚乙二醇甲醚、甜菜碱(10mM)、石墨化碳纳米管溶液(10ng/μL)、10×SYBR Green I。此外,设置石墨化碳纳米管缺省对照组。
检测体系及扩增程序:检测体系为25μL,具体包括:每25μL反应液中包括10×反应缓冲液2.5μL,Bst DNA聚合酶1μL,dNTPs 3.5μL,10×SYBR Green I 2.5μL,甜菜碱(10mM)1.2μL,聚乙二醇甲醚0.8μL,石墨化碳纳米管溶液(10ng/μL)1.5μL,SAL-F和SAL-R各1.5μL,待检样品DNA 3μL,其余为灭菌生理盐水。扩增程序的步骤包括74℃1秒,60℃1秒,循环总数45。
检测结果的判定:当反应结束后,荧光曲线起峰(荧光值大于0.0001)判定为阳性;当荧光曲线未起峰(荧光值小于等于0.0001)时判定为阴性。或取5μl扩增产物,加1μl6×Loading buffer混匀,点样于3%琼脂糖凝胶电泳板孔中,100V电压,电泳40min,于凝胶成像仪下拍照判定,可见约47bp大小的的清晰条带,而缺省石墨化碳纳米管对照组几乎未见特异性条带,而出现明显的引物二聚体(如图1)。
实施例2特异性评价实验
用实施例1的方法进行本发明检测方法的特异性评价,将24株参考菌株在脑心浸液肉汤培养基中增菌培养,将增菌液稀释10000倍后使用商品化的细菌基因组DNA抽提试剂盒提取细菌基因组DNA,按照实施例1所述方法进行检测,结果如表2所示,只有沙门氏菌(序号1-14)的检测结果为阳性,其它种属细菌均为阴性。
表2本发明特异性评价试验结果
Figure BDA0003855192460000042
Figure BDA0003855192460000051
实施例3抗干扰评价实验
用实施例1的方法进行本发明检测方法的敏感性评价。分别将沙门氏菌ATCC14028、大肠埃希氏菌ATCC25922、奇异变形杆菌ATCC12453、福氏志贺氏菌CMCC51572和肺炎克雷伯氏菌ATCC700603接种营养肉汤培养基增菌培养,再将增菌液分别稀释10000倍后使用商品化的细菌基因组DNA抽提试剂盒提取细菌基因组。将提取的基因组分为2份,1号样品仅含沙门氏菌ATCC14028,2号样品为沙门氏菌、大肠埃希氏菌、奇异变形杆菌、志贺氏菌和肺炎克雷伯氏菌基因组按1:1:1:1:1比例混合,3号样品为阴性对照。按照实施例1所述方法进行检测,结果如图2所示,1号样品和2号样品均显示出明显的荧光曲线,3号样品无荧光曲线出现,表明本发明方法具有较好的抗干扰能力。
实施例4灵敏度评价实验
用实施例1的方法进行本发明检测方法的敏感性评价。将沙门氏菌ATCC14028在营养肉汤培养基中增菌培养,使用商品化的细菌基因组DNA抽提试剂盒提取基因组,测定原始浓度后10倍梯度稀释,对不同稀释梯度细菌基因组DNA进行扩增。由图3可知本发明方法检测沙门氏菌的最低下限可达0.68拷贝,具有较高的灵敏度和应用价值。
实施例5稳定性评价实验
用实施例1的方法进行本发明检测方法的重复性评价。以沙门氏菌ATCC14028基因组DNA为模板,分别进行10次扩增测试。结果见表3,由表可见,荧光信号时间阈值(Tt)相对稳定(变异系数约为4.1%),阴性对照无荧光信号时间阈值,表明该方法具有较好的稳定性。
表3稳定性测试结果
Figure BDA0003855192460000061
实施例6检测试剂盒的组装
根据实施例1表中的序列合成沙门氏菌特异性检测引物,用灭菌生理盐水稀释为10μM浓度,等体积混合后得到检测引物;使用商品化的细菌基因组DNA抽提试剂盒提取沙门氏菌ATCC14028基因组DNA作为阳性对照;核酸扩增试剂:10×反应缓冲液(其组分包括200mM Tris-HCl,100mM(NH4)2SO4,500mM KCl,20mM MgSO4,1%Triton X-100,pH8.6~8.8)、dNTPs(包含dGTP、dCTP、dATP、dTTP,各组分浓度均为2.5mM)、Bst DNA聚合酶(8000U/μl)、甜菜碱(10mM)、聚乙二醇甲醚、石墨化碳纳米管溶液(10ng/μL)检测引物、阳性对照以及阴性对照(无菌生理盐水)。
将以上所涉试剂和产品共同包装,再配以产品使用说明书(包括产品保存条件、反应程序和结果判定方法等),组装成本发明所述的沙门氏菌新型核酸检测试剂盒。
实施例7临床样品检测
用实施例1的方法进行对临床送检的342份沙门氏菌病样品(死胚、弱雏等)进行检测,同时使用沙门氏菌国家标准(GB/T 4789.4-2008)中的方法进行沙门氏菌分离鉴定。结果如表4所示,在342株临床分离株中,本发明提供的检测方法与国标检测方法均检测出37株沙门氏菌,2种检测方法符合率达100%,表明本发明的检测方法具有较好特异性。此外GB/T 4789.4-2008标准鉴定沙门氏菌需要5天时间,采用本发明试剂盒检测仅需约半小时。
表4临床样本验证测试结果
Figure BDA0003855192460000071
尽管已经示出和描述了本发明的实施例,对于本领域的普通技术人员而言,可以理解在不脱离本发明的原理和精神的情况下可以对这些实施例进行多种变化、修改、替换和变型,本发明的范围由所附权利要求及其等同物限定。

Claims (7)

1.一种沙门氏菌新型核酸检测试剂盒,其特征在于,所述的试剂盒包括:1)反应缓冲液;2)检测引物:正向引物SAL-F和反向引物SAL-R,所述的SAL-F和SAL-R引物序列如SEQ IDNO.1和SEQ ID NO.2所示;3)Bst DNA聚合酶;4)dNTPs;5)SYBR Green I;6)甜菜碱;7)聚乙二醇甲醚;8)石墨化碳纳米管。
2.根据权利要求1所述的多杀性巴氏杆菌新型核酸检测试剂盒,其特征在于,所述试剂盒还包括:9)阳性对照:沙门氏菌ATCC14028基因组DNA;10)阴性对照:灭菌生理盐水。
3.根据权利要求1所述的沙门氏菌新型核酸检测试剂盒,其特征在于,所述的反应缓冲液含有Tris-HCl、氯化钾、硫酸铵、硫酸镁和Triton X-100。
4.根据权利要求1所述的一种沙门氏菌新型核酸检测试剂盒,其特征在于,正向引物SAL-F和反向引物SAL-R的浓度均为10pmol/μL。
5.根据权利要求1所述的一种沙门氏菌新型核酸检测试剂盒,其特征在于,该试剂盒的检测反应体系为:每25μL反应液中包括10×反应缓冲液2.5μL,Bst DNA聚合酶1μL,dNTPs3.5μL,10×SYBR Green I 2.5μL,10mM甜菜碱1.2μL,聚乙二醇甲醚0.8μL,10ng/μL石墨化碳纳米管溶液1.5μL,SAL-F和SAL-R各1.5μL,待检样品DNA 3μL,其余为灭菌生理盐水。
6.权利要求1-5任意一项所述的一种沙门氏菌新型核酸检测试剂盒在制备检测沙门氏菌的试剂中的应用。
7.一种使用权利要求1-5任意一项所述的沙门氏菌核酸检测试剂盒进行非诊断性检测的方法,包括以下步骤:
S1:使用煮沸法或商品化试剂盒提取细菌基因组DNA,得到检测模板。
S2:将缓冲液、Bst DNA聚合酶、dNTPs、SYBR Green I、甜菜碱、聚乙二醇甲醚、石墨化碳纳米管溶液、检测引物以及DNA模板加入灭菌反应管中,添加灭菌生理盐水至总体积25μl,同时设置阳性、阴性对照,使用荧光定量PCR仪进行扩增反应;
S3:当反应结束后,荧光曲线起峰,即荧光值大于0.001,判定为阳性;当荧光曲线未起峰,即荧光值小于等于0.001,时判定为阴性;或采用3%琼脂糖凝胶电泳对扩增产物进行电泳检测并分析结果。
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