CN114711328A - 一种双歧杆菌饲料添加剂及其在海鲈鱼养殖中的应用 - Google Patents
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Abstract
本发明提供一种双歧杆菌饲料添加剂及其在海鲈鱼养殖中的应用，该添加剂添加在饲料中在海鲈鱼繁育、饲喂过程使用，对海鲈鱼幼鱼生长发育、脂氮代谢和防病抗病有促进作用，可以有效增强海鲈幼鱼对致病菌的抵抗能力，提高存活率，有利于促产增收。
Description
技术领域
本发明属于海鱼养殖技术领域，具体涉及一种双歧杆菌饲料添加剂及其在海鲈鱼养殖中的应用。
背景技术
随着工业的快速发展，水产品集约化水平的不断提高，抗生素等化学品的大量投人，水产养殖环境污染日趋严重，生态环境质量恶化、水产品安全性问题日益突出。近几年对农产品污染的调查表明，我国水产品化学污染超标率已相当高，且分布普遍。在我国当前社会经济状况下，做到水产品有毒有害物质的零残留，就必须切断有害物质进入动物体内的途径。对饲料而言，必须保证饲料中绝对不含任何有毒有害物质，使用自然饲料是绝对做不到这一点的，因此用微生物制品添加剂替代抗生素成为水产养殖中在绿色养殖方面的工作重点。
鲈(Lateolabrax japonicus)，俗称“七星鲈”、“花鲈”，为广盐性海水鱼类，成熟亲鱼在盐度25以上的海水鱼卵，幼鱼回到近岸河口水域生长。为了区别加州鲈，桂花鲈等淡水繁育的鲈鱼，沿海养殖者称鲈为“海鲈”。斗门区位于珠江口，为咸淡水交汇处，十分适合海鲈生长，池塘养殖海鲈已有20年历史，有着丰富的养殖经验。为做到高产、高质地养殖鲈鱼，广东珠海市斗门区利用当地的自然水域优势，先在淡水池塘养成商品规格，获得高产量，再转到海水网箱中养殖一段时间，提高海鲈的品质。
因白蕉海鲈鱼营养价值和经济价值较高，所以池塘养殖和工厂化养殖前景良好。随着海鲈鱼养殖业在我国的蓬勃发展，特别是工厂化养殖规模的快速增长，随之而来的养殖环境不断恶化，病害日趋严重，已成为制约其可持续发展的瓶颈。传统的抗生素和化学药物的使用会引起耐药性菌株增加、鱼类药源性器官损害、药物残留、危害生态环境等许多不良后果，造成水产品品质下降和出口障碍。在水产饲料中添加益生菌来替代抗生素，不仅能提高动物的免疫力，抑制病原微生物，达到有效预防或减少水产疾病的发生，还能提高养殖鱼类的消化道酶活性，促进其生长发育。因此，在水产饲料中添加益生菌不仅能够保障水产品安全，降低养殖风险，还能提高养殖经济效益。
目前有益菌主要集中在大菱鲆、牙鲆、虹鳟、大西洋鲑等的研究上。本试验是在海鲈仔稚鱼及成鱼基础饲料中添加改造后的乳双歧杆菌，旨在探讨其对养殖水质因子和海鲈仔稚鱼及成鱼生长的影响，为益生菌在海鲈仔稚鱼及成鱼苗种生产中的推广应用提供依据。
发明内容
针对现有技术存在的问题，本发明提供一种双歧杆菌饲料添加剂及其在海鲈鱼养殖中的应用，该添加剂可以有效增强海鲈幼鱼对致病菌的抵抗能力，提高存活率，有利于促产增收。本发明的技术方案为：
第一方面，本发明提供一种双歧杆菌饲料添加剂，至少包括：双歧杆菌。
第二方面，本发明提供过一种海鲈鱼饲料，包括：基础饲料和上述添加剂。
第三方面，本发明提供上述饲料添加剂或者上述饲料在提升海鲈鱼抗病能力上的应用。
第四方面，本发明提供上述饲料添加剂或者上述饲料在提升海鲈鱼存活率上的应用。
第五方面，本发明提供上述饲料添加剂或者上述饲料在海鲈鱼增产上的应用。
第六方面，本发明提供一种海鲈鱼养殖方法，是采用上述饲料进行饲喂。
进一步地，所述饲料中饲料添加剂的投喂量为日投饵量的1％。
优选地，日投饵率为鱼体重的4％-6％。
优选地，饲喂次数为2次，时间为上午9：00和下午16：00。
进一步地，养殖条件为：海水盐度30-33，水温18-22℃，pH 8.0-8.2，溶解氧大于等于5mg/L，循环水。
与现有技术相比，本发明具有以下突出优点和积极效果：
本发明的饲料添加剂对海鲈鱼幼鱼生长发育、脂氮代谢和防病抗病有促进作用，可在海鲈鱼繁育、饲喂过程使用，有利于促产增收。
附图说明
图1为本发明实施例中试验组与对照组养殖池内pH变化。
图2为本发明实施例中试验组与对照组养殖池内DO变化对照图。
图3为本发明实施例中试验组与对照组养殖池内温度变化对照。
图4为本发明实施例中试验组与对照组养殖池内氨氮变化对照。
图5为本发明实施例中试验组与对照组养殖池内亚硝氮变化对照。
图6为本发明实施例中幼鱼试验前后对比图。注：幼鱼生长情况对比图：从上至下分为三组，试验组，对照组和初始幼鱼。
具体实施方式
在本发明的描述中，需要说明的是，实施例中未注明具体条件者，按照常规条件或制造商建议的条件进行。所用试剂或仪器未注明生产厂商者，均为可以通过市售购买获得的常规产品。
下面结合附图和具体实施方式对本发明作进一步详细的说明，以帮助本领域的技术人员对本发明的发明构思、技术方案有更完整、准确和深入的理解，本发明的保护范围包括但不限于以下实施例，在不偏离本申请的精神和范围的前提下任何对本发明的技术方案的细节和形式所做出的修改均落入本发明的保护范围内。
本发明具体实施例提供一种双歧杆菌饲料添加剂，包括：双歧杆菌。并通过该添加剂考察了其对养殖水质因子和海鲈仔稚鱼及成鱼生长的影响。具体试验过程如下：
材料与方法
试验准备
试验用仔鱼，体长1.5-2cm，于200目/80目筛绢网箱(100cm×100cm×100cm)内微量通气养殖。光照控制在≤1000Lux，孵化水质要求水温18-22℃，pH 8.0-8.2，溶解氧大于等于5mg/L,盐度30-33。释放鱼苗前，用含氯消毒剂刷洗养殖池的池底和池壁，注水后用0.5mg/L SanocarePUR溶液消毒水体。试验期间不再进行消杀，循环换水。培养条件为：海水盐度30-33，水温18-22℃，pH 8.0-8.2，溶解氧大于等于5mg/L。
试验共使用圆筒形养殖池6个，单个养殖池水深2m，水体约4立方米，池底部向中央倾斜5％，排水口设置于池底部中央，排水口末端设阀门及活动摇臂器控制水位。池内配有进水、充气、调温管道等设备。
试验设计
试验设计不加双歧杆菌的3个养殖池为空白对照组，记为A1、A2、A3，添加双歧杆菌的3个养殖池为试验组记为B1、B2、B3,每处理3个平行，试验的每个养殖池均作为一个平行单元。
挑选符合条件的仔鱼6000尾，平均投放到6个养殖池中。鱼苗适应水质环境后，从第2天开始添加冻干双歧杆菌干粉，浓度约为1×1010CFU/kg。在此之前试验组和对照组用相同的处理方式。试验使用冻干菌粉喂食试验组，投喂量为日投饵量的1％，投入鱼苗饲料中搅拌均匀。试验组喂食添加了冻干菌粉的饲料，对照组只喂食同质来源的饲料。每天投喂2次，时间为9：00和16：00，日投饵率为鱼体重的4％-6％，每次投饵观察鱼的摄食情况，并随时调整投饵量。实验观察周期30天。
检测方法
1.早晨10点测定水体的pH、DO、水温、氨氮和亚硝氮。pH、DO和水温分别用pH计、溶氧仪、温度计测定，每天测定一次；氨氮用靛酚蓝分光光度法测定；亚硝氮用萘乙二胺分光光度法测定，每2天测定一次。
2.鱼体生长指标测定方法
在试验开始和结束时分别测量鱼体生长指标。每组随机抽取100尾鱼检测生长情况，鱼体长度测定采用精度为1mm的游标卡尺度量，全长为鱼的吻端到尾鳍末端之间的距离。体重采用电子天平称量。
试验生长指标如下公式计算：
成活率(％)＝N1/N0×100％；
相对成活率(％)＝(100×试验组成活率)/对照组成活率×100％；
增重率(％)＝(Wt-W0)/W0×100％；
相对增重率(％)＝(100×试验组增重率)/对照组增重率×100％；
全长增长率(％)＝(Le-Li)/Li×100％；
相对增长率(％)＝(100×试验组增长率)/对照组增长率×100％；
肥满度＝Wt/Le；
相对肥满度(％)＝(100×试验组肥满度)/对照组肥满度×100％；
式中：N0为试验开始时鱼数量，尾；N1为试验结束时鱼数量，尾；W0为试验开始时鱼体重，g；Wt为试验结束时鱼体重，g；t为养殖天数，d；Li为试验开始时鱼体全长，mm；Le为试验结束时鱼体全长，mm。
数据处理方法
试验数据结果采用Excel和SPSS22.0统计软件进行单因素方差分析，以P＜0.05为显著水平。
结果与分析
益生菌对水质的影响
图1显示，在此实验中，试验组和对照组的pH值变化趋势基本一致。表现为pH值先升高至最大值，在第21天降低至最小值，从第22天开始pH值升高，随后pH值保持在7.9上下波动。具体为：第8天开始第一次出现pH值先降低后升高波动，第13天再次出现pH值先降低后升高波动，第21天第3次出现pH值先降低后升高波动，最终稳定在7.9左右。经SPSS软件分析，P＞0.05，差异不显著，表明在该试验条件下，试验组与对照组pH值无显著差异，添加双歧杆菌对试验组pH值无显著影响。
图2表示，在此实验中，试验组与对照组的DO值变化趋势基本一致。表现为DO值由最大值降低至最小值，随后DO值在7.0-7.5mg/L之间波动。经SPSS软件分析，P＞0.05，差异不显著，表明在该试验条件下，试验组与对照组DO值无显著差异，添加双歧杆菌对试验组pH值无显著影响。
图3显示，在此试验中，试验组和对照组的温度变化趋势基本一致。前23天时间内温度基本维持在21.5-22.5℃，第24天时由于遇到寒潮，温度逐步降低，在27天降至最低值18.5℃，后逐渐升温至21℃。经SPSS软件分析，P>0.05，差异不显著，表明在该试验条件下，试验组与对照组温度无显著差异，添加双歧杆菌对试验组pH值无显著影响。
图4显示，在此试验中，试验组和对照组的氨氮变化趋势基本一致。表现为氨氮由最小值逐渐升高，降低再升高至最大值，依次再降低升高，随后在0.013mg/L上下波动。经SPSS软件分析，P>0.05，差异不显著，表明在该试验条件下，试验组与对照组氨氮无显著差异，添加双歧杆菌对试验组pH值无显著影响。
图5显示，在此试验中，试验组和对照组的亚硝氮变化趋势基本一致。表现为硝氮由逐渐升高至最大值(最大值出现在第14天)，再逐渐降低，在24天时出现一次小波动。经SPSS软件分析，P>0.05，差异不显著，表明在该试验条件下，试验组与对照组硝氮无显著差异，添加双歧杆菌对试验组pH值无显著影响。
益生菌对海鲈仔鱼生长的影响
益生菌对增重率的影响
从表1中可以看出，试验组1、2、3的增重率分别为215.34％、214.79％、214.60％，对照组1、2、3的增重率分别为58.68％、86.96％、86.89％。若以对照组1的增重率为100％，则各试验组相对增重率见表1。可以看出，在相同的饲养管理条件下，试验组比对照组的增重率提高149.12％—151.33％，差异非常显著(P<0.05)，表明在该试验条件下，添加益生菌对半滑舌鳎的增重率有影响。
益生菌对增长率的影响
从表1中可以看出，试验组1、2、3的增长率分别为65.02％、64.98％和65.01％，对照组1、2、3的增长率分别为26.80％、26.75％和26.72％。若以对照组1的增长率为100％，则各试验组相对增长率见表1。可以看出，在相同的饲养管理条件下，试验组比对照组的增长率提高142.94％、142.92％和142.95％，差异非常显著(P<0.05)，表明在该试验条件下，添加益生菌对半滑舌鳎的增长率有影响。
从表1中可以看出，试验组1、2、3的肥满度分别为3.93％、3.93％和3.92％，对照组1、2、3的肥满度分别为3.05％、3.06％和3.05％。若以对照组1的肥满度为100％，则各试验组相对肥满度见表1。可以看出，在相同的饲养管理条件下，试验组比对照组的肥满度提高28.43％—28.63％，差异显著(P<0.05)。
益生菌对成活率的影响
表1结果显示，试验组1、2、3的成活率分别为98.4％、98.2％和98.3％，对照组1、2、3的成活率为分别95.5％、95.2％、95.1％。若以对照组的成活率为100％，则各试验组的相对成活率见表1。可以看出，试验组比对照组的成活率提高3.04％—3.36％，差异显著(P<0.05)，表明在该试验条件下，添加益生菌对半滑舌鳎的成活率影响较大。
苗种经济效益分析
若一次卖出苗种10万尾，试验组比对照组的成活率提高3.04％—3.36％，即试验组比对照组成活尾数增多3040—3360条，如果每尾海鲈苗种的价格是0.6元，则增收1824—2016元，经济效益显著。
表1：添加双歧杆菌对海鲈鱼幼鱼生长的影响
注：
1.Wc为初始体重；Ws为收获体重；Lc为初始体长；Ls为收获体长；Wz为增重率；Wxz为相对增重率；Lz为增长率；Lxz为相对增长率；F为肥满度；Fx为相对肥满度；C为成活率；Cx为相对成活率。
2.同一行中相同上标字母的均值经Duncan检验确定差异不显著(P>0.05)。数据表示为平均值±标准差(n＝100)
此外，图6还给出了幼鱼生长情况对比图：从上至下分为三组，试验组，对照组和初始幼鱼。
组织匀浆生化指标的测定
1.鲈鱼幼鱼组织匀浆中总蛋白的测定
总蛋白(TP)的测定采用考马斯亮蓝法，操作步骤如下：
⑴首先进行样本的前处理：将鲈鱼幼鱼用手持式组织匀浆机打碎、离心、取上清，用生理盐水稀释，稀释比例为组织上清：生理盐水＝1:49。
⑵在空白管中加入0.05mL蒸馏水，标准管中加入0.05mL的0.563g/mL的标准液，测定管中加入待测组织匀浆，然后在空白管、标准管和测定管中分别加入3mL考马斯亮蓝显色剂，用涡旋振荡器混匀，静置10min，于595nm处，用1cm光径比色蛋白皿，先用蒸馏水调零，然后测各管OD值，将所得OD值记录下来按照以下公式计算。
2.鲈鱼幼鱼组织匀浆中尿素氮、总胆固醇和甘油三酯含量的测定
尿素氮(BUN)的测定采用脲酶法，分光光度计波长为640nm，总胆固醇(TC)的测定釆用CHO酶法，甘油三酯(TG)的测定采用酶偶联比色法，具体操作过程按照南京建成试剂盒说明书进行。
表2：添加双歧杆菌对海鲈鱼幼鱼组织匀浆生化指标的影响
注:
同一列中相同上标字母的均值经Duncan检验确定差异不显著(P>0.05)。数据表示为平均值±标准差(n＝100)
双歧杆菌对海鲈鱼幼鱼组织匀浆生化指标的影响见上表，对比试验组与对照组的数据发现，总蛋白(TP)和尿素氮(BUN)呈上升趋势，且有显著性差异(P＜0.05)。总胆固醇(TC)和甘油三酯(TG)呈下降趋势，试验组总胆固醇显著低于对照组(P＜0.05)，降低了31.92％；试验组甘油三酯低于对照组(P＜0.05)，降低了9.06％。
益生菌在水产养殖中应用的研究主要集中在改善水质和促进水产动物生长方面，而对水产动物自身免疫和抗氧化功能影响的报道较少。
补体C3、C4的测定采用的测定采用上海酶联生物科技有限公司试剂盒，开始检测前将试剂盒从冷藏环境中取出在室温放置30min，测定样品的同时制作标准曲线。ELISA试剂盒法测量组织匀浆中补体C3、C4是利用的固相夹心法，将已知浓度的标准品、待测样品加入微孔酶标板内进行检测，先将生物素标记的抗体同时温育，洗涤后，加入亲和素标记过的HRP，再进行温育和洗涤，去除未结合的酶结合物，然后加入底物A、B和酶结合物同时作用产生颜色。酶结合物与相应抗原或抗体结合后，可根据加入底物的颜色变化来判断是否有免疫反应的存在，颜色反应的深浅是与标本中相应抗体的量成正比例，因此，可以按底物显色的程度显示试验结果。具体步骤如下：
准备试剂、样品和标准品→加入准备好的样品标准品→37℃反应30min→洗涤5次，加入酶标试剂→37℃反应30min→洗涤5次，加入显色液A、B，37℃显色10min→加入终止液→15min内读取OD值→代入标准曲线计算。
溶菌酶的测定采用南京建成试剂盒，以溶壁微球菌为底物，标准品为0.1mg/mL，应用菌液浓度0.25mg/mL。配置好的应用菌液，按照说明书进行测定。
鲈鱼幼鱼组织匀浆中碱性磷酸酶的测定
碱性磷酸酶(AKP)活力的测定采用磷酸苯二钠法进行，测定波长为520nm，待反应结束后用酶标仪读取吸光值。AKP活力定义：100mL上清于37℃与基质作用15min产生1mg酚作为一个金氏单位，1金氏单位＝7.14U/L。
谷丙转氨酶(AST)和谷草转氧酶(ALT)的测定分别采用谷丙转氨酶试剂盒和谷草转氨酶试剂盒测定，试剂盒均购自南京建成，按照试剂盒说明书操作骤进行测定，于510nm波长用酶标仪测定各孔OD值，该方法是利用比色分析原理将待测幼鱼组织匀浆样品显色与丙酮酸标准品配置成的系列标准液比较，求出样品中谷丙转氨酶的活力和谷草转氨酶的活力。
表3：添加双歧杆菌对海鲈鱼幼鱼组织匀浆非特异性免疫指标的影响
注：同一行中相同上标字母的均值经Duncan检验确定差异不显著(P>0.05)。数据表示为平均值±标准差(n＝100)
双歧杆菌对海鲈鱼幼鱼组织匀浆非特异性免疫指标的影响见上表，对比试验组与对照组的数据发现，试验组溶菌酶、补体C3和补体C4呈上升趋势，溶菌酶提高了32.10％，补体C3提高了31.65％，补体C4提高了73.68％，有显著性差异(P＜0.05)，补体C3可见显著提高但未有统计差异，可能是由于数据波动大，一致性差导致。谷丙转氨酶、谷草转氨酶各组间无显著性差异(P＞0.05)，但是试验组的谷丙转氨酶略高于对照组，试验组的谷草转氨酶略低于对照组。
总超氧化物歧化酶(T-SOD)的测定采用黄嘌呤氧化酶法(羟胺法)，黄嘌呤氧化酶催化黄嘌呤产生超氧阴离子自由基，后者氧化羟胺成亚硝酸盐，亚硝酸盐在对氨基苯磺酸与甲萘胺作用下呈现紫红色，用可见光分光光度计测其吸光度。当被测样品中含SOD时，则对超氧阴离子自由基有专一性抑止作用，使可形成的亚硝酸盐减少，比色时测定管的吸光度值低于空白管的吸光度值，通过公式计算可求出被测样品中SOD的活力。
过氧化氢酶、谷胱甘肽过氧化物酶、还原型谷胱甘肽和总抗氧化能力的测定采用试剂盒所述操作完成，试剂盒购自南京建成，使用可见光分光光度计，过氧化氢酶的测定波长为240nm，谷胱甘肽过氧化物酶的测定采用的波长为412nm，，还原型谷胱甘肽的测定釆用420nm波长，总抗氧化能力的测定采用450nm波长，测定后根据试剂盒说明书提供的公式计算得出最终结果。
抗超氧阴离子自由基活力(Inhibition O2-)的是指反应体系中，每克样品在37℃反应40min所抑制的超氧阴离子自由基，相当于每mg的维生素C所抑制的超氧阴离子自由基的变化值，定义为一个活力单位。
表4：添加双歧杆菌对海鲈鱼幼鱼组织匀浆抗氧化指标的影响
注：同一行中相同上标字母的均值经Duncan检验确定差异不显著(P>0.05)。数据表示为平均值±标准差(n＝100)
双歧杆菌对海鲈鱼幼鱼组织匀浆抗氧化指标的影响见表4，总超氧化物歧化酶、谷胱甘肽过氧化物酶试验组高于对照组，分别提高了39.88％和37.57％，有显著性差异(P＜0.05)；还原性谷胱甘肽和过氧化氢酶试验组低于对照组，分别降低了7.60％和4.67％，无显著性差异(P＞0.05)，总抗氧化能力试验组明显低于对照组，降低了25.16％，有显著性差异(P＜0.05)。
肠道微生物的测定采用混菌法进行，混菌法是平板菌落计数法的一种常用方法，根据固体培养基上形成的单个菌落是由一个单细胞繁殖而成的子细胞群体这一特征来进行计数的方法。其具体方法是，将待测样品准确地进行系列倍比稀释，使微生物达到适当浓度，并且以单细胞存在，在涂布或倾注法制成含菌的平板上能够形成单个的菌落，经过培养后，统计菌落数目，根据稀释比例计算出原样品中含有的活菌数，该方法得到的菌落数实际为菌落形成单位(CFU)。
将所采集的样品从4℃冰箱中取出，于室温中放置30min，开启紫外灯对超净工作台进行杀菌，30min后，关闭紫外灯，在实验室超净工作台上，用镊子轻轻地将幼鱼肠道内容物挤出，分组装入离心管中，用祸旋振荡器震荡10min，于分析天平上将灭菌过的装有玻璃珠的锥形瓶调零，用称量勺称取一定数量的肠道内容物，读数，记录下肠道内容物的重量，称取9倍肠道内容物的无菌生理盐水加入锥形瓶中，震荡混勾，制备成样品的10倍稀释液，即10-1浓度，充分震荡混勻后依次以10倍梯度稀释，选取适当的稀释倍数吸取1mL菌液进行混菌计数，将事先准备好的培养基倾注到平板，轻轻转动平板使菌液和培养基充分混匀，每组的每种培养基取三个平行，不同的培养基选取不同的稀释倍数，稀释倍数的选取根据预实验结果而定。
采用选择性培养基对肠道菌群进行分析:细菌总数的测量用平板计数琼脂培养基，于30℃恒温培养72h；肠细菌总数的测量用结晶紫中性红胆盐葡萄糖琼脂培养基，于37℃恒温培养24h；乳酸菌用乳酸细菌培养基于37℃恒温培养24h；酵母菌用孟加拉红培养基于28℃恒温培养72h；微球菌用甘露醇琼脂培养基于28℃恒温培养72h；嗜水气单胞菌用大豆酪蛋白琼脂培养基于28℃恒温培养48h。完成培养后统计各浓度梯度菌落数，每克肠道内容物菌落数(CFU)＝平板菌落数×稀释倍数；计算结果转换成对数值lgCFU进行分析。
表5：添加双歧杆菌对海鲈鱼幼鱼肠道微生物的影响
1.同一行中相同上标字母的均值经Duncan检验确定差异不显著(P>0.05)。数据表示为平均值±标准差(n＝100)
双歧杆菌对海鲈鱼幼鱼肠道微生物的影响见表5，可以看出除细菌总数和嗜水气单胞菌外试验组各类细菌总数较对照组均有所增加，细菌总数减少3.30％，无显著差异(P＞0.05)，肠细菌总数减少3.61％，有显著性差异(P＜0.05)。试验组与对照组相比，肠道乳酸菌增加25.28％，酵母菌增加3.21％，微球菌增加8.41％，差异显著(P＜0.05)。
以上所述实施例仅表达了本发明的几种实施方式，其描述较为具体和详细，但并不能因此而理解为对本发明专利范围的限制。应当指出的是，对于本领域的普通技术人员来说，在不脱离本发明构思的前提下，还可以做出若干变形和改进，这些都属于本发明的保护范围。因此，本发明专利的保护范围应以所附权利要求为准。
Claims (10)
1.一种双歧杆菌饲料添加剂，其特征在于：至少包括：双歧杆菌。
2.一种海鲈鱼饲料，其特征在于：包括：基础饲料和上述添加剂。
3.权利要求1所述的一种双歧杆菌饲料添加剂或者权利要求2所述的一种海鲈鱼饲料在提升海鲈鱼抗病能力上的应用。
4.权利要求1所述的一种双歧杆菌饲料添加剂或者权利要求2所述的一种海鲈鱼饲料在提升海鲈鱼存活率上的应用。
5.权利要求1所述的一种双歧杆菌饲料添加剂或者权利要求2所述的一种海鲈鱼饲料在海鲈鱼增产上的应用。
6.一种海鲈鱼养殖方法，其特征在于：是采用权利要求2所述的饲料进行饲喂。
7.根据权利要求6所述的一种海鲈鱼养殖方法，其特征在于：所述饲料中饲料添加剂的投喂量为日投饵量的1％。
8.根据权利要求6所述的一种海鲈鱼养殖方法，其特征在于：日投饵率为鱼体重的4％-6％。
9.根据权利要求6所述的一种海鲈鱼养殖方法，其特征在于：饲喂次数为2次，时间为上午9：00和下午16：00。
10.根据权利要求6所述的一种海鲈鱼养殖方法，其特征在于：养殖条件为：海水盐度30-33，水温18-22℃，pH 8.0-8.2，溶解氧大于等于5mg/L，循环水。
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