CN114990135A - 一种籽粒β-葡聚糖含量提高的转基因水稻的制备方法 - Google Patents

一种籽粒β-葡聚糖含量提高的转基因水稻的制备方法 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种籽粒β‑葡聚糖含量提高的转基因水稻的制备方法,该方法包括:将GluB‑1启动子和CslF6基因进行重组,重组后的目标基因转入至受体植株中,得到转基因水稻;所述目标基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示。本发明方法获得的转基因水稻能够显著提高水稻籽粒中的β‑葡聚糖含量,在水稻遗传育种领域可用于培育高β‑葡聚糖含量的水稻新品种,为功能稻的筛选和培育提供理论指导。

Description

一种籽粒β-葡聚糖含量提高的转基因水稻的制备方法
技术领域
本发明涉及作物生理技术领域,尤其涉及一种籽粒β-葡聚糖含量提高的转基因水稻的制备方法。
背景技术
β-葡聚糖是禾谷类植物籽粒细胞壁中的非淀粉多糖,是籽粒细胞壁的主要成分。β-葡聚糖属于膳食纤维成分之一,具有许多有益的健康特性,主要体现在以下几个方面:1.降低血糖血脂和血清胆固醇。β-葡聚糖能够减少小肠对脂肪及胆固醇的吸收率,从而降低血清胆固醇;同时β-葡聚糖作为一种粘性纤维,可通过影响肠道粘度而减缓碳水化合物的吸收,从而降低血糖;β-葡聚糖可降低血液中的胆固醇和葡萄糖浓度,从而降低心血管疾病和糖尿病的风险。2.改善肠道健康。β-葡聚糖在小肠中不能水解,而在大肠中降解并作为细菌发酵的底物,发酵产生乙酸、丙酸和丁酸等短链脂肪酸,抑制腐败菌,促进益生菌,维持肠道菌群平衡,从而促进肠道健康,其在胃肠道的正常运作和预防炎症以及结肠癌方面发挥着重要作用。总之,β-葡聚糖具有许多有益健康特性,其可能在改善健康和预防慢性非传染性疾病方面发挥关键作用,例如糖尿病、高胆固醇血症、肥胖症、心血管疾病和癌症等。
水稻是我国主要的粮食作物,随着我国经济的发展,国民对稻米的需求由吃得饱变为吃的健康,对高端稻米产业的功能稻供给研究逐渐提上日程。功能稻应具备优质的营养结构和丰富的营养供给,同时具有部分高端保健功能,对一些疾病的预防和防治都具有良好的效果。目前,生产上功能稻的主栽品种十分缺乏,选育进程缓慢,极大限制了人们日常饮食中对功能营养成分的摄取,限制了人们对高品质稻米的需求。已知水稻中β-葡聚糖含量极低,远远低于大麦和燕麦。
因此,提高水稻中β-葡聚糖含量可以提高人们日常饮食中对β-葡聚糖的摄取,通过食疗对糖尿病、高胆固醇血症、肥胖症和心血管疾病等有较好的辅助治疗功能;同时也为水稻功能营养品质育种提供材料基础,为功能稻的筛选和培育提供参考。
发明内容
本发明提供了一种籽粒β-葡聚糖含量提高的转基因水稻的制备方法,该方法能够使水稻籽粒中的β-葡聚糖含量提高至少3~4倍。
具体技术方案如下:
一种籽粒β-葡聚糖含量提高的转基因水稻的制备方法,包括:将GluB-1启动子和CslF6基因转入至受体植株中,得到转基因水稻;
将GluB-1启动子和CslF6基因进行重组,重组后的目标基因转入至受体植株中,得到转基因水稻;所述目标基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示。
进一步地,所述受体植株为水稻中花11或和华占。
进一步地,所述制备方法包括以下步骤:
(1)分别获取GluB-1启动子和CslF6基因;所述GluB-1启动子的核苷酸序列如SEQID NO.2所示,所述CslF6基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示;
(2)将步骤(1)的GluB-1启动子和CslF6基因连接至原始表达载体上,得到同时包含有GluB-1启动子和CslF6基因的重组表达载体;
(3)将重组表达载体转化至感受态细胞进行培养,得到基因工程菌;
(4)将步骤(3)的基因工程菌转化至受体植株内,得到转基因植株;
(5)验证步骤(4)的转基因植株,测定转基因植株籽粒中的β-葡聚糖含量,得到籽粒β-葡聚糖含量提高的转基因水稻。
进一步地,步骤(1)中,获取GluB-1启动子的方法为:
(A)提取水稻中花11幼苗叶片的基因组DNA;
(B)对基因组DNA进行一次PCR扩增,再对一次扩增后的产物进行二次PCR扩增,得到目标扩增产物;
所述一次PCR扩增所用引物如SEQ ID NO.6和SEQ ID NO.7所示;所述二次PCR扩增所用引物如SEQ ID NO.8和SEQ ID NO.9所示。
进一步地,步骤(1)中,获取CslF6基因的方法为:
(a)提取水稻叶片总RNA,反转录成单链cDNA;
(b)以单链cDNA为模板,进行第一轮PCR扩增,再对第一轮PCR扩增后的产物进行第二轮PCR扩增,得到目标扩增产物;
所述第一轮PCR扩增所用引物如SEQ ID NO.10和SEQ ID NO.11所示;所述第一轮PCR扩增所用引物如SEQ ID NO.12和SEQ ID NO.13所示。
进一步地,所述原始表达载体为B24_pCAMBIA-1300-35S-GFP-Nos。
进一步地,所述感受态细胞为大肠杆菌DH5α。
与现有技术相比,本发明具有以下有益效果:
本发明将GluB-1启动子和CslF6基因进行重组,重组后的目标基因转入至受体植株中,获得的转基因水稻能够显著提高水稻籽粒中的β-葡聚糖含量,在水稻遗传育种领域可用于培育高β-葡聚糖含量的水稻新品种,为功能稻的筛选和培育提供理论指导。
附图说明
图1为实施例1、2、3中过表达植株与对照植株籽粒β-葡聚糖含量的比较;
其中,图A受体材料为中花11,图B受体材料为华占;CK表示阴性对照材料;OE1,OE2,OE3分别表示实施例1、2、3中的转基因阳性植株;**所示为实施例1中的转基因植株与对照植株的差异为极显著,显著水平为P<0.05。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明作进一步描述,以下列举的仅是本发明的具体实施例,但本发明的保护范围不仅限于此。
实施例1转基因植株的制备(GluB-1启动子连接CslF6基因)
1)水稻基因组DNA的提取
水稻种子(中花11)在25℃条件下发芽,水稻幼苗长到3~4片叶时,采用CTAB法提取水稻幼苗叶片基因组DNA。
2)启动子的分离
以上述步骤中的基因组DNA为模板,用以下引物按下述方法进行两轮PCR扩增,获得启动子核苷酸序列。
第一轮PCR扩增:
模板:步骤1)中的基因组DNA
引物如下:
F:5’-ACAGATTCTTGCTACCAACAAC-3’;
R:5’-AGTTCAAAGACAGACCAAGCTAG-3’;
以水稻基因组DNA为模板,在上述引物的作用下,通过PCR扩增得到启动子片段。
PCR体系(50μL):
Figure BDA0003710312540000031
PCR程序:
Figure BDA0003710312540000032
第二轮PCR扩增:
模板:第一轮纯化后的PCR产物
引物:
F:5’-GTAAAACGACGGCCAGTGCCAAGCTTACAGATTCTTGCTACCAACAAC-3’;
R:5’-AGTTCAAAGACAGACCAAGCTAG-3’;
PCR体系和程序与第一轮相同。
扩增结束后,PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳检测(长约为2.3kb的特异性扩增条带)并切胶回收目的片段,采用北京天根生化公司的胶回收试剂盒。
3)水稻总RNA提取及cDNA合成
采用Takara公司的TaKaRaMiniBEST Plant RNA Extraction Kit提取水稻(中花11)叶片中总RNA,采用DNase I酶去除基因组DNA,随后使用Takara公司的
Figure BDA0003710312540000043
RTreagent Kit Perfect Real Time试剂盒将提取的总RNA反转录成单链cDNA。
4)A基因编码区扩增
以上述步骤中的cDNA为模板,用以下引物按下述方法进行两轮PCR扩增,选用TOYOBO公司的KOD-FX聚合酶,扩增得到PCR产物,全长为2865bp。PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳检测并切胶回收目的片段,采用北京天根生化公司的胶回收试剂盒。
第一轮PCR扩增:
模板:步骤3)中的cDNA
引物:F:5’-TTAGCAATGGCGCCAGCGGT-3’;
R:5’-TCATGGCCAGGCGTAGGTGA-3’;
PCR体系(50μL):
Figure BDA0003710312540000041
PCR程序:
Figure BDA0003710312540000042
第二轮PCR扩增:
模板:第一轮纯化后的PCR产物
引物:
F:5’-CTAGCTTGGTCTGTCTTTGAACTTTAGCAATGGCGCCAGCGGT-3’;
R:5’-TTGAACGATCGGGGAAATTCGAGCTCTCATGGCCAGGCGTAGGTGA-3’;
PCR体系和程序与第一轮相同。
5)重组载体构建
采用Vazyme的同源重组试剂盒进行线性化载体、启动子片段和基因编码区片段的同源重组,在此所用载体为pCAMBIA-1300-35S-GFP-Nos,限制性酶切位点分别为HindIII(AAGCTT)和SacI(GAGCTC)。
将重组载体转化大肠杆菌感受态,涂板至含50μg/ml卡那霉素的LB培养基,过夜培养后挑取单克隆采用引物F(5’-CTAGCTTGGTCTGTCTTTGAACTTTAGCAATGGCGCCAGCGGT-3’)和R:(5’-TTGAACGATCGGGGAAATTCGAGCTCTCATGGCCAGGCGTAGGTGA-3’)进行菌液PCR验证并测序验证其序列(即如SEQ ID No.1所示,重组片段总长为5209bp)。
将序列正确的阳性克隆进行过夜培养抽提质粒。质粒提取试剂盒购自北京天根生化公司,提取方法参照说明书。将质粒进行遗传转化,转化受体材料为中花11。
经潮霉素筛选后,获得数十株转基因候选植株;再依次提取转基因候选植株和对照组植株CK(不含潮霉素抗性基因)的DNA,通过PCR的验证方法获得转基因阳性植株和阴性植株(作为对照组材料),其中验证引物为上述菌液PCR验证引物,引物信息如前所述。
实施例2转基因植株的制备(35S启动子连接CslF6基因)
1)水稻总RNA提取及cDNA合成
采用Takara公司的TaKaRaMiniBEST Plant RNA Extraction Kit提取水稻(中花11)叶片中总RNA,采用DNase I酶去除基因组DNA,随后使用Takara公司的
Figure BDA0003710312540000051
RTreagent Kit Perfect Real Time试剂盒将提取的总RNA反转录成单链cDNA。
2)基因编码区扩增
以上述步骤中的cDNA为模板,用以下引物按下述方法进行两轮PCR扩增,选用TOYOBO公司的KOD-FX聚合酶,扩增得到PCR产物,全长为2865bp。PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳检测并切胶回收目的片段,采用北京天根生化公司的胶回收试剂盒。
第一轮PCR扩增:
模板:步骤3)中的cDNA
引物:F:5’-TTAGCAATGGCGCCAGCGGT-3’;
R:5’-TCATGGCCAGGCGTAGGTGA-3’;
PCR体系(50μL):
Figure BDA0003710312540000061
PCR程序:
Figure BDA0003710312540000062
第二轮PCR扩增:
模板:第一轮纯化后的PCR产物
引物:
F:5’-AGAACACGGGGGACTCTAGATTAGCAATGGCGCCAGCGGT-3’;
R:5’-TTGAACGATCGGGGAAATTCGAGCTCTCATGGCCAGGCGTAGGTGA-3’;
PCR体系和程序与第一轮相同。
3)重组载体构建
采用Vazyme的同源重组试剂盒进行线性化载体、启动子片段和基因编码区片段的同源重组,在此所用载体为pCAMBIA-1300-35S-GFP-Nos,限制性酶切位点分别为XbaI(TCTAGA)和SacI(GAGCTC)。
将重组载体转化大肠杆菌感受态,涂板至含50μg/ml卡那霉素的LB培养基,过夜培养后挑取单克隆采用引物F(5’-AGAACACGGGGGACTCTAGATTAGCAATGGCGCCAGCGGT-3’)和R:(5’-TTGAACGATCGGGGAAATTCGAGCTCTCATGGCCAGGCGTAGGTGA-3’)进行菌液PCR验证并测序验证其序列(即如SEQ ID No.3所示,重组片段总长为3739bp)。
将序列正确的阳性克隆进行过夜培养抽提质粒。质粒提取试剂盒购自北京天根生化公司,提取方法参照说明书。将质粒进行遗传转化,转化受体材料为中花11和华占。
经潮霉素筛选后,获得数十株转基因候选植株;再依次提取转基因候选植株和对照组植株CK(不含潮霉素抗性基因)的DNA,通过PCR的验证方法获得转基因阳性植株和阴性植株(作为对照组材料),其中验证引物为上述菌液PCR验证引物,引物信息前已所述。
实施例3转基因植株的制备(GluB-1启动子连接CslF3基因)
1)水稻基因组DNA的提取
水稻种子(中花11)在25℃条件下发芽,水稻幼苗长到3~4片叶时,采用CTAB法提取水稻幼苗叶片基因组DNA。
2)启动子的分离
以上述步骤中的基因组DNA为模板,用以下引物按下述方法进行两轮PCR扩增,获得启动子核苷酸序列。
第一轮PCR扩增:
模板:步骤1)中的基因组DNA
引物如下:
F:5’-ACAGATTCTTGCTACCAACAAC-3’;
R:5’-AGTTCAAAGACAGACCAAGCTAG-3’;
以水稻基因组DNA为模板,在上述引物的作用下,通过PCR扩增得到启动子片段。
PCR体系(50μL):
Figure BDA0003710312540000071
PCR程序:
Figure BDA0003710312540000072
第二轮PCR扩增:
模板:第一轮纯化后的PCR产物
引物:
F:5’-GTAAAACGACGGCCAGTGCCAAGCTTACAGATTCTTGCTACCAACAAC-3’;
R:5’-AGTTCAAAGACAGACCAAGCTAG-3’;
PCR体系和程序与第一轮相同。
扩增结束后,PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳检测(长约为2.3kb的特异性扩增条带)并切胶回收目的片段,采用北京天根生化公司的胶回收试剂盒。
3)水稻总RNA提取及cDNA合成
采用Takara公司的TaKaRaMiniBEST Plant RNA Extraction Kit提取水稻(中花11)叶片中总RNA,采用DNase I酶去除基因组DNA,随后使用Takara公司的
Figure BDA0003710312540000083
RTreagent Kit Perfect Real Time试剂盒将提取的总RNA反转录成单链cDNA。
4)基因编码区扩增
以上述步骤中的cDNA为模板,用以下引物按下述方法进行两轮PCR扩增,选用TOYOBO公司的KOD-FX聚合酶,扩增得到PCR产物,全长为2553bp。PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳检测并切胶回收目的片段,采用北京天根生化公司的胶回收试剂盒。
第一轮PCR扩增:
模板:步骤3)中的cDNA
引物:F:5’-ATGGCGTCGGCGGCCGGTGC-3’;
R:5’-AAATGGAAGAAAACTAAGAA-3’;
PCR体系(50μL):
Figure BDA0003710312540000081
PCR程序:
Figure BDA0003710312540000082
第二轮PCR扩增:
模板:第一轮纯化后的PCR产物
引物:
F:5’-CTAGCTTGGTCTGTCTTTGAACTATGGCGTCGGCGGCCGGTGC-3’;
R:5’-TTGAACGATCGGGGAAATTCGAGCTCAAATGGAAGAAAACTAAGAA-3’;
PCR体系和程序与第一轮相同。
5)重组载体构建
采用Vazyme的同源重组试剂盒进行线性化载体、启动子片段和基因编码区片段的同源重组,在此所用载体为pCAMBIA-1300-35S-GFP-Nos,限制性酶切位点分别为HindIII(AAGCTT)和SacI(GAGCTC)。
将重组载体转化大肠杆菌感受态,涂板至含50μg/ml卡那霉素的LB培养基,过夜培养后挑取单克隆采用引物F(5’-CTAGCTTGGTCTGTCTTTGAACTATGGCGTCGGCGGCCGGTGC-3’)和R:(5’-TTGAACGATCGGGGAAATTCGAGCTCAAATGGAAGAAAACTAAGAA-3’)进行菌液PCR验证并测序验证其序列(即如SEQ ID No.4所示,重组片段总长为4897bp)。
将序列正确的阳性克隆进行过夜培养抽提质粒。质粒提取试剂盒购自北京天根生化公司,提取方法参照说明书。将质粒进行遗传转化,转化受体材料为中花11。
经潮霉素筛选后,获得数十株转基因候选植株;再依次提取转基因候选植株和对照组植株CK(不含潮霉素抗性基因)的DNA,通过PCR的验证方法获得转基因阳性植株和阴性植株(作为对照组材料),其中验证引物为上述菌液PCR验证引物,引物信息前已所述。
实施例4功能验证
对上述实施例1~3中的转基因阳性植株与对照组植株CK(非转基因植株)成熟籽粒进行β-葡聚糖含量的测定分析,测定采用Megazyme试剂盒。结果发现,与对照相比,仅实施例1中导入SEQ ID No.1(GluB-1启动子连接CslF6基因组合)的转基因阳性植株籽粒β-葡聚糖含量极显著升高,最高可分别达对照的350%(中花11)和500%(华占)左右,而实施例2和3(其他启动子和基因组合)在两个受体材料中均不能提高水稻籽粒β-葡聚糖含量。因此,通过以上分析发现通过在水稻中外源导入SEQ ID No.1序列可提高水稻籽粒β-葡聚糖含量。
序列表
<110> 浙江大学中原研究院
<120> 一种籽粒β-葡聚糖含量提高的转基因水稻的制备方法
<160> 31
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 5209
<212> DNA
<213> 水稻(Oryza sativa L.)
<400> 1
gtaaaacgac ggccagtgcc aagcttacag attcttgcta ccaacaactt cacaaagtag 60
tagtcaacca aaactatgct aaggaatcac ctcacttccg cccatgaccg tgagcacgac 120
tgttcaaaca gtttgttaat ctctacaaag aaggtacact ttacctacac aacgccacta 180
acctgagtta cccagcccat gcaaaatagc cacgtcttgt gacttaaggg atttcgcgac 240
aaggcatttc gaaagcccac acaaggacac cttatgaaaa ctggaggggt cccacagacc 300
aacaacaagt taggtcccaa accatgttgt gccaggaaaa atccaagggg tcctccccaa 360
caccaccccg acaaatccac ttgtccattg gcatcaagat ttgcctgacc tagctaatta 420
ctcagccagg catgtcacaa ttcacccatg tggtcacaca tgttaggttg gagaaattct 480
aaaggaaagg aatcggtcca tatgagcaag accgagaaac cataccacca gtacttctac 540
cgaaatacga gtttagtaaa ctcatttgtt ttcaaggcac ccgacccagg tgtgtcgggt 600
tttccaggga ttttgtaaac ccaagtttta cccatagttg atcattcaaa ttttgaggag 660
ggtcattggt atccgtacct gagggcacga atactgagac ctagcattgt agtcgaccaa 720
ggaggttaat gcagcaattg taggtggggc ctgttggtta tattgcaaac tgcggccaac 780
atttcatgtg taatttagag atgtgcattt tgagaaatga aatacttagt ttcaaattat 840
gggctcaaat aatgaaaggt gacctacctt gcttgatatc ttgagcttct tcctcgtatt 900
ccgcgcacta ggagatcttc tggctccgaa gctacacgtg gaacgagata actcaacaaa 960
acgaccaagg aaaagctcgt attagtgagt actaagtgtg ccactgaata gatctcgatt 1020
tttgaggaat tttagaagtt gaacagagtc aatcgaacag acagttgaag agatatggat 1080
tttctaagat taattgattc tctgtataaa gaaaaaaagt attattgaat taaatggaaa 1140
aagaaaaagg aaaaagggga tggcttctgc tttttgggct gaaggcggcg tgtggccagc 1200
gtgctgcgtg cggacagcga gcgaacacac gacggagcag ctacgacgaa cgggggaccg 1260
agtggaccgg acgaggatgt ggcctaggac gagtgcacaa ggctagtgga ctcggtcccc 1320
gcgcggtatc ccgagtggtc cactgtctgc aaacacgatt cacatagagc gggcagacgc 1380
gggagccgtc ctaggtgcac cggaagcaaa tccgtcgcct gggtggattt gagtgacacg 1440
gcccacgtgt agcctcacag ctctccgtgg tcagatgtgt aaaattatca taatatgtgt 1500
ttttcaaata gttaaataat atatataggc aagttatatg ggtcaataag cagtaaaaag 1560
gcttatgaca tggtaaaatt acttacacca atatgcctta ctgtctgata tattttacat 1620
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<212> DNA
<213> 水稻(Oryza sativa L.)
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<212> DNA
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taaagaaaaa aagtattatt gaattaaatg gaaaaagaaa aaggaaaaag gggatggctt 1140
ctgctttttg ggctgaaggc ggcgtgtggc cagcgtgctg cgtgcggaca gcgagcgaac 1200
acacgacgga gcagctacga cgaacggggg accgagtgga ccggacgagg atgtggccta 1260
ggacgagtgc acaaggctag tggactcggt ccccgcgcgg tatcccgagt ggtccactgt 1320
ctgcaaacac gattcacata gagcgggcag acgcgggagc cgtcctaggt gcaccggaag 1380
caaatccgtc gcctgggtgg atttgagtga cacggcccac gtgtagcctc acagctctcc 1440
gtggtcagat gtgtaaaatt atcataatat gtgtttttca aatagttaaa taatatatat 1500
aggcaagtta tatgggtcaa taagcagtaa aaaggcttat gacatggtaa aattacttac 1560
accaatatgc cttactgtct gatatatttt acatgacaac aaagttacaa gtacgtcatt 1620
taaaaataca agttacttat caattgtagt gtatcaagta aatgacaaca aacctacaaa 1680
tttgctattt tgaaggaaca cttaaaaaaa tcaataggca agttatatag tcaataaact 1740
gcaagaaggc ttatgacatg gaaaaattac atacaccaat atgctttatt gtccggtata 1800
ttttacaaga caacaaagtt ataagtatgt catttaaaaa tacaagttac ttatcaattg 1860
tcaagtaaat gaaaacaaac ctacaaattt gttattttga aggaacacct aaattatcaa 1920
atatagcttg ctacgcaaaa tgacaacatg cttacaagtt attatcatct taaagttaga 1980
ctcatcttct caagcataag agctttatgg tgcaaaaaca aatataatga caaggcaaag 2040
atacatacat attaagagta tggacagaca tttctttaac aaactccatt tgtattactc 2100
caaaagcacc agaagtttgt catggctgag tcatgaaatg tatagttcaa tcttgcaaag 2160
ttgcctttcc ttttgtactg tgttttaaca ctacaagcca tatattgtct gtacgtgcaa 2220
caaactatat caccatgtat cccaagatgc ttttttattg ctatataaac tagcttggtc 2280
tgtctttgaa ctatggcgtc ggcggccggt gctgctgggt caaatgccag cctcgccgcc 2340
ccgctgctgg cgagccgcga gggaggtgcc aagaagccgg tcggtgccaa gggcaagcac 2400
tgggaggccg ccgacaagga cgagcggcgg gccgccaagg agagcggcgg cgaggacggc 2460
aggccgctgc tgttccggac gtacaaggtc aaaggcaccc tcctgcaccc atacagggcg 2520
ctaatcttca ttcgcttaat tgcggtcctt ctattcttcg tatggcgcat caagcacaac 2580
aaatccgaca tcatgtggtt ttggacaata tcagtcgtcg gggacgtatg gttcgggttc 2640
tcgtggctgc tcaaccaact cccaaagttc aaccctatca aaaccatacc tgatatggtc 2700
gcccttaggc gacaatacga tctttcagat gggacatcta cactcccggg catagatgtc 2760
tttgtcacca ccgctgaccc aatcgatgag ccgatactat acaccatgaa ttgtgtcctt 2820
tctatccttg cttctgacta tcctgtcgat aggtgtgcct gctatctctc agatgatagt 2880
ggagcattga ttcaatacga ggccttagtt gagaccgcaa agtttgctac tttgtgggtc 2940
ccattttgtc ggaagcattg cattgagcca agagccccag aaagctactt tgaaatagag 3000
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tctgatgctt acaacagcat gaagactgag gaaggagatg caaaggccac gtggatggca 3180
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caagaaagca cccacaacct cagcttcgcc aacaccgatg agcgcctccc gatgcttgtg 3360
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aggcaaggtg ataacactgc ctttgttcaa ttccctcaac gcttcgacaa tgttgatcca 3600
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cctccaccca ttagtgaaac attggtggct gagatggaaa gggttgtgtc ggcttcacac 3900
gataaagcca ctggttgggg caagggtgtt gggtacatat atgacatagc cacagaggat 3960
atcgtgactg gtttccgcat ccatgggcaa ggttggcgtt ccatgtattg tacaatggag 4020
cgtgacgcct tctgtggcat tgcaccaatc aacctaaccg agcgcctcca ccaaattgtg 4080
cgctggtccg gtggatcttt agagatgttc ttctcactaa ataacccact cataggtggt 4140
cgccggatcc aagcccttca gcgtgtctcc tacctcaaca tgacagtcta cccagtcaca 4200
tcactcttta tcctactcta tgctctcagc ccagtgatgt ggcttatccc tgatgaagta 4260
tacatccaga ggccattcac caaatatgtc gtgttccttc tcgtgatcat tctgatgatc 4320
catataattg ggtggctcga gataaaatgg gcgggggtca catggttgga ttactggagg 4380
aatgaacagt tctttatgat cgggtcgacg agtgcatacc cagcagccgt gctgcacatg 4440
gtggtgaatc tccttacaaa gaagggtata cacttcagag ttacttcgaa gcaaacaacg 4500
gcagacacca atgacaagtt tgctgacttg tatgacatgc gatgggtgcc aatgttaatc 4560
cctacaacag tggtgctgat tgccaatgtt ggtgcaatcg gtgtagccat gggtaaaacg 4620
atagtataca tgggagcatg gacaattgca cagaagacac atgccgcatt gggtctgctc 4680
ttcaacgtgt ggatcatggt cctgctctat ccgtttgcat tggcgatcat gggacggtgg 4740
gcaaagaggc cagtcatcct ggtggtcttg ttgccggttg cctttacaat agtttgcctt 4800
gtatatgttt ctgttcatat attacttctt agttttcttc cattt 4845
<210> 6
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<212> DNA
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acagattctt gctaccaaca ac 22
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gtaaaacgac ggccagtgcc aagcttacag attcttgcta ccaacaac 48
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agttcaaaga cagaccaagc tag 23
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<213> 人工序列(Artificial sequence)
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agaacacggg ggactctaga ttagcaatgg cgccagcggt 40
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<211> 46
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ttgaacgatc ggggaaattc gagctcaaat ggaagaaaac taagaa 46

Claims (7)

1.一种籽粒β-葡聚糖含量提高的转基因水稻的制备方法,其特征在于,包括:将GluB-1启动子和CslF6基因进行重组,重组后的目标基因转入至受体植株中,得到转基因水稻;所述目标基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示。
2.如权利要求1所述的籽粒β-葡聚糖含量提高的转基因水稻的制备方法,其特征在于,所述受体植株为水稻中花11或和华占。
3.如权利要求1所述的籽粒β-葡聚糖含量提高的转基因水稻的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)分别获取GluB-1启动子和CslF6基因;所述GluB-1启动子的核苷酸序列如SEQ IDNO.2所示,所述CslF6基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示;
(2)将步骤(1)的GluB-1启动子和CslF6基因连接至原始表达载体上,得到同时包含有GluB-1启动子和CslF6基因的重组表达载体;
(3)将重组表达载体转化至感受态细胞进行培养,得到基因工程菌;
(4)将步骤(3)的基因工程菌转化至受体植株内,得到转基因植株;
(5)验证步骤(4)的转基因植株,测定转基因植株籽粒中的β-葡聚糖含量,得到籽粒β-葡聚糖含量提高的转基因水稻。
4.如权利要求3所述的籽粒β-葡聚糖含量提高的转基因水稻的制备方法,其特征在于,步骤(1)中,获取GluB-1启动子的方法为:
(A)提取水稻中花11幼苗叶片的基因组DNA;
(B)对基因组DNA进行一次PCR扩增,再对一次扩增后的产物进行二次PCR扩增,得到目标扩增产物;
所述一次PCR扩增所用引物如SEQ ID NO.6和SEQ ID NO.7所示;所述二次PCR扩增所用引物如SEQ ID NO.8和SEQ ID NO.9所示。
5.如权利要求3所述的籽粒β-葡聚糖含量提高的转基因水稻的制备方法,其特征在于,步骤(1)中,获取CslF6基因的方法为:
(a)提取水稻叶片总RNA,反转录成单链cDNA;
(b)以单链cDNA为模板,进行第一轮PCR扩增,再对第一轮PCR扩增后的产物进行第二轮PCR扩增,得到目标扩增产物;
所述第一轮PCR扩增所用引物如SEQ ID NO.10和SEQ ID NO.11所示;所述第一轮PCR扩增所用引物如SEQ ID NO.12和SEQ ID NO.13所示。
6.如权利要求3所述的籽粒β-葡聚糖含量提高的转基因水稻的制备方法,其特征在于,所述原始表达载体为B24_pCAMBIA-1300-35S-GFP-Nos。
7.如权利要求3所述的籽粒β-葡聚糖含量提高的转基因水稻的制备方法,其特征在于,所述感受态细胞为大肠杆菌DH5α。
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