CN114350677A - OsWRKY53基因在负向调控水稻分蘖形成中的应用 - Google Patents
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Abstract
OsWRKY53基因在负向调控水稻分蘖形成中的应用。涉及植物基因工程领域,尤其涉及一种水稻OsWRKY53基因的新应用。本发明提供OsWRKY53基因在负向调控水稻分蘖形成中的应用。即敲除OsWRKY53基因后,水稻分蘖数目增多。增加水稻分蘖数目的方法为:利用CRISPR/Cas9方法靶向突变水稻OsWRKY53基因,获得敲除突变体oswrky53。本发明应用于水稻分蘖调控。
Description
技术领域
本发明涉及植物基因工程领域,尤其涉及一种水稻OsWRKY53基因的新应用。
背景技术
水稻(Oryza sativa L.)是重要的粮食作物之一,世界上一半以上的人口都以其为主食,中国的水稻种植面积居世界第二位,而总产量位居世界第一,因此在农业生产和发展中具有重要的地位。近些年来,理想株型水稻新品种的培育是育种家们的关注重点,力求通过筛选高质、高产水稻新株型,实现水稻产量的新突破。
水稻单株有效穗数、每穗粒数和千粒重是决定产量的3个基本要素。分蘖是构成水稻株型的重要农艺性状之一,其数目直接决定有效穗数。因此,水稻分蘖的研究和应用具有十分重要的意义。水稻分蘖数的形成主要受环境因素、植物激素和基因调控三方面的影响,通过基因编辑的方式对水稻分蘖进行调控,将其应用于水稻分子设计育种,培育高质、高产新株型,实现作物产量的提高是一项十分意义的工作。
OsWRKY53基因是一个功能较强大的水稻转录因子,被报道能够参与调控水稻BR信号反应、参与调控水稻叶倾角和粒型的发育、正向调控水稻稻瘟病反应、负向调控水稻白叶枯病反应、正向调控病原体防御反应、负向调控咀嚼式虫害防御反应。但OsWRKY53在水稻分蘖数上的调控功能未见报道,
发明内容
本发明的目的是要提供OsWRKY53基因在水稻分蘖数上的调控中的新用途。
本发明提供OsWRKY53基因在负向调控水稻分蘖形成中的应用。
进一步的,所述负向调控水稻分蘖为敲除OsWRKY53基因后,水稻分蘖数目增多。
本发明还提供一种增加水稻分蘖数目的方法包括以下步骤:利用CRISPR/Cas9方法靶向突变水稻OsWRKY53基因,获得敲除突变体oswrky53。
进一步的,所述利用CRISPR/Cas9方法靶向突变水稻OsWRKY53基因的具体方法为:
一、根据OsWRKY53基因的CDS序列设计两对靶点引物F1、R1、F2和R2,构建OsWRKY53基因编辑载体
二、将OsWRKY53基因编辑载体转入农杆菌EHA105中,利用农杆菌介导法转化水稻,获得转基因水稻植株;
三、以转基因水稻植株的DNA为模板,用鉴定引物F3和R3进行PCR扩增,筛选出位点编辑纯合的oswrky53突变体。
本发明的有益效果:
水稻单株有效穗数、每穗粒数和千粒重是决定产量的3个基本要素。而单株有效穗数由成蘖数和成穗率直接决定,因而水稻分蘖数的研究对作物产量的提高具有十分重要的意义。
水稻分蘖的形成主要受环境因素、植物激素和基因调控三方面的影响,本发明首次发现水稻转录因子OsWRKY53基因负向调控水稻分蘖的形成,通过基因编辑的方式,在水稻品种龙粳11、龙稻16和稻花香2号中敲除OsWRKY53基因后,筛选出OsWRKY53基因编辑纯合的oswrky53突变体。连续大田种植3年,分别统计3年农艺性状。结果显示这3种遗传背景下的oswrky53突变体,分蘖数均显著增多,说明OsWRKY53负向调控水稻的分蘖数的形成。
本发明发现了OsWRKY53基因所调控的一个新功能,为水稻株型育种提供理论支撑。
附图说明
图1为龙粳11、龙稻16和稻花香遗传背景下的oswrky53突变体突变类型和测序结果;
图2为龙粳11遗传背景下oswrky53突变体及其对照总体形态图;
图3为龙粳11遗传背景下oswrky53突变体及其对照的分蘖放大图;
图4为2019年9月龙粳11遗传背景下oswrky53突变体及其对照分蘖数统计结果;
图5为2020年3月龙粳11遗传背景下oswrky53突变体及其对照分蘖数统计结果;
图6为2020年9月龙粳11遗传背景下oswrky53突变体及其对照分蘖数统计结果;
图7为龙稻16遗传背景下oswrky53突变体及其对照总体形态图;
图8为2019年9月龙稻16遗传背景下oswrky53突变体及其对照分蘖数统计结果;
图9为2020年3月龙稻16遗传背景下oswrky53突变体及其对照分蘖数统计结果;
图10为2020年9月龙稻16遗传背景下oswrky53突变体及其对照分蘖数统计结果;
图11为稻花香2号遗传背景下oswrky53突变体及其对照总体形态图;
图12为2019年9月稻花香2号遗传背景下oswrky53突变体及其对照分蘖数统计结果;
图13为2020年3月稻花香2号遗传背景下oswrky53突变体及其对照分蘖数统计结果;
图14为2020年9月稻花香2号遗传背景下oswrky53突变体及其对照分蘖数统计结果。
具体实施方式
下面对本发明的实施例做详细说明,以下实施例在以本发明技术方案为前提下进行实施,给出了详细的实施方案和具体的操作过程,但本发明的保护范围不限于下述的实施例。
实施例1:构建OsWRKY53基因编辑载体
1、将OsWRKY53基因的CDS序列输入CRISPR Primer Designer软件,设计两对靶点引物(F1和R1;F2和R2)。
正向引物F1:5'-GGCATTCCAGTCGTACCTCTGAGC-3'
反向引物R1:5'-AAACGCTCAGAGGTACGACTGGAA-3'
正向引物F2:5'-GCCGAGCTGGAGGACGGGTACAAC-3'
反向引物R2:5'-AAACGTTGTACCCGTCCTCCAGCT-3'
2、将100μM上下游引物各取1μl加入到98μl的0.5×TE溶液中,90℃热激30s,形成打靶接头,移转至室温冷却,完成退火过程。
3、将以上2个打靶接头分别连接到U3和U6a的gRNA表达盒上,得到连接产物。PCR程序为:37℃ 5min,20℃ 5min,5个循环。
表1
pYL-U3/U6a-gRNA载体(10ng/μl) | 1.0μl |
打靶接头(0.1μM) | 1.0μl |
10×T<sub>4</sub> DNA ligase buffer | 1.0μl |
T<sub>4</sub> DNA连接酶 | 0.5μl |
Bsa Ⅰ限制性内切酶 | 0.1μl |
ddH<sub>2</sub>O | 补至10μl |
4、通过巢式PCR的方法扩增gRNA表达盒
(1)以步骤3连接产物为模板进行第一轮PCR扩增,PCR程序:98℃ 2min;98℃ 10s,60℃ 10s,72℃ 20s,共25个循环;72℃ 5min。
表2
(2)PCR产物倍,以其
将第一轮稀释10为模板进行第二轮PCR扩增,PCR程序:98℃ 2min;98℃ 10s,60℃10s,72℃ 30s,25个循环;72℃ 5min。
表3
模板 | 1μl |
B<sub>n</sub>'引物(10μM) | 0.3μl |
B<sub>n+1</sub>引物(10μM) | 0.3μl |
5×PrimerSTAR GXL Buffer | 4μl |
PrimerSTAR GXL DNA Polymerase | 0.2μl |
dNTP(2.5mM) | 1μl |
ddH<sub>2</sub>O | 补至18μl |
本步骤操作所涉及到的通用引物序列为:
U-F:5'-CTCCGTTTTACCTGTGGAATCG-3'
gRNA-R:5'-CGGAGGAAAATTCCATCCAC-3'
B1':5'-TTCAGAGGTCTCTCTCGCACTGGAATCGGCAGCAAAGG-3'
B2:5'-AGCGTGGGTCTCGTCAGGGTCCATCCACTCCAAGCTC-3'
B2':5'-TTCAGAGGTCTCTCTGACACTGGAATCGGCAGCAAAGG-3'
BL:5'-AGCGTGGGTCTCGACCGGGTCCATCCACTCCAAGCTC-3'
5、将上述第二轮PCR获得的片段连接入pYLCRSPR/Cas9-MT载体骨架上,即完成敲除载体的构建。pYLCRSPR/Cas9-MT载体骨架购买自淼灵质粒平台(www.miaolingbio.com)。
表4
pYLCRISPR/Cas9-MT质粒(100ng/μL) | 1μL |
各回收PCR产物 | 20~40ng |
BsaI | 1μL |
10×Cutsmart Buffer | 1.5μL |
ddH<sub>2</sub>O | 补至15μL |
PCR程序:37℃,15min.
随后,在上述体系基础上加入连接酶,连接体系为:
表5
T<sub>4</sub> DNA酶 | 0.1μL |
10x DNA ligase buffer | 1.5μL |
PCR程序:37℃ 5min,10℃ 5min,20℃ 5min,共15个循环。
6、连接产物转化大肠杆菌
(1)将步骤5的连接产物全部加入至大肠杆菌Top10感受态,用手指轻轻弹动管底,使连接产物与感受态完全混匀,冰上静止30min。
(2)42℃,热激90s,迅速转移至冰上2min。
(3)加入800μl LB液体培养基,37℃,120rpm孵育1h。
(4)将上述大肠杆菌涂布于含50μg/ml的卡那霉素抗性的的固体LB培养基上。
7、鉴定阳性克隆
(1)混合PCR体系
表6
(2)PCR程序如下:95℃ 3min;95℃ 30s,58℃ 30s,72℃ 1min,35个循环;72℃10min。
8、挑取上述PCR鉴定出的阳性克隆至10ml左右液体LB培养基中(50μg/ml的卡那霉素),37℃,120rpm孵育12h以上,进行质粒的提取,质粒提取方法参照康为世纪的质粒提取试剂盒。
实施例2:转化农杆菌EHA105
1、将EHA105感受态从-80℃冰箱取出,置于冰上融化。
2、将0.5~1μg的目的质粒加入到100ul EHA105感受态中,冰上放置30min。
3、迅速置于液氮中5min。
4、从液氮中取出,迅速置于37℃水预锅中水浴5min。
5、转移至冰上2min。
6、加入800μl LB液体培养基,置于全温震荡器(购自MKN公司)中,28℃,120rpm孵育4~5h。
7、离心,弃大部分上清,将剩余菌液涂抹于含有卡那霉素(50μg/ml)(购自Amresco)和利福平(50ug/ml)(购自Amresco)的LB固体培养基上,28℃培养3天左右。
8、待长出菌落后,进行菌落PCR鉴定,鉴定出阳性克隆。
9、挑取阳性克隆至加有相应抗生素和利福平的液体LB培养基中,28℃,180rpm培养16h左右,此时的菌液可以用30%的甘油按1:1的体积比进行保存,存至-80℃冰箱,侵染愈伤组织时,从-80℃取出进行活化即可。
实施例3:oswrky53突变体的获得
1、农杆菌侵染水稻愈伤组织
(1)从-80℃冰箱取出以上目的存菌,按1:100的比例加入含有卡那霉素(50μg/ml)和利福平(50μg/ml)的液体LB培养基中,180rpm,28℃培养过夜。
(2)将菌液培养至肉眼看上去像橙汁一样的颜色(OD=1.0左右),方可从培养箱中取出。
(3)取500μl左右菌液至1.5ml离心管中,5000rpm,28℃,离心3min,弃上清,可以看到管底有白色的菌团。用300ul含有20μg/ml的乙酰丁香酮(购自Aldrich)的液体共培培养基轻轻吹打管底菌团,使其均匀的悬浮在液体培养基中。
(4)挑选生长状态良好的龙粳11(LJ11)、龙稻16(LD16)和稻花香(DHX)的愈伤组织至50ml离心管中,大约至离心管刻度5ml左右。
(5)加入20ml含有20μg/ml的乙酰丁香酮的液体共培培养基,然后将上述悬浮好的300μl菌液全部加入到50ml离心管中,持续轻柔混匀2~3min,以进行侵染。
(6)将液体共培培养基倒掉,然后将侵染好的愈伤组织转移至铺有滤纸的培养皿中,吸附多余的培养基,这一过程大约需要1min左右。在固体共培培养基上铺一层滤纸,使滤纸浸透,然后将上述侵染好的愈伤组织转移至此固体培养基上,28℃暗培养2~3天。
2、恢复培养
(1)除菌:被侵染的愈伤暗培养2~3天后,将愈伤颗粒转移至50ml离心管中,用含有400μg/ml羧卞青霉素(购自Amresco)的无菌水,清洗愈伤组织4~5遍,每次持续1min左右。
(2)再用无菌水清洗愈伤组织2~3遍,转移至铺有滤纸的培养皿上,吸干多余水分。将上述愈伤组织转移至含有400μg/ml羧卞青霉素的恢复培养基上,28℃人工气候培养箱(24h光培养)恢复培养4~5天。
3、筛选培养
恢复培养4~5天后,将恢复培养基上的愈伤组织转移至含有400μg/ml羧卞青霉素和50μg/ml潮霉素(购自Roche)的筛选培养基上。将其转移至28℃人工气候培养箱(24h光培养)中培养30天左右。
4、分化培养
将筛选培养基上的抗性愈伤转移至分化培养基上,每瓶移至一簇愈伤。将其置于28℃人工气候培养箱(24h光培养)中培养30天左右,即可分化出转基因苗。
5、转基因苗的鉴定
(1)将20mg左右水稻叶片装入2ml离心管中,加入经高压灭菌的钢珠,用液氮速冻,然后剧烈震荡,直至叶片成粉末状。
(2)将钢珠倒出,加入700μl DNA裂解液,65℃水浴30min,使其充分裂解。
(3)加入700μl氯仿,上下剧烈颠倒混匀,室温静置10min。
(4)12000rpm,4℃,离心10min。
(5)取上清至一新的1.5ml离心管中,加入等体积异丙醇,上下颠倒混匀,室温静置10min。
(6)12000rpm,4℃,离心10min。
(7)弃上清,即可看到管底有白色沉淀,该沉淀即为DNA和蛋白的混合物,加入70%乙醇清洗沉淀。
(8)12000rpm,4℃,离心10min。弃上清并置于室温晾干,待乙醇挥发干净后,加入50~100μl去离子水溶解沉淀,此时的液体即为水稻的DNA粗提液,可用于进行下一步PCR鉴定。
(9)用以上粗提的DNA为模板,按照上述Takara公司的的LA Taq DNA Polymerase说明书,用鉴定引物(F3和R3)进行扩增,PCR产物送至金唯智公司进行测序,直至筛选出位点编辑纯合的oswrky53(LJ11)、oswrky53(LD16)和oswrky53(DHX)突变体。
F3:5'-CGGGGTGCCCAAGTTCAAGTC-3'
R3:5'-ATGGAGCAGCCGTTGTAGGTG-3'
如图1所示,是龙粳11、龙稻16和稻花香2号遗传背景下,获得的3种突变体材料,oswrky53(LJ11)、oswrky53(LD16)和oswrky53(DHX2)的编辑类型和测序结果。以上结果显示,本实验所采用的的3种不同遗传背景下的oswrky53突变体均为纯合的基因编辑材料。
实施例4:大田实验统计水稻农艺性状
将oswrky53(LJ11)、oswrky53(LD16)、oswrky53(DHX2)及各自对照材料分别于2019年5月种植于黑龙江省,2019年9月统计分蘖等农艺性状;2019年11月种植于海南省,2020年3月统计分蘖等农艺性状;2020年5月种植于黑龙江省,2020年9月统计分蘖等农艺性状,连续统计3年。
图2为龙粳11遗传背景下oswrky53突变体及其对照总体形态图,由图2可以看出,敲除OsWRKY53基因后,与对照相比水稻植株矮小。图3为龙粳11遗传背景下oswrky53突变体及其对照的分蘖放大图。由图3可以看出,敲除OsWRKY53基因后,与对照相比水稻分蘖数增多。图4为2019年9月龙粳11遗传背景下oswrky53突变体及其对照分蘖数统计结果。图5为2020年3月龙粳11遗传背景下oswrky53突变体及其对照分蘖数统计结果。图6为2020年9月龙粳11遗传背景下oswrky53突变体及其对照分蘖数统计结果。由统计结果可知,与对照相比oswrky53突变体水稻分蘖数显著增多。
图7为龙稻16遗传背景下oswrky53突变体及其对照总体形态图。由图7可以看出oswrky53突变体分蘖数较对照增多,图8为2019年9月龙稻16遗传背景下oswrky53突变体及其对照分蘖数统计结果。图9为2020年3月龙稻16遗传背景下oswrky53突变体及其对照分蘖数统计结果。图10为2020年9月龙稻16遗传背景下oswrky53突变体及其对照分蘖数统计结果。由统计结果可知,与对照相比oswrky53突变体水稻分蘖数显著增多。
图11为稻花香2号遗传背景下oswrky53突变体及其对照总体形态图。由图11可以看出oswrky53突变体分蘖数较对照增多,图12为2019年9月稻花香2号遗传背景下oswrky53突变体及其对照分蘖数统计结果。图13为2020年3月稻花香2号遗传背景下oswrky53突变体及其对照分蘖数统计结果。图14为2020年9月稻花香2号遗传背景下oswrky53突变体及其对照分蘖数统计结果。由统计结果可知,与对照相比oswrky53突变体水稻分蘖数显著增多。
由以上实验,oswrky53(LJ11)、oswrky53(LD16)和oswrky53(DHX2)的分蘖数目较它们各自的对照都显著增多,且茎较对照显著变细。说明OsWRKY53能够抑制水稻分蘖的形成,负向调控水稻的分蘖数目。
序列表
<110> 中国科学院东北地理与农业生态研究所
<120> OsWRKY53基因在负向调控水稻分蘖形成中的应用
<160> 10
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
ggcattccag tcgtacctct gagc 24
<210> 2
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
aaacgctcag aggtacgact ggaa 24
<210> 3
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
gccgagctgg aggacgggta caac 24
<210> 4
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
aaacgttgta cccgtcctcc agct 24
<210> 5
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 5
ctccgtttta cctgtggaat cg 22
<210> 6
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 6
cggaggaaaa ttccatccac 20
<210> 7
<211> 38
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 7
ttcagaggtc tctctcgcac tggaatcggc agcaaagg 38
<210> 8
<211> 37
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 8
agcgtgggtc tcgtcagggt ccatccactc caagctc 37
<210> 9
<211> 38
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 9
ttcagaggtc tctctgacac tggaatcggc agcaaagg 38
<210> 10
<211> 37
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 10
agcgtgggtc tcgaccgggt ccatccactc caagctc 37
Claims (7)
1.OsWRKY53基因在负向调控水稻分蘖形成中的应用。
2.根据权利要求1所述的应用,其特征在于所述负向调控水稻分蘖为敲除OsWRKY53基因后,水稻分蘖数目增多。
3.根据权利要求2所述的应用,其特征在于增加水稻分蘖数目的方法包括以下步骤:利用CRISPR/Cas9方法靶向突变水稻OsWRKY53基因,获得敲除突变体oswrky53。
4.根据权利要求3所述的方法,其特征在于所述利用CRISPR/Cas9方法靶向突变水稻OsWRKY53基因的具体方法为:
一、根据OsWRKY53基因的CDS序列设计两对靶点引物F1、R1、F2和R2,构建OsWRKY53基因编辑载体
二、将OsWRKY53基因编辑载体转入农杆菌EHA105中,利用农杆菌介导法转化水稻,获得转基因水稻植株;
三、以转基因水稻植株的DNA为模板,用鉴定引物F3和R3进行PCR扩增,筛选出位点编辑纯合的oswrky53突变体。
5.根据权利要求4所述的方法,其特征在于步骤一中靶点引物F1的序列为GGCATTCCAGTCGTACCTCTGAGC,引物R1的序列为AAACGCTCAGAGGTACGACTGGAA。
6.根据权利要求4或5所述的方法,其特征在于步骤一中靶点引物F2的序列为GCCGAGCTGGAGGACGGGTACAAC,引物R2的序列为AAACGTTGTACCCGTCCTCCAGCT。
7.根据权利要求6所述的方法,其特征在于步骤三中鉴定引物F3的序列为CGGGGTGCCCAAGTTCAAGTC,鉴定引物R3的序列为ATGGAGCAGCCGTTGTAGGTG。
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Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2006126671A1 (ja) * | 2005-05-26 | 2006-11-30 | National Institute Of Agrobiological Sciences | 転写因子遺伝子の導入による植物の病害抵抗性の改良 |
CN107299102A (zh) * | 2017-07-20 | 2017-10-27 | 中国科学院东北地理与农业生态研究所 | 水稻BR信号正调控因子OsWRKY53基因及其编码蛋白 |
CN110734916A (zh) * | 2019-11-26 | 2020-01-31 | 浙江大学 | OsbHLH98在调控水稻叶夹角中的应用 |
CN112522299A (zh) * | 2020-12-10 | 2021-03-19 | 浙江万里学院 | 一种利用OsTNC1基因突变获得分蘖增加的水稻的方法 |
CN112812164A (zh) * | 2021-03-31 | 2021-05-18 | 中国科学院东北地理与农业生态研究所 | 水稻转录因子wrky53在mapk级联信号通路中的应用 |
CN112898396A (zh) * | 2021-03-24 | 2021-06-04 | 中国科学院东北地理与农业生态研究所 | OsWRKY53在正向调控BR信号中的应用 |
-
2022
- 2022-01-12 CN CN202210029684.2A patent/CN114350677B/zh active Active
Patent Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2006126671A1 (ja) * | 2005-05-26 | 2006-11-30 | National Institute Of Agrobiological Sciences | 転写因子遺伝子の導入による植物の病害抵抗性の改良 |
CN107299102A (zh) * | 2017-07-20 | 2017-10-27 | 中国科学院东北地理与农业生态研究所 | 水稻BR信号正调控因子OsWRKY53基因及其编码蛋白 |
CN110734916A (zh) * | 2019-11-26 | 2020-01-31 | 浙江大学 | OsbHLH98在调控水稻叶夹角中的应用 |
CN112522299A (zh) * | 2020-12-10 | 2021-03-19 | 浙江万里学院 | 一种利用OsTNC1基因突变获得分蘖增加的水稻的方法 |
CN112898396A (zh) * | 2021-03-24 | 2021-06-04 | 中国科学院东北地理与农业生态研究所 | OsWRKY53在正向调控BR信号中的应用 |
CN112812164A (zh) * | 2021-03-31 | 2021-05-18 | 中国科学院东北地理与农业生态研究所 | 水稻转录因子wrky53在mapk级联信号通路中的应用 |
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
CHUJO,T. 等: "Oryza sativa Japonica Group OsWRKY53 mRNA for transcription factor OsWRKY53, complete cds", 《GENBANK DATABASE》 * |
JIAQI TANG 等: "WRKY53 negatively regulates rice cold tolerance at the booting stage by fine-tuning anther gibberellin levels", 《THE PLANT CELL》 * |
XIAOYAN DAI 等: "OsWRKY74, a WRKY transcription factor, modulates tolerance to phosphate starvation in rice", 《JOURNAL OF EXPERIMENTAL BOTANY》 * |
陈悦 等: "水稻转录因子OsWRKY68蛋白质的表达特征及其功能特性", 《中国农业科学》 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
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