CN115804372B - 一种睡莲切花保鲜液及保鲜方法和应用 - Google Patents
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Abstract
本发明提供了一种睡莲切花保鲜液及保鲜方法和应用，属于园艺作物保鲜技术领域。本发明提供了一种睡莲切花保鲜液，包括蔗糖、赤霉素、小分子渗透物质和灭菌剂。本发明所述睡莲切花保鲜液中的各个组分相互配合，共同提高了睡莲切花的保鲜效果，进而提高了睡莲切花的观赏价值。本发明所述睡莲切花保鲜液能显著延长睡莲切花保鲜的时间至12天，从而解决睡莲切花保鲜时间短的技术问题。
Description
技术领域
本发明属于园艺作物保鲜技术领域，具体涉及一种睡莲切花保鲜液及保鲜方法和应用。
背景技术
白天开花热带睡莲花香浓郁，花色丰富，群体花期长，是优良的切花材料。但是由于热带睡莲的单朵花期短，花瓣薄、花梗易缺水萎蔫，导致其在切花市场受到限制。目前鲜花保鲜液往往仅对于单一品种鲜花有良好的保鲜效果，不具有广泛适用性，且关于睡莲切花保鲜液的研究相对较少。即便有相关报道对睡莲切花保鲜液进行了相关研究，而其保鲜效果往往较差，存在保鲜时间短的不利因素。因此，研究出延长睡莲保鲜时间的切花保鲜方法，可以促进热带睡莲鲜切花走进千家万户。
发明内容
本发明的目的在于提供一种睡莲切花保鲜液，所述保鲜液能够延长睡莲切花保鲜时间，且组分价格低廉、安全性高。
本发明提供了一种睡莲切花保鲜液，包括以下组分：蔗糖、赤霉素、小分子渗透物质和灭菌剂。
优选的，所述保鲜液包括以下质量浓度的组分：蔗糖0.5～2.5g/L、赤霉素100～200mg/L、小分子渗透物质25～150mg/L和灭菌剂100～300mg/L。
优选的，所述保鲜液包括以下质量浓度的组分：蔗糖1.5g/L、赤霉素100mg/L、小分子渗透物质50mg/L和灭菌剂150mg/L。
优选的，所述小分子渗透物质包括脯氨酸和/或甜菜碱；所述灭菌剂包括二氧化氯、明矾和硝酸铝中的一种或两种以上。
本发明提供了上述技术方案所述保鲜液在睡莲切花保鲜中的应用。
本发明提供了一种睡莲切花保鲜方法，包括以下步骤：
将修剪后的睡莲切花浸泡于上述技术方案所述保鲜液中，进行保鲜；
当所述保鲜液水位下降至距花梗顶端15～18cm时，进行补液或换液。
优选的，进行补液时，所述补液的组分包括以下任一种：
I.50～150mg/L的明矾水溶液；
II.50～150mg/L的硝酸铝水溶液；
III.50～150mg/L的二氧化氯水溶液；
进行换液时，所述换液包括以下任一种：
(1)上述技术方案所述保鲜液；
(2)水。
优选的，睡莲切花进行浸泡时，花梗未被浸没部分≤10cm。
优选的，进行补液或换液时，剪切花梗底端0.1～1.5cm。
优选的，所述保鲜的温度为20～32℃。
有益效果：
本发明提供了一种睡莲切花保鲜液，包括蔗糖、赤霉素、小分子渗透物质和灭菌剂。本发明提供的睡莲切花保鲜液中蔗糖在作为营养成分维持代谢的同时还能保护切花细胞的膜结构，降低乙烯的敏感性等；赤霉素在促进睡莲切花生长的同时，还能保持切花茎直立生长，从而提升观赏价值；小分子渗透物质为切花提供营养成分的同时还能缓解外界胁迫对睡莲切花的危害，同时调节细胞渗透压，提高细胞的吸水和保水能力；灭菌剂主要通过灭菌作用，防止微生物对切花生长产生不利影响。本发明中睡莲切花保鲜液中的各个组分相互配合，共同提高睡莲切花的保鲜效果，进而提高了睡莲切花的观赏价值。所述睡莲切花保鲜液能显著延长睡莲切花保鲜的时间至12天，从而解决了睡莲切花保鲜时间短的技术问题。
附图说明
为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案，下面将对实施例中所需要使用的附图作简单地介绍，显而易见地，下面描述中的附图仅仅是本发明的一些实施例，对于本领域普通技术人员来讲，在不付出创造性劳动性的前提下，还可以根据这些附图获得其他的附图。
图1为睡莲切花保鲜方法流程图；
图2为睡莲切花保鲜方法流程图。
具体实施方式
本发明提供了一种睡莲切花保鲜液，包括以下组分：蔗糖、赤霉素、小分子渗透物质和灭菌剂。
如无特殊说明，本发明对各组分的来源没有特殊要求，采用本领域技术人员所熟知市售产品即可。
在本发明中，所述保鲜液中蔗糖的质量浓度优选为0.5～2.5g/L，进一步优选为1.0～2.0g/L，更优选为1.5g/L。在本发明中，所述蔗糖在作为营养成分维持代谢的同时还能保护切花细胞的膜结构，降低乙烯的敏感性。
在本发明中，所述保鲜液中所述赤霉素的质量浓度优选为100～200mg/L，进一步优选为100～150mg/L，更优选为100mg/L。在本发明中，所述赤霉素在促进睡莲切花生长的同时，还能保持切花花茎直立生长，从而提升观赏价值。
在本发明中，所述保鲜液中所述小分子渗透物质的质量浓度优选为25～150mg/L，进一步优选为30～100mg/L，更优选为50mg/L。在本发明中，所述小分子渗透物质优选包括脯氨酸和/或甜菜碱，更优选为脯氨酸或甜菜碱。当所述小分子渗透物质同时包括脯氨酸和甜菜碱，本发明对脯氨酸和甜菜碱的添加量没有特殊限定，采用任意配比添加均可。在本发明中，所述小分子渗透物质为切花提供营养成分的同时还能缓解外界胁迫对睡莲切花的危害，同时调节细胞渗透压，提高细胞的吸水和保水能力。
在本发明中，所述保鲜液中灭菌剂的质量浓度优选为50～300mg/L，进一步优选为100～300mg/L。在本发明中，所述灭菌剂优选包括二氧化氯、明矾和硝酸铝中的一种或两种以上；进一步优选为二氧化氯和明矾，或者为二氧化氯和硝酸铝，或者为明矾和硝酸铝。在本发明中，当所述灭菌剂为二氧化氯和明矾或二样化氯和硝酸铝时，所述二氧化氯的质量浓度优选为50～150mg/L，进一步优选为80～120mg/L，更优选为100mg/L；所述明矾或硝酸铝的质量浓度优选为50～150mg/L，进一步优选为50～100mg/L，更优选为50mg/L。在本发明中，所述灭菌剂主要通过灭菌作用，防止微生物对切花生长产生不利影响。
本发明提供的保鲜液中的蔗糖、赤霉素、小分子渗透物质和灭菌剂各个组分相互配合，共同提高睡莲切花的保鲜效果。所述睡莲切花保鲜液能显著延长睡莲切花保鲜的时间至12天，解决睡莲切花不易保存、保鲜时间短难题。
作为本发明优选的技术方案，所述睡莲切花保鲜液包括以下质量浓度的组分：100mg/L二氧化氯、1.5g/L蔗糖、100mg/L赤霉素、50mg/L明矾和50mg/L脯氨酸。
作为本发明优选的技术方案，所述睡莲切花保鲜液包括以下质量浓度的组分：100mg/L二氧化氯、1.5g/L蔗糖、100mg/L赤霉素、50mg/L明矾和100mg/L脯氨酸。
作为本发明优选的技术方案，所述睡莲切花保鲜液包括以下质量浓度的组分：50mg/L二氧化氯、1.5g/L蔗糖、100mg/L赤霉素、100mg/L明矾和100mg/L脯氨酸
作为本发明优选的技术方案，所述睡莲切花保鲜液包括以下质量浓度的组分：100mg/L二氧化氯、2.5g/L蔗糖、150mg/L赤霉素、50mg/L明矾和100mg/L脯氨酸。
作为本发明优选的技术方案，所述睡莲切花保鲜液包括以下质量浓度的组分：100mg/L二氧化氯、2.5g/L蔗糖、150mg/L赤霉素、50mg/L明矾和150mg/L脯氨酸。
作为本发明优选的技术方案，所述睡莲切花保鲜液包括以下质量浓度的组分：100mg/L二氧化氯、2.5g/L蔗糖、100mg/L赤霉素、50mg/L明矾和100mg/L脯氨酸。
本发明提供了上述技术方案所述的保鲜液在睡莲切花保鲜中的应用。本发明将所述保鲜液应用于睡莲切花保鲜中能显著延长睡莲切花的保鲜时间至12天，同时能够在睡莲切花保鲜期内，保持睡莲切花的观赏状态，使睡莲切花花径保持直立、睡莲切花花径大小不发生显著变化。
本发明还提供了一种睡莲切花保鲜方法，包括以下步骤：
将修剪后的睡莲切花浸泡于上述技术方案所述保鲜液中，进行保鲜；
当所述保鲜液水位下降至距花梗顶端15～18cm时，进行补液或者换液。
本发明将修剪后的睡莲切花浸泡于上述技术方案所述保鲜液中，进行保鲜。
在本发明中，当睡莲花为新鲜采摘的睡莲花时，本发明优选将修剪的睡莲切花直接浸泡于保鲜液中；当睡莲花为经过长途运输的睡莲花时，本发明优选将修剪的睡莲切花进行醒花后，再浸泡于保鲜液中。本发明所述醒花优选将睡莲切花花梗全部浸泡于自来水中；所述醒花的时间优选为5～6h，更优选为6h。本发明通过醒花可使缺水的睡莲补充充足的水分，使花梗顶端变硬，使睡莲切花恢复至新鲜采摘时的状态。在本发明中，当睡莲切花为新鲜采摘的睡莲时，所述睡莲优选为开花前两天至开花1d(开花当天)的睡莲。本发明实施例使用的睡莲切花为完全开花状态、开花1d的睡莲花。在本发明中，当所述睡莲切花为新鲜采摘的睡莲切花时，本发明所述修剪优选为将花梗底端切开剪成平齐口或45°斜口，更优选为将花梗底端切口剪成45°斜口；当所述睡莲切花为经过长途运输的睡莲切花时，本发明所述修剪优选剪除花梗底端2～3cm后将睡莲切花底端剪成平齐口或45°斜口，更优选为将花梗底端切口剪成45°斜口。在本发明中，所述睡莲切花的花梗长度优选为20～30cm，进一步优选为20～25cm，更优选为20cm。
本发明将睡莲切花进行浸泡时，花梗未被浸没部分优选≤10cm，进一步优选为5～10cm，更优选为5～8cm，最优选为5cm。本发明将花梗露出液面一段距离主要是为了保证切花的观赏度。在本发明中，所述保鲜的温度优选为室温，所述室温优选为20～32℃。本发明所述保鲜优选避免强光直射，避免风的直吹。本发明实施例中，所述保鲜于室内阴凉处进行；若室内开有空调维持温度，防止风直吹睡莲切花，造成切花缺水。本发明实施例中的睡莲切花品种为巴拿马太平洋。
当所述保鲜液水位下降至距花梗顶端15～18cm时，本发明进行补液或者换液。
在本发明中，所述保鲜液水位下降至距花梗顶端15～18cm进行补液或者换液，更优选为所述保鲜液水位下降至距花梗顶端16cm进行补液或者换液。本发明进行补液或换液时，优选剪切花梗底端0.1～1.5cm，进一步优选为0.5～1.5cm，更进一步优选为0.5～1cm，更优选为1cm。本发明进行补液时，所述补液的组分优选为明矾水溶液，所述明矾水溶液中明矾的质量浓度优选为50～150mg/L，进一步优选为50～100mg/L，更优选为50mg/L；或者所述补液的组分为硝酸铝水溶液，所述硝酸铝水溶液的中硝酸铝质量浓度优选为50～150mg/L，进一步优选为50～100mg/L，更优选为50mg/L；或者所述补液的组分为二氧化氯水溶液，所述二氧化氯水溶液中二氧化氯的质量浓度优选为50～150mg/L，进一步优选为50～100mg/L，更优选为100mg/L。本发明所述换液优选为将保鲜液进行全部替换。本发明进行换液时，所述换液优选为上述技术方案所述保鲜液或水。在本发明中，当所述换液为上述技术方案所述保鲜液时，保鲜液各组分的质量浓度优选低于初始保鲜液中各组分的质量浓度，或者为所述保鲜液中蔗糖和/或小分子渗透物质的质量浓度小于初始保鲜液中相应组分的质量浓度。在本发明中，当所述换液为水时，所述水优选为自来水；当所述换液为水时，本发明优选每天进行换液。本发明补液或换液后的水位优选花梗未被浸没部分优选≤10cm，进一步优选为5～10cm，更优选为5～8cm，更进一步优选为5cm，最优选为等同于保鲜液初始浸泡时的水位。
本发明进行补液或换液后，当所述保鲜液水位再次下降至距花梗顶端15～18cm时，优选采用水进行换液，并每天进行换水。本发明进行换水时优选剪切花梗底端0.1～1.5cm，进一步优选为0.5～1.5cm，更进一步优选为0.5～1cm，更优选为1cm。本发明补水后的水位优选花梗未被浸没部分优选≤10cm，进一步优选为5～10cm，更优选为5～8cm，更进一步优选为5cm，最优选为等同于保鲜液初始浸泡时的水位。
为了进一步说明本发明，下面结合附图和实施例对本发明提供的一种睡莲切花保鲜液及保鲜方法和应用进行详细地描述，但不能将它们理解为对本发明保护范围的限定。
实施例1
杀菌剂种类和浓度的筛选。
取第一天开花的睡莲花朵，剪至花梗20cm长，花梗底端切口剪成45°斜口，得到睡莲切花。各试验组中初始睡莲切花状态和花径大小较为一致。
分别采用不同种类和不同浓度的灭菌剂作为保鲜液的组分，用自来水作为溶剂，进行试验。将睡莲切花插入瓶高为15cm的保鲜瓶中，将花梗的5cm露出瓶插容器，后灌入保鲜液至满瓶。
进行试验的灭菌剂分别为8-羟基喹啉、明矾、羧甲基壳聚糖和二氧化氯，每个灭菌剂采用3个不同的浓度分别作为保鲜液，每组试验设置3组平行试验。8-羟基喹啉和羧甲基壳聚糖的三个浓度分别为100mg/L，200mg/L和300mg/L；明矾和二氧化氯的三个浓度分别为50mg/L，100mg/L和150mg/L。采用自来水清水组作为对照组。
观察睡莲切花的保鲜时间(即瓶插周期)和是否弯茎两个指标，以睡莲切花枯萎作为保鲜时间评价的标准，观察瓶插第4～5d睡莲切花或判断睡莲花切花是否弯茎的方法为瓶口处是否发生弯曲，花头下垂。试验结果如表1所示。
表1不同种类和不同浓度的灭菌剂作为保鲜液对睡莲切花保鲜的影响
由表1可得，采用不同灭菌剂对睡莲切花进行保鲜时，相对于8-羟基喹啉和羧甲基壳聚糖，明矾和二氧化氯更适合作为睡莲切花保鲜时的灭菌剂，明矾和二氧化氯作为保鲜剂组分时能够减小灭菌剂对睡莲鲜花的不利影响，并且在一定浓度时，对睡莲切花保鲜时间的延长具有促进效果。其中二氧化氯质量浓度为100mg/L时或者明矾质量浓度为50mg/L时作为保鲜液对睡莲切花保鲜不会产生不利影响，与清水作为保鲜液时效果相当，略优于清水保鲜。
实施例2
蔗糖质量浓度筛选。
取第一天开花的睡莲花朵，剪至花梗20cm长，花梗底端切口剪成45°斜口，得到睡莲切花。各试验组中初始睡莲切花状态和花径大小较为一致。
保鲜液组分为100mg/L二氧化氯和不同质量浓度的蔗糖组成，用自来水作为溶剂，进行试验。将睡莲切花插入瓶高为15cm的保鲜瓶中，将花梗的5cm露出瓶插容器，后灌入保鲜液至满瓶。
不同质量浓度的蔗糖分别为0.5g/L，1.5g/L，2.5g/L，5g/L，10g/L。采用自来水清水组作为对照组。每组试验设置3组平行试验。
以瓶插周期、是否弯茎、整个瓶插期的平均花径和第五天后的平均花径为评价指标。其中以睡莲切花枯萎作为保鲜时间评价的标准，瓶插期间每天的花径采用直尺测量(每朵花测两个数据)方法进行测量，观察睡莲切花是否弯茎的时间为瓶插第4～5天。试验结果如表2所示。
表2保鲜液中不同质量浓度的蔗糖对睡莲切花保鲜的影响
| 浓度 | 0.5g/L | 1.5g/L | 2.5g/L | 5g/L | 10g/L | 自来水清水对照 |
| 瓶插周期 | 5.7d | 6.3d | 5d | 5d | 5d | 5d |
| 整个瓶插期的平均花径 | 11.5cm | 12cm | 11.7cm | 12.3cm | 12.1cm | 12 |
| 第五天后的平均花径 | 4.5cm | 5cm | / | / | / | / |
| 是否弯茎 | 是 | 是 | 是 | 是 | 是 | 是 |
注：/未给出的第五天后的平均花径是因为瓶插周期没有超过5天
由表2可得，睡莲切花保鲜中，保鲜液中蔗糖浓度由0.5g/L增加至1.5g/L，随着蔗糖浓度增加能够延长睡莲切花的保鲜周期，当蔗糖浓度高于2.5g/L后，保鲜液中添加的蔗糖浓度不会对睡莲保鲜产生促进作用，而高浓度蔗糖溶液5～10g/L相对于低浓度蔗糖溶液0.5～2.5g/L，瓶插第5天后花瓣易萎蔫。综合考虑低浓度蔗糖更适合用于睡莲切花保鲜中延长睡莲切花保鲜时间。
实施例3
植物生长调节剂种类和浓度筛选。
取第一天开花的睡莲花朵，剪至花梗20cm长，花梗底端切口剪成45°斜口，得到睡莲切花。各试验组中初始睡莲切花状态和花径大小较为一致。
保鲜液组分在100mg/L二氧化氯和1.5g/L蔗糖的基础上，添加不同种类不同浓度的植物生长调节剂，用自来水作为溶剂，进行试验。将睡莲切花插入瓶高为15cm的保鲜瓶中，将花梗的5cm露出瓶插容器，后灌入保鲜液至满瓶。
进行试验的植物生长调节剂分别为赤霉素、6-BA、多效唑，每个植物生长调节剂采用3个不同的浓度分别作为保鲜液组分。赤霉素的三个浓度分别为100mg/L、200mg/L和300mg/L；6-BA的三个浓度分别为10mg/L、30mg/L和50mg/L；多效唑的三个浓度分别为5mg/L、10mg/L和20mg/L。每组试验设置3组平行试验。
以瓶插周期、是否弯茎、整个瓶插期的平均花径和第五天后的平均花径为评价指标。其中以睡莲切花枯萎作为保鲜时间评价的标准，瓶插期间每天的花径采用直尺测量，每朵花测量2个值，观察睡莲切花是否弯茎的时间为瓶插第4～5天。试验结果如表3所示。
表3保鲜液中不同种类和不同质量浓度的植物生长调节剂对睡莲切花保鲜的影响
注：/未给出的第五天后的平均花径是因为瓶插周期没有超过5天
睡莲切花的弯茎现象是影响睡莲切花保鲜的关键因素之一。由表3可得，使用赤霉素作为保鲜液中的植物生长调节剂可避免睡莲切花在瓶插保鲜过程中产生弯茎现象，且以赤霉素作为保鲜液的组分相对于6-BA、多效唑和清水对照组可有效延长瓶插周期至7d，但不同赤霉素浓度之间差异不大，最终选用150mg/L进行后续试验。
实施例4
小分子渗透物质种类和浓度筛选。
取第一天开花的睡莲花朵，剪至花梗20cm长，花梗底端切口剪成45°斜口，得到睡莲切花。各组试验中初始睡莲切花的状态和花径大小较为一致。
保鲜液组分在100mg/L二氧化氯、1.5g/L蔗糖和150mg/L赤霉素的基础上，添加不同种类不同浓度的小分子渗透物质，用自来水作为溶剂，进行试验。将睡莲切花插入瓶高为15cm的保鲜瓶中，将花梗的5cm露出瓶插容器，后灌入保鲜液至满瓶。
进行试验的小分子渗透物质分别为脯氨酸和甜菜碱，每个小分子渗透物质采用3个不同的浓度分别作为保鲜液组分。脯氨酸的三个浓度分别为50mg/L、100mg/L和200mg/L；甜菜碱的三个浓度分别为50mg/L、100mg/L和200mg/L。每组试验3组平行试验。
以瓶插周期、是否弯茎、整个瓶插期的平均花径和第五天后的平均花径为评价指标。其中以睡莲切花枯萎作为保鲜时间评价的标准，瓶插期间每天的花径采用直尺测量(每朵花测两个数据)方法进行测量，观察睡莲切花是否弯茎的时间为瓶插第4～5天。试验结果如表4所示。
表4保鲜液中不同种类和不同质量浓度的小分子渗透物质对睡莲切花保鲜的影响
注：/未给出的第五天后的平均花径是因为瓶插周期没有超过5天
脯氨酸和甜菜碱是渗透调节小分子物质，有帮助调节细胞渗透压，促进细胞吸水和保水的作用，由表4可知，小分子调节物质的添加可以进一步延长睡莲切花的瓶插寿命，相对于清水对照，脯氨酸和甜菜碱分别最长将睡莲切花的瓶插周期延长至7.7和7.3天。
在上述睡莲切花保鲜中，在瓶插第5天时，瓶插液中出现缠绕花梗的黏状菌丝，并出现了花朵萎蔫的现象，考虑单一的二氧化氯不能完全杀死保鲜液中的菌体，因此在上述保鲜成分的基础上再加入一定浓度的明矾，进行后续试验。
实施例5～10除所设置的条件不同外，其他试验条件均相同。实施例5～10组间具有可比性。
实施例5
根据实施例1～4的结果，分别根据每个组分最佳浓度为基准，在其上下取值，进行相应曲面试验，各试验组中初始睡莲切花状态和花径大小较为一致。具体试验设计方案如表5所示：
表5响应曲面法试验方案设计
根据表5的瓶插液方案，以清水瓶插为对照，统计瓶插周期，整个瓶插期的平均花径，第五天后的平均花径，是否弯茎4个指标，统计结果如表5-1所示：
表5-1不同组分的保鲜液对睡莲切花保鲜的影响
按照此浓度范围进行46次曲面试验，以清水瓶插液为对照，以瓶插周期和为第五天以后是否弯茎和整个瓶插期的平均花径作为考察指标，筛选得到最佳浓度四舍五入后，组合为：100mg/L二氧化氯、1.5g/L蔗糖、100mg/L赤霉素、50mg/L明矾和50mg/L脯氨酸为最优组合，相较于清水对照组7天可延长花期2天，最大瓶插期可达到9天，整个瓶插期间不弯茎，且平均花径值达到12～13cm。
实施例6
在获得的最优方案基础上，为进一步验证实施例5的试验结果，分别调整了脯氨酸和明矾的浓度，进行了不同浓度组分组成的保鲜液对睡莲切花保鲜的影响的试验。
试验分为3组，每组试验采用不同浓度的保鲜液组分，每组试验设置3组平行试验。其中，100mg/L二氧化氯、1.5g/L蔗糖、100mg/L赤霉素、50mg/L明矾和100mg/L脯氨酸作为保鲜液1组；100mg/L二氧化氯、1.5g/L蔗糖、100mg/L赤霉素、50mg/L明矾和50mg/L脯氨酸作为保鲜液2组；50mg/L二氧化氯、1.5g/L蔗糖、100mg/L赤霉素、100mg/L明矾和100mg/L脯氨酸作为保鲜液3组。采用自来水为培养液作为对照组。
取第一天开花的睡莲花朵，剪至花梗20cm长，花梗底端切口剪成45°斜口，得到睡莲切花。各试验组中初始睡莲切花状态和花径大小较为一致。
将修剪好的睡莲切花的花梗插入瓶高为15cm的保鲜瓶中，将花梗的5cm露出瓶插容器，将保鲜液1组～保鲜液3组分别灌入保鲜瓶中至满瓶。
以瓶插周期、是否弯茎、整个瓶插期的平均花径和第五天后的平均花径为评价指标。其中以睡莲切花枯萎作为保鲜时间评价的标准，瓶插期间每天的花径采用直尺测量(每朵花测两个数据)方法进行测量，观察瓶插第4～5d睡莲切花或判断睡莲花切花是否弯茎的方法为瓶口处是否发生弯曲。试验结果如表6所示。
表6不同浓度保鲜液对睡莲切花保鲜的影响
由表6可得，由实施例5得到的最优保鲜液组分和浓度数据的基础上，进一步调整脯氨酸和灭菌剂浓度，能够延长保鲜时间和更好的保持保鲜效果的组合仍为100mg/L二氧化氯、1.5g/L蔗糖、100mg/L赤霉素、50mg/L明矾和50mg/L脯氨酸。通过试验组与对照组对比得出，采用所述保鲜液对睡莲切花进行处理能够显著增加睡莲切花的瓶插寿命。
实施例7
花梗底端切口设置试验。
试验分为两组，分别为试验一组和试验二组。每组试验设置3组平行试验。各试验组中初始睡莲切花状态和花径大小较为一致。
取第一天开花的睡莲花朵，剪至花梗20cm长，花梗底端切口剪成平齐口，得到睡莲切花，为试验一组。
取第一天开花的睡莲花朵，剪至花梗20cm长，花梗底端切口剪成45°斜口，得到睡莲切花，为试验二组。
试验一组和试验二组的保鲜液组分均为100mg/L二氧化氯、1.5g/L蔗糖、100mg/L赤霉素、50mg/L明矾和50mg/L脯氨酸。将试验一组和试验二组睡莲切花放入瓶高为15cm的保鲜瓶中，将花梗的5cm露出瓶插容器，后灌入保鲜液至满瓶。
以瓶插周期、是否弯茎、整个瓶插期的平均花径和第五天后的平均花径为评价指标。其中以睡莲切花枯萎作为保鲜时间评价的标准，瓶插期间每天的花径采用直尺测量(每朵花测两个数据)方法进行测量，观察睡莲切花是否弯茎的时间为瓶插第4～5天。试验结果如表7所示。
表7花梗底端切口对睡莲切花保鲜的影响
由表7可得，花梗底端45°斜切口相对于花梗底端平齐口对于延长瓶插周期更有利。
实施例8
花梗浸没于保鲜液中的长度的确定试验。
试验分为3组，分别为试验1组、试验2组和试验3组。每组试验设置3组平行试验。各试验组中初始睡莲切花状态和花径大小较为一致。
取第一天开花的睡莲花朵，剪至花梗20cm长，花梗底端切口剪成45°斜口，得到睡莲切花，为试验1组。
取第一天开花的睡莲花朵，剪至花梗25cm长，花梗底端切口剪成45°斜口，得到睡莲切花，为试验2组。
取第一天开花的睡莲花朵，剪至花梗30cm长，花梗底端切口剪成45°斜口，得到睡莲切花，为试验3组。
保鲜液组分为100mg/L二氧化氯、1.5g/L蔗糖、100mg/L赤霉素、50mg/L明矾和50mg/L脯氨酸。将睡莲切花放入瓶高为15cm的保鲜瓶中，露出瓶插容器，后灌入保鲜液至满瓶。
以瓶插周期、是否弯茎、整个瓶插期的平均花径和第五天后的平均花径为评价指标。其中以睡莲切花枯萎作为保鲜时间评价的标准，瓶插期间每天的花径采用直尺测量(每朵花测两个数据)方法进行测量，观察睡莲切花是否弯茎的时间为瓶插第4～5天。试验结果如表8所示。
表8花梗浸没于保鲜液中的长度对睡莲切花保鲜的影响
由表8可得，花梗浸没于保鲜液中的长度对瓶插周期有显著影响。其中随着花梗浸没于保鲜液中的长度比例的增加，瓶插周期呈现出增加的趋势。
实施例9
以100mg/L二氧化氯、1.5g/L蔗糖、100mg/L赤霉素、50mg/L明矾和50mg/L脯氨酸作为保鲜液组分作为保鲜液1组；
以50mg/L甜菜碱替换保鲜液1组组分中的50mg/L脯氨酸，作为保鲜液2组；
以50mg/L硝酸铝替换保鲜液1组组分中的50mg/L明矾，作为保鲜液3组；
每组试验设置3组平行试验。各试验组中初始睡莲切花状态和花径大小较为一致。
取第一天开花的睡莲花朵，剪至花梗20cm长，花梗底端切口剪成45°斜口，得到睡莲切花。
将修剪好的睡莲切花的花梗插入瓶高为15cm的保鲜瓶中，将花梗的5cm露出瓶插容器，将保鲜液1组～保鲜液3组分别灌入保鲜瓶中至满瓶。
以瓶插周期、是否弯茎、整个瓶插期的平均花径和第五天后的平均花径为评价指标。其中以睡莲切花枯萎作为保鲜时间评价的标准，瓶插期间每天的花径采用直尺测量(每朵花测两个数据)方法进行测量，观察睡莲切花是否弯茎的时间为瓶插第4～5天。试验结果如表9所示。
表9不同保鲜液组分对睡莲切花保鲜的影响
由表9可得，在分别用甜菜碱和硝酸铝替换组分中的脯氨酸和明矾后，对睡莲切花的瓶插寿命以及整个瓶插周期的平均花径影响不大，因此，可以采用甜菜碱和硝酸铝替代原组分中的脯氨酸和硝酸铝。
实施例10
在实施例8中，可知浸没于保鲜液中的花梗长度对于睡莲切花瓶插寿命具有显著影响，在统一花梗长度的情况下，在瓶插过程中通过补液和换液方式进行进一步的试验。
实施例10中(1)和(2)组试验除所列条件不同外，其余试验条件均相同，具有可比性。各试验组中初始睡莲切花状态和花径大小较为一致。
(1)在睡莲切花保鲜期间进行不同方式的补液对睡莲切花保鲜的影响。
取第一天开花的睡莲花朵，剪至花梗20cm长，花梗底端切口剪成45°斜口，得到睡莲切花。采用三组不同浓度的保鲜液进行补液试验。保鲜液1组的组分为100mg/L二氧化氯、2.5g/L蔗糖、150mg/L赤霉素、50mg/L明矾和100mg/L脯氨酸；保鲜液2组的组分为100mg/L二氧化氯、2.5g/L蔗糖、150mg/L赤霉素、50mg/L明矾和150mg/L脯氨酸；保鲜液3组的组分为100mg/L二氧化氯、1.5g/L蔗糖、100mg/L赤霉素、50mg/L明矾和50mg/L脯氨酸。
将睡莲切花放入瓶高为15cm保鲜瓶中，将保鲜液1、保鲜液2和保鲜液3分别倒入保鲜瓶中，将花梗的5cm露出瓶插容器，后灌入保鲜液至满瓶。
将保鲜液1组、保鲜液2组和保鲜液3组中的睡莲切花分别进行3组试验，即在保鲜液水位下降至距花梗顶端16cm时，进行补液。补液组分为100mg/L二氧化氯水溶液为试验1组；补液组分为50mg/L明矾水溶液为试验2组；补液组分为50mg/L硝酸铝水溶液为试验3组；补充等量清水组作为对照组。进行补液时，补充至保鲜液满瓶状态。每组试验设置3组平行试验。
以瓶插周期、是否弯茎、整个瓶插期的平均花径和第五天后的平均花径为评价指标。其中以睡莲切花枯萎作为保鲜时间评价的标准，瓶插期间每天的花径采用直尺测量(每朵花测两个数据)方法进行测量，观察睡莲切花是否弯茎的时间为瓶插第4～5天。试验结果如表10所示。
表10睡莲切花保鲜期间采用不同灭菌剂进行补液对睡莲切花保鲜的影响
由表10可得，采用补液方式的起始保鲜液组分浓度最佳为保鲜液1，而采用硝酸铝、明矾和二氧化氯进行补液，除瓶插周期稍有差别外，其它均无明显差别，因此补液三种成分均可。通过将保鲜液2组与实施例5中17组试验的数值相比得出，在保鲜过程中进行补液，能将睡莲切花的保鲜时间由6.3d延长至11天左右，显著延长睡莲切花的保鲜时间。同样的，保鲜液3组进行补液后，也显著提高了睡莲切花的保鲜时间。
(2)在睡莲切花保鲜期间进行不同方式的换液对睡莲切花保鲜的影响。
取第一天开花的睡莲花朵，剪至花梗20cm长，花梗底端切口剪成45°斜口，得到睡莲切花。采用两组不同浓度的保鲜液进行换液试验。
保鲜液1组的组分为100mg/L二氧化氯、2.5g/L蔗糖、100mg/L赤霉素、50mg/L明矾和100mg/L脯氨酸；
保鲜液2组的组分为100mg/L二氧化氯、1.5g/L蔗糖、100mg/L赤霉素、50mg/L明矾和50mg/L脯氨酸。
将睡莲切花放入瓶高为15cm保鲜瓶中，将保鲜液1和保鲜液2分别倒入保鲜瓶中，将花梗的5cm露出瓶插容器，后灌入保鲜液至满瓶。
将保鲜液1组和保鲜液2组中的睡莲切花分别进行3组换液试验，即在保鲜液水位下降至距花梗顶端16cm时，进行换液；
其中，保鲜液1组对应的换液的组分为：100mg/L二氧化氯、1.5g/L蔗糖、100mg/L赤霉素、50mg/L明矾和50mg/L脯氨酸为试验1组；
保鲜液2组对应的换液的组分为：100mg/L二氧化氯、0.5g/L蔗糖、100mg/L赤霉素、50mg/L明矾和25mg/L脯氨酸为试验2组；
保鲜液1组和保鲜液2组分别采用清水换液作为清水换液组，其中以清水作为换液组分时，每天进行换液；采用低浓度保鲜液组分作为换液组分时，换液后不进行天天换液处理。换液时同样灌入相应保鲜液至满瓶。
其中试验1组和试验2组分别进行两种不同的处理，即换液时剪除花梗底端1cm，和换液时不进行花梗底端剪除；采用清水作为换液组分时，花梗底端剪除1cm。每组试验设置3组平行试验。
以瓶插周期、是否弯茎、整个瓶插期的平均花径和第五天后的平均花径为评价指标。其中以睡莲切花枯萎作为保鲜时间评价的标准，瓶插期间每天的花径采用直尺测量(每朵花测两个数据)方法进行测量，观察睡莲切花是否弯茎的时间为瓶插第4～5天。试验结果如表11所示。
表11睡莲切花保鲜期间采用不同方式进行换液对睡莲切花保鲜的影响
由表11可得，采用3种换液方案均能使睡莲切花的瓶插寿命得到进一步的延长，睡莲切花在瓶插后期容易失水导致蔫花，采用低浓度保鲜液或清水进行换液，可以降低睡莲切花细胞的水分胁迫，从而延长切花寿命。此外，在换液时将花梗底端剪出新的切口，可以促进切花对水分的吸收，进一步延长切花寿命，最长可延长至12天。
综上所述，本发明提供的睡莲切花保鲜液中通过各个组分的相互作用，能够显著延长睡莲切花的保鲜时间，增大整个睡莲切花保鲜期间的平均花径和5天后睡莲切花的平均花径，同时，保持切花茎直立生长。因此，本发明提供的睡莲切花保鲜液和睡莲切花保鲜方法可以延长睡莲切花的观赏价值。
尽管上述实施例对本发明做出了详尽的描述，但它仅仅是本发明一部分实施例，而不是全部实施例，人们还可以根据本实施例在不经创造性前提下获得其他实施例，这些实施例都属于本发明保护范围。
Claims (9)
1.一种睡莲切花保鲜液，其特征在于，所述保鲜液包括以下质量浓度的组分：蔗糖0.5~1.5g/L、赤霉素100mg/L、脯氨酸50mg/L、二氧化氯100mg/L和明矾50mg/L。
2.根据权利要求1所述睡莲切花保鲜液，其特征在于，使用甜菜碱替换脯氨酸。
3.根据权利要求1或2所述睡莲切花保鲜液，其特征在于，使用硝酸铝替换明矾。
4.权利要求1~3任意一项所述的保鲜液在睡莲切花保鲜中的应用。
5.一种睡莲切花保鲜方法，其特征在于，包括以下步骤：
将修剪后的睡莲切花浸泡于权利要求1~3任意一项所述保鲜液中，进行保鲜；
当所述保鲜液水位下降至距花梗顶端15～18cm时，进行补液或换液。
6.根据权利要求5所述的保鲜方法，其特征在于，进行补液时，所述补液的组分包括以下任一种：
I.50～150mg/L的明矾水溶液；
II.50～150mg/L的硝酸铝水溶液；
III.50～150mg/L的二氧化氯水溶液；
进行换液时，所述换液包括以下任一种：
（1）权利要求1～3任一项所述保鲜液；
（2）水。
7.根据权利要求5所述的保鲜方法，其特征在于，睡莲切花进行浸泡时，花梗未被浸没部分≤10cm。
8.根据权利要求5所述的保鲜方法，其特征在于，进行补液或换液时，剪切花梗底端0.1～1.5cm。
9.根据权利要求5所述的保鲜方法，其特征在于，所述保鲜的温度为20～32℃。
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| CN202211630424.7A CN115804372B (zh) | 2022-12-19 | 2022-12-19 | 一种睡莲切花保鲜液及保鲜方法和应用 |
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|---|---|---|---|---|
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Non-Patent Citations (4)
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| Research on the Vase Preservative of Anthurium seherzerianum CutFlowers;MAI You-Zhuan等;《Agricultural Sciecne ＆Technology》;第11卷(第3期);第151-155页 * |
| 多效唑、脯氨酸对迎春切花保鲜作用研究;戈家英;北方园艺(03);第40-41页 * |
| 氮营养对香石竹切花保鲜效果的研究;王雅鑫;王海英;周乾;刘玲玲;闫晗;孙晶晶;倪继勇;;广东农业科学(08);第81-84页 * |
| 王清欢.《我的小阳台四季有花》.四川美术出版社,2020,(第1版),第157页. * |
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