CN114395634A - 一种江黄颡鱼性别相关snp分子标记及其应用 - Google Patents
一种江黄颡鱼性别相关snp分子标记及其应用 Download PDFInfo
- Publication number
- CN114395634A CN114395634A CN202210210711.6A CN202210210711A CN114395634A CN 114395634 A CN114395634 A CN 114395634A CN 202210210711 A CN202210210711 A CN 202210210711A CN 114395634 A CN114395634 A CN 114395634A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- enzyme digestion
- fragment set
- male
- sex
- female
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6876—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
- C12Q1/6888—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6876—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
- C12Q1/6879—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for sex determination
-
- G—PHYSICS
- G16—INFORMATION AND COMMUNICATION TECHNOLOGY [ICT] SPECIALLY ADAPTED FOR SPECIFIC APPLICATION FIELDS
- G16B—BIOINFORMATICS, i.e. INFORMATION AND COMMUNICATION TECHNOLOGY [ICT] SPECIALLY ADAPTED FOR GENETIC OR PROTEIN-RELATED DATA PROCESSING IN COMPUTATIONAL MOLECULAR BIOLOGY
- G16B20/00—ICT specially adapted for functional genomics or proteomics, e.g. genotype-phenotype associations
- G16B20/20—Allele or variant detection, e.g. single nucleotide polymorphism [SNP] detection
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q2600/00—Oligonucleotides characterized by their use
- C12Q2600/156—Polymorphic or mutational markers
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Immunology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Theoretical Computer Science (AREA)
- Bioinformatics & Computational Biology (AREA)
- Spectroscopy & Molecular Physics (AREA)
- Medical Informatics (AREA)
- Evolutionary Biology (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本申请公开了一种江黄颡鱼性别相关SNP分子标记及其应用。与江黄颡鱼性别相关SNP分子标记为SEQ ID NO.1所示序列自5’端起100、101位碱基,分别是TC或AT,所述SNP分子标记为TC/AT杂合基因型的个体为雄性江黄颡鱼,所述SNP分子标为TC纯合基因型的个体为雌性江黄颡鱼。通过鉴别该SNP分子标记,能够快速、简便、准确鉴别江黄颡的于遗传性别,从而能够推动江黄颡鱼性别控制育种、单性养殖技术及产业发展,带来巨大的经济效益。
Description
技术领域
本申请涉及SNP分子标记技术领域,尤其涉及一种江黄颡鱼性别相关SNP分子标记及其应用。
背景技术
黄颡鱼个体小,肉质鲜美,肌间刺少,是我国重要的水产品,近几年黄颡鱼养殖可以说非常火爆,在特种养殖领域占有很高的比重,一直保持着相对较高且稳定的市场价格和养殖效益,受到广大养殖户的追捧。2019年全国黄颡鱼养殖产量超过了50万吨,并且仍在持续增长。以江黄颡鱼为父本和黄颡鱼母本杂交而来的杂交黄颡鱼,具有生长速度快,适温范围广,饲料系数低,抗病能力强等优势,是黄颡鱼养殖的当家品种。由于雌鱼生长速度明显小于雄鱼,存在出塘鱼体规格差异大,雌鱼卖价低等问题,培育全雄杂交黄颡鱼将可以很好的解决这些问题,具有重要的经济效益。
目前,江黄颡鱼单性育种技术研究较少,国内外还没有江黄颡鱼性别特异分子标记的报道。因此开发江黄颡鱼性别特异的分子标记对于培育全雄杂交黄颡鱼具有重要的生产应用价值。
发明内容
有鉴于此,本申请的目的在于提供一种江黄颡鱼性别相关SNP分子标记及其应用,以在一定程度上解决上述技术问题之一。
第一方面,本申请实施例公开了一种江黄颡鱼性别相关SNP分子标记,所述SNP分子标记为SEQ ID NO.1所示序列自5’端起第100、101位碱基,分别是TC或AT。
本申请实施例中,所述SNP分子标记为TC/AT杂合基因型的个体为雄性江黄颡鱼,所述SNP分子标为TC纯合基因型的个体为雌性江黄颡鱼。
第二方面,本申请实施例提供了一组用于扩增本申请第一方面SNP分子标记SEQID NO.1序列的引物对,其序列如下:
P1:如SEQ ID NO.2所示;
P2:如SEQ ID NO.3所示。
第三方面,本申请实施例提供了一种鉴定江黄颡鱼遗传性别的方法,包括以下步骤:
提取江黄颡鱼待检样本基因组DNA;
以第二方面所述引物对进行PCR扩增,得到PCR产物;
对所述PCR产物进行分组后,获得分离曲线,从而鉴定江黄颡鱼雌、雄性别。
本申请实施例中,所述分离曲线为两条分开的曲线,其中一条为杂合SNP分子标记的显示结果,另一条为纯合SNP分子标记的显示结果,分别代表雄性和雌性样本;
本申请实施例中,所述纯合SNP分子标记,即指两条同源基因上的SNP位点是同样的碱基,所述杂合SNP分子标记,即指两条同源基因上的SNP位点是不同的碱基;
本申请实施例中,以实际解剖获得的性别结果对上述鉴定结果进行验证。
第四方面,本申请实施例提供了一种检测所述SNP标记的试剂盒,所述试剂盒包含第二方面所述引物以及其他用于扩增所述SNP标记的试剂。
第五方面,本申请实施例提供了第一方面所述SNP分子标记的筛选方法,其步骤包括:
获得原始序列集,所述原始序列集是对DNA样本的进行全基因组测序得到的原始序列集合构成,所述DNA样本包括雄性混合池、雌性混合池、8个雄性单样本和8个雌性单样本;
获得参考序列,所述参考序列是将所述原始序列分别进行过滤和电子酶切以得到分别与所述雄性混合池、所述雌性混合池、所述8个雄性单样本和所述8个雌性单样本对应的酶切片段集,挑选具有数量较多的特异片段的雄性单样本或中雌性单样本对应的酶切片段集进行串联,即为参考序列;
获得候选SNPs,将所述参考序列与来源于所述雄性混合池的酶切片段集或来源于所述雌性混合池的酶切片段集与所述参考序列比对,从对应的酶切数据集中得到与参考序列不一致具有单核苷酸多态性位点的序列,以作为候选SNPs;以及
获得与与江黄颡鱼性别相关SNP分子标记。
本申请实施例中,获得参考序列的步骤具体包括:
将所述原始序列集过滤以得到过滤序列集;
将所述过滤序列集进行电子酶切以得到酶切片段集,所述酶切片段集包括来源于所述雄性混合池的第一酶切片段集、来源于所述雌性混合池的第二酶切片段集、来源于所述8个雄性单样本的8个第三酶切片段集以及来源于所述8个雌性单样本的8个第四酶切片段集;
进行第一比对,是将所述第一酶切片段集与所述第二酶切片段集进行比对,以获得仅存在于所述第一酶切片段集的第一特异片段以及仅存在于所述第二酶切片段集的第二特异片段;
进行第二比对,是比较所述第三酶切片段集中包含的所述第一特异化片段的数量与在所述第四酶切片段集中包含的所述第二特异化片段的数量大小:
若第一特异片段在第三酶切片段集中出现的数量大于第二特异片段的数量,则对随机挑选1个雄性单样本对应的过滤序列集中的全部过滤序列进行串联,以作为参考序列;反之,则对随机挑选1个雌性单样本对应的过滤序列集中的全部过滤序列进行串联,以作为参考序列。
在本实施例中,获得候选SNPs的步骤具体包括:
进行第三比对,将所述参考序列与所述第一酶切片段集或所述第二酶切片段集进行比对,从所述第二酶切片段集或第一酶切片段集中得到与参考序列不一致的具有SNPs的序列,以作为候选SNPs。
在本实施例中,从所述第二酶切片段集或所述第一酶切片段集中得到与参考序列不一致的具有SNPs的序列的条件包括以下至少一项:
所述候选SNPs是否出现在同一个150bp长度的第二酶切片段集或第一酶切片段集中;
所述候选SNPs是否出现同一个150bp长度的第二酶切片段集或第一酶切片段集的同一个酶切片段中且相距不超过30bp;以及
所述候选SNPs是否出现在同一个150bp长度的第二酶切片段集或第一酶切片段集中次数较多。
在本申请实施例中,获得与江黄颡鱼性别相关SNP分子标记的步骤具体包括:
进行第四比对,含有候选SNPs的序列分别与来源于8个雄性单样本和8个雌性单样本的过滤序列数据集进行比对,以判断含有候选SNPs的序列在8个雄性单样本中是否全部为杂合的,以及在8尾雌性单样本中是否都是纯合的:如果是则可确定为待选SNPs,否则即可排除;
对待选SNPs设计引物,并以及该引物对待选SNPs进行PCR扩增,并获得扩增产物的分离曲线;
根据分离曲线确定性别,判断确定的性别与样本的真实性别是否一致,若一致则得到与江黄颡鱼性别相关的SNP分子标记;否则即排除。
与现有技术相比,本申请至少具有以下有益效果:
本申请中涉及一种江黄颡鱼性别相关SNP分子标记及其应用,本申请通过剪取江黄颡鱼部分组织来提取全基因组DNA,从最大程度减少对鱼体的伤害,并且从中筛选获得了性别差异的DNA片段即SNP标记序列(如SEQ ID NO.1所示)用于江黄颡鱼的遗传性别鉴定,所述SNP标记为位于江黄颡鱼SEQ ID NO.1序列的自5’端起第100、101位碱基,分别是TC或AT,根据SNP标记序列设计检测引物,从而可以快速、准确的区分江黄颡鱼的遗传性别。
附图说明
图1为本申请实施例提供的与江黄颡鱼性别相关SNP分子标记的筛选方法流程示意图。
图2为图1中S2步骤的具体流程示意图。
图3为图1中S4步骤的具体流程示意图。
图4为本申请实施例提供的Lightscanner系统对于雌雄江黄颡鱼样本分离曲线。
图5为本申请实施例提供的利用SNP标记鉴定江黄颡鱼遗传性别的结果验证。
具体实施方式
为了使本申请的目的、技术方案及优点更加清楚明白,以下结合实施例对本申请进行进一步详细说明。应当理解,此处所描述的具体实施例仅仅用以解释本申请,并不用于限定本申请。本申请中未详细单独说明的试剂均为常规试剂,均可从商业途径获得;未详细特别说明的方法均为常规实验方法,可从现有技术中获知。
江黄颡鱼性别相关SNP分子标记的筛选
如图1所示,本申请实施例公开了一种江黄颡鱼性别相关SNP分子标记的筛选方法,包括步骤S1~S4。具体如下:
步骤S1、获得原始序列集
在繁殖季节通过解剖观察性腺的方式鉴定出江黄颡鱼雌鱼和雄鱼各24尾,剪取尾鳍并提取其全基因组DNA。并随机取16尾雌性DNA等量混合为雌性混合池,获得雌性混合池,随机取16尾雄性DNA等量混合为雄性混合池,获得雄性混合池。
将所述雌性混合池、所述雄性混合池以及剩下的8个雌性单样本和8个雄性单样本共18个样本,在Illumina Hiseq X Ten平台进行全基因组测序,以分别得到与此18个样本对应的18个原始序列集。
步骤S2、获得参考序列
如图2所示,本步骤是将原始序列集中的原始序列进行过滤和电子酶切以得到分别与所述雄性混合池、所述雌性混合池、所述8个雄性单样本和所述8个雌性单样本对应的酶切片段集(即总共18个酶切片段集),对来自于雄性混合池的酶切片段集与来自雌性混合池的酶切片段集进行比对,得到雌性混合池和雄性混合池分别对应的特异片段,挑选具有数量较多的特异片段的雄性单样本或雌性单样本对应的酶切片段进行串联,即为参考序列。
如图2所示,进一步的实施例公开的S2步骤具体包括:
步骤S21、将原始序列集过滤后(剔除长度大于150bp的序列数据),得到过滤序列集;
步骤S22、将所有过滤序列集从5’端开始逐一进行AC、AG、AT、GA、GC和GT六种碱基起始的60bp片段化电子酶切,起始碱基不符合要求则向后位移,由此能够件全部过滤序列集电子酶切为长度大小为60bp的酶切片段集。由所述雄性混合池电子酶切的片段对应的序列数据构成为第一酶切片段集,由所述雌性混合池电子酶切的片段对应的序列数据构成为第二酶切片段集,由全部8个雄性单样本进行电子酶切得到的片段对应的序列数据构成为第三酶切片段集;由全部8个雌性单样本进行电子酶切得到的片段对应的序列数据构成为第四酶切片段集;
步骤S23、第一比对
将第一酶切片段集与第二酶切片段集进行比对,以获得仅存在于所述第一酶切片段集的第一特异片段以及仅存在于所述第二酶切片段集的第二特异片段。具体为,第一酶切片段集对应为雄性混合池电子酶切后得到的片段对应的序列数据,第二酶切片段集对应为雌性混合池电子酶切后得到的片段对应的序列数据。
步骤S24、第二比对
在所述第三酶切片段集中包含的所述第一特异化片段的数量与在所述第四酶切片段集中包含的所述第二特异化片段的数量大小;
若第一特异片段在第三酶切片段集中出现的数量大于第二特异片段的数量,则随机从8个雄性单样本中挑选与某一样本对应的过滤序列集中的全部过滤序列进行串联,以作为参考序列;
反之,若第一特异片段在第三酶切片段集中出现的数量小于第二特异片段的数量,则随机从8个雄性单样本中挑选与某一样本对应的过滤序列集中的全部过滤序列进行串联,以作为参考序列。
步骤S3、获得候选SNPs
本步骤主要进行第三比对,将步骤S2得到的参考序列与第一酶切片段集或第二酶切片段集进行比对,从第二酶切片段集或第一酶切片段集中得到与参考序列不一致的具有单核苷酸多态性位点(SNPs)的序列,以将这些SNPs作为候选SNPs。具体的,若参考序列是由雄性单样本对应的过滤序列构建的,则将该参考序列与第二酶切片段集进行比对;反之,则将参考序列与第一酶切片段进行比对。
本步骤的进一步实施例中,对这些具有SNPs的序列进行如下条件挑选,如挑选出现在同一个150bp长度的第二酶切片段集或第一酶切片段集中;如挑选出现同一个150bp长度的第二酶切片段集或第一酶切片段集的同一个酶切片段中且距离较近(相距不超过30bp)的SNPs位点作为候选SNPs位点;如挑选出现在同一个150bp长度的第二酶切片段集或第一酶切片段集中次数较多的SNPs位点作为候选SNPs位点;优选地,本申请实施例将结合上述这些条件挑选,以剔除不符合这些条件的SNPs。步骤S4、获得与江黄颡鱼性别相关SNP分子标记
如图3所示,本步骤具体包括:
S41、进行第四比对,含有候选SNPs的序列分别与来源于8个雄性单样本和8个雌性单样本的过滤序列数据集进行比对,以判断含有候选SNPs的序列在8个雄性单样本中是否全部为杂合的,以及在8尾雌性单样本中是否都是纯合的:如果是则可确定为待选SNPs,否则即可排除。具体的,本步骤可以使用IGV软件,进行可视化Manual check,结果如图3所示。
S42、对待选SNPs设计引物,并以及该引物对待选SNPs进行PCR扩增,并获得扩增产物的分离曲线。
S43、根据分离曲线确定性别,判断确定的性别与样本的真实性别是否一致,若一致则得到与江黄颡鱼性别相关的SNP分子标记;否则即排除。
本实施例第S24步骤的比对结果中,第一特异片段在第三酶切片段集中的数量远大于来源于第二特异片段在第四酶切片段集中的数量,由此判断江黄颡鱼为XX/XY性别决定类型。
本实施例步骤S4的比对结果中,挑选出的含有候选SNPs的序列在雄性单样本中表现为杂合体,在雌性单样本中表现为纯合体;因此,此次候选的SNPs可作为区分雌雄个体SNPs,最终获得含有效区分雌雄个体的SNP分子标记序列,其核苷酸序列为SEQ ID NO.1所示,其所述SNP标记为所述SEQ IDNO:1序列的自5’端起第100、101位碱基,分别是TC或AT。所述SNP分子标记为TC/AT杂合基因型的个体为雄性江黄颡鱼,所述SNP分子标为TC纯合基因型的个体为雌性江黄颡鱼。
江黄颡鱼SNP分子标记有效性验证
(1)针对包含SEQ ID NO.1所示序列的核苷酸序列设计引物对:
P1:序列如SEQ ID NO.2所示;
P2:序列如SEQ ID NO.3所示。
(2)基因组DNA提取(chelex100煮沸法)
配置5%chelex100溶液;取5mg尾鳍组织置于0.2mLPCR管中,震荡chelex100溶液使树脂颗粒均匀悬浮在溶液中,用扩口吸头吸取150uL至装有尾鳍组织的PCR管中;往PCR管中加入5uL 20mg/mL蛋白酶K溶液,震荡混匀,放置于PCR仪上,设定条件热盖105℃,模块55℃,40min;98℃,5min;反应结束后立即拿出,涡旋振荡3次,每次5s;将PCR管放入离心机中,4000rpm离心5min;得到的上清即为DNA溶液,可直接用于PCR扩增。
(4)PCR扩增
反应体系如表1所示:
表1
添加物 | 添加量 |
10X buffer(Mg2+plus) | 1μl |
LC Green | 1μl |
dNTP(10mM each) | 0.2μl |
Forward primer(10mM) | 0.2μl |
Reverse primer(10mM) | 0.2μl |
Sample DNA | 1μl |
Taq(5U/μl) | 0.1μl |
ddH2O | 6.3μl |
Total | 10μl |
PCR反应条件为94℃预变性4min;94℃变性30s,56℃退火30s,72℃延伸25s,40个循环;72℃终延伸5min;12℃保存。
(4)上机扫描
样本孔悬空滴加液体石蜡,放入HRM仪器板槽中,设置起始扫描温度68℃,终止扫描温度94℃,点击Start Run开始扫描;扫描结束后,选择Small Amplicon模式进行分析,点击New subset选择需要分析的样本孔,归为一组;点击Normalize调整分析分温度区间;点击Grouping-Auto group进行选定样本的分组,Lightscanner系统得到分离曲线。
结果:如图4所示,Lightscanner系统对样本的分析,灰色的曲线代表的SNP分子标记为纯合体是雌鱼(XX),红色的曲线代表的SNP分子标记为杂合体是雄鱼(XY),通过Lightscanner系统的分析,雌雄个体被明显的分开,所述SNP分子标记能够准确的区分江黄颡鱼的遗传性别。
SNP分子标记在鉴定江黄颡鱼遗传性别的应用
(1)从市场随机收集江黄颡鱼鱼体,编号1-96,通过解剖确定鱼体性别,雌鱼48尾,雄鱼48尾,采集鳍条组织样本保存于96孔板中冷冻保存,利用chelexlOO煮沸法提取其基因组DNA。
(2)用实施例2的方法对上述江黄颡鱼DNA样本进行PCR扩增。
(3)PCR扩增产物通过sanger测序法进行测序,
(4)对扩增产物进行HRM分型获得两种分离曲线,分离曲线以各自标准曲线作为标准化参照。
(4)HRM分型结果显示,与解剖获得的已知结果进行对比。
结果:通过测序,江黄颡鱼样本SNP分子标记序列如下:
纯合型:如SEQ IDNO.1所示;
杂合型:有两条序列,如SEQ IDNO.1和SEQ IDNO.4所示;
如图5所示,纯合型样本显示曲线为均为XX曲线,为雌性江黄颡鱼样本,杂合型样本显示曲线均为XY曲线,为雄性黄颡鱼样本,与解剖获得的已知结果完全一致,准确性为100%。
综上所述,本申请筛选获得的SNP分子标记在用于江黄颡鱼的遗传性别鉴定时,可以快速、准确地区分江黄颡鱼的遗传性别。
以上所述,仅为本申请较佳的具体实施方式,但本申请的保护范围并不局限于此,任何熟悉本技术领域的技术人员在本申请揭露的技术范围内,可轻易想到的变化或替换,都应涵盖在本申请的保护范围之内。
序列表
<110> 佛山市南海百容水产良种有限公司
阳新县百容水产良种有限公司
<120> 一种江黄颡鱼性别相关SNP分子标记及其应用
<160> 4
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 157
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 1
ctgctgaccg ttacatctga gacttcagct attagccaga ctgaggcgat gtatctccaa 60
tctgctctgg catctttaac ccacagcagc gcttgaaagt cggaatagac cgacagaaaa 120
agcgattatt gtgcagtgct ggattggtga tgagggt 157
<210> 2
<211> 20
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 2
ctgctgaccg ttacatctga 20
<210> 3
<211> 19
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 3
accctcatca ccaatccag 19
<210> 4
<211> 157
<212> DNA
<213> 2 Ambystoma laterale x Ambystoma jeffersonianum
<400> 4
ctgctgaccg ttacatctga gacttcagct attagccaga ctgaggcgat gtatctccaa 60
tctgctctgg catctttaac ccacagcagc gcttgaaaga tggaatagac cgacagaaaa 120
agcgattatt gtgcagtgct ggattggtga tgagggt 157
Claims (10)
1.一种江黄颡鱼性别相关SNP分子标记,其特征在于,所述SNP分子标记为SEQ ID NO.1所示序列自5’端起第100、101位碱基,分别是TC或AT。
2.根据权利要求1所述的SNP分子标记,其特征在于,所述SNP分子标记为TC/AT杂合基因型的个体为雄性江黄颡鱼,所述SNP分子标为TC纯合基因型的个体为雌性江黄颡鱼。
3.一组用于扩增权利要求1或2所述SNP分子标记SEQ ID NO.1序列的引物对,其特征在于,所述引物对的序列如下:
P1:如SEQ ID NO.2所示;
P2:如SEQ ID NO.3所示。
4.一种鉴定江黄颡鱼遗传性别的方法,其特征在于,包括以下步骤:
提取江黄颡鱼待检样本基因组DNA;
以权利要求3所述的引物进行PCR扩增,得到PCR产物;
对所述PCR产物进行分组后,获得分离曲线,从而鉴定江黄颡鱼雌、雄性别。
5.一种检测如权利要求1或2所述的SNP标记的试剂盒,其特征在于,所述试剂盒包含权利要求3所述引物以及其他用于扩增所述SNP标记的试剂。
6.权利要求1或2所述SNP分子标记的筛选方法,其特征在于,所述筛选方法包括以下步骤:
获得原始序列集,所述原始序列集是对DNA样本的进行全基因组测序得到的原始序列集合构成,所述DNA样本包括雄性混合池、雌性混合池、8个雄性单样本和8个雌性单样本;
获得参考序列,所述参考序列是将所述原始序列分别进行过滤和电子酶切以得到分别与所述雄性混合池、所述雌性混合池、所述8个雄性单样本和所述8个雌性单样本对应的酶切片段集,挑选具有数量较多的特异片段的雄性单样本或中雌性单样本对应的酶切片段集进行串联,即为参考序列;
获得候选SNPs,将所述参考序列与来源于所述雄性混合池的酶切片段集或来源于所述雌性混合池的酶切片段集与所述参考序列比对,从对应的酶切数据集中得到与参考序列不一致具有单核苷酸多态性位点的序列,以作为候选SNPs;以及
获得与与江黄颡鱼性别相关SNP分子标记。
7.根据权利要求6所述的筛选方法,其特征在于,获得参考序列的步骤具体包括:
将所述原始序列集过滤以得到过滤序列集;
将所述过滤序列集进行电子酶切以得到酶切片段集,所述酶切片段集包括来源于所述雄性混合池的第一酶切片段集、来源于所述雌性混合池的第二酶切片段集、来源于所述8个雄性单样本的8个第三酶切片段集以及来源于所述8个雌性单样本的8个第四酶切片段集;
进行第一比对,是将所述第一酶切片段集与所述第二酶切片段集进行比对,以获得仅存在于所述第一酶切片段集的第一特异片段以及仅存在于所述第二酶切片段集的第二特异片段;
进行第二比对,是比较所述第三酶切片段集中包含的所述第一特异化片段的数量与在所述第四酶切片段集中包含的所述第二特异化片段的数量大小:
若第一特异片段在第三酶切片段集中出现的数量大于第二特异片段的数量,则对随机挑选1个雄性单样本对应的过滤序列集中的全部过滤序列进行串联,以作为参考序列;反之,则对随机挑选1个雌性单样本对应的过滤序列集中的全部过滤序列进行串联,以作为参考序列。
8.根据权利要求7所述的筛选方法,其特征在于,获得候选SNPs的步骤具体包括:
进行第三比对,将所述参考序列与所述第一酶切片段集或所述第二酶切片段集进行比对,从所述第二酶切片段集或第一酶切片段集中得到与参考序列不一致的具有SNPs的序列,以作为候选SNPs。
9.根据权利要求7所述的筛选方法,其特征在于,从所述第二酶切片段集或所述第一酶切片段集中得到与参考序列不一致的具有SNPs的序列的条件包括以下至少一项:
所述候选SNPs是否出现在同一个150bp长度的第二酶切片段集或第一酶切片段集中;
所述候选SNPs是否出现同一个150bp长度的第二酶切片段集或第一酶切片段集的同一个酶切片段中且相距不超过30bp;以及
所述候选SNPs是否出现在同一个150bp长度的第二酶切片段集或第一酶切片段集中次数较多。
10.根据权利要求8所述的筛选方法,其特征在于,获得与江黄颡鱼性别相关SNP分子标记的步骤具体包括:
进行第四比对,含有候选SNPs的序列分别与来源于8个雄性单样本和8个雌性单样本的过滤序列数据集进行比对,以判断含有候选SNPs的序列在8个雄性单样本中是否全部为杂合的,以及在8尾雌性单样本中是否都是纯合的:如果是则可确定为待选SNPs,否则即可排除;
对待选SNPs设计引物,并以及该引物对待选SNPs进行PCR扩增,并获得扩增产物的分离曲线;
根据分离曲线确定性别,判断确定的性别与样本的真实性别是否一致,若一致则得到与江黄颡鱼性别相关的SNP分子标记;否则即排除。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202210210711.6A CN114395634A (zh) | 2022-03-03 | 2022-03-03 | 一种江黄颡鱼性别相关snp分子标记及其应用 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202210210711.6A CN114395634A (zh) | 2022-03-03 | 2022-03-03 | 一种江黄颡鱼性别相关snp分子标记及其应用 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN114395634A true CN114395634A (zh) | 2022-04-26 |
Family
ID=81234117
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN202210210711.6A Pending CN114395634A (zh) | 2022-03-03 | 2022-03-03 | 一种江黄颡鱼性别相关snp分子标记及其应用 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN114395634A (zh) |
Citations (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101418347A (zh) * | 2008-12-04 | 2009-04-29 | 中国科学院水生生物研究所 | 黄颡鱼性染色体特异分子标记及遗传性别鉴定方法 |
CN104719199A (zh) * | 2015-03-15 | 2015-06-24 | 青岛农业大学 | 一种黄颡鱼与江黄颡鱼的杂交繁育方法 |
CN106614119A (zh) * | 2016-10-29 | 2017-05-10 | 天津蕴华农业科技发展有限公司 | 一种瓦氏黄颡鱼与南美白对虾混养的方法 |
CN106614113A (zh) * | 2015-10-28 | 2017-05-10 | 青岛农业大学 | 一种江黄颡鱼与粗唇鮠杂交繁育的方法 |
CN108315439A (zh) * | 2018-03-27 | 2018-07-24 | 南京师范大学 | 一种与瓦氏黄颡鱼生长相关的snp分子标记及其应用 |
CN109182556A (zh) * | 2018-11-01 | 2019-01-11 | 菏泽学院 | 一种与瓦氏黄颡鱼生长性状相关的snp分子标记及应用 |
CN109825603A (zh) * | 2019-04-02 | 2019-05-31 | 南京师范大学 | 一种与杂交黄颡鱼“黄优1号”生长性状相关的snp分子标记及其应用 |
CN110432187A (zh) * | 2018-05-03 | 2019-11-12 | 青岛农业大学 | 一种黄颡鱼与江黄颡鱼的杂交繁育方法 |
CN111304337A (zh) * | 2020-03-13 | 2020-06-19 | 中国水产科学研究院淡水渔业研究中心 | 鉴定江黄颡鱼、瓦氏黄颡鱼和杂交子一代的srap分子标记、试剂盒和方法及应用 |
-
2022
- 2022-03-03 CN CN202210210711.6A patent/CN114395634A/zh active Pending
Patent Citations (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101418347A (zh) * | 2008-12-04 | 2009-04-29 | 中国科学院水生生物研究所 | 黄颡鱼性染色体特异分子标记及遗传性别鉴定方法 |
CN104719199A (zh) * | 2015-03-15 | 2015-06-24 | 青岛农业大学 | 一种黄颡鱼与江黄颡鱼的杂交繁育方法 |
CN106614113A (zh) * | 2015-10-28 | 2017-05-10 | 青岛农业大学 | 一种江黄颡鱼与粗唇鮠杂交繁育的方法 |
CN106614119A (zh) * | 2016-10-29 | 2017-05-10 | 天津蕴华农业科技发展有限公司 | 一种瓦氏黄颡鱼与南美白对虾混养的方法 |
CN108315439A (zh) * | 2018-03-27 | 2018-07-24 | 南京师范大学 | 一种与瓦氏黄颡鱼生长相关的snp分子标记及其应用 |
CN110432187A (zh) * | 2018-05-03 | 2019-11-12 | 青岛农业大学 | 一种黄颡鱼与江黄颡鱼的杂交繁育方法 |
CN109182556A (zh) * | 2018-11-01 | 2019-01-11 | 菏泽学院 | 一种与瓦氏黄颡鱼生长性状相关的snp分子标记及应用 |
CN109825603A (zh) * | 2019-04-02 | 2019-05-31 | 南京师范大学 | 一种与杂交黄颡鱼“黄优1号”生长性状相关的snp分子标记及其应用 |
CN111304337A (zh) * | 2020-03-13 | 2020-06-19 | 中国水产科学研究院淡水渔业研究中心 | 鉴定江黄颡鱼、瓦氏黄颡鱼和杂交子一代的srap分子标记、试剂盒和方法及应用 |
Non-Patent Citations (5)
Title |
---|
GUOSONG ZHANG等: "A high-density SNP-based genetic map and several economic traits-related loci in Pelteobagrus vachelli", BMC GENOMICS, vol. 21, pages 700 * |
巩高瑞;张晋;丹成;桂建芳;梅洁;: "应用DNA分子标记鉴定黄颡鱼、瓦氏黄颡鱼及其杂交种的研究", 水生生物学报, vol. 41, no. 02, pages 321 - 325 * |
谢彬月;熊舒婷;梅洁;: "黄颡鱼性别决定和分化相关基因的鉴定及其在性腺中的表达分析", 湖北农业科学, no. 12, pages 2362 - 2367 * |
郑翔;徐杰杰;张佳佳;王涛;尹绍武;: "4个瓦氏黄颡鱼群体遗传多样性的微卫星分析", 水产科学, no. 05, pages 657 - 668 * |
钟立强;陈校辉;蔡永祥;潘建林;夏爱军;: "黄颡鱼DNA分子标记的研究进展", 中国农学通报, vol. 28, pages 67 - 75 * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN113913533B (zh) | 与草鱼性状相关的snp分子标记及其应用 | |
CN111394445B (zh) | 用于斑鳢性别鉴定的Indel标记及应用 | |
CN109988862B (zh) | 与甘蓝显性核基因雄性不育性相关的pcr标记及其应用 | |
CN107488659B (zh) | 一种与柑橘果皮红黄颜色性状相关的序列及其应用 | |
CN113881785B (zh) | 用于凡纳滨对虾多性状育种的snp位点引物组合及应用 | |
CN111304337B (zh) | 鉴定黄颡鱼、瓦氏黄颡鱼和杂交子一代的srap分子标记、试剂盒和方法及应用 | |
CN110512024B (zh) | 桃果实低酸或酸性状相关的snp分子标记及其应用 | |
CN106939343B (zh) | 一种用于拟穴青蟹性别鉴定的snp位点及其鉴定方法 | |
CN110331217B (zh) | 一种适用于尼罗罗非鱼、奥利亚罗非鱼及其杂交种的微卫星标记亲权鉴定引物、方法及应用 | |
CN113930525B (zh) | 用于乌鳢性别鉴定的特异性序列及应用 | |
CN105441576A (zh) | 一种用于长牡蛎亲子鉴定的微卫星多重pcr方法 | |
CN102747070A (zh) | 甜瓜抗白粉病基因Pm-AN紧密连锁的两个CAPs标记与使用方法 | |
CN107475414B (zh) | 一种筛选长牡蛎高糖原含量亲贝的方法 | |
CN117265168A (zh) | 与大豆中蛋白含量相关的分子标记和应用 | |
CN111057771B (zh) | 一种用于区分“中洋1号”和普通暗纹东方鲀的snp分子标记及其应用 | |
CN105441536A (zh) | 用于区别牙鲆中的性别的snp标志物 | |
CN112080570A (zh) | 中俄杂交刺参鉴定的kasp标记引物组合及其应用 | |
CN109439771B (zh) | 一种利用微卫星标记鉴定杂交鲷家系的方法 | |
CN114574594B (zh) | 加州鲈性别特异snp分子标记引物及其应用 | |
CN114395634A (zh) | 一种江黄颡鱼性别相关snp分子标记及其应用 | |
CN113604587B (zh) | 一种快速鉴定日本对虾低温耐受品种的分子标记t5198及其应用 | |
CN107151693B (zh) | 基于MEG3基因检测猪达100kg体重日龄的分子标记及应用 | |
CN108588242B (zh) | 一种长牡蛎ahr基因的snp位点 | |
KR102000878B1 (ko) | 넙치 암수판별용 마커 및 이를 이용한 hrm-pcr 분석방법 | |
CN111471774B (zh) | 半滑舌鳎性别甄别用共显性长indel分子标记及方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination |