CN116139205A - 一种化橘红提取物及其提取方法和应用 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一种化橘红提取物的提取方法。所述提取方法包括如下步骤:取化橘红的乙醇‑乙酸乙酯提取液,萃取,萃取部位再依次采用不同配比的石油醚‑乙酸乙酯混合溶液进行梯度洗脱分离,收集目标洗脱液组分,硅胶薄层色谱分离,获得化橘红提取物;其中,石油醚和乙酸乙酯的体积比为(10~0):(0~10);目标洗脱液组分为石油醚和乙酸乙酯的体积比为(2.5~3):1时的洗脱液组分。提取获得的化橘红提取物以酸橙素烯醇为有效活性成分,不仅对于肿瘤细胞具有细胞毒活性,能够有效地抑制肿瘤细胞的克隆形成能力和横向迁移能力,还可减缓移植瘤的荷瘤生长、降低荷瘤体积以及荷瘤瘤重,起到了优异的抗肿瘤作用。

Description

一种化橘红提取物及其提取方法和应用
技术领域
本发明属于中药活性成分提取技术领域。更具体地,涉及一种化橘红提取物及其提取方法和应用。
背景技术
肺癌是全球发病率第二、致死率最高、预后差的肿瘤类型,全球肺癌新发病例的估计值为220.7万,死亡病例的估计值为179.6万,而非小细胞肺癌(Non-Small Cell LungCancer,NSCLC)是肺癌中临床最常见的一种组织学亚型。目前NSCLC的治疗方案有外科手术、放疗、化疗、靶向治疗、免疫治疗及其组合疗法等,使NSCLC的管理进入个性化时代,但NSCLC的年新发病例仍在百万级别、五年相对生存率仅为26%,同时治疗成本高昂、药物毒性较大、易产生耐药性、耐受性,影响生活质量而使NSCLC患者总体生存获益不高,因此NSCLC成为危害人类健康和社会经济的公共卫生问题。研发高效低毒、不易产生耐药性的抗肺癌药物来干预肺癌进展仍然是当前国内外新药研究的一个热点与急迫需要。
据统计,获批上市的抗肿瘤药物中有63%来源于天然产物,中药及传统天然药物是抗肿瘤新药来源的一个宝库。中医药理论对肿瘤的认识中,肿瘤多为痰阻、气滞、血瘀、热毒等相互搏结而成,部分肺癌症状属于“痰证”范畴,肺癌的治疗可以选择从“痰”论治,中医药理论为源于中药的抗肿瘤新药研发提供了理论指导,缩小抗肿瘤中药的品种筛选范围。
化橘红(Exocarpium Citri grandis)归肺、脾经,具有理气宽中,燥湿化痰功效,主治咳嗽痰多,食积伤酒,呕恶痞闷等症状,临床上多应用于止咳化痰方面。中药资源方面,《广东省岭南中药材保护条例》将化橘红列为首个岭南八大中药材保护对象,加强了中药资源保护力度,化橘红按商品规格可分为毛橘红和光橘红,对应的基原植物分别为芸香科柑橘属化州柚Citrus grandis Tomentosa和柚C.grandis(L.)Osbeck,入药部位均为未成熟或近成熟的干燥外层果皮,其中化州柚为柚的变种之一,仅栽培种植于中国广东省化州市,由于两种植物属于变种与种的关系,毛橘红和光橘红的化学成分类似,但在临床应用上,毛橘红的止咳化痰功效优于光橘红,具有道地性特征。中国专利CN10730554A公开了一种化橘红提取物及其在制备治疗APEI介导的疾病的药物中的应用,化橘红提取物包括如下重量百分比的有效成分:川陈皮素20~30%;槲皮素10~20%;柚皮甙30~40%,所述化橘红提取物可抑制A549细胞系APE1蛋白表达并对A549细胞系产生细胞毒作用,具有作为APE1抑制剂使用的前景。但是现有的化橘红止咳化痰的功效物质基础为以柚皮苷为主要成分的黄酮类,且为多类提取物组合,其作用机制与抑制快速适应性肺部牵张感受器(RARs)放电等途径有关,目前化橘红黄酮类、化橘红柚皮苷分别被开发成中药五类新药、化学一类新药进入临床试验阶段,但是现有关于化橘红提取物可用于抗肿瘤的报道仍较少,且提取物内不同有效成分的含量不同,其抗肿瘤效果也具有较大差距。
发明内容
针对上述现有的技术问题,本发明的首要目的在于提供一种新的化橘红提取物的提取方法,通过优化所述提取方法,提取获得的化橘红提取物以酸橙素烯醇为有效活性成分,不仅对于肿瘤细胞具有细胞毒活性,能够有效地抑制肿瘤细胞的克隆形成能力和横向迁移能力,还可减缓移植瘤的荷瘤生长、降低荷瘤体积以及荷瘤瘤重,起到了优异的抗肿瘤作用。
本发明的第二个目的在于提供一种上述提取方法提取获得的化橘红提取物。
本发明的第三个目的在于提供上述化橘红提取物或酸橙素烯醇在制备预防和/或治疗肿瘤药物中的应用。
本发明上述目的通过以下技术方案实现:
一种化橘红提取物的提取方法,包括如下步骤:取化橘红的乙醇-乙酸乙酯提取液,采用乙酸乙酯进行萃取,减压浓缩后,得化橘红乙酸乙酯萃取部位;再将化橘红乙酸乙酯萃取部位依次采用不同配比的石油醚-乙酸乙酯混合溶液进行梯度洗脱分离,收集目标洗脱液组分,再采用硅胶薄层色谱进行分离,获得所述化橘红提取物;所述石油醚和乙酸乙酯的体积比为(10~0):(0~10);所述目标洗脱液组分为石油醚和乙酸乙酯的体积比为(2.5~3):1时的洗脱液组分。
本发明通过采用不同配比的石油醚-乙酸乙酯混合溶液进行梯度洗脱分离,梯度洗脱优选分离出了具有特定组分的目标洗脱液组分,即本发明中含有有效活性成分酸橙素烯醇的化橘红提取物,所述化橘红提取物的抗肿瘤药理评价研究结果表明,以酸橙素烯醇为主要成分的化橘红提取物具有抗肿瘤作用,为化橘红所有组分中细胞毒活性最强的组分。更具体而言,所述化橘红提取物对人非小细胞肺癌A549细胞系和/或H1299细胞系展现出了优异的抑制作用,对两类细胞具有优异的毒性,且能够有效地抑制两种细胞的克隆形成能力和横向迁移能力。此外,含有有效活性成分酸橙素烯醇的化橘红提取物还可减缓移植瘤的荷瘤生长、降低荷瘤体积以及荷瘤瘤重,为化橘红的抗肿瘤新用途、化痰中药治疗“痰证”范畴的肿瘤提供了实验依据。
优选地,所述化橘红的乙醇-乙酸乙酯提取液加入乙酸乙酯进行萃取的次数为5~8次。进一步优选地,所述化橘红的乙醇-乙酸乙酯提取液加入乙酸乙酯进行萃取的次数为7次。
优选地,所述目标洗脱液组分为石油醚和乙酸乙酯的体积比为3:1时的洗脱液组分。
优选地,依次采用石油醚和乙酸乙酯体积比为10:0,10:1,10:2,10:3,3:1,2:1,3:2,1:1,2:3,0:10的石油醚-乙酸乙酯混合溶液进行梯度洗脱分离。
优选地,所述化橘红的乙醇-乙酸乙酯提取液为化橘红中加入乙醇-乙酸乙酯混合溶液,经超声提取获得;所述超声提取的次数≥4次,所述乙醇-乙酸乙酯混合溶液的总用量为化橘红干重的8~15倍。
进一步优选地,为了更充分地提取化橘红中的有效活性成分,在化橘红中依次加入化橘红干重4、2、2、2倍用量的乙醇-乙酸乙酯混合溶剂,超声提取4次。
优选地,所述超声提取的时间为30~60min。
优选地,所述乙醇-乙酸乙酯混合溶剂中,乙醇和乙酸乙酯体积比为1:(1~3);进一步优选地,乙醇和乙酸乙酯体积比为1:1。
此外,本发明也可以采用化州柚(Citrus grandis Tomentosa)果实通过上述提取方法获得含有酸橙素烯醇的提取物。
进一步地,本发明还提供了上述提取方法提取获得的化橘红提取物。
优选地,按重量百分比计,所述化橘红提取物包含如下有效成分:65~75%的酸橙素烯醇。
进一步优选地,按重量百分比计,所述化橘红提取物包含如下有效成分:70~75%的酸橙素烯醇。
此外,以下应用均应在本发明的保护范围之内:
上述化橘红提取物或酸橙素烯醇在制备预防和/或治疗癌症药物中的应用。
优选地,所述肿瘤为肺癌。
优选地,所述肺癌为非小细胞肺癌。
优选地,所述非小细胞肺癌为人非小细胞肺癌A549细胞系和/或人非小细胞肺癌H1299细胞系。
本发明具有以下有益效果:
(1)本发明提供了一种化橘红提取物的提取方法,通过优化提取过程中的梯度洗脱步骤的工艺条件,分离出了具有优异抗肿瘤作用的以酸橙素烯醇为有效活性成分的化橘红提取物,且分离组分之间的化学成分重叠性低,提高了化橘红提取物中的有效成分含量。
(2)本发明提供一种以酸橙素烯醇为有效活性成分的新的化橘红提取物,不仅对于肿瘤细胞具有细胞毒活性,能够有效地抑制肿瘤细胞的克隆形成能力和横向迁移能力,还可减缓移植瘤的荷瘤生长、降低荷瘤体积以及荷瘤瘤重,起到了优异的抗肿瘤作用。为化橘红的抗肿瘤新用途、化痰中药治疗“痰证”范畴的肿瘤提供了实验依据。
附图说明
图1为本发明实施例1中化橘红提取物提取的工艺流程图。
图2为实施例1中化橘红提取物和酸橙素烯醇的高效液相色谱图谱。
图3为实施例1中分离提取的酸橙素烯醇的高分辨质谱图。
图4为实施例1中分离提取的酸橙素烯醇的核磁共振氢谱图。
图5为实施例1中分离提取的酸橙素烯醇的核磁共振碳谱图。
图6为酸橙素烯醇的抗肿瘤活性试验;其中,图a为酸橙素烯醇作用于A549细胞系48h的IC50图,图b为酸橙素烯醇作用于H1299细胞系48h的IC50图。
图7为不同浓度给药组对A549和H1299细胞系毒活性测试;其中,a为不同浓度给药组对A549细胞增殖抑制作用,b为不同浓度给药组对H1299细胞增殖抑制作用。
图8为不同浓度给药组抑制A549和H1299细胞系克隆形成试验;其中,a为不同浓度给药组处理A549细胞和H1299细胞一周后的细胞数量变化;b和c分别为不同浓度给药组处理A549细胞和H1299细胞一周后的细胞数量变化柱状统计。
图9为不同浓度给药组对A549和H1299细胞划痕情况;其中,a为不同浓度给药组下,A549细胞和H1299细胞在0h和24h的愈合情况,b和c分别为不同浓度给药组下,A549细胞和H1299细胞在0h和24h的愈合率柱状统计。
图10为不同试验组裸鼠的皮下荷瘤图。
图11为不同试验组裸鼠的皮下荷瘤瘤重。
图12为不同试验组裸鼠的皮下荷瘤体积生长曲线。
图13为不同试验组裸鼠体重生长曲线。
具体实施方式
以下结合说明书附图和具体实施例来进一步说明本发明,但实施例并不对本发明做任何形式的限定。除非特别说明,本发明采用的试剂、方法和设备为本技术领域常规试剂、方法和设备。
实施例1化橘红提取物和酸橙素烯醇的分离制备
1、实验材料
化橘红(Exocarpium Citri grandis)采收自广东省化州市新安镇大合化橘红种植基地,基原为芸香科柑橘属化州柚Citrus grandis Tomentosa的幼果。
2、化橘红提取物的提取
本实施例中化橘红提取物的提取流程如图1所示,具体包括以下步骤:
(1)化橘红超声提取:取化橘红药材,粉碎,依次加入4、2、2、2倍量的乙醇-乙酸乙酯(1:1,v/v)混合溶剂进行超声提取30min,过滤,共提取4次,合并4次的提取液,减压浓缩至浓稠状,得化橘红的乙醇-乙酸乙酯提取液,通过薄层色谱法监测每次提取的情况,254、365nm紫外检视下样品无法被乙酸乙酯展开则确定为提取终点。橘红提取液进行活性测试,作用48小时后,化橘红的乙醇-乙酸乙酯提取液对A549和H1299细胞系的IC50均大于500μg/mL。
活性测试的操作步骤为:通过MTT法检测细胞存活率,进行细胞毒活性测试,简要步骤为将3000cells/well的NSCLC细胞接种于96孔板中,孵育过夜后加入不同浓度的待测药物(提取物和萃取物给药浓度梯度为0~500μg/mL,分离组分给药浓度梯度为0~200μg/mL)作用48h,加入MTT工作液继续孵育4h后去除培养液,加入DMSO溶解甲瓒,通过酶标仪检测490nm的吸光值来表征细胞存活。
(2)化橘红乙酸乙酯萃取:取步骤(1)中化橘红的乙醇-乙酸乙酯提取液,加入纯水分散,加入等体积的乙酸乙酯进行萃取,共萃取7次,合并7次的乙酸乙酯层,稍微减压浓缩后进行水洗、乙酸乙酯反萃处理,减压浓缩除去溶剂,得化橘红乙酸乙酯萃取部位;通过薄层色谱法监测每次萃取的情况,254、365nm紫外检视下样品无法被乙酸乙酯展开则确定为萃取终点。
其中,在第1次萃取静置分层中,析出大量不溶于两相的黄白色固体,过滤,滤液继续萃取,收集滤渣,乙酸乙酯洗涤并干燥后得到化橘红不溶物萃取部位,通过高效液相色谱法比对标准品,鉴定主要成分为柚皮苷和野漆树苷。
萃取完成后,余下的水层减压浓缩除去溶剂,得化橘红水萃取部位。各萃取部位进行步骤(1)中的活性测试,作用48小时后,化橘红不溶物萃取部位、水萃取部位对A549和H1299细胞系的IC50均大于500μg/mL,化橘红乙酸乙酯萃取部位对A549和H1299细胞系的IC50分别为296.8,326.5μg/mL,选择化橘红乙酸乙酯萃取部位继续分离筛选。
(3)梯度洗脱分离:取步骤(2)中获得的化橘红乙酸乙酯萃取部位,干法装柱(200-300目硅胶),湿法上样后,用石油醚-乙酸乙酯体系(石油醚和乙酸乙酯的体积比从10:0到0:10,v/v)进行梯度洗脱分离,具体而言,石油醚-乙酸乙酯混合溶剂体积配比依次为10:0,10:1,10:2,10:3,3:1,2:1,3:2,1:1,2:3,0:10,通过薄层色谱法监测所在梯度洗脱的情况,254、365nm紫外检视下样品展开无斑点或斑点极浅则变换至下一梯度。洗脱液通过薄层色谱法监测,按极性大小将其合并为8份(分别为化橘红组分A-H),具体为:收集石油醚-乙酸乙酯(体积比从10:0到10:3,v/v)的洗脱液,减压浓缩除去溶剂,得化橘红组分A;收集石油醚-乙酸乙酯(体积比为3:1,v/v)的洗脱液,减压浓缩除去溶剂,得化橘红组分B(即化橘红提取物);收集石油醚-乙酸乙酯(体积比为2:1到3:2,v/v)的洗脱液,减压浓缩除去溶剂,得化橘红组分C;收集石油醚-乙酸乙酯(体积比为1:1,v/v)的洗脱液,减压浓缩除去溶剂,得化橘红组分D;收集石油醚-乙酸乙酯(体积比为2:3,v/v)的洗脱液,减压浓缩除去溶剂,得化橘红组分E;收集石油醚-乙酸乙酯(体积比为0:10,v/v)的洗脱液,根据薄层色谱行为合并为3份,分别减压浓缩除去溶剂,依次得化橘红组分F、G和H。对各化橘红组分A-H进行步骤(1)中的活性测试,作用48小时后,化橘红组分B对A549细胞系的IC50为77.00μg/mL,其余组分对A549细胞系的IC50均大于200μg/mL,化橘红组分B对H1299细胞系的IC50为78.61μg/mL,化橘红组分C、D、F对H1299细胞系的IC50分别为190.6,127.6,145.8μg/mL,其余组分对H1299细胞系的IC50均大于200μg/mL;选择化橘红组分B(即化橘红提取物)进行抗肿瘤药理评价及后续化学成分研究。
上述提取、萃取、分离过程,通过薄层色谱法监测提取、萃取、分离洗脱情况,确保药材提取完全,按极性大小分离的萃取部位之间、分离组分之间的化学成分重叠性低。
(4)对化橘红组分B的主要成分进行分离:将化橘红组分B通过硅胶薄层色谱进行分离,以石油醚-乙酸乙酯(体积比为1:1,v/v)展开后,366nm紫外检识下,收集比移值Rf=0.5的浅蓝色条带,通过乙酸乙酯浸泡将目标产物从硅胶中洗脱出来,过滤除去硅胶收集滤液,减压浓缩除去溶剂,得浅黄色粉末,对上述化橘红组分B和酸橙素烯醇进行高效液相色谱分析,如图2所示,酸橙素烯醇占化橘红组分B的72%。
通过薄层色谱法分析,化橘红提取物、乙酸乙酯萃取部位、化橘红组分B经乙酸乙酯展开后,在366紫外下均有蓝色荧光斑点,具有香豆素类化合物的理化性质;对化橘红组分B进行分离纯化,得两种单体化合物,两者的核磁共振氢谱中均有一组dd峰,耦合常数为9.4~9.5Hz,通过该典型信号特征鉴定两种单体化合物属于香豆素类化合物,含量占化橘红组分B的10%左右。
对上述浅黄色粉末进行质谱和核磁共振分析,并与文献(Barik B,Dey A,Das P,et al.Phytochemistry,1983,22,792.)对比,上述分离制备所得的浅黄色粉末易溶于甲醇、乙醇、氯仿、乙酸乙酯等有机溶剂,高分辨质谱图、核磁共振氢谱图和核磁共振碳谱图分别如图3、图4和图5所示,其具体数据如下:
高分辨质谱数据为:ESI-MS m/z:261.1119[M+H]+;分子式为C15H16O4
核磁共振氢谱(400MHz)数据为:1H NMR(Chloroform-d,400MHz):δH 7.64(1H,d,J=9.5Hz,H-4),7.35(1H,d,J=8.6Hz,H-5),6.87(1H,d,J=8.6Hz,H-6),6.25(1H,d,J=9.5Hz,H-3),4.90(1H,s,H-4′a),4.81(1H,s,H-4′b),4.35(1H,dd,J=8.2,4.7Hz,H-2′),3.94(3H,s,7-OMe),3.20(1H,dd,J=13.5,4.6Hz,H-1′a),3.10(1H,dd,J=13.5,8.5Hz,H-1′b),1.89(3H,s,5′-Me)。
核磁共振碳谱(100MHz)数据为:13C NMR(Chloroform-d,100MHz):δC161.15(C-2),160.66(C-7),153.49(C-8a),147.19(C-3′),143.85(C-4),127.04(C-5),115.05(C-8),113.13(C-4a),113.04(C-3),110.55(C-4′),107.36(C-6),75.28(C-2′),56.19(7-OMe),29.42(C-1′),18.09(C-5′)。
以上数据与文献报道的一致,故鉴定为酸橙素烯醇(Auraptenol,CAS:1221-43-8)。
实施例2
本实施例与实施例1的区别在于:步骤(1)中超声提取的次数为6次,依次加入4、2、2、2、2、2倍量的乙醇-乙酸乙酯混合溶剂进行超声提取。
实施例3
本实施例与实施例1的区别在于:步骤(1)中超声提取的次数为4次,依次加入4、2、1、1倍量的乙醇-乙酸乙酯混合溶剂进行超声提取。
实施例4
本实施例与实施例1的区别在于:步骤(2)中加入等体积的乙酸乙酯进行萃取,共萃取5次,合并5次的乙酸乙酯层。
实验例
(1)酸橙素烯醇的抗肿瘤活性试验
人非小细胞肺癌A549和H1299细胞系按常规方法培养至对数生长期,通过PBS清洗、胰酶消化、离心收集所需细胞,加入完全培养基重悬后进行血球计数板细胞计数,调整细胞密度至5.0×104cells/mL,按100μL/well,即5.0×103cells/well将细胞接种于96孔板中。细胞种板过夜确保细胞贴壁后,于超净工作台中将上述配置成的药物母液加入完全培养基中,通过连续稀释配成系列浓度的含药培养基,最高浓度的含药培养基按体积分数计算不高于1‰的DMSO,含药培养基现配现用,然后弃96孔板中完全培养基,各浓度给药组(50,75,100,150,200μg/mL)每孔加入100μL相应的含药培养基,阴性对照组(0μg/mL)每孔加入100μL的完全培养基,放入培养箱中继续培养48h。
药物作用48h后,超净工作台中避光加入10μL/well的5mg/mL MTT工作液,置培养箱中孵育4h,弃96孔板中的溶液,加入150μL/well的DMSO,水平摇床振摇10min确保甲瓒结晶完全溶解,于酶标仪中震荡30s后测试490nm下的吸光值。对阴性对照组的吸光值归一化处理后,计算各组的细胞存活率。
如图6所示,图a、图b分别为酸橙素烯醇作用于A549和H1299细胞系48h的IC50图,从图中可以看出,随着酸橙素烯醇浓度的不断增高,A549和H1299的细胞活力不断下降,说明酸橙素烯醇对于A549和H1299细胞系的细胞活力具有抑制作用。
因酸橙素烯醇对于A549和H1299细胞系的抑制IC50低于化橘红组分B(化橘红提取物),因此,下面采用实施例1中的化橘红提取物进行体内外抗肿瘤作用评价试验。具体为实施例1中的化橘红提取物加入DMSO配成200mg/mL的药物母液供细胞生物学实验使用,以DMSO/Corn Oil(1:9,v/v)作为药物溶媒配成50mg/mL和100mg/mL的化橘红组分溶液供皮下荷瘤试验使用。
(2)化橘红提取物的细胞毒活性测试
人非小细胞肺癌A549和H1299细胞系按常规方法培养至对数生长期,通过PBS清洗、胰酶消化、离心收集所需细胞,加入完全培养基重悬后进行血球计数板细胞计数,调整细胞密度至5.0×104cells/mL,按100μL/well,即5.0×103cells/well将细胞接种于96孔板中。细胞种板过夜确保细胞贴壁后,于超净工作台中将上述配置成的药物母液加入完全培养基中,通过连续稀释配成系列浓度的含药培养基,最高浓度的含药培养基按体积分数计算不高于1‰的DMSO,含药培养基现配现用,然后弃96孔板中完全培养基,各浓度给药组(75,100,125,150,180,200μg/mL)每孔加入100μL相应的含药培养基,阴性对照组(0μg/mL)每孔加入100μL的完全培养基,放入培养箱中继续培养48h。
药物作用48h后,超净工作台中避光加入10μL/well的5mg/mL MTT工作液,置培养箱中孵育4h,弃96孔板中的溶液,加入150μL/well的DMSO,水平摇床振摇10min确保甲瓒结晶完全溶解,于酶标仪中震荡30s后测试490nm下的吸光值。对阴性对照组的吸光值归一化处理后,计算各组的细胞存活率。
如图7所示,其中图a为不同浓度给药组(75~200μg/mL)梯度处理A549细胞48h后对A549细胞系细胞增殖抑制作用。其中,最低浓度给药组(75μg/mL)与阴性对照组(0μg/mL)对比具有极其显著统计学差异(P<0.001)。图b为不同浓度给药组(75~200μg/mL)梯度处理H1299细胞48h后对H1299细胞系细胞增殖抑制作用,其中,最低浓度给药组(75μg/mL)与阴性对照组(0μg/mL)对比具有极其显著统计学差异(P<0.001)。
(3)化橘红提取物抑制细胞克隆形成实验
人非小细胞肺癌A549和H1299细胞系按常规方法培养至对数生长期,通过PBS清洗、胰酶消化、离心收集所需细胞,调整细胞密度至500cells/mL,以2000μL/well,即1000cells/well将细胞接种于6孔板中。细胞种板过夜确保细胞贴壁后,于超净工作台中将上述配置成的药物母液加入完全培养基中,通过连续稀释配成系列浓度的含药培养基,含药培养基现配现用,各浓度给药组(25,50,75μg/mL)每孔加入2000μL相应的含药培养基,阴性对照组(0μg/mL)每孔加入2000μL的完全培养基,放入培养箱中继续培养约一周。当阴性对照组的细胞克隆数量呈现肉眼可见明显增加时即可终止培养,弃培养基,PBS清洗3次,加入1000μL/well的4%多聚甲醛固定液,孵育10min,加入1000μL/well的0.1%结晶紫染色液,染色15min,回收染色液,以水冲洗干净,拍照后计算各组的细胞克隆数量。
如图8所示,其中,图a为不同浓度给药组处理A549细胞和H1299细胞一周后的细胞数量变化,图b和图c分别为不同浓度给药组处理A549细胞和H1299细胞一周后的细胞数量变化柱状统计。可见,处理A549细胞约一周后,各浓度梯度(25,50,75μg/mL)对A549细胞系产生克隆形成抑制作用,50μg/mL处理组、75μg/mL处理组与阴性对照组(0μg/mL)对比具有极其显著统计学差异(P<0.001,P<0.001)。处理H1299细胞约一周后各浓度梯度(25,50,75μg/mL)对H1299细胞系产生克隆形成抑制作用,50μg/mL处理组、75μg/mL处理组与阴性对照组(0μg/mL)对比具有显著统计学差异(P<0.01,P<0.01)。
(4)化橘红提取物的划痕愈合实验
人非小细胞肺癌A549和H1299细胞系按常规方法培养至对数生长期,通过PBS清洗、胰酶消化、离心收集所需细胞,调整细胞密度至1.5×105cells/mL,以2000μL/well,即3×105cells/well将细胞接种于6孔板中。细胞种板后在培养箱中孵育至形成单层细胞,于超净工作台中将上述配置成的药物母液加入无血清的完全培养基中,通过连续稀释配成系列浓度的含药培养基,含药培养基现配现用;随后用10μL枪头在单层细胞上划出笔直的划痕,PBS清洗脱落的细胞,弃PBS,各浓度给药组(25,50,75μg/mL)每孔加入2000μL相应的含药培养基,阴性对照组(0μg/mL)每孔加入2000μL/well无血清的完全培养基,放入培养箱中继续培养24h。显微镜下观察并拍照记录0h和24h的细胞划痕情况,通过Image J软件计算图片中的划痕面积,并计算划痕愈合率。
如图9所示,其中,图a为不同浓度给药组下,A549细胞和H1299细胞在显微镜下0h和24h的愈合情况,图b和图c为不同浓度给药组下,A549细胞和H1299细胞在0h和24h的愈合率统计柱状图。如图9b和图9c所示,处理A549细胞24h后,各浓度给药组(25,50,75μg/mL)对A549细胞产生的横向迁移具有抑制作用,50μg/mL处理组、75μg/mL处理组与阴性对照组(0μg/mL)对比具有极其显著统计学差异(P<0.001,P<0.001)。处理H1299细胞约一周后,各浓度梯度(25,50,75μg/mL)对H1299细胞系产生的横向迁移具有抑制作用,50μg/mL处理组、75μg/mL处理组与阴性对照组(0μg/mL)对比具有极其显著统计学差异(P<0.001,P<0.001)。
(5)化橘红提取物的皮下荷瘤试验
人非小细胞肺癌A549细胞系按常规方法培养至对数生长期,通过PBS清洗、胰酶消化、离心收集所需细胞,用预冷的PBS重悬细胞,调整细胞悬液密度为1.0×108cells/mL,加入等体积基质胶调整细胞悬液密度至5.0×107cells/mL。BALB/c nude裸鼠经过适应性饲养后,将上述细胞悬液接种于经过一周适应性饲养的BALB/c nude裸鼠腋窝中后部的皮下,每只接种100μL细胞悬液,即每只5.0×106cells。接种后,每天测量皮下荷瘤的长径、短径,按公式[(长径×短径2)×0.5]计算皮下荷瘤体积,待裸鼠皮下荷瘤体积生长至100mm3时开始分组进行药物干预。将荷瘤裸鼠分为4组,每组6只:阴性对照组(Vehicle Group,0.05mL/10g/day)给予等量的药物溶媒灌胃给药,化橘红组分低剂量组(Fr.B-LD Group,250mg/kg/day)、化橘红组分高剂量组(Fr.B-HD Group,500mg/kg/day)分别给予50mg/mL、100mg/mL的化橘红组分溶液灌胃给药,阳性对照组(CDDP Group,2mg/kg/3days)给予0.4mg/mL的顺铂生理盐水溶液腹腔注射给药。药物干预期间,测量裸鼠体重、皮下荷瘤的长径和短径、每周的摄食饮水量,绘制体重生长曲线、皮下荷瘤体积生长曲线;试验终点时,将裸鼠进行安乐死,取皮下荷瘤并称重,拍照记录。
如图10所示,试验终点时,解剖取出皮下荷瘤后多呈椭圆状,有完整被膜包裹,质坚韧,未见肿瘤浸润。皮下荷瘤瘤重结果如图11所示,化橘红组分低剂量组、化橘红组分高剂量组、阳性对照组均能降低皮下瘤瘤重,对皮下荷瘤的生长产生抑制作用,与阴性对照组(2.1098±0.0715g)比较,化橘红组分高剂量组(1.1592±0.0800g)、阳性对照组(0.8717±0.0955g)具有极其显著统计学差异(P<0.001,P<0.001)。且化橘红组分降低皮下荷瘤瘤重呈剂量依赖性。
通过计算试验终点时的平均肿瘤负担(瘤重/体重,%)可得阴性对照组、化橘红组分低剂量组、化橘红组分高剂量组、阳性对照组的平均肿瘤负担依次为8.9002%、7.9149%、5.8321%、3.7314%,说明化橘红组分降低平均肿瘤负担呈剂量依赖性。
皮下荷瘤体积生长曲线如图12所示,化橘红组分、顺铂均能降低皮下荷瘤体积,减缓皮下荷瘤的体积增长速度,对皮下荷瘤的生长产生抑制作用,药物干预第17天时,与阴性对照组(2539.8433±178.0549mm3)比较,化橘红组分低剂量组(Fr.B-LD Group)(1633.7302±148.0168mm3)、化橘红组分高剂量组(Fr.B-HD Group)(1264.8382±70.3657mm3)、阳性对照组(CDDP Group)(835.6652±62.4282mm3)具有极其显著统计学差异(P<0.001,P<0.001,P<0.001),化橘红组分降低皮下荷瘤体积呈剂量依赖性。通过计算药物干预第17天时各组的相对肿瘤增殖率(T/C,%)可得化橘红组分低剂量组、化橘红组分高剂量组、阳性对照组的T/C分别为63.8516%、47.0814%、32.0942%,说明化橘红组分干预相对肿瘤增殖率呈剂量依赖性。
裸鼠体重生长曲线如图13所示,阴性对照组(23.9333±0.8842g)比较,化橘红组分低剂量组(Fr.B-LD Group)(21.2333±0.9608g)、化橘红组分高剂量组(Fr.B-HD Group)(20.6833±1.3580g)、阳性对照组(CDDP Group)(23.5000±0.8610g)不具有统计学差异(P>0.05,P>0.05,P>0.05),说明化橘红组分在药物干预期间对裸鼠体重影响不大。
上述实施例为本发明较佳的实施方式,但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制,其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化,均应为等效的置换方式,都包含在本发明的保护范围之内。

Claims (10)

1.一种化橘红提取物的提取方法,其特征在于,包括如下步骤:取化橘红的乙醇-乙酸乙酯提取液,采用乙酸乙酯进行萃取,减压浓缩后,得化橘红乙酸乙酯萃取部位;再将化橘红乙酸乙酯萃取部位依次采用不同配比的石油醚-乙酸乙酯混合溶液进行梯度洗脱分离,收集目标洗脱液组分,再采用硅胶薄层色谱进行分离,获得所述化橘红提取物;
所述石油醚和乙酸乙酯的体积比为(10~0):(0~10);所述目标洗脱液组分为石油醚和乙酸乙酯的体积比为(2.5~3):1时的洗脱液组分。
2.根据权利要求1所述提取方法,其特征在于,所述目标洗脱液组分为石油醚和乙酸乙酯的体积比为3:1时的洗脱液组分。
3.根据权利要求1所述提取方法,其特征在于,所述化橘红的乙醇-乙酸乙酯提取液为化橘红中加入乙醇-乙酸乙酯混合溶液,经超声提取获得;所述超声提取的次数≥4次,所述乙醇-乙酸乙酯混合溶液的总用量为化橘红干重的8~15倍。
4.根据权利要求1所述的提取方法,其特征在于,依次采用石油醚和乙酸乙酯体积比为10:0,10:1,10:2,10:3,3:1,2:1,3:2,1:1,2:3,0:10的石油醚-乙酸乙酯混合溶液进行梯度洗脱分离。
5.权利要求1~4任一所述提取方法提取获得的化橘红提取物。
6.根据权利要求5所述化橘红提取物,其特征在于,按重量百分比计,包含如下有效成分:65~75%的酸橙素烯醇。
7.权利要求5所述化橘红提取物或权利要求6中所述酸橙素烯醇在制备预防和/或治疗肿瘤药物中的应用。
8.根据权利要求7所述应用,其特征在于,所述肿瘤为肺癌。
9.根据权利要求8所述应用,其特征在于,所述肺癌为非小细胞肺癌。
10.根据权利要求9所述应用,其特征在于,所述非小细胞肺癌为人非小细胞肺癌A549细胞系和/或人非小细胞肺癌H1299细胞系。
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