CN114568249B - 一种茶枝扦插育苗棒及育苗方法 - Google Patents
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Abstract
本发明属于茶树繁育技术领域,具体涉及一种茶枝扦插育苗棒及育苗方法。本发明的育苗棒采用废弃食用菌菌棒,经过消毒后加入微生物发酵菌剂、尿素、甲壳素和寡聚糖后进行发酵,活化得到。本发明还提供了采用所述育苗棒进行茶枝扦插育苗的方法。实现废弃食用菌菌棒的资源化利用,通过菌棒免破袋再利用技术,可以降低生产成本;同时利用废弃菌棒制作成的育苗棒可以用于作物育苗、花卉栽培等,实现废弃菌棒的高效利用,避免了废弃菌棒随意丢弃、焚烧等造成的环境污染问题。
Description
技术领域
本发明属于茶树繁育技术领域,具体涉及一种茶枝扦插育苗棒及育苗方法。
背景技术
近年来,贵州省食用菌产业发展迅速,据统计全省每年种植的食用菌总数超过8亿棒,食用菌产业已经成为重要支柱型产业。然而,由于专业化的废弃菌棒处理企业较少,多数废弃菌棒以丢弃、焚烧为主,废弃菌棒的处理率和利用率较低,这不仅造成了环境污染,还造成了资源的浪费,不利于生态文明建设,因此废弃菌棒处理已经成为当前产业发展的一大难题。采用有机肥料开发利用、二次栽培料循环利用、能源和生物质燃料利用、土壤改良剂和修复剂利用、栽培基质利用、特色养殖业利用等技术模式可以实现废弃菌棒的资源化利用,真正实现废弃菌棒的“变废为宝”。但是,由于废弃菌棒循环利用中需要增加破袋拆除、原料分筛等繁琐工序,无形中增加了对设备的生产要求以及生产成本等,而废弃菌棒免破袋再利用技术则能够避免上述不利条件,既可以减少成本投入,又能够实现废弃菌棒的资源化利用。与此同时,采用菌棒免破袋再利用技术将废弃菌棒制作成育苗棒,应用于作物育苗、花卉栽培等,可以实现一举多得的效果。然而,目前菌棒免破袋再利用技术相对缺乏,无法有效的指导实际生产。
贵州茶园面积已达700万亩,而且每年的茶园面积仍在不断增加,因此对茶苗的需要也在不断增加。目前传统的茶枝扦插育苗法多以土壤为苗床进行扦插,茶苗成活率低、成苗时间长,无法保证茶苗的有效及时供应。因此,必须研发新型采用基质育苗法实现茶枝快速扦插成苗及壮苗,从而提高茶苗成活率和成活率。
发明内容
本发明要解决的技术问题是为茶枝扦插育苗提供一种营养物。
本发明的技术方案是一种茶枝扦插育苗棒,其制备方法包括如下步骤:
步骤一)菌棒灭活:选取长度20cm、体积3.0~3.6L的食用菌菌棒,将未经破袋的食用菌菌棒从两端注入400~600mL质量比2.0~4.0%的H2O2溶液,采用高压120℃灭菌1~2h,待灭菌完成后将菌棒取出常温冷却至20~25℃,再从菌棒两端注入100~200mL质量比10.0~20.0%的酒精溶液,常温晾晒24h;
步骤二)配制发酵液:先将800~1200g淀粉加入至50kg纯净水中,搅拌均匀后,再依次加入细菌型、真菌型、放线菌型的微生物发酵菌剂加入至淀粉溶液中,搅拌均匀后,密封发酵3~5天即可;其中细菌型发酵菌剂20~40g,是地衣芽孢杆菌(Bacilluslichenifromis)、枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)、假单胞杆菌(Pseudomonasadaceae)中的一种或几种,真菌型发酵菌剂40~60g,是木霉菌(richoderma)、曲霉菌(Aspergillus)、青霉菌(Penicillium)中的一种或几种,放线菌型发酵菌剂10~30g,是纤维放线菌(Acidoherums celluloliicus)、链霉菌(Srpomyces)、诺卡氏菌属(Ncardia)中的一种或几种;
步骤三):菌棒发酵:将8~12g固体尿素、1~3g甲壳素、1~3g寡聚糖溶解至100mL水中,然后将尿素溶液从菌棒中间部位注入,静置24h后,再将步骤二)中的发酵液按照体积比1:100比例用水稀释后,将15~25mL稀释液从菌棒中间部位注入,静置发酵20天;
步骤四)菌棒活化:菌棒发酵20天后,采用喷雾法将冷水喷洒至菌棒表面,将菌棒内的温度降至 20~25℃,然后每个菌棒引入5~10条蚯蚓种,继续培养20天,即得到育苗棒。
其中,步骤一)中,H2O2溶液质量比为3.0%,注入量为500mL;高压灭菌时间为1.5h;酒精溶液质量比为15.0%,注入量为150mL。
具体的,步骤二)中,淀粉用量为1000g,细菌型发酵菌剂为30g,真菌型发酵菌剂为50g,放线菌型发酵菌剂20g。
优选的,细菌型发酵菌剂为地衣芽孢杆菌,真菌型发酵菌剂为木霉菌,放线菌型发酵菌剂为纤维放线菌。
进一步的,步骤三)中,尿素用量为10g,甲壳素用量为2g,寡聚糖用量为2g;发酵稀释液用量为 20mL。
其中,步骤四)中,引入的蚯蚓种条数为8条。
本发明还提供采用所述育苗棒育苗的方法,包括如下步骤:
步骤a)茶枝扦插:选取5年生以上的茶树剪取茶枝,茶枝顶端需保留1芽1叶、中部保留1片老叶,茶枝长度5~8cm,然后将茶枝底端浸泡于营养液中0.5h,然后取出扦插于育苗棒中,根据育苗棒长度每间隔10cm插一个茶枝,最后放置于小拱棚内,并用土壤将育苗棒完全覆盖,露出茶枝即可,同时保证棚内温度白天25~30℃、夜间5~10℃;
步骤b)壮苗提质:在茶枝扦插后的第7、15、25、35天,从育苗棒中间部位浇灌400~600mL质量比0.03~0.05%的H2O2溶液,后期根据育苗棒水分状况补充水分,并在茶枝扦插后的第60、90、120、150 天,将含有质量比0.01~0.03%海藻酸和质量比0.01~0.03%2,4-表芸·赤霉酸混合溶液喷施于茶苗表面,喷洒量为1~1.5L/m2;
步骤c)茶苗移栽:在育苗6个月后,将整个育苗棒取出得到茶苗,去除菌袋后,按照株距50cm、行距50cm移栽于田间即可。
具体的,步骤a)中,所示营养液的制备方法如下:将经过550℃高温炭化后的酒糟生物炭800~1200 g、200~300g生根粉、1~1.5L木醋液加入至20L纯净水中,搅拌均匀后静置24h,即得到营养液,其中木醋液是酒糟经过550℃高温炭化后得到。
优选的,步骤a)中,酒糟生物炭用量为1000g,生根粉用量为250g,木醋液用量为1.2L。
进一步的,步骤b)中,H2O2溶液质量比为0.04%,注入量为500mL,海藻酸质量比为0.02%,2,4- 表芸·赤霉酸质量比为0.02%,混合溶液喷洒量为1.2L/m2。
本发明中所用菌棒为食用菌培养后的废弃菌棒。
本发明的有益效果:
(1)该技术可以实现废弃食用菌菌棒的资源化利用,通过菌棒免破袋再利用技术,可以降低生产成本;同时利用废弃菌棒制作成的育苗棒可以用于作物育苗、花卉栽培等,实现废弃菌棒的高效利用,避免了废弃菌棒随意丢弃、焚烧等造成的环境污染问题。
(2)采用H2O2-高温高压-酒精“三重”灭菌法,能够保证菌棒灭菌效果更彻底,避免影响微生物菌剂的发酵效果。
(3)使用“真菌型-细菌型-放线菌型”三类微生物发酵菌剂联合进行菌棒发酵,发酵速度快,发酵程度高;同时使用含有尿素、甲壳素、寡聚糖的混合溶液联合发酵,既可以保证菌棒中充足的氮素供应,又能够避免氮素快速转化损失。
(4)利用蚯蚓进行菌棒活化,一方面可以依靠蚯蚓粪增强菌棒的生物活性、提高菌棒透气性、钝化有害物质,另一方面可以利用蚯蚓检验菌棒发酵是否完全。
(5)使用酒糟生物炭、生根粉、木醋液配置的营养液,不仅可以起到茶枝切口杀菌的作用,还可以使茶枝吸收部分营养物质,保证茶枝具有生命活力。
(6)H2O2能够增加茶苗根区含氧量,提高根系活力和吸收能力,并能促进作物根系代谢;海藻酸可以刺激植物体内非特异性活性因子的产生和调节内源素的平衡,同时降低水的表面张力,在叶片表面形成一层薄膜,增强了接触面积,水溶性物质能够轻易快速的透过茎叶表面细胞,使植物快速有效地吸收营养成分;2,4-表芸·赤霉酸具有促进细胞分裂和细胞伸长的双重作用,同时还能激发植物体内某些起保护作用的酶活性,能够减轻干旱或低温等逆境条件下植物体所产生的有害物质。三者联合使用能够提高茶苗株高、茎粗和根系活力。
(7)与传统的土壤扦插育苗技术相比,该技术实现了茶枝扦插快速成苗,提高了成苗率和成活率,同时提高了茶苗根系生长能力,保证茶苗移栽后的成活率。
附图说明
图1为不同处理对茶苗根系总吸收面积的影响;图中不同小写字母表示处理间差异达5%显著水平。
图2为不同处理对茶苗根系活跃吸收面积的影响;图中不同小写字母表示处理间差异达5%显著水平。
图3为不同处理对茶苗根系活力的影响;图中不同小写字母表示处理间差异达5%显著水平。
具体实施方式
实施例1本发明育苗棒的制备
包括以下步骤:
步骤一)菌棒灭活:选取长度20cm、体积3.0L的食用菌菌棒,将未经破袋的食用菌菌棒从两端注入400mL质量比3.0%的H2O2溶液,采用高压120℃灭菌1~2h,待灭菌完成后将菌棒取出常温冷却至 20~25℃,再从菌棒两端注入100mL质量比15.0%的酒精溶液,常温晾晒24h;
步骤二)配制发酵液:先将1000g淀粉加入至10kg纯净水中,搅拌均匀后,再依次加入细菌型、真菌型、放线菌型的微生物发酵菌剂加入至淀粉溶液中,搅拌均匀后,密封发酵3~5天即可。其中细菌型发酵菌剂(枯草芽孢杆菌)30g,真菌型发酵菌剂(曲霉菌)50g,放线菌型发酵菌剂(链霉菌)20g,微生物发酵菌剂均购自于青岛和实生态工程有限公司;
步骤三)菌棒发酵:将10g固体尿素、2g甲壳素、2g寡聚糖溶解至100mL水中,然后将其从菌棒中间部位注入,静置24h后,再将步骤二)中的发酵液按照1:100比例用水稀释后,将20mL稀释液从菌棒中间部位注入,静置发酵20天,甲壳素和寡聚糖购自于济南阿波罗甲壳素肥业有限公司;
步骤四)菌棒活化:菌棒发酵20天后,采用喷雾法将冷水喷洒至菌棒表面,将菌棒内的温度降至 20~25℃,然后每个菌棒引入8条蚯蚓种,继续培养20天,即得到育苗棒。
实施例2本发明育苗棒的制备
步骤一)菌棒灭活:选取长度20cm、体积3.4L的食用菌菌棒,将未经破袋的食用菌菌棒从两端注入 500mL质量比3.0%的H2O2溶液,采用高压120℃灭菌1~2h,待灭菌完成后将菌棒取出常温冷却至 20~25℃,再从菌棒两端注入150mL质量比15.0%的酒精溶液,常温晾晒24h;
步骤二)配制发酵液:先将1000g淀粉加入至10kg纯净水中,搅拌均匀后,再依次加入细菌型、真菌型、放线菌型的微生物发酵菌剂加入至淀粉溶液中,搅拌均匀后,密封发酵3~5天即可。其中细菌型发酵菌剂(地衣芽孢杆菌)30g,真菌型发酵菌剂(木霉菌)50g,放线菌型发酵菌剂(纤维放线菌)20g,微生物发酵菌剂均购自于青岛和实生态工程有限公司;
步骤三)菌棒发酵:将10g固体尿素、2g甲壳素、2g寡聚糖溶解至100mL水中,然后将其从菌棒中间部位注入,静置24h后,再将步骤二)中的发酵液按照1:100比例用水稀释后,将20mL稀释液从菌棒中间部位注入,静置发酵20天,甲壳素和寡聚糖购自于济南阿波罗甲壳素肥业有限公司;
步骤四)菌棒活化:菌棒发酵20天后,采用喷雾法将冷水喷洒至菌棒表面,将菌棒内的温度降至 20~25℃,然后每个菌棒引入8条蚯蚓种,继续培养20天,即得到育苗棒。
实施例3本发明育苗棒的制备
步骤一)菌棒灭活:选取长度20cm、体积3.6L的食用菌菌棒,将未经破袋的食用菌菌棒从两端注入 600mL质量比3.0%的H2O2溶液,采用高压120℃灭菌1~2h,待灭菌完成后将菌棒取出常温冷却至 20~25℃,再从菌棒两端注入200mL质量比15.0%的酒精溶液,常温晾晒24h;
步骤二)配制发酵液:先将1000g淀粉加入至10kg纯净水中,搅拌均匀后,再依次加入细菌型、真菌型、放线菌型的微生物发酵菌剂加入至淀粉溶液中,搅拌均匀后,密封发酵3~5天即可。其中细菌型发酵菌剂(假单胞杆菌)30g,真菌型发酵菌剂(青霉菌)50g,放线菌型发酵菌剂(诺卡氏菌属)20g,微生物发酵菌剂均购自于青岛和实生态工程有限公司;
步骤三)菌棒发酵:将10g固体尿素、2g甲壳素、2g寡聚糖溶解至100mL水中,然后将其从菌棒中间部位注入,静置24h后,再将步骤二)中的发酵液按照1:100比例用水稀释后,将20mL稀释液从菌棒中间部位注入,静置发酵20天,甲壳素和寡聚糖购自于济南阿波罗甲壳素肥业有限公司;
步骤四)菌棒活化:菌棒发酵20天后,采用喷雾法将冷水喷洒至菌棒表面,将菌棒内的温度降至 20~25℃,然后每个菌棒引入8条蚯蚓种,继续培养20天,即得到育苗棒。
实施例4采用本发明育苗棒的扦插育苗法
采用实施例1中的育苗棒制备方法,制作100个育苗棒,育苗棒制作完成后,按照以下步骤进行茶枝扦插育苗试验,每个实施例扦插200个茶枝(该实施例所使用的茶枝未经过营养液沾根处理)。
步骤a)茶枝扦插:选取5年生以上的茶树剪取茶枝,茶枝顶端需保留1芽1叶、中部保留1片老叶,茶枝长度5~8cm,然后将茶枝扦插于育苗棒中,每个育苗棒扦插2个茶枝,间距10cm,最后放置于小拱棚内,并用土壤将育苗棒完全覆盖,露出茶枝即可,同时保证棚内温度白天25~30℃、夜间5~10℃;
步骤b)壮苗提质:在茶枝扦插后的第7、15、25、35天,从育苗棒中间部位浇灌500mL质量比0.04%的H2O2溶液,后期根据育苗棒水分状况补充水分,并在茶枝扦插后的第60、90、120、150天,将含有质量比0.02%的海藻酸和质量比0.02%的2,4-表芸·赤霉酸混合溶液喷施于茶苗表面,喷洒量为1.2L/m2,海藻酸和2,4-表芸·赤霉酸购自于青岛海大生物集团股份有限公司;
步骤c)茶苗移栽:在育苗6个月后,将整个育苗棒取出并从中间一分为二,得到两株茶苗,去除菌袋后,按照株距50cm、行距50cm移栽于田间即可。
实施例5采用本发明育苗棒的扦插育苗法
采用实施例1中的育苗棒制备方法,制作100个育苗棒,育苗棒制作完成后,按照以下步骤进行茶枝扦插育苗试验,每个实施例扦插200个茶枝(该实施例所使用的茶枝未经过壮苗提质处理)。
步骤a)茶枝扦插:选取5年生以上的茶树剪取茶枝,茶枝顶端需保留1芽1叶、中部保留1片老叶,茶枝长度5~8cm,然后将茶枝底端浸泡于营养液中0.5h,然后取出扦插于育苗棒中,每个育苗棒扦插2 个茶枝,间距10cm,最后放置于小拱棚内,并用土壤将育苗棒完全覆盖,露出茶枝即可,同时保证棚内温度白天25~30℃、夜间5~10℃;
其中,营养液的制备方法为:将经过550℃高温炭化后的酒糟生物炭1000g、250g生根粉、1.2L木醋液加入至20L纯净水中,搅拌均匀后静置24h,即得到营养液,其中木醋液是酒糟经过550℃高温炭化后得到,酒糟购自于贵州省仁怀市茅台镇某酒厂;
步骤c)茶苗移栽:在育苗6个月后,将整个育苗棒取出并从中间一分为二,得到两株茶苗,去除菌袋后,按照株距50cm、行距50cm移栽于田间即可。
比较例不同育种方法的比较
试验设置了7个处理(见表1)。
表1具体处理的步骤过程
T1处理:传统土壤扦插育苗法。具体为:选择疏松、透气、排水性、透气性良好的土壤,将表层土壤 (0~15cm)进行翻耕疏松后,将茶枝剪成8~10cm左右,然后在茶枝底部涂上生根粉,最后将茶枝的三分之二插入土壤中,将土壤压实,浇少量的水即可。根据茶苗长势,育苗6~8个月即可移栽。移栽后施足有机肥,合理追施化肥即可。
T2处理:采用育苗棒扦插育苗法。包括以下步骤:
步骤一)菌棒灭活:选取长度20cm、体积3.4L的食用菌菌棒,将未经破袋的食用菌菌棒从两端注入 500mL 3.0%浓度的H2O2溶液,采用高压120℃灭菌1~2h,待灭菌完成后将菌棒取出常温冷却至20~25℃,再从菌棒两端注入150mL 15.0%浓度的酒精溶液,常温晾晒24h;
步骤二)配制发酵液:先将1000g淀粉加入至10kg纯净水中,搅拌均匀后,再依次加入细菌型、真菌型、放线菌型的微生物发酵菌剂加入至淀粉溶液中,搅拌均匀后,密封发酵3~5天即可。其中细菌型发酵菌剂30g,可以是地衣芽孢杆菌(Bacillus lichenifromis)、枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)、假单胞杆菌(Pseudomonas adaceae)中的一种或几种,真菌型发酵菌剂50g,可以是木霉菌(richoderma)、曲霉菌 (Aspergillus)、青霉菌(Penicillium)中的一种或几种,放线菌型发酵菌剂20g,可以是纤维放线菌 (Acidoherumscelluloliicus)、链霉菌(Srpomyces)、诺卡氏菌属(Ncardia)中的一种或几种;
步骤三)菌棒发酵:将10g固体尿素、2g甲壳素、2g寡聚糖溶解至100mL水中,然后将其从菌棒中间部位注入,静置24h后,再将步骤二)中的发酵液按照1:100比例用水稀释后,将20mL稀释液从菌棒中间部位注入,静置发酵20天;
步骤四)菌棒活化:菌棒发酵20天后,采用喷雾法将冷水喷洒至菌棒表面,将菌棒内的温度降至 20~25℃,然后每个菌棒引入8条蚯蚓种,继续培养20天,即得到育苗棒;
步骤五)配制营养液:将经过550℃高温炭化后的酒糟生物炭1000g、250g生根粉、1.2L木醋液加入至20L纯净水中,搅拌均匀后静置24h,即得到营养液,其中木醋液是酒糟经过550℃高温炭化后得到;
步骤六)茶枝扦插:选取5年生以上的茶树剪取茶枝,茶枝顶端需保留1芽1叶、中部保留1片老叶,茶枝长度5~8cm,然后将茶枝底端浸泡于步骤五)营养液中0.5h,然后取出扦插于步骤四)育苗棒中,每个育苗棒扦插2个茶枝,间距8~10cm,最后放置于小拱棚内,并用土壤将育苗棒完全覆盖,露出茶枝即可,同时保证棚内温度白天25~30℃、夜间5~10℃;
步骤七)壮苗提质:在茶枝扦插后的第7、15、25、35天,从育苗棒中间部位浇灌500mL 0.04%浓度的H2O2溶液,后期根据育苗棒水分状况补充水分,并在茶枝扦插后的第60、90、120、150天,将含有0.02%浓度海藻酸和0.02%浓度24-表芸·赤霉酸混合溶液喷施于茶苗表面,喷洒量为1.2L/m2;
步骤八)茶苗移栽:在育苗6个月后,将整个育苗棒取出并从中间一分为二,得到两株茶苗,去除菌袋后,按照株距50cm、行距50cm移栽于田间即可。
T3处理:优选育苗棒扦插育苗法,包括T2处理中的步骤二、三、四、五、六、七、八,各个步骤依次进行(即该处理所使用的食用菌菌棒未经过灭活处理)。
T4处理:优选育苗棒扦插育苗法,包括T2处理中的步骤一、四、五、六、七、八,各个步骤依次进行(即该处理所使用的食用菌菌棒未经过发酵处理)。
T5处理:优选育苗棒扦插育苗法,包括T2处理中的步骤一、二、三、五、六、七、八,各个步骤依次进行(即该处理所使用的食用菌菌棒未经过活化处理)。
T6处理:优选育苗棒扦插育苗法,包括T2处理中的步骤一、二、三、四、六、七、八,各个步骤依次进行(即该处理所使用的茶枝未经过营养液沾根处理)。
T7处理:优选育苗棒扦插育苗法,包括T2处理中的步骤一、二、三、四、五、六、八,各个步骤依次进行(即该处理所使用的茶枝未经过壮苗提质处理)。
T2-T7处理分别按照各自相应步骤制作100个育苗棒,育苗棒制作完成后,对T2-T5处理的育苗棒发酵效果进行评估分析,从而筛选出最优的育苗棒制作方法,具体处理的步骤过程如表1所示。然后将T2-T7 处理的育苗棒联合T1处理进行茶枝扦插育苗试验,每个处理扦插200个茶枝,育苗试验结束后对茶苗成活率、茶苗株高、茶苗茎粗、根系活力等进行了记录与分析。
结果分析:
(1)通过对育苗棒发酵效果进行评估发现(表2):T2处理的育苗棒发酵程度达到100%,且袋内没有肉眼可见菌丝,通过蚯蚓引种后的蚯蚓存活率达到95.3%,有机质和养分含量分别为75.8%和8.3%,说明T2处理的育苗棒发酵彻底且具备良好的生物活性,养分含量高;T3处理的育苗棒未经过灭活处理,其发酵程度为78.2%,而且发酵后的部分育苗棒中有肉眼可见的菌丝(13袋),说明未经过灭活处理会影响育苗棒的发酵效果,并且通过蚯蚓引种后的蚯蚓存活率为86.4%,有机质和养分含量分别为73.8%和7.5%,说明发酵不完全或存在菌丝也影响了蚯蚓的存活,降低了育苗棒的生物活性和养分含量;T4处理的育苗棒未经过发酵处理,其发酵程度为0%,且育苗棒中均含有肉眼可见的食用菌菌丝(没有活性的菌丝),通过蚯蚓引种后的蚯蚓存活率仅为34.8%,有机质和养分含量分别为51.8%和2.6%,说明未经过发酵的育苗棒不适合蚯蚓生存,其生物活性和养分含量较低;T5处理未经过活化处理,其发酵程度为100%,且袋内没有肉眼可见菌丝,有机质和养分含量分别为67.2%和4.2%,说明未经过活化处理不会影响育苗棒的发酵效果,但却影响了育苗棒的养分含量。因此,综合育苗棒发酵效果和营养效果,T2处理效果最好,是最优的育苗棒制作方法。
表2育苗棒发酵效果
(2)优选育苗棒扦插育苗法对茶苗生物性状的作用效果(表3):从成活率看,与T1传统土壤扦插育苗法相比,T2、T3、T5、T6、T7处理的成活率提高了17~23个百分点,以T2处理最高,T4处理则降低了28个百分点;从茶苗株高看,与T1传统土壤扦插育苗法相比,T2、T3、T5、T6处理的株高增加了 0.33~4.22cm,增幅为0.76~9.60%,以T2处理的株高最大,而T4和T7处理的株高则较T1处理降低了 8.33%和1.00%;从茶苗茎粗看,与T1传统土壤扦插育苗法相比,T2、T3、T5、T6、T7处理的茎粗增加了0.11~1.24mm,增幅为1.60~17.91%,以T2处理的茎粗最大,而T4处理的茎粗则较T1处理降低了 2.12%。这说明采用优选育苗棒扦插育苗法能够提高茶枝扦插后的茶苗成活率,增加其生物性状,以T2处理效果最佳。
表3不同处理的茶苗生物性状
处理 | 成活率(%) | 株高(cm) | 茎粗(mm) |
T1 | 73 | 44.00±1.53c | 6.92±0.19d |
T2 | 96 | 48.22±2.04a | 8.16±0.27a |
T3 | 91 | 47.34±1.71ab | 7.48±0.14b |
T4 | 45 | 40.33±2.25d | 6.78±0.23d |
T5 | 93 | 46.22±1.84abc | 7.31±0.18bc |
T6 | 91 | 44.33±1.33bc | 7.12±0.17cd |
T7 | 90 | 43.56±1.67cd | 7.04±0.18cd |
注:表中同一列的不同字母表示处理间差异达5%显著水平。
(3)优选育苗棒扦插育苗法对根系总吸收面积的作用效果(图1):与T1传统土壤扦插育苗法相比, T2-T7处理的茶苗根系总吸收面积增加了3.40~12.03m2,增幅为23.61~83.56%,以T2处理的根系总吸收面积最大,说明采用优选育苗棒扦插育苗法能够提高茶苗的根系吸收面积,提高茶苗移栽后对土壤中水分和养分的吸收能力,提高其成活率。
(4)优选育苗棒扦插育苗法对根系活跃吸收面积的作用效果(图2):与T1传统土壤扦插育苗法相比,T2-T7处理的茶苗根系活跃吸收面积增加了1.73~5.99m2,增幅为24.22~83.80%,以T2处理的活跃吸收面积最大,说明采用优选育苗棒扦插育苗法能够提高茶苗的根系吸收面积,提高茶苗吸收养分能力,进而提高其生长发育能力和营养水平。
(5)优选育苗棒扦插育苗法对根系活力的作用效果(图3):与T1传统土壤扦插育苗法相比,T2-T7 处理的茶苗根系活力增加了79.80~199.73ug/g·h,增幅为23.18~58.01%,以T2处理的根系活力最高,说明采用优选育苗棒扦插育苗法能够增强茶苗根系在土壤中的活动能力越强,从而使根系能够从土壤中吸收到更多的养分和水分,最终为茶苗地上部分提供充足的营养。
综上所述:经过筛选,T2处理为最优的育苗棒扦插育苗法。
以上实施例仅用于说明本发明,但不用来限制本发明的范围,凡是依据本发明的技术实质对以下实例所作的任何简单修改、等同变化与修饰,均仍属于本发明技术方案的范围内。
Claims (10)
1.一种茶枝扦插育苗棒,其特征在于,其制备方法包括如下步骤:
步骤一)菌棒灭活:选取长度20 cm、体积3.0~3.6 L的食用菌菌棒,将未经破袋的食用菌菌棒从两端注入400~600 mL质量比2.0~4.0%的H2O2溶液,采用高压120℃灭菌1~2 h,待灭菌完成后将菌棒取出常温冷却至20~25℃,再从菌棒两端注入100~200 mL质量比10.0~20.0%的酒精溶液,常温晾晒24 h;
步骤二)配制发酵液:先将800~1200 g淀粉加入至50 kg纯净水中,搅拌均匀后,再依次将细菌型、真菌型、放线菌型的微生物发酵菌剂加入至淀粉溶液中,搅拌均匀后,密封发酵3~5天即可;其中细菌型的发酵菌剂20~40 g,是地衣芽孢杆菌(Bacillus lichenifromis)、枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)、假单胞杆菌(Pseudomonas adaceae)中的一种或几种,真菌型的发酵菌剂40~60 g,是木霉菌(richoderma)、曲霉菌(Aspergillus)、青霉菌(Penicillium)中的一种或几种,放线菌型的发酵菌剂10~30 g,是纤维放线菌(Acidoherums celluloliicus)、链霉菌(Srpomyces)、诺卡氏菌属(Ncardia)中的一种或几种;
步骤三):菌棒发酵:将8~12 g固体尿素、1~3 g甲壳素、1~3 g寡聚糖溶解至100 mL水中,然后将溶液从菌棒中间部位注入,静置24 h后,再将步骤二)中的发酵液按照体积比1︰100比例用水稀释后,将15~25 mL稀释液从菌棒中间部位注入,静置发酵20天;
步骤四)菌棒活化:菌棒发酵20天后,采用喷雾法将冷水喷洒至菌棒表面,将菌棒内的温度降至20~25℃,然后每个菌棒引入5~10条蚯蚓种,继续培养20天,即得到育苗棒。
2.如权利要求1所述育苗棒,其特征在于,步骤一)中,H2O2溶液质量比为3.0%,注入量为500 mL;高压灭菌时间为1.5 h;酒精溶液质量比为15.0%,注入量为150 mL。
3.如权利要求1所述育苗棒,其特征在于,步骤二)中,淀粉用量为1000 g,细菌型的发酵菌剂为30 g,真菌型的发酵菌剂为50 g,放线菌型的发酵菌剂20 g。
4.如权利要求3所述育苗棒,其特征在于,细菌型的发酵菌剂为地衣芽孢杆菌,真菌型的发酵菌剂为木霉菌,放线菌型的发酵菌剂为纤维放线菌。
5.如权利要求1所述育苗棒,其特征在于,步骤三)中,尿素用量为10 g,甲壳素用量为2g,寡聚糖用量为2 g;发酵稀释液用量为20 mL。
6.如权利要求1所述育苗棒,其特征在于,步骤四)中,引入的蚯蚓种条数为8条。
7.采用权利要求1~6任一项所述育苗棒育苗的方法,包括如下步骤:
步骤a)茶枝扦插:选取5年生以上的茶树剪取茶枝,茶枝顶端需保留1芽1叶、中部保留1片老叶,茶枝长度5~8 cm,然后将茶枝底端浸泡于营养液中0.5 h,然后取出扦插于育苗棒中,根据育苗棒长度每间隔8~10 cm插一个茶枝,最后放置于小拱棚内,并用土壤将育苗棒完全覆盖,露出茶枝即可,同时保证棚内温度白天25~30℃、夜间5~10℃;
步骤b)壮苗提质:在茶枝扦插后的第7、15、25、35天,从育苗棒中间部位浇灌400~600mL质量比0.03~0.05%的H2O2溶液,后期根据育苗棒水分状况补充水分,并在茶枝扦插后的第60、90、120、150天,将含有质量比0.01~0.03%海藻酸和质量比0.01~0.03% 2,4-表芸·赤霉酸混合溶液喷施于茶苗表面,喷洒量为1~1.5 L/m2;
步骤c)茶苗移栽:在育苗6个月后,将整个育苗棒取出得到茶苗,去除菌袋后,按照株距50 cm、行距50 cm移栽于田间即可。
8.如权利要求7所述方法,其特征在于,步骤a)中,所述营养液的制备方法如下:将经过550℃高温炭化后的酒糟生物炭800~1200 g、200~300 g生根粉、1~1.5 L木醋液加入至20 L纯净水中,搅拌均匀后静置24 h,即得到营养液。
9.如权利要求8所述方法,其特征在于,步骤a)中,酒糟生物炭用量为1000 g,生根粉用量为250 g,木醋液用量为1.2 L。
10.如权利要求7所述方法,其特征在于,步骤b)中,H2O2溶液质量比为0.04%,注入量为500 mL,海藻酸质量比为0.02%,2,4-表芸·赤霉酸质量比为0.02%,混合溶液喷洒量为1.2L/m2。
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