CN115105455B - 一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物 - Google Patents

一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物 Download PDF

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Abstract

本发明属于化妆品和药品技术领域，公开了一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物。该组合物包含：肌肽、高良姜提取物和芒果核提取物；该组合物具有美白功效：该组合物能够减少AGEs含量，最高降幅达到20.08％，降低与其受体AGER结合，从而抑制黑色素的生成；能够直接抑制黑色素细胞合成黑色素，抑制率最高达到18.84％；能够增强皮肤屏障：LBA色差亮度恢复度达到21.42％；透皮失水率显著下降，有明显的保湿效果；皮肤厚度明显变薄；达到真正增强皮肤屏障的效果；最终达到美白功效，并且各组分在降低AGEs含量、抑制黑色素合成、抑制TEWL升高等方面具有协同效果作用。

Description

一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物
技术领域
本发明属于化妆品和药品技术领域，具体涉及一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物。
背景技术
爱美之心人皆有之，而“美”往往离不开“白”，人们对皮肤美白越来越重视，然而诸多原因会导致皮肤疾病频频发生，严重损害人们的皮肤状况，决定皮肤白与黑最直接的原因是皮肤表皮层的色素，皮肤色素主要包括黑色素与褐色素，皮肤中色素变化的因素分为内源性因素与外源性因素，内源性因素包括遗传因素，基因组失衡，蛋白质失稳等，外源性因素主要包括紫外线照射，压力过大，吸烟饮酒等。其中紫外的照射会促使表皮层的黑色素细胞合成大量的黑色素。而晚期糖基化(AGEs)是造成黑色素增加的一个重要的原因，AGEs对皮肤的影响主要体现在其会导致皮肤衰老、肤色暗沉，而血糖浓度，紫外(UVB)照射等因素会导致AGEs含量大量增加，从而影响弹性蛋白与胶原蛋白的活性以及增加黑色素的含量。黑色素的沉积正是皮肤变黑及导致众多色素性皮肤病的原因之一，如黄褐斑，光老化通过黑色素细胞因子和Wnt信号通路在黄褐斑的发展中起着至关重要的作用。
目前皮肤美白的主要有两个领域。其一是关于皮肤健康的生物医药领域，其次是关于皮肤保护的化妆品领域。而这两个领域的美白方式主要是对抗自由基的产生，改善肌肤的微循环，减少黑色素的合成等方式，其药物或者化妆品存在着物质不清楚，效果单一或出现一定的不良反应等缺点，因此，人们非常需要一种成分明确，途径多样，无副作用的美白护肤产品。
发明内容
本发明第一个方面的目的，在于提供一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物。
本发明的第二方面的目的，在于提供第一方面的多肽植物组合物的制备方法。
本发明的第三方面的目的，在于提供第一方面的多肽植物组合物的应用。
本发明的第四方面的目的，在于提供一种产品。
为了实现上述目的，本发明所采取的技术方案是：
本发明的第一个方面，提供一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物，包含：肌肽、高良姜提取物和芒果核提取物。
肌肽(β-丙氨酰-L-组氨酸)，是一种由β-丙氨酰和L-组氨酸两种氨基酸组成的二肽，肌肽具有很强的抗糖化作用，肌肽，能在糖侵蚀肌肤前，通过与糖反应的形式，代替体内蛋白质与糖反应，从而帮助保护蛋白质不被糖基化，达到抗糖化的作用；肌肽还是一种重要的细胞内抗氧化剂，肌肽可清除活性氧(ROS)，还可在氧化应激过程中防止细胞膜脂肪酸发生过氧化反应；同时，它还具有很强的抗衰老功效。
高良姜提取物是一种天然的植物提取物，为棕黄色粉末，味辛性热，脾胃经，温中散寒，理气止痛。
芒果核提取物是一种天然的植物提取物，性味甘酸苦平，归肺，脾胃经，止咳，化痰，行气与消积于一体。
优选地，所述多肽植物组合物，包含以下重量份的组分：0.1～6份肌肽、3～10份高良姜提取物和3～10份芒果核提取物。
优选地，所述多肽植物组合物，包含以下重量份的组分：0.1～5份肌肽、3～8份高良姜提取物和7～10份芒果核提取物。
优选地，所述多肽植物组合物，包含以下重量份的组分：2～4份肌肽、6～7份高良姜提取物和7～8份芒果核提取物。
优选地，所述多肽植物组合物，包含以下重量份的组分：3份肌肽、7份高良姜提取物和7份芒果核提取物。
优选地，所述高良姜提取物为高良姜水提取物。
优选地，所述芒果核提取物为芒果核水提取物。
本发明的第二个方面，提供第一方面的多肽植物组合物的制备方法，将肌肽、高良姜提取物和芒果核提取物混合，得到。
本发明的第三个方面，提供第一方面的多肽植物组合物在制备产品中的应用。
优选地，所述产品包括化妆品和药品。
优选地，所述化妆品包括洁面乳、化妆水、乳液、面膜、膏霜和精华液。
优选地，所述药品的剂型包括液体、乳膏、凝胶和喷雾。
优选地，所述产品具有(1)～(4)中任一种功能：
(1)美白皮肤；
(2)抗糖基化；
(3)抑制黑色素生成；
(4)增强皮肤屏障。
优选地，所述产品还包括药品或化妆品上可接受的辅料。
本发明的第四个方面，提供一种产品，包含本发明第一方面的多肽植物组合物。
优选地，所述产品包括化妆品和药品。
优选地，所述化妆品包括洁面乳、化妆水、乳液、面膜、膏霜和精华液。
优选地，所述药品的剂型包括液体、乳膏、凝胶和喷雾。
优选地，所述产品具有(1)～(4)中任一种功能：
(1)美白皮肤；
(2)抗糖基化；
(3)抑制黑色素生成；
(4)增强皮肤屏障。
优选地，所述产品还包括药品或化妆品上可接受的辅料。
本发明的有益效果是：
本发明提供了一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物，包含：肌肽、高良姜提取物和芒果核提取物；该组合物具有美白功效：能够减少AGEs含量，最高降幅达到20.08％，降低与其受体AGER结合，从而抑制黑色素的生成；能够直接抑制黑色素细胞合成黑色素，抑制率最高达到18.84％；能够增强皮肤屏障：LBA色差亮度恢复度达到21.42％；透皮失水率显著下降，有明显的保湿效果；皮肤厚度明显变薄；达到真正增强皮肤屏障的效果；最终达到美白功效，并且各组分在降低AGEs含量、抑制黑色素合成、抑制TEWL升高等方面具有协同效果作用；同时，该组合物中小分子多肽—肌肽容易吸收发挥作用，高良姜提取物和芒果核提取物有提升水分，亮度，弹性等效果，各组分天然无污染，且无毒副作用。
附图说明
图1是不同处理对小鼠黑色素瘤细胞(B16)中黑色素含量的影响图；*表示与模型组相比，p＜0.05；****表示与模型组相比，p＜0.0001。
图2是不同处理对裸鼠皮肤透皮失水率的影响图；*表示与模型组相比，p＜0.05；**表示与模型组相比，p＜0.01；****表示与模型组相比，p＜0.0001。
图3是不同处理对裸鼠皮肤厚度的影响图。
具体实施方式
以下通过具体的实施例对本发明的内容作进一步详细的说明。
本实施例中肌肽选自中国荣甄生物(货号RZ-19032609，含量≥99％)；高良姜提取物为高良姜水提取物，选自西安美禾生物(货号MH-040704，含量≥98％)；芒果核提取物为芒果核水提取物，选自陕西绿晟源(货号LSYSW-MGHTQW，含量≥30：1)。本领域技术人员可以根据实际需要选用相关市售商品。除非特别说明，以下实施例所用试剂和材料均为市购。
实施例1 一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物
一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物，由以下重量份的组分组成：肌肽0.1份、高良姜提取物8份、芒果核提取物8.9份。
上述具有抗糖化作用的多肽植物组合物的制备方法，将肌肽、高良姜提取物、芒果核提取物混合，得到。
实施例2 一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物
一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物，由以下重量份的组分组成：肌肽1份、高良姜提取物6份、芒果核提取物10份。
上述具有抗糖化作用的多肽植物组合物的制备方法，将肌肽、高良姜提取物、芒果核提取物混合，得到。
实施例3 一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物
一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物，由以下重量份的组分组成：肌肽2份、高良姜提取物7份、芒果核提取物8份。
上述具有抗糖化作用的多肽植物组合物的制备方法，将肌肽、高良姜提取物、芒果核提取物混合，得到。
实施例4 一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物
一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物，由以下重量份的组分组成：肌肽3份、高良姜提取物7份、芒果核提取物7份。
上述具有抗糖化作用的多肽植物组合物的制备方法，将肌肽、高良姜提取物、芒果核提取物混合，得到。
实施例5 一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物
一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物，由以下重量份的组分组成：肌肽4份、高良姜提取物6份、芒果核提取物7份。
上述具有抗糖化作用的多肽植物组合物的制备方法，将肌肽、高良姜提取物、芒果核提取物混合，得到。
实施例6 一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物
一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物，由以下重量份的组分组成：肌肽5份、高良姜提取物3份、芒果核提取物9份。
上述具有抗糖化作用的多肽植物组合物的制备方法，将肌肽、高良姜提取物、芒果核提取物混合，得到。
对比例1 一种具有抗糖化作用的物质
一种具有抗糖化作用的物质，由以下重量份的组分组成：肌肽17份。
对比例2 一种具有抗糖化作用的物质
一种具有抗糖化作用的物质，由以下重量份的组分组成：高良姜提取物17份。
对比例3 一种具有抗糖化作用的物质
一种具有抗糖化作用的物质，由以下重量份的组分组成：芒果核提取物17份。
对比例4 一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物
一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物，由以下重量份的组分组成：肌肽5份、高良姜提取物12份。
上述具有抗糖化作用的多肽植物组合物的制备方法，将肌肽、高良姜提取物混合，得到。
对比例5 一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物
一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物，由以下重量份的组分组成：肌肽5份、芒果核提取物12份。
上述具有抗糖化作用的多肽植物组合物的制备方法，将肌肽、芒果核提取物混合，得到。
对比例6 一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物
一种具有抗糖化作用的多肽植物组合物，由以下重量份的组分组成：高良姜提取物8份、芒果核提取物9份。
上述具有抗糖化作用的多肽植物组合物的制备方法，将高良姜提取物、芒果核提取物混合，得到。
效果实施例
1.实施例1～6及对比例1～6的物质/组合物对晚期糖基化终末产物(advancedglycation end products，AGEs)的影响的体外实验验证
(1)实验目的
本实验在体外模拟AGEs的生成过程，具体如下：通过高温加速其反应过程，研究物质/组合物对晚期糖基化终末产物生成的抑制效果；运用酶联免疫吸附测定法测量AGEs水平，评估不同物质/组合物对AGEs的影响。
(2)实验试剂及设备
牛血清白蛋白(BSA)、葡萄糖、磷酸氢二钠、磷酸氢二钾、叠氮化钠、CML ELISA试剂盒，Spectramax酶标仪。
(3)实验步骤
1)配制PBS缓冲液：称取K2HPO4(0.2M，M＝228.22)20.539g溶于450mL蒸馏水，得到K2HPO4溶液；KH2PO4(0.2M，M＝136.09)2.7218g溶于100mL蒸馏水，得到KH2PO4溶液；取99mLKH2PO4溶液和401mL K2HPO4溶液混合均匀，调PH为7.4后加叠氮化钠0.0975g，得到。
2)配制样品母液：称取0.1g样品(实施例1～6及对比例1～6的物质/组合物)，溶解至1mL，溶解后得到100mg/mL母液。
3)配制反应液：称BSA1.125 g加入步骤1)配制好的PBS溶解至150mL，得到浓度为7.5mg/mL BSA溶液，称葡萄糖(D-Glu)0.0675g加入步骤1)配制好的PBS溶解至100mL，得到浓度为6.75mg/mL的葡萄糖溶液。
4)样品浓度稀释：用样品母液(100mg/mL)和PBS以1：99的体积进行稀释，得到浓度为1mg/mL的样品。
5)分组：空白组加BSA(7.5mg/mL)50uL以及PBS 150uL，模型组加BSA(7.5mg/mL)50uL，葡萄糖溶液(6.75mg/mL)50uL以及PBS 100uL，样品组分别加BSA(7.5mg/mL)50uL，葡萄糖溶液(6.75mg/mL)50uL以及样品100uL(实施例1～6及对比例1～6的物质/组合物)；每个组别3个复孔。
6)孵育：各分组溶液避光，在60度下孵育24小时。
(4)晚期糖基化终末产物(advanced glycation end products AGEs)浓度检测
1)原理：酶联免疫吸附测定法是应用双抗体夹心法测定血液中晚期糖基化终末产物(AGEs)水平；将AGEs抗体包被在96板制成的固相载体上，向微孔中依次加入标准品和样本，AGEs与连接于固相载上的抗体结合，再与HRP标记的检测抗体结合，形成抗体-抗原-酶标抗体复合物，经过洗涤后加入底物TMB显色，TMB在HRP酶的催化下显示蓝色，并在酸的作用下最终呈黄色，颜色深浅和样品中的AGEs呈正相关，用酶标仪在450nm波长下测定吸光度(O.D.值)，计算样本中AGEs浓度。
2)平衡：使用前将所有试剂和样本缓慢均衡至室温。
3)加样：分别设置空白孔、标准孔和样本孔，在标准孔和样本孔中先加样品稀释液40uL(空白孔加50uL)，再在标准孔和样本孔中分别加入标准品和样本10uL(空白孔不加)。
4)加酶：除空白孔(空白孔加入等量样品稀释液)外每孔加入酶标试剂100uL。
5)温育：用封板膜封板后放置37℃恒温箱温育1小时。
6)洗涤：温育完成后，弃去液体，加入稀释20倍的浓缩洗涤液后，静置30秒钟，甩干，重复洗板5次。
7)显色：每孔加入显色试剂A50uL，再加入显色试剂B50uL，轻轻震荡混匀，放置37℃避光显色15分钟。
8)终止：每孔加入终止液50uL，此时蓝色立即转为黄色。
9)测定：加入终止液15分钟内，在确保酶标板底无水滴及孔内无气泡后，立即用酶标仪在450nm波长测量各孔的光密度(OD值)，计算样品中AGEs的浓度。
(5)实验结果
晚期糖基化终末产物(AGEs)能够影响黑色素细胞产生黑色素；因此降低血液中的AGEs含量，能够有效的抑制黑色素的生成。根据AGE的生成特点，通过体外验证实验研究各实施例和对比列对AGEs的抑制效果。根据计算公式：样品(实施例1～6及对比例1～6的物质/组合物)对AGEs的降幅＝(模型组的AGEs含量-样品组的AGEs含量)÷模型组的AGEs的含量×100％。样品(实施例1～6及对比例1～6的物质/组合物)对AGEs的降幅的结果如表1所示：空白对照没有经过葡萄糖、样品处理过，经过检测，其含量就是AGEs的正常水平；模型组的AGEs含量相比空白对照显著上升，表明造模成功；经过样品处理后，样品组中AGEs的含量相比模型组均显著降低，表明样品(实施例1～6及对比例1～6的物质/组合物)对黑色素细胞的抑制作用，可以抑制黑色素生成。通过比较对比例6的组合物(对比例中AGEs降幅最大的样品)与实施例1～6的组合物对AGEs降幅的效果，结果如表2所示：实施例1～6的组合物对AGEs的降幅显著高于对比例6的组合物(对比例中AGEs降幅最大的样品)，可见，实施例1～6的组合物对AGEs的降低效果显著优于组合物中的任意一种组分或任意两种组分组成的组合物，实施例1～6的组合物中的各组分在降低AGEs方面具有协同增效的作用，能够有效的减弱AGEs的效果，从而减少黑色素细胞的含量，达到抑制黑色素生成的效果。
表1不同处理对AGEs的降幅的影响
注：与模型组相比，*表示P小于0.05，**表示P小于0.01，***表示P小于0.001，****表示P小于0.0001；与对比例6相比，★表示P小于0.05，★★表示P小于0.01，★★★表示P小于0.001，★★★★表示P小于0.0001。
表2 AGE降幅差异显著性分析
对比组 P-value 是否具有显著性差异
对比例6 VS实施例1 0.0217 是
对比例6 VS实施例2 <0.0001 是
对比例6 VS实施例3 0.0394 是
对比例6 VS实施例4 0.0397 是
对比例6 VS实施例5 0.0048 是
对比例6 VS实施例6 0.0002 是
2.实施例1～6及对比例1～6的物质/组合物对黑色素合成的抑制率
(1)实验目的
为了确认实施例1～6与对比例1～6的物质/组合物对黑色素细胞合成黑色素的影响，利用小鼠黑色素细胞进行测定。
(2)实验试剂及设备
1)实验试剂
胎牛血清、双抗、DMEM培养基、0.25％胰岛素-EDTA、促黑素细胞激素msh、MTT溶液、DMSO溶液；其中，完全培养基由10％胎牛血清，1％双抗和89％的DMEM培养基配置而成。
2)实验设备
37℃恒温培养箱、96孔板、酶标仪。
(3)实验步骤
1)将小鼠黑色素瘤细胞(B16)接入完全培养基中，在37℃，5％CO2的条件下进行培养。
2)将培养的B16细胞用0.25％胰岛素-EDTA消化分离，在96孔板以5×103细胞/孔(cells/well)的浓度培养细胞，调零组不接种细胞，其余操作同空白组。
3)培养2 4小时后，除空白组外，模型组，样品(实施例1～6及对比例1～6的物质/组合物)组分别加入100uL的600umol/mL的msh溶液(含msh的DMEM培养基)，空白组加入等量的DMEM培养基，每种处理重复3次。
4)2小时后，弃去培养液，用PBS洗干净，然后在空白组、模型组加入100μL完全培养基，样品组加入100μL含样品的完全培养基(50μg/mL)。
5)48h后，加入100μL的MTT溶液(0.5mg/mL)。
6)4h后，加入150μL DMSO溶液。
7)孵育15min，使用酶标仪，震荡20s，570nm波长下测量吸光度，吸光度越大表示黑色素的含量越高。
(4)实验结果
通过吸光度计算相应的黑色素含量，然后计算各处理后黑色素增长率，黑色素增长率％＝(模型组/样品组黑色素含量-空白组黑色素含量)÷空白组黑色素含量×100％；同时，计算样品对黑色素增长的抑制率，样品对黑色素增长的抑制率＝模型组黑色素增长率-样品组黑色素增长率。结果如图1及表3所示：经msh溶液诱导后，模型组中的黑色素增加了41.89％，表明造模成功；样品(实施例1～6及对比例1～6的物质/组合物)处理后，黑色素增长率低于模型组，表明样品(实施例1～6及对比例1～6的物质/组合物)能够抑制黑色素的增加/合成。进一步地，通过比较对比例6的物质(对比例中黑色素增长抑制率最高的样品)与实施例1～6的组合物对黑色素增长/合成抑制的效果，结果如表4所示：实施例1～6的组合物对黑色素增长/合成的抑制率显著高于对比例6的物质(对比例中对黑色素增长的抑制率最大的样品)，可见，实施例1～6的组合物对黑色素增长/合成抑制效果显著优于组合物中的任意一种组分或任意两种组分组成的组合物，实施例1～6的组合物中的各组分在抑制黑色素增长/合成方面具有协同增效的作用。
表3不同处理对黑色素合成的抑制率
注：与模型组相比，*表示P小于0.05，**表示P小于0.01，***表示P小于0.001，****表示P小于0.0001；与对比例6相比，★表示P小于0.05，★★表示P小于0.01，★★★表示P小于0.001，★★★★表示P小于0.0001。
表4黑色素增长抑制率差异显著性分析
对比组 P-value 是否具有显著性差异
对比例6 VS实施例1 0.0006 是
对比例6 VS实施例2 <0.0001 是
对比例6 VS实施例3 <0.0001 是
对比例6 VS实施例4 0.0017 是
对比例6 VS实施例5 <0.0001 是
对比例6 VS实施例6 <0.0001 是
3.实施例1～6及对比例1～6的物质/组合物的皮肤屏障验证
(1)实验目的
本实验采用裸鼠来进行实验验证，在用不同样品(实施例1～6及对比例1～6的物质/组合物)对小鼠进行处理后，对其皮肤屏障进行评价。
(2)实验方法
1)实验步骤
①药物配置
分别取实施例1～6及对比例1～6的物质/组合物、丙二醇按质量比1:9混合，得到药物SY1、SY2、SY3、SY4、SY5、SY6、DY1、DY2、DY3、DY4、DY5、DY6。
②实验处理
将70只裸鼠随机分成14组，每组5只，适应性喂养1周后，除空白组外，模型组、药物组(SY1、SY2、SY3、SY4、SY5、SY6、DY1、DY2、DY3、DY4、DY5、DY6)分别用UVB以3.2mW/cm2功率照射40秒钟；5小时后，除空白组和模型组，药物组裸鼠背部分别涂抹药物SY1～SY6和DY1～DY6；每天2次，每次200uL，连续造模给药7天。
(3)实验记录
色差值：于实验前及给药第7天后1h时，使用色差仪测量皮肤LAB值。
透皮失水率：在最后一天进行TEWL数据的测量。
HE染色：在实验结束后，取裸鼠眼血，取裸鼠背部皮肤2cm2～3cm2。
(4)实验结果
1)色差值LAB
人的肤色是由四种生物色素组成，分别是褐色的黑色素，红色的血红蛋白，蓝色的还原血红素以及黄色的胡萝卜素与胆色素。用色差仪对皮肤的颜色进行测量，其测量指标为LAB值，其中L为垂直轴，代表为明度，值越小代表越暗，黑色素越多，值越大代表越亮，黑色素越少。LAB值中的L黑值测试结果见表5：降幅＝第7天值-第0天值，降幅减少量＝模型组降幅-药物组降幅；经UVB处理后，模型组L黑值下降显著，表明建模成功；药物(包含实施例1～6及对比例1～6的物质/组合物的SY1、SY2、SY3、SY4、SY5、SY6、DY1、DY2、DY3、DY4、DY5、DY6)处理后，抑制了L黑值下降，表明药物(包含实施例1～6及对比例1～6的物质/组合物的SY1、SY2、SY3、SY4、SY5、SY6、DY1、DY2、DY3、DY4、DY5、DY6)能够抑制L黑值下降，抑制皮肤变暗，抑制黑色素增加。进一步地，通过比较药物DY6(包含对比例6的组合物的药物，对比例中L黑值降幅最小(降幅减少量最大)的药物)与药物SY1～SY6(包含实施例1～实施例6的组合物的药物)对L黑值降幅抑制的效果(降幅减少量)，结果如表6所示：药物SY1～SY6(包含实施例1～实施例6的组合物的药物)对L黑值降幅抑制效果显著优于DY6(包含对比例6的组合物的药物，对比例中L黑值降幅最小(降幅减少量最大)的药物)，可见，药物SY1～SY6(包含实施例1～实施例6的组合物的药物)对L黑值降幅抑制效果显著优于包含组合物中的任意一种组分或任意两种组分组成的组合物的药物，实施例1～实施例6的组合物中的各组分在L黑值降幅抑制(黑色素抑制)方面具有协同增效的作用。
表5裸鼠皮肤色差值(L黑值)
注：与模型组相比，*表示P小于0.05，**表示P小于0.01，***表示P小于0.001，****表示P小于0.0001；与对比例6相比，★表示P小于0.05，★★表示P小于0.01，★★★表示P小于0.001，★★★★表示P小于0.0001。
表6色差值(L黑值)降幅减少量差异显著性分析
对比组 P-value 是否具有显著性差异
对比例6 VS实施例1 0.0059 是
对比例6 VS实施例2 <0.0001 是
对比例6 VS实施例3 <0.0001 是
对比例6 VS实施例4 <0.0001 是
对比例6 VS实施例5 0.0002 是
对比例6 VS实施例6 <0.0001 是
2)透皮失水率
各处理透皮失水率结果如图2及表7所示：经UVB处理后，模型组TEWL显著升高，表明建模成功；药物(包含实施例1～实施例6及对比例1～对比例6的物质/组合物的SY1、SY2、SY3、SY4、SY5、SY6、DY1、DY2、DY3、DY4、DY5、DY6)处理后，抑制了TEWL的升高，表明药物(包含实施例1～实施例6及对比例1～对比例6的物质/组合物的SY1、SY2、SY3、SY4、SY5、SY6、DY1、DY2、DY3、DY4、DY5、DY6)能够抑制TEWL的升高，具有一定的保湿作用。进一步地，通过比较药物DY6(包含对比例6的组合物的药物，对比例中透皮失水率的减少量最大的药物)与药物SY1～SY6(包含实施例1～实施例6的组合物的药物)对透皮失水率升高抑制的效果(透皮失水率的减少量＝模型组TEWL的变化量-药物组TEWL的变化量)，结果如表8所示：药物SY1～SY6(包含实施例1～实施例6的组合物的药物)对TEWL升高抑制(保湿)效果显著优于DY6(包含对比例6的组合物的药物，对比例中透皮失水率的减少量最大的药物)，可见，药物SY1～SY6(包含实施例1～实施例6的组合物的药物)对TEWL升高抑制(保湿)效果显著优于包含组合物中的任意一种组分或任意两种组分组成的组合物的药物，实施例1～实施例6的组合物中的各组分在TEWL升高抑制(保湿)方面具有协同增效的作用，有效地增强了皮肤屏障。
表7各处理透皮失水率
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注：与模型组相比，**表示P小于0.01，***表示P小于0.001，****表示P小于0.0001；与实施例3比，与对比例6相比，★表示P小于0.05，★★表示P小于0.01，★★★表示P小于0.001，★★★★表示P小于0.0001；
表8透皮失水率减少量差异显著性分析
对比组 P-value 是否具有显著性差异
对比例6 VS实施例1 <0.0001 是
对比例6 VS实施例2 <0.0001 是
对比例6VS实施例3 0.0220 是
对比例6VS实施例4 0.0013 是
对比例6VS实施例5 <0.0001 是
对比例6VS实施例6 <0.0001 是
3)HE染色
HE染色法又称苏木精-伊红染色法，苏木精染液为碱性，使细胞核内的染色质与胞质内的核酸着紫蓝色；伊红为酸性染料，主要使细胞质和细胞外基质中的成分着红色。通过HE染色可以清楚的观察的皮肤的颜色。实验结果如图3所示：空白组所示的皮肤厚度未经过UVB及药物处理，此皮肤厚度为裸鼠原本的皮肤厚度；经过UVB处理后，裸鼠皮肤厚度有明显的增加，表明造模成功；经过药物(包含实施例1～实施例6及对比例1～对比例6的物质/组合物的SY1、SY2、SY3、SY4、SY5、SY6、DY1、DY2、DY3、DY4、DY5、DY6)处理后，裸鼠背部皮肤变薄，而药物DY1、DY2、DY3、DY4、DY5、DY6(包含对比例1～对比例6的物质/组合物的药物)处理后，裸鼠背部皮肤变薄的程度不如药物SY1、SY2、SY3、SY4、SY5、SY6(包含实施例1～实施例6的组合物的药物)，即药物SY1、SY2、SY3、SY4、SY5、SY6(包含实施例1～实施例6的组合物的药物)改善皮肤的效果优于药物DY1、DY2、DY3、DY4、DY5、DY6(包含对比例1～对比例6的物质/组合物的药物)，可见，实施例4(实施例中效果最差的组合)的组合物在改善皮肤的效果优于对比例6(对比例中效果最好的对比例)，实施例1～实施例6的组合物中的各组分在改善皮肤方面具有协同增效的作用。
上述实施例为本发明较佳的实施方式，但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制，其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化，均应为等效的置换方式，都包含在本发明的保护范围之内。

Claims (12)

1.一种组合物，包含：肌肽、高良姜提取物和芒果核提取物；
所述高良姜提取物为水提取物；
所述芒果核提取物为水提取物。
2.根据权利要求1所述的组合物，其特征在于：
所述组合物包含以下重量份的组分：0.1～6份 肌肽、3～10份 高良姜提取物和3～10份 芒果核提取物。
3.根据权利要求2所述的组合物，其特征在于：
所述组合物包含以下重量份的组分：0.1～5份 肌肽、3～8份 高良姜提取物和7～10份芒果核提取物。
4.权利要求1～3中任一项所述的组合物在制备产品中的应用；
所述产品具有（1）～（4）中任一种功能：
（1）美白皮肤；
（2）抗糖基化；
（3）抑制黑色素生成；
（4）增强皮肤屏障。
5.根据权利要求4所述的应用，其特征在于：
所述产品包括化妆品和药品。
6.根据权利要求5所述的应用，其特征在于：
所述化妆品包括洁面乳、化妆水、乳液、面膜、膏霜和精华液。
7.根据权利要求5所述的应用，其特征在于：
所述药品的剂型包括液体、乳膏、凝胶和喷雾。
8.一种产品，包含权利要求1～3中任一项所述的组合物。
9.根据权利要求8所述的产品，其特征在于：
所述产品具有（1）～（4）中任一种功能：
（1）美白皮肤；
（2）抗糖基化；
（3）抑制黑色素生成；
（4）增强皮肤屏障。
10.根据权利要求8或9所述的产品，其特征在于：
所述产品包括化妆品和药品。
11.根据权利要求10所述的产品，其特征在于：
所述化妆品包括洁面乳、化妆水、乳液、面膜、膏霜和精华液。
12.根据权利要求10所述的产品，其特征在于：
所述药品的剂型包括液体、乳膏、凝胶和喷雾。
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