CN114058602A - 新疆紫草咖啡酸及迷迭香酸糖基转移酶及编码基因与应用 - Google Patents

新疆紫草咖啡酸及迷迭香酸糖基转移酶及编码基因与应用 Download PDF

Info

Publication number
CN114058602A
CN114058602A CN202010764505.0A CN202010764505A CN114058602A CN 114058602 A CN114058602 A CN 114058602A CN 202010764505 A CN202010764505 A CN 202010764505A CN 114058602 A CN114058602 A CN 114058602A
Authority
CN
China
Prior art keywords
protein
aeugt
nucleic acid
acid molecule
recombinant
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CN202010764505.0A
Other languages
English (en)
Other versions
CN114058602B (zh
Inventor
黄璐琦
王瑞杉
郭兰萍
王升
詹志来
梁玖雯
李锬
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Institute of Materia Medica of CAMS
Original Assignee
Institute of Materia Medica of CAMS
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Institute of Materia Medica of CAMS filed Critical Institute of Materia Medica of CAMS
Priority to CN202010764505.0A priority Critical patent/CN114058602B/zh
Publication of CN114058602A publication Critical patent/CN114058602A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN114058602B publication Critical patent/CN114058602B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/10Transferases (2.)
    • C12N9/1048Glycosyltransferases (2.4)
    • C12N9/1051Hexosyltransferases (2.4.1)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/70Vectors or expression systems specially adapted for E. coli
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/18Preparation of compounds containing saccharide radicals produced by the action of a glycosyl transferase, e.g. alpha-, beta- or gamma-cyclodextrins
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/44Preparation of O-glycosides, e.g. glucosides
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

本发明公开了新疆紫草咖啡酸及迷迭香酸糖基转移酶及编码基因与应用。本发明提供了来自于新疆紫草的糖基转移酶,为SEQ ID No.6所示AeUGT_01、SEQ ID No.7所示AeUGT_02、SEQ ID No.8所示AeUGT_03、SEQ ID No.9所示AeUGT_04或SEQ ID No.10所示AeUGT_05。酶促反应发现AeUGT_01、02和05可在体外催化咖啡酸形成一种单糖基化产物;AeUGT_01、02、03、04及05可催化迷迭香酸生成至少一种单糖基化产物,其中AeUGT_01还可催化生成双糖基化产物。本发明对于生产咖啡酸及迷迭香酸糖基化产物具有重要理论及实际意义。

Description

新疆紫草咖啡酸及迷迭香酸糖基转移酶及编码基因与应用
技术领域
本发明涉及药用植物基因工程领域,具体涉及新疆紫草咖啡酸及迷迭香酸糖基转移酶及编码基因与应用。
背景技术
传统中药材紫草味甘、咸,性寒,归心、肝经,《本草纲目》曰:紫草“治斑疹、痘毒,活血凉血、利大肠”。新疆紫草[Arnebia euchroma(Royle)Johnst.]有效成分含量高,临床疗效好,是紫草的道地药材。咖啡酸及其衍生物是新疆紫草的主要水溶性有效成分。咖啡酸(caffeic acid)是植物中广泛存在的一种重要次级代谢产物。该化合物不仅是苯丙素(phenylpropanoids)类化合物代谢过程的重要中间体,还是木质素生物合成的前体,在植物生命活动中发挥重要功能。此外,该化合物还是一种抗氧化剂并具有作为抗自由基保护剂应用的潜力。紫草中,迷迭香酸(rosmarinic acid)是主要的咖啡酸衍生物之一,具有抗菌、抗炎和抗病毒等多种生物学活性。
尽管咖啡酸具有多种生物学活性,但常温条件下水溶性较差,仅溶于热水或乙醇,限制了该化合物的应用。酚羟基糖基化修饰可以在不影响咖啡酸生物学活性的前提下提高产物水溶性,并提高咖啡酸的稳定性,是解决上述问题的可行手段(NISHIMURA T,KOMETANIT,TAKII H,et al.Glucosylation of caffeic acid with Bacillus subtilis X-23α-amylase and a description of the glucosides[J].J Biosci Bioeng,1995,80(1):18.)。对于迷迭香酸,4,4′-OH双糖基化修饰可以提高其超氧阴离子清除活性(SATAKE T,KAMIYA K,SAIKI Y,et al.Studies on the constituents of fruits of Helicteresisora L.[J].Chem Pharm Bull,1999,47(10):1444.),因此其酚羟基糖基化同样具有潜在应用价值。
发明内容
本发明的目的是提供新疆紫草咖啡酸及迷迭香酸糖基转移酶及编码基因与应用。
第一方面,本发明要求保护一种蛋白质或成套蛋白质。
本发明所要求保护的蛋白质或成套蛋白质来源于新疆紫草[Arnebia euchroma(Royle)Johnst.]。
所述蛋白质为蛋白AeUGT_01、蛋白AeUGT_02、蛋白AeUGT_03、蛋白AeUGT_04或蛋白AeUGT_05。
所述成套蛋白质由所述蛋白AeUGT_01、所述蛋白AeUGT_02、所述蛋白AeUGT_03、所述蛋白AeUGT_04和所述蛋白AeUGT_05中的全部或任意四项或任意三项或任意两项组成。
所述蛋白AeUGT_01可为如下(A1)-(A4)中任一:
(A1)氨基酸序列如SEQ ID No.6所示的蛋白质;
(A2)将(A1)所限定的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的蛋白质;
(A3)与(A1)或(A2)所限定的氨基酸序列具有99%以上、95%以上、90%以上、85%以上或者80%以上同源性且具有相同功能的蛋白质;
(A4)在(A1)-(A3)中任一所限定的蛋白质的N端和/或C端连接标签后得到的融合蛋白。
所述蛋白AeUGT_02可为如下(B1)-(B4)中任一:
(B1)氨基酸序列如SEQ ID No.7所示的蛋白质;
(B2)将(B1)所限定的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的蛋白质;
(B3)与(B1)或(B2)所限定的氨基酸序列具有99%以上、95%以上、90%以上、85%以上或者80%以上同源性且具有相同功能的蛋白质;
(B4)在(A1)-(B3)中任一所限定的蛋白质的N端和/或C端连接标签后得到的融合蛋白。
所述蛋白AeUGT_03可为如下(C1)-(C4)中任一:
(C1)氨基酸序列如SEQ ID No.8所示的蛋白质;
(C2)将(C1)所限定的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的蛋白质;
(C3)与(C1)或(C2)所限定的氨基酸序列具有99%以上、95%以上、90%以上、85%以上或者80%以上同源性且具有相同功能的蛋白质;
(C4)在(C1)-(C3)中任一所限定的蛋白质的N端和/或C端连接标签后得到的融合蛋白。
所述蛋白AeUGT_04可为如下(D1)-(D4)中任一:
(D1)氨基酸序列如SEQ ID No.9所示的蛋白质;
(D2)将(D1)所限定的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的蛋白质;
(D3)与(D1)或(D2)所限定的氨基酸序列具有99%以上、95%以上、90%以上、85%以上或者80%以上同源性且具有相同功能的蛋白质;
(D4)在(D1)-(D3)中任一所限定的蛋白质的N端和/或C端连接标签后得到的融合蛋白。
所述蛋白AeUGT_05可为如下(E1)-(E4)中任一:
(E1)氨基酸序列如SEQ ID No.10所示的蛋白质;
(E2)将(E1)所限定的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的蛋白质;
(E3)与(E1)或(E2)所限定的氨基酸序列具有99%以上、95%以上、90%以上、85%以上或者80%以上同源性且具有相同功能的蛋白质;
(E4)在(E1)-(E3)中任一所限定的蛋白质的N端和/或C端连接标签后得到的融合蛋白。
其中,所述一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加是指不多于十个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加。
上述蛋白质中,所述标签是指利用DNA体外重组技术,与目的蛋白一起融合表达的一种多肽或者蛋白,以便于目的蛋白的表达、检测、示踪和/或纯化。所述标签可为Flag标签、His标签、MBP标签、HA标签、myc标签、GST标签和/或SUMO标签等。
上述蛋白质中,同源性是指氨基酸序列的同一性。可使用国际互联网上的同源性检索站点测定氨基酸序列的同一性,如NCBI主页网站的BLAST网页。例如,可在高级BLAST2.1中,通过使用blastp作为程序,将Expect值设置为10,将所有Filter设置为OFF,使用BLOSUM62作为Matrix,将Gap existence cost,Per residue gap cost和Lambda ratio分别设置为11,1和0.85(缺省值)并进行检索一对氨基酸序列的同一性进行计算,然后即可获得同一性的值(%)。
上述蛋白质中,所述95%以上的同源性可为至少96%、97%、98%的同一性。所述90%以上的同源性可为至少91%、92%、93%、94%的同一性。所述85%以上的同源性可为至少86%、87%、88%、89%的同一性。所述80%以上的同源性可为至少81%、82%、83%、84%的同一性。
第二方面,本发明要求保护一种核酸分子或成套核酸分子。
本发明所要求保护的核酸分子为核酸分子A、核酸分子B、核酸分子C、核酸分子D或核酸分子E。
本发明所要求保护的成套核酸分子由所述核酸分子A、所述核酸分子B、所述核酸分子C、所述核酸分子D和所述核酸分子E中的全部或任意四项或任意三项或任意两项组成。
所述核酸分子A为编码前文所述蛋白AeUGT_01的核酸分子;
所述核酸分子B为编码前文所述蛋白AeUGT_02的核酸分子;
所述核酸分子C为编码前文所述蛋白AeUGT_03的核酸分子;
所述核酸分子D为编码前文所述蛋白AeUGT_04的核酸分子;
所述核酸分子E为编码前文所述蛋白AeUGT_05的核酸分子。
所述核酸分子可以是DNA,如cDNA、基因组DNA或重组DNA;所述核酸分子也可以是RNA,如mRNA、hnRNA或tRNA等。
进一步地,所述核酸分子A可为如下(a1)-(a3)中任一:
(a1)核苷酸序列如SEQ ID No.1所示的DNA分子;
(a2)在严格条件下与(a1)限定的DNA分子杂交且编码前文所述蛋白AeUGT_01的DNA分子;
(a3)与(a1)或(a2)所限定的DNA序列具有99%以上、95%以上、90%以上、85%以上或者80%以上同源性且编码前文所述蛋白AeUGT_01的DNA分子。
进一步地,所述核酸分子B可为如下(b1)-(b3)中任一:
(b1)核苷酸序列如SEQ ID No.2所示的DNA分子;
(b2)在严格条件下与(b1)限定的DNA分子杂交且编码前文所述蛋白AeUGT_02的DNA分子;
(b3)与(b1)或(b2)所限定的DNA序列具有99%以上、95%以上、90%以上、85%以上或者80%以上同源性且编码前文所述蛋白AeUGT_02的DNA分子。
进一步地,所述核酸分子C可为如下(c1)-(c3)中任一:
(c1)核苷酸序列如SEQ ID No.3所示的DNA分子;
(c2)在严格条件下与(c1)限定的DNA分子杂交且编码前文所述蛋白AeUGT_03的DNA分子;
(c3)与(c1)或(c2)所限定的DNA序列具有99%以上、95%以上、90%以上、85%以上或者80%以上同源性且编码前文所述蛋白AeUGT_03的DNA分子。
所述核酸分子D可为如下(d1)-(d3)中任一:
(d1)核苷酸序列如SEQ ID No.4所示的DNA分子;
(d2)在严格条件下与(d1)限定的DNA分子杂交且编码前文所述蛋白AeUGT_04的DNA分子;
(d3)与(d1)或(d2)所限定的DNA序列具有99%以上、95%以上、90%以上、85%以上或者80%以上同源性且编码前文所述蛋白AeUGT_04的DNA分子。
所述核酸分子E可为如下(e1)-(e3)中任一:
(e1)核苷酸序列如SEQ ID No.1所示的DNA分子;
(e2)在严格条件下与(e1)限定的DNA分子杂交且编码前文所述蛋白AeUGT_05的DNA分子;
(e3)与(e1)或(e2)所限定的DNA序列具有99%以上、95%以上、90%以上、85%以上或者80%以上同源性且编码前文所述蛋白AeUGT_05的DNA分子。
上述核酸分子中,所述严格条件可为如下:50℃,在7%十二烷基硫酸钠(SDS)、0.5M NaPO4和1mM EDTA的混合溶液中杂交,在50℃,2×SSC,0.1%SDS中漂洗;还可为:50℃,在7%SDS、0.5M NaPO4和1mM EDTA的混合溶液中杂交,在50℃,1×SSC,0.1%SDS中漂洗;还可为:50℃,在7%SDS、0.5M NaPO4和1mM EDTA的混合溶液中杂交,在50℃,0.5×SSC,0.1%SDS中漂洗;还可为:50℃,在7%SDS、0.5M NaPO4和1mM EDTA的混合溶液中杂交,在50℃,0.1×SSC,0.1%SDS中漂洗;还可为:50℃,在7%SDS、0.5M NaPO4和1mM EDTA的混合溶液中杂交,在65℃,0.1×SSC,0.1%SDS中漂洗;也可为:在6×SSC,0.5%SDS的溶液中,在65℃下杂交,然后用2×SSC,0.1%SDS和1×SSC,0.1%SDS各洗膜一次。
上述核酸分子中,同源性是指核苷酸序列的同一性。可使用国际互联网上的同源性检索站点测定核苷酸序列的同一性,如NCBI主页网站的BLAST网页。例如,可在高级BLAST2.1中,通过使用blastp作为程序,将Expect值设置为10,将所有Filter设置为OFF,使用BLOSUM62作为Matrix,将Gap existence cost,Per residue gap cost和Lambda ratio分别设置为11,1和0.85(缺省值)并进行检索一对核苷酸序列的同一性进行计算,然后即可获得同一性的值(%)。
上述核酸分子中,所述95%以上的同源性可为至少96%、97%、98%的同一性。所述90%以上的同源性可为至少91%、92%、93%、94%的同一性。所述85%以上的同源性可为至少86%、87%、88%、89%的同一性。所述80%以上的同源性可为至少81%、82%、83%、84%的同一性。
SEQ ID No.6(AeUGT_01蛋白)由499个氨基酸组成。SEQ ID No.1(AeUGT_01基因)由1500个核苷酸组成,编码SEQ ID No.6所示蛋白质。SEQ ID No.7(AeUGT_02蛋白)由463个氨基酸组成。SEQ ID No.2(AeUGT_02基因)由1392个核苷酸组成,编码SEQ ID No.7所示蛋白质。SEQ ID No.8(AeUGT_03蛋白)由507个氨基酸组成。SEQ ID No.3(AeUGT_03基因)由1524个核苷酸组成,编码SEQ ID No.8所示蛋白质。SEQ ID No.9(AeUGT_04蛋白)由469个氨基酸组成。SEQ ID No.4(AeUGT_04基因)由1410个核苷酸组成,编码SEQ ID No.9所示蛋白质。SEQ ID No.10(AeUGT_05蛋白)由481个氨基酸组成。SEQ ID No.5(AeUGT_05基因)由1446个核苷酸组成,编码SEQ ID No.10所示蛋白质。
第三方面,本发明要求保护如下任一生物材料:
P1、重组载体或成套重组载体;
所述重组载体为重组载体A、重组载体B、重组载体C、重组载体D或重组载体E。
所述成套重组载体由所述重组载体A、所述重组载体B、所述重组载体C、所述重组载体D和所述重组载体E中的全部或任意四项或任意三项或任意两项组成。
所述重组载体A为含有前文所述核酸分子A的重组载体;
所述重组载体B为含有前文所述核酸分子B的重组载体;
所述重组载体C为含有前文所述核酸分子C的重组载体;
所述重组载体D为含有前文所述核酸分子D的重组载体;
所述重组载体E为含有前文所述核酸分子E的重组载体。
P2、表达盒或成套表达盒;
所述表达盒为表达盒A、表达盒B、表达盒C、表达盒D或表达盒E。
所述成套表达盒由所述表达盒A、所述表达盒B、所述表达盒C、所述表达盒D和所述表达盒E中的全部或任意四项或任意三项或任意两项组成。
所述表达盒A为含有前文所述核酸分子A的表达盒;
所述表达盒B为含有前文所述核酸分子B的表达盒;
所述表达盒C为含有前文所述核酸分子C的表达盒;
所述表达盒D为含有前文所述核酸分子D的表达盒;
所述表达盒E为含有前文所述核酸分子E的表达盒。
P3、转基因细胞系或成套转基因细胞系;
所述转基因细胞系为转基因细胞系A、转基因细胞系B、转基因细胞系C、转基因细胞系D或转基因细胞系E。
所述成套转基因细胞系由所述转基因细胞系A、所述转基因细胞系B、所述转基因细胞系C、所述转基因细胞系D和所述转基因细胞系E中的全部或任意四项或任意三项或任意两项组成。
所述转基因细胞系A为含有前文所述核酸分子A的转基因细胞系;
所述转基因细胞系B为含有前文所述核酸分子B的转基因细胞系;
所述转基因细胞系C为含有前文所述核酸分子C的转基因细胞系;
所述转基因细胞系D为含有前文所述核酸分子D的转基因细胞系;
所述转基因细胞系E为含有前文所述核酸分子E的转基因细胞系。
P4、重组菌或成套重组菌;
所述重组菌为重组菌A、重组菌B、重组菌C、重组菌D或重组菌E。
所述成套重组菌由所述重组菌A、所述重组菌B、所述重组菌C、所述重组菌D和所述重组菌E中的全部或任意四项或任意三项或任意两项组成。
所述重组菌A为含有前文所述核酸分子A的重组菌;
所述重组菌B为含有前文所述核酸分子B的重组菌;
所述重组菌C为含有前文所述核酸分子C的重组菌;
所述重组菌D为含有前文所述核酸分子D的重组菌;
所述重组菌E为含有前文所述核酸分子E的重组菌。
所述重组载体可为重组表达载体,也可为重组克隆载体。
所述重组表达载体可用现有的表达载体构建。所述表达载体还可包含外源基因的3’端非翻译区域,即包含聚腺苷酸信号和任何其它参与mRNA加工或基因表达的DNA片段。所述聚腺苷酸信号可引导聚腺苷酸加入到mRNA前体的3’端。使用所述基因构建重组表达载体时,在其转录起始核苷酸前可加上任何一种增强型、组成型、组织特异型或诱导型启动子,它们可单独使用或与其它的启动子结合使用;此外,使用本发明的基因构建重组表达载体时,还可使用增强子,包括翻译增强子或转录增强子,这些增强子区域可以是ATG起始密码子或邻接区域起始密码子等,但必需与编码序列的阅读框相同,以保证整个序列的正确翻译。所述翻译控制信号和起始密码子的来源是广泛的,可以是天然的,也可以是合成的。翻译起始区域可以来自转录起始区域或结构基因。
在本发明的一个实施例中,所述重组载体为在pET-28a(+)载体的多克隆位点(如EcoR I和Xho I)间插入所述基因得到的重组质粒。
所述表达盒由能够启动所述基因表达的启动子,所述基因,以及转录终止序列组成。
在本发明的一个实施例中,所述重组菌为含有所述重组载体的大肠杆菌;所述大肠杆菌具体为Transetta(DE3)。
第四方面,本发明要求保护前文所述的蛋白质或成套蛋白质在作为糖基转移酶中的应用。
第五方面,本发明要求保护前文所述的蛋白质或成套蛋白质或前文所述的核酸分子或成套核酸分子或前文所述的生物材料在制备具有糖基转移酶活性的产品中的应用。
在第四和第五方面所述应用中,以咖啡酸或迷迭香酸作为糖基化的受体底物。
所述咖啡酸的结构式如式I所示;所述迷迭香酸的结构式如式II所示。
Figure BDA0002609667190000061
进一步地,当所述糖基转移酶为前文所述蛋白AeUGT_01时,所述受体底物可为迷迭香酸或咖啡酸。
进一步地,当所述糖基转移酶为前文所述蛋白AeUGT_02时,所述受体底物可为咖啡酸或迷迭香酸;
进一步地,当所述糖基转移酶为前文所述蛋白AeUGT_03时,所述受体底物可为迷迭香酸;
进一步地,当所述糖基转移酶为前文所述蛋白AeUGT_04时,所述受体底物可为迷迭香酸;
进一步地,当所述糖基转移酶为前文所述蛋白AeUGT_05时,所述受体底物可为迷迭香酸或咖啡酸。
更进一步地,当所述糖基转移酶为前文所述蛋白AeUGT_01时,可催化迷迭香酸生成单糖基化产物和双糖基化产物,可催化咖啡酸生成单糖基化产物;
更进一步地,当所述糖基转移酶为前文所述蛋白AeUGT_02时,可催化咖啡酸生成单糖基化产物,可催化迷迭香酸生成单糖基化产物;
更进一步地,当所述糖基转移酶为前文所述蛋白AeUGT_03时,可催化迷迭香酸生成单糖基化产物;
更进一步地,当所述糖基转移酶为前文所述蛋白AeUGT_04时,可催化迷迭香酸生成单糖基化产物;
更进一步地,当所述糖基转移酶为前文所述蛋白AeUGT_05时,可催化迷迭香酸生成单糖基化产物,可催化咖啡酸生成单糖基化产物。
第六方面,本发明要求保护如下任一方法:
方法1:一种制备迷迭香酸单糖基化产物和双糖基化产物的方法,包括如下步骤:以前文所述蛋白AeUGT_01为糖基转移酶,以迷迭香酸为糖基化的受体底物,以UDP-葡萄糖作为糖基供体,进行酶促反应。
方法2:一种制备咖啡酸单糖基化产物的方法,包括如下步骤:以前文所述蛋白AeUGT_01为糖基转移酶,以咖啡酸为糖基化的受体底物,以UDP-葡萄糖作为糖基供体,进行酶促反应。
方法3:一种制备咖啡酸单糖基化产物的方法,包括如下步骤:以前文所述蛋白AeUGT_02为糖基转移酶,以咖啡酸为糖基化的受体底物,以UDP-葡萄糖作为糖基供体,进行酶促反应。
方法4:一种制备迷迭香酸单糖基化产物的方法,包括如下步骤:以前文所述蛋白AeUGT_02为糖基转移酶,以迷迭香酸为糖基化的受体底物,以UDP-葡萄糖作为糖基供体,进行酶促反应。
方法5:一种制备迷迭香酸单糖基化产物的方法,包括如下步骤:以前文所述蛋白AeUGT_03为糖基转移酶,以迷迭香酸为糖基化的受体底物,以UDP-葡萄糖作为糖基供体,进行酶促反应。
方法6:一种制备迷迭香酸单糖基化产物的方法,包括如下步骤:以前文所述蛋白AeUGT_04为糖基转移酶,以迷迭香酸为糖基化的受体底物,以UDP-葡萄糖作为糖基供体,进行酶促反应。
方法7:一种制备迷迭香酸单糖基化产物的方法,包括如下步骤:以前文所述蛋白AeUGT_05为糖基转移酶,以迷迭香酸为糖基化的受体底物,以UDP-葡萄糖作为糖基供体,进行酶促反应。
方法8:一种制备咖啡酸单糖基化产物的方法,包括如下步骤:以前文所述蛋白AeUGT_05为糖基转移酶,以咖啡酸为糖基化的受体底物,以UDP-葡萄糖作为糖基供体,进行酶促反应。
进一步,所述方法中,所述受体底物和所述供体的摩尔比可为1:2;作为糖基转移酶的所述蛋白质足量。
在所述方法中,进行所述酶促反应的温度为30℃;反应时间为90min。
在本发明中,所述糖基化为酚羟基的糖基化。
实验证明,本发明咖啡酸寡聚体合成调控有关的糖基转移酶AeUGT_01–AeUGT_05具有糖基转移酶的特征结构域,酶促反应分析发现AeUGT_01、AeUGT_02和AeUGT_05可在体外催化咖啡酸形成一种单糖基化产物;AeUGT_01、AeUGT_02、AeUGT_03、AeUGT_04及AeUGT_05可催化迷迭香酸生成至少一种单糖基化产物,其中AeUGT_01还可催化生成双糖基化产物。本发明,对于生产咖啡酸及迷迭香酸糖基化产物具有重要的理论及实际意义。
附图说明
图1为AeUGT_01、AeUGT_02、AeUGT_03及AeUGT_04基因的克隆。1-3为AeUGT_01,4-6为AeUGT_02,7-9为AeUGT_03,10-12为AeUGT_04,M为DNA marker(DL2000)。
图2为AeUGT_05基因的克隆。1-3为AeUGT_05,M为DNA marker(DL2000)。
图3为UPLC/MS检测AeUGT_01–AeUGT_05蛋白粗酶对咖啡酸及迷迭香酸的体外活性。通过比对提取离子色谱图(extracted ion chromatogram,EIC)与样品紫外吸收色谱图确认底物、产物保留时间及产物中糖基个数。底物及糖基化产物提取分子量(m/z)分别如下:咖啡酸,m/z 179;咖啡酸单糖基化产物,m/z 341;迷迭香酸,m/z 359;迷迭香酸单糖基化产物,m/z 521;迷迭香酸双糖基化产物,m/z 683。A1为AeUGT_01对咖啡酸的糖基化反应。A2为AeUGT_02对咖啡酸的糖基化反应。A3为AeUGT_05对咖啡酸的糖基化反应。B1为AeUGT_01对迷迭香酸的糖基化反应。B2为AeUGT_02对迷迭香酸的糖基化反应。B3为AeUGT_05对迷迭香酸的糖基化反应。B4为AeUGT_03对迷迭香酸的糖基化反应。B5为AeUGT_04对迷迭香酸的糖基化反应。C1为咖啡酸(Caffeic acid)和迷迭香酸(Rosmarinic acid)的化学结构。UPLC/MS结果图按从上到下顺序依次为:第一行,酶促反应UPLC检测结果;第二行,酶促反应提取离子色谱图(extracted ion chromatogram,EIC),提取分子量为底物分子量;第三/四行,酶促反应EIC图,提取分子量为单/双糖基化产物分子量。底物及糖基化产物提取分子量(m/z):咖啡酸,m/z179;咖啡酸单糖基化产物,m/z341;迷迭香酸,m/z359迷迭香酸单糖基化产物,m/z521;迷迭香酸双糖基化产物,m/z683。
具体实施方式
下面结合具体实施方式对本发明进行进一步的详细描述,给出的实施例仅为了阐明本发明,而不是为了限制本发明的范围。以下提供的实施例可作为本技术领域普通技术人员进行进一步改进的指南,并不以任何方式构成对本发明的限制。
下述实施例中的实验方法,如无特殊说明,均为常规方法,按照本领域内的文献所描述的技术或条件或者按照产品说明书进行。下述实施例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。
咖啡酸(Caffeic acid):西力生物公司产品,货号:BBP02925。
迷迭香酸(Rosmarinic acid):西力生物公司产品,货号:BBP00081。
尿苷二磷酸-α-D-葡萄糖(UDPG):sigma-aldrich公司产品,货号:670120。
大肠杆菌表达载体pET-28a(+):NovagenTM,货号:69864-3。
大肠杆菌表达菌株Transetta(DE3)Chemically Competent Cell:全式金,货号:CD801-02。
实施例1、咖啡酸及迷迭香酸糖基转移酶基因的筛选与克隆
一、咖啡酸及迷迭香酸糖基转移酶基因的筛选
候选基因的筛选按照下列程序进行:(1)利用已报道糖基转移酶氨基酸序列对新疆紫草转录组数据库(Genbank SRA档案库,录入编号SRP137782)进行本地Blast检索,结合转录组数据库中各Unigene功能注释初步选定候选基因;(2)选择紫草素匮乏白色悬浮培养细胞系中表达量FPKM值大于1的序列并排除对应氨基酸数量小于300的不完整序列;(3)通过在线比对确认候选基因中包含UDP-葡萄糖基转移酶保守结构域(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Structure/cdd/wrpsb.cgi)。
二、咖啡酸及迷迭香酸糖基转移酶基因的克隆
1、以TRIzol试剂(Invitrogen)从新疆紫草白色悬浮培养细胞中提取总RNA。用DNase处理后,取总RNA样品进行琼脂糖凝胶电泳,通过比较28S与18S条带之间亮度的差异确定RNA提取质量。使用oligo(dT)引物以PrimerScript第一链cDNA合成试剂盒(TaKaRa)合成第一链cDNA。
2、全长cDNA的克隆和测序
以第一链cDNA为模板,使用
Figure BDA0002609667190000091
Hot Start High-Fidelity DNA Polymerase(NEB)克隆候选基因蛋白编码区(CDS)全长,使用如下5对引物分别进行PCR扩增:
AeUGT_01-F1:5’-ATGGGATCTTTAGGTGAGATT-3’;
AeUGT_01-R1:5’-TTATGAAGACGAGTCGCT-3’。
AeUGT_02-F1:5’-ATGTCTGGTGCTAGTCC-3’;
AeUGT_02-R1:5’-TTATTCACTTATTTCTCTCACAAGT-3’。
AeUGT_03-F1:5’-ATGGAAGCTTTGGGTGA-3’;
AeUGT_03-R1:5’-TTATGAAGACGAGTCGCTTA-3’。
AeUGT_04-F1:5’-ATGGGTGAAGATCAACTACA-3’;
AeUGT_04-R1:5’-TCATCGGTTAAGCTGCC-3’。
AeUGT_05-F1:5’-ATGACAACAATTATGGGACAG-3’;
AeUGT_05-R1:5’-TCAACTAATATTTTTCTTGATATCTTGT-3’。
扩增产物进行琼脂糖凝胶电泳,结果如图1、图2所示,电泳结果表明在约1500bp处出现特异片段,用TIANgel Midi Purification Kit(天根)回收目标片段,连接
Figure BDA0002609667190000092
E1载体(全式金)并转化Trans1-T1 Phage Resistant ChemicallyCompetent Cell(全式金),并挑取阳性转化子测序(上海生工)。
测序结果显示:采用引物对AeUGT_01-F1/AeUGT_01-R1扩增得到了含有SEQ IDNo.1所示核苷酸序列的DNA片段,采用引物对AeUGT_02-F1/AeUGT_02-R1扩增得到了含有SEQ ID No.2所示核苷酸序列的DNA片段,采用引物对AeUGT_03-F1/AeUGT_03-R1扩增得到了含有SEQ ID No.3所示核苷酸序列的DNA片段,采用引物对AeUGT_04-F1/AeUGT_04-R1扩增得到了含有SEQ ID No.4所示核苷酸序列的DNA片段,采用引物对AeUGT_05-F1/AeUGT_05-R1扩增得到了含有SEQ ID No.5所示核苷酸序列的DNA片段。将SEQ ID No.1所示基因命名为AeUGT_01基因,SEQ ID No.2所示基因命名为AeUGT_02基因,SEQ ID No.3所示基因命名为AeUGT_03基因,SEQ ID No.4所示基因命名为AeUGT_04基因,SEQ ID No.5所示基因命名为AeUGT_05基因。SEQ ID No.1为完整开放阅读框,编码SEQ ID No.6所示蛋白质(命名为AeUGT_01蛋白);SEQ ID No.2为完整开放阅读框,编码SEQ ID No.7所示蛋白质(命名为AeUGT_02蛋白);SEQ ID No.3为完整开放阅读框,编码SEQ ID No.8所示蛋白质(命名为AeUGT_03蛋白);SEQ ID No.4为完整开放阅读框,编码SEQ ID No.9所示蛋白质(命名为AeUGT_04蛋白);SEQ ID No.5为完整开放阅读框,编码SEQ ID No.10所示蛋白质(命名为AeUGT_05蛋白)。
经上述步骤最终获得含有AeUGT_01基因(SEQ ID No.1)的重组载体pEASY-BluntE1-AeUGT_01,含有AeUGT_02基因(SEQ ID No.2)的重组载体pEASY-Blunt E1-AeUGT_02,含有AeUGT_03基因(SEQ ID No.3)的重组载体pEASY-Blunt E1-AeUGT_03,含有AeUGT_04基因(SEQ ID No.4)的重组载体pEASY-Blunt E1-AeUGT_04,含有AeUGT_05基因(SEQ ID No.5)的重组载体pEASY-Blunt E1-AeUGT_05。
实施例2、咖啡酸及迷迭香酸糖基转移酶基因原核表达及功能分析
1、大肠杆菌表达载体的构建
根据AeUGT_01基因(SEQ ID No.1),AeUGT_02基因(SEQ ID No.2),AeUGT_03基因(SEQ ID No.3),AeUGT_04基因(SEQ ID No.4)及AeUGT_05基因(SEQ ID No.5)的核苷酸序列,分别设计带有EcoR I和Xho I酶切位点的五对引物AeUGT_01-F2/AeUGT_01-R2,AeUGT_02-F2/AeUGT_02-R2,AeUGT_03-F2/AeUGT_03-R2,AeUGT_04-F2/AeUGT_04-R2以及AeUGT_05-F2/AeUGT_05-R2。
AeUGT_01-F2:5’-TCGCGGATCCGAATTCATGGGATCTTTAGGTGAGATT-3’;
AeUGT_01-R2:5’-GGTGGTGGTGCTCGAGTTATGAAGACGAGTCGCT-3’。
AeUGT_02-F2:5’-TCGCGGATCCGAATTCATGTCTGGTGCTAGTCC-3’;
AeUGT_02-R2:5’-GGTGGTGGTGCTCGAGTTATTCACTTATTTCTCTCACAAG T-3’。
AeUGT_03-F2:5’-TCGCGGATCCGAATTCATGGAAGCTTTGGGTGA-3’;
AeUGT_03-R2:5’-GGTGGTGGTGCTCGAGTTATGAAGACGAGTCGCTTA-3’。
AeUGT_04-F2:5’-TCGCGGATCCGAATTCATGGGTGAAGATCAACTACA-3’;
AeUGT_04-R2:5’-GGTGGTGGTGCTCGAGTCATCGGTTAAGCTGCC-3’。
AeUGT_05-F2:5’-TCGCGGATCCGAATTCATGACAACAATTATGGGACAG-3’;
AeUGT_05-R2:5’-GGTGGTGGTGCTCGAGTCAACTAATATTTTTCTTGATATCTTGT-3’。
以实施例1所得重组载体pEASY-Blunt E1-AeUGT_01为模板,以AeUGT_01-F2/AeUGT_01-R2为引物进行PCR扩增,切胶回收后以In-Fusion HD Cloning Kit(Takara)与经过限制性内切酶EcoR I和Xho I双酶切的大肠杆菌表达载体pET-28a(+)的骨架大片段相连,得到重组表达载体pET-28a(+)-AeUGT_01。
以实施例1所得重组载体pEASY-Blunt E1-AeUGT_02为模板,以AeUGT_02-F2/AeUGT_02-R2为引物进行PCR扩增,切胶回收后以In-Fusion HD Cloning Kit(Takara)与经过限制性内切酶EcoR I和Xho I双酶切的大肠杆菌表达载体pET-28a(+)的骨架大片段相连,得到重组表达载体pET-28a(+)-AeUGT_02。
以实施例1所得重组载体pEASY-Blunt E1-AeUGT_03为模板,以AeUGT_03-F2/AeUGT_03-R2为引物进行PCR扩增,切胶回收后以In-Fusion HD Cloning Kit(Takara)与经过限制性内切酶EcoR I和Xho I双酶切的大肠杆菌表达载体pET-28a(+)的骨架大片段相连,得到重组表达载体pET-28a(+)-AeUGT_03。
以实施例1所得重组载体pEASY-Blunt E1-AeUGT_04为模板,以AeUGT_04-F2/AeUGT_04-R2为引物进行PCR扩增,切胶回收后以In-Fusion HD Cloning Kit(Takara)与经过限制性内切酶EcoR I和Xho I双酶切的大肠杆菌表达载体pET-28a(+)的骨架大片段相连,得到重组表达载体pET-28a(+)-AeUGT_04。
以实施例1所得重组载体pEASY-Blunt E1-AeUGT_05为模板,以AeUGT_05-F2/AeUGT_05-R2为引物进行PCR扩增,切胶回收后以In-Fusion HD Cloning Kit(Takara)与经过限制性内切酶EcoR I和Xho I双酶切的大肠杆菌表达载体pET-28a(+)的骨架大片段相连,得到重组表达载体pET-28a(+)-AeUGT_05。
之后将连接反应体系直接转化Trans1-T1 Phage Resistant ChemicallyCompetent Cell(全式金)。
采用引物对T7 promoter primer/T7 terminator primer对重组表达载体pET-28a(+)-AeUGT_01,pET-28a(+)-AeUGT_02,pET-28a(+)-AeUGT_03,pET-28a(+)-AeUGT_04和pET-28a(+)-AeUGT_05进行PCR鉴定。
T7 promoter primer:5’-TAATACGACTCACTATAGGG-3’;
T7 terminator primer:5’-GCTAGTTATTGCTCAGCGG-3’。
PCR扩增阳性结果应为1800bp左右,为外源基因加部分载体片段长度。
PCR检测阳性的重组表达载体pET-28a(+)-AeUGT_01经测序验证后,可知其结构描述为:将SEQ ID No.1所示DNA片段插入到pET-28a(+)载体的酶切位点EcoR I和Xho I之间后得到的重组质粒。PCR检测阳性的重组表达载体pET-28a(+)-AeUGT_02经测序验证后,可知其结构描述为:将SEQ ID No.2所示DNA片段插入到pET-28a(+)载体的酶切位点EcoR I和Xho I之间后得到的重组质粒。PCR检测阳性的重组表达载体pET-28a(+)-AeUGT_03经测序验证后,可知其结构描述为:将SEQ ID No.3所示DNA片段插入到pET-28a(+)载体的酶切位点EcoR I和Xho I之间后得到的重组质粒。PCR检测阳性的重组表达载体pET-28a(+)-AeUGT_04经测序验证后,可知其结构描述为:将SEQ ID No.4所示DNA片段插入到pET-28a(+)载体的酶切位点EcoR I和Xho I之间后得到的重组质粒。PCR检测阳性的重组表达载体pET-28a(+)-AeUGT_05经测序验证后,可知其结构描述为:将SEQ ID No.5所示DNA片段插入到pET-28a(+)载体的酶切位点EcoR I和Xho I之间后得到的重组质粒。
2、诱导表达
将步骤1构建的pET-28a(+)-AeUGT_01,pET-28a(+)-AeUGT_02,pET-28a(+)-AeUGT_03,pET-28a(+)-AeUGT_04和pET-28a(+)-AeUGT_05质粒分别转化表达宿主菌大肠杆菌Transetta(DE3)Chemically Competent Cell(全式金),将重组表达菌株接入含100μg/mL卡那霉素的LB液体培养基中37℃,220转/分钟条件下培养至OD600值约为1.0。其后按照1/10的比例转入新鲜抗性LB液体培养基中相同条件下培养至OD600值约为0.6,加入终浓度1mMIPTG,16℃,180转/分钟条件下诱导蛋白表达。约16小时后结束诱导表达,10,000×g离心20分钟收集菌体。将菌体以1/10培养基体积破碎缓冲液(50mM Tris-HCl,pH 7.6,10%glycerol,1mM PMSF,1mM DTT)重悬浮,冰浴条件下超声破碎菌体,4℃ 14,000×g离心20分钟收集上清,得到含有AeUGT_01、AeUGT_02、AeUGT_03、AeUGT_04、AeUGT_05蛋白的浓缩液。
后续蛋白纯化以1mL镍柱Ni-NTA(GE,USA)进行。上样后以10mL含不同浓度咪唑的缓冲液(20mM磷酸缓冲液,0.5M NaCl,50-200mM咪唑,pH 7.4)梯度洗脱获得。以15mL超滤管(
Figure BDA0002609667190000111
Ultra-15,10K)3000×g离心浓缩蛋白并将洗脱缓冲液置换为反应缓冲液。最终蛋白纯度>80%,Bradford法(全式金)检测浓度约为1mg/mL。
3、新疆紫草咖啡酸和迷迭香酸糖基转移酶的活性分析
在含有约10μg/mL AeUGT_01蛋白或AeUGT_02蛋白或AeUGT_03蛋白或AeUGT_04蛋白或AeUGT_05蛋白的缓冲体系中加入底物咖啡酸(Caffeic acid)或迷迭香酸(Rosmarinicacid),糖基供体尿苷二磷酸-α-D-葡萄糖(UDPG)进行催化反应,缓冲体系包括50mM的Tric-HCl(pH 7.6)、10%(体积分数)的甘油、200μM底物和400μM糖基供体。催化反应温度30℃,90分钟。加入600μL色谱甲醇终止反应。-30℃冷冻过夜使蛋白充分沉淀,15,000×g离心20min收集上清,以针头式滤器(配备0.2μm PTFE滤膜)(津腾)过滤并进行后续UPLC-MS检测。
UPLC-MS仪器为Waters ACQUITY UPLC H-Class超高效液相色谱系统(沃特世公司,美国)配备Waters Separations Module 2695,Waters 2996Photodiode ArrayDetector检测器,Waters Millennium 32工作站;Waters Q-TOF飞行时间串联质谱仪(沃特世公司,美国)。色谱柱为ACQUITY UPLC HSS T3(2.1×100mm,1.8μm,waters),柱温40℃,进样体积1μL。使用乙腈(A)-0.1%甲酸(B)进行梯度洗脱:0~5min,2%~50%A;5~5.5min,50%~98%A(%表示体积百分含量)。质谱条件:离子化模式为电喷雾(ESI)负离子,毛细管电压2500V,锥孔电压为40V,除溶剂气体为氮气,流速900L/h,除溶剂温度为450℃,离子源温度为100℃,扫描范围为50至1500Da。低能量扫描时碰撞电压为6V,高能量扫描时碰撞电压为25-40V。准确质量数用leucine enkephalin作校正液。LC-MS操作软件为MassLynax4.1。
结果显示:
AeUGT_01催化咖啡酸糖基化反应的效率较低,仅生成单糖基化产物(图3中A1);催化迷迭香酸糖基化效率显著提高,且生成单糖基化及双糖基化两类产物(图3中B1)。
AeUGT_02可催化咖啡酸及迷迭香酸的单糖基化反应,对咖啡酸的转化效率高于迷迭香酸(图3中A2,B2)。
AeUGT_03无法糖基化咖啡酸,仅催化迷迭香酸形成单糖基化产物(图3中B4)。
AeUGT_04可有效催化迷迭香酸生成三种单糖基化产物,对咖啡酸无转化能力(图3中B5)。
AeUGT_05可催化咖啡酸及迷迭香酸的单糖基化反应,对迷迭香酸的转化效率高于咖啡酸(图3中A3,B3)。
由于植物次级代谢产物中迷迭香酸糖基化均发生在酚羟基上,故推测AeUGT_01-AeUGT_05催化迷迭香酸酚羟基糖基化反应。目前已知能催化咖啡酸葡萄糖酯形成的植物糖基转移酶均无法同时催化咖啡酸及其衍生物酚羟基糖基化反应(LIM EK,LI Y,PARR A,etal.Identification of glucosyltransferase genes involved in sinapatemetabolism and lignin synthesis in Arabidopsis[J].J Biol Chem,2001,276(6):4344.)。AeUGT_01、AeUGT_02和AeUGT_05可糖基化迷迭香酸酚羟基,因此上述酶催化咖啡酸形成的也是酚羟基糖基化产物。
以上对本发明进行了详述。对于本领域技术人员来说,在不脱离本发明的宗旨和范围,以及无需进行不必要的实验情况下,可在等同参数、浓度和条件下,在较宽范围内实施本发明。虽然本发明给出了特殊的实施例,应该理解为,可以对本发明作进一步的改进。总之,按本发明的原理,本申请欲包括任何变更、用途或对本发明的改进,包括脱离了本申请中已公开范围,而用本领域已知的常规技术进行的改变。按以下附带的权利要求的范围,可以进行一些基本特征的应用。
<110> 中国中医科学院中药研究所
<120> 新疆紫草咖啡酸及迷迭香酸糖基转移酶及编码基因与应用
<130> GNCLN201897
<160> 10
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 1500
<212> DNA
<213> Artificial sequence
<400> 1
atgggatctt taggtgagat tatagtgctt ccattttttg gtcaaggcca tttgaaccca 60
tgtttggaat tgtgcaaaca atttggtgca ctcaatgtta aagccatttt catcataccc 120
tccactttgt catcctctgt atctaatgac catcccttag ttgaggtggt tgagcttccc 180
aactcaccct ctgaatctga atctgaatct gaatctgaat ccaatcctag tcatggaaca 240
ggatcgaatc caccgaggag gaggagtctg gccaatcctc tggctcaggg gattgacagc 300
ttcttgacag aacgatatgg atcgggtcag gttcgaccga tttgtgcagt tgttgatgtc 360
atgatggctt ggagtgtgga tgttttcgct aagttggaga tacccattgc ttcatttttc 420
acttctggag catgtcactc tgctatagag tatgcaaaat ggaaagtaga tgctgattcc 480
atcaaaccag gcgaggttcg gttcttgcct ggtttgccta acaatatgac cttgagttat 540
gcagatgtca acatacatca acgcaagaaa ggaggaaacg tagcagaacc aggatcagca 600
cccgggggtt cggttgaaag caaaccgggt gctggtagaa gaatcccgtg gtgggaaaac 660
gtggagaggt caactgtttt gctgttcaat acttgtgagg atttggaagg gctaataatc 720
aagtatatag ctgatcagac cgggaaaccg gtttatggtg ttgggccttt gttgcctgag 780
caatactgga agtcagctgg ttcacttgtc catgataatg aggctaggtc gaataaggcc 840
accggtatcg cagaagatga agtgatggaa tggttaaagt cgaaagcgga tcagtctgtg 900
atctatatct cattcgggag tgaagttaca ccaacatctg aagaattagg tgaactagca 960
agtgcattgg aggagtcaaa tcaggcattc atatgggtga tccctccagg ttcagggata 1020
tccggacctc ctaggagtat taaaactatg atggggaaag aagaggaggg cggctttgac 1080
ccttatggat tagaggaaaa agttggaaat agggggttga taattaaagg gtgggcaccc 1140
cagttgctaa ttctgagcca tccatcagtg ggaggtttct tatcgcattg tggttggaac 1200
tcgaccgtgg aagcaatagg gaggggtgtg ccaattctgg catggcctat tgggggtgac 1260
cagttcaaca acgctaagct gatagtgaac tatcttggag ttggtcacac gctctataca 1320
agcgaggatc catttgagac gatgaagaag gaacgaatac tgaaagggat taagatgatg 1380
atggatgatc aacaagttca taagaagggg aaggaattgg cacagagatt ccagactggt 1440
tatccttctg tggcttcttt gaaggcgatt gttggtctag taagcgactc gtcttcataa 1500
<210> 2
<211> 1392
<212> DNA
<213> Artificial sequence
<400> 2
atgtctggtg ctagtccaag ctcaaaaaat ggtgtccata ttctcatctt cccctttcca 60
gctcaaggcc acatgctccc acttcttgat ttagcttctc aactagccaa acatggcctt 120
accataacaa ttctagtcac cccaaaaaat cttcctattc tatcaccact tctctcagct 180
caacccacca tcaaacctct aatctttccc tttccacccc acccttcagt tccatctggt 240
gctgaaaatg ttaaggatat tggaaattcc ggaaatgccc ctatcattgc tgcactagcc 300
aaactccatg atgagatagt tgaatggttc aactctcaaa gttgtccacc cattgctctt 360
atctctgact tctttcttgg gtggacccaa gatttggcca acaagattgg tgttccaaga 420
attgtttttt attcatctgg tgcctttttg gcttctgctt ttgattatat ttggaagaat 480
tttgatcttt tgaggtgttt ggatgaaatt gagttttcag attttccaag aaaaccaaga 540
ttcttgaagg aacatctccc ttccgtgttc aggagataca gagactctga tcctgattgg 600
gtgattgtta ggaagagtat ggttgcaaat tcatcaagtt ggggggctgt aatcaacaca 660
tttgatgcca tggaaagtga gttttgtgaa tatttcaaga gattaatggg ccatgaacga 720
gtttattcta ttgggcctgt gaatttactg agtggggcag acagagaagg tgatccaact 780
agtgaagttc taagttggct tgatcaatgt gttaatcgat cagtgttgta tgtgtgcttt 840
ggtagtcaga cagtgttgag ccaggctcaa atcgactctt tgtgtagtgc tcttgatggc 900
agtggagtta aatttgtgtt tgtgacaaag ccgattacgg aacaacagaa aacagagggg 960
tatgggtcgg tccctattga gtttgatacc cgagtcaaca gtcggggctt gattataaga 1020
ggttgggccc cacaagtttc gattctgagc caccgagctg ttggcgggtt tttgagtcat 1080
tgtgggtgga actcggtgtt ggaagcggta gttgggggtg tgatgatatt ggcttggccc 1140
atggaggctg accaatatat caatgcaaga ctattggttg attacatggg cgccgcggta 1200
caagtgtgtg gtgggaggga taccgtgcct aactcgttcg agttggctcg taccattttc 1260
gagtcaatgc aaggagacat cattcaaaag gccaaagcaa atggattgag agatcaagct 1320
cttgaagcaa ttaggagtgg tgggagttca gcaaatgata tggagacact tgtgagagaa 1380
ataagtgaat aa 1392
<210> 3
<211> 1524
<212> DNA
<213> Artificial sequence
<400> 3
atggaagctt tgggtgagat tatagtgctt ccatttttcg gtcaagggca cttaaatcca 60
tgcatggaat tatgcaaaca atttgcaaaa ctaaattata aagccattct catcataccc 120
tccactttgt catcctctgt acctactacc cacaatcctt tggttgaggt ggttgaactt 180
cccaacccat ctccgccaca ggaaaccgct attgtaaccg tggctggatt gaagaatgaa 240
aatggagctg gattataccc atctagagat agcttctcca cccccctggg tcgggcaatt 300
gacaattttt tgtcagagcg atatagaagc tctggtcaga taccactcat ttgtgcagtt 360
gttgatgcca tgatgcgttg gagtgcggat atttttgcta agttgaacgt acccattgct 420
tcatttttca cttccggagc atgccattat gctatagagt atgcaagatg gaaagctgat 480
gttgattcca ttcaaccggg agaggttcgg ttcttgcctg gtttaccaga caatatggcc 540
gtaaactatg cagattttat ccggaacagg cgcattattg gtggaagaga agctactaaa 600
accgatcaac acgaaccggc atcaaccccg ggcgaaagca gacatggtcc acctggtgca 660
tccagaagat taccatggtg ggaagaagaa agatcaactg ttttgctgtt caatacttgt 720
gatgacttgg aagaagtaat aatcaagtgc atagctgatc agaccgggaa accggtttat 780
ggcgttgggc cgttgttgcc ggagcaatac tggaagtcaa ctggttcagt tgtccatgat 840
catgaggttc ggtcgaacaa agccacaagt gttacagaag atgaagtgat gagatggtta 900
agctcaaagc ctgaacagtc ggtcatctat atctcattcg ggagtgaagt ctctccaatg 960
tctgaagaac taggcgagct agcaaacgcc ttggaggagt cgaaccaggc gtttatatgg 1020
gtgatcccac caggctcggg aactcctgga ccgcctagga gcataaaaac tctgatgggg 1080
agggaagatg aggggggatt ttacccttat ggaatggatg aaaaaattgg aaacaggggg 1140
ttgttgatca aagggtgggc acctcagttg ttaattttga gccatccatc agttggaggt 1200
ttcttgtcac attgtggttg gaattcgaca gtggaggcgg tagggagggg tgtaccaatc 1260
ttggcatggc caattggggg tgatcaattc aacaatgcta aactgatagt gaaccatctt 1320
ggggttggtc acacgttata tacgagcgac gattcatttg aaccaatgaa gaaggaacag 1380
ataatgaaag ggattgagat gatgatggct gatcaagaag ttcacaagaa aggtaaggaa 1440
ttggcagcga aattccaggg tggttatcct tctatggctt cgttgaaggc gatcattcat 1500
cgagtaagcg actcgtcttc ataa 1524
<210> 4
<211> 1410
<212> DNA
<213> Artificial sequence
<400> 4
atgggtgaag atcaactaca cataatgttc ttccctttca tggctgctgg ccatatcata 60
cctacactag acatggtcaa gctattttct tcccgtggaa atgtcaaaat cacccttgtc 120
atcacccata gtaattcttc catggttgcc caacaactcg aaaatcaaga aaacatcaac 180
ttcaaacaaa ttgagttccc agatcaagat tctggtctac ctaaagaata tgatactgtt 240
gacaaaatca agggggcacc tgagttgttc cctaagttct tgaaggccct ggaattaatg 300
cagaacccat ttgagaaaat attgcaagaa ttttcccctg attgtcttgt tgcagacatg 360
ttctatccat gggcaacaaa tgctgctgca aagtttgata ttccaaggtt ggtttttcat 420
ggtgtttctt tgtttgctct ctgtggctca gaggttatga gaagagacaa gcctttcaag 480
aacgtttcat cagatacaga acattttgtt attcccaata ttcctcatga aatagtcttc 540
accaggcagc aactttcgga tacagacagg gaggagtttg agacagatat gactagattg 600
atgaggagag tgctggagac agacaagaaa agctatggta ttctcatcaa cagcttttta 660
gagcttgatc cagtctatac cgagtattat aagacggttt tcggaagaag ggcatggaat 720
attggccctc ttctgttatg cagaaggcaa ggaagggaac ttcaatcatc tggcgacgac 780
aacaacgtat gtttgagatg gctggatggg aagaagccaa attcagtaat ctatttgtgt 840
tttgggagtg gctcagtctt cacaacagct cagttgcaag atattgcttt tggtcttgag 900
gctgctggcc aacagttcat ttgggttgtg aggcaagaag ttgatgaaaa ctggttgcct 960
gaaggatttg aggagaaaat attgtctgat aacaggggcc taattataaa gggatgggca 1020
cctcaggtgc ggattcttga acataaagcc gttggagcat tcctgactca ttgtggatgg 1080
aactcgattt tagaagcgat atgtgccggt gtgcctatgg taacatggcc tttatttgca 1140
gagcaatttt acaatgagag gtttgtgaca cgaattttag ggatcggaat tcctgttggt 1200
gcaccaaaat acggtatgat tagcagtggt gtgagcaagg aagccatagc taaggcctta 1260
aaagccataa tggaaggtga gaaagctctt gaagttagaa acaaagcaaa tgaatccaag 1320
aaaatggcat ggaaggctgt tgaaaagggt ggatcatctt acaatgagtt gagtgctttg 1380
ttggaggaaa ttaggcagct taaccgatga 1410
<210> 5
<211> 1446
<212> DNA
<213> Artificial sequence
<400> 5
atgacaacaa ttatgggaca gaaaacacaa cttgtgttca tcccaactcc agcaaggggg 60
catttaatag catcagttga tatggcaaag atgttaatca acagagatgc aaatctttcc 120
attaccatct tgctcatcaa aagaccaaac taccctgctc tagattcctt ccttaattct 180
cttgcaacac tccacatccc ccatctgaat tttgtacaac ttcctagtgc agaacccact 240
gcacccttat ctttcaacat tttcatgtcc aagttggttg acaatcacaa ggaccctgta 300
agagatttcg tgaatggatt cttgaaatca caaggagaaa ccaaacttgc tggatttgtt 360
attgatatgt tttgtacagg gatgattgct gttgctgatg aatttggtct tcccacttat 420
gtattttcta cttcaggaac agctatgctt ggcttgatat ttcatctcca aaatctaagg 480
gatgagttca accaagatat taccaggttt aaggattctg atcaagaagc tgacttgtct 540
gtttcaactt acatcaacaa agttccagca aaggtattgc cttctcctgc tatagacaag 600
gatggctcaa accatttctt gaatcatgca aaaggtatca aaggaaccag gggtatattg 660
gtgaattcat tcttggagtt ggaatctcat gctgtgaaat ctttgtttga agatgataat 720
gttcctccaa tatatccagt agggccgatt cttaatgtcc aggaggaaag tggtggtgat 780
gaaaatgaaa agaataggga gatcttgaaa tggttagatg atcagcctga ttcttctgtt 840
gtgttcttgt gcttcggtac aatagggtgt tttgaagctg agcaggtgaa agaaattgct 900
catgcattgg agggaagtgg gtacaggttt ctttggtcat tgcgacaacc tccaccaaag 960
ggggtgacag ggattccgga agaatacgag aatccccagc aagttttgcc agaaggcttc 1020
cttaaacgga cggcgggtgt cgggaagatc ataggatggg caccacaatt ggcggtgttg 1080
tctcattcgg cggtaggagg tttcgtttct cattgcggtt ggaattcgac gttagaaagt 1140
gtttggtgtg gagtacctat ggctgcatgg cctcagtatg cagagcaaca aatgaatgca 1200
tttcaactag tggaagatct tgaattggct gttgagattc aaatggatta cagaatgggt 1260
agttcaagtt tggtgaaagc tcaagagatt gaaactaaag ttaagcaatt gatggaccca 1320
aattctgaaa tgagattcaa agtcaaagct atgaaggaaa agagcagaat ggccttaatg 1380
gagggtggat catcctacaa cttcctagat ggtttcctac aagatatcaa gaaaaatatt 1440
agttga 1446
<210> 6
<211> 499
<212> PRT
<213> Artificial sequence
<400> 6
Met Gly Ser Leu Gly Glu Ile Ile Val Leu Pro Phe Phe Gly Gln Gly
1 5 10 15
His Leu Asn Pro Cys Leu Glu Leu Cys Lys Gln Phe Gly Ala Leu Asn
20 25 30
Val Lys Ala Ile Phe Ile Ile Pro Ser Thr Leu Ser Ser Ser Val Ser
35 40 45
Asn Asp His Pro Leu Val Glu Val Val Glu Leu Pro Asn Ser Pro Ser
50 55 60
Glu Ser Glu Ser Glu Ser Glu Ser Glu Ser Asn Pro Ser His Gly Thr
65 70 75 80
Gly Ser Asn Pro Pro Arg Arg Arg Ser Leu Ala Asn Pro Leu Ala Gln
85 90 95
Gly Ile Asp Ser Phe Leu Thr Glu Arg Tyr Gly Ser Gly Gln Val Arg
100 105 110
Pro Ile Cys Ala Val Val Asp Val Met Met Ala Trp Ser Val Asp Val
115 120 125
Phe Ala Lys Leu Glu Ile Pro Ile Ala Ser Phe Phe Thr Ser Gly Ala
130 135 140
Cys His Ser Ala Ile Glu Tyr Ala Lys Trp Lys Val Asp Ala Asp Ser
145 150 155 160
Ile Lys Pro Gly Glu Val Arg Phe Leu Pro Gly Leu Pro Asn Asn Met
165 170 175
Thr Leu Ser Tyr Ala Asp Val Asn Ile His Gln Arg Lys Lys Gly Gly
180 185 190
Asn Val Ala Glu Pro Gly Ser Ala Pro Gly Gly Ser Val Glu Ser Lys
195 200 205
Pro Gly Ala Gly Arg Arg Ile Pro Trp Trp Glu Asn Val Glu Arg Ser
210 215 220
Thr Val Leu Leu Phe Asn Thr Cys Glu Asp Leu Glu Gly Leu Ile Ile
225 230 235 240
Lys Tyr Ile Ala Asp Gln Thr Gly Lys Pro Val Tyr Gly Val Gly Pro
245 250 255
Leu Leu Pro Glu Gln Tyr Trp Lys Ser Ala Gly Ser Leu Val His Asp
260 265 270
Asn Glu Ala Arg Ser Asn Lys Ala Thr Gly Ile Ala Glu Asp Glu Val
275 280 285
Met Glu Trp Leu Lys Ser Lys Ala Asp Gln Ser Val Ile Tyr Ile Ser
290 295 300
Phe Gly Ser Glu Val Thr Pro Thr Ser Glu Glu Leu Gly Glu Leu Ala
305 310 315 320
Ser Ala Leu Glu Glu Ser Asn Gln Ala Phe Ile Trp Val Ile Pro Pro
325 330 335
Gly Ser Gly Ile Ser Gly Pro Pro Arg Ser Ile Lys Thr Met Met Gly
340 345 350
Lys Glu Glu Glu Gly Gly Phe Asp Pro Tyr Gly Leu Glu Glu Lys Val
355 360 365
Gly Asn Arg Gly Leu Ile Ile Lys Gly Trp Ala Pro Gln Leu Leu Ile
370 375 380
Leu Ser His Pro Ser Val Gly Gly Phe Leu Ser His Cys Gly Trp Asn
385 390 395 400
Ser Thr Val Glu Ala Ile Gly Arg Gly Val Pro Ile Leu Ala Trp Pro
405 410 415
Ile Gly Gly Asp Gln Phe Asn Asn Ala Lys Leu Ile Val Asn Tyr Leu
420 425 430
Gly Val Gly His Thr Leu Tyr Thr Ser Glu Asp Pro Phe Glu Thr Met
435 440 445
Lys Lys Glu Arg Ile Leu Lys Gly Ile Lys Met Met Met Asp Asp Gln
450 455 460
Gln Val His Lys Lys Gly Lys Glu Leu Ala Gln Arg Phe Gln Thr Gly
465 470 475 480
Tyr Pro Ser Val Ala Ser Leu Lys Ala Ile Val Gly Leu Val Ser Asp
485 490 495
Ser Ser Ser
<210> 7
<211> 463
<212> PRT
<213> Artificial sequence
<400> 7
Met Ser Gly Ala Ser Pro Ser Ser Lys Asn Gly Val His Ile Leu Ile
1 5 10 15
Phe Pro Phe Pro Ala Gln Gly His Met Leu Pro Leu Leu Asp Leu Ala
20 25 30
Ser Gln Leu Ala Lys His Gly Leu Thr Ile Thr Ile Leu Val Thr Pro
35 40 45
Lys Asn Leu Pro Ile Leu Ser Pro Leu Leu Ser Ala Gln Pro Thr Ile
50 55 60
Lys Pro Leu Ile Phe Pro Phe Pro Pro His Pro Ser Val Pro Ser Gly
65 70 75 80
Ala Glu Asn Val Lys Asp Ile Gly Asn Ser Gly Asn Ala Pro Ile Ile
85 90 95
Ala Ala Leu Ala Lys Leu His Asp Glu Ile Val Glu Trp Phe Asn Ser
100 105 110
Gln Ser Cys Pro Pro Ile Ala Leu Ile Ser Asp Phe Phe Leu Gly Trp
115 120 125
Thr Gln Asp Leu Ala Asn Lys Ile Gly Val Pro Arg Ile Val Phe Tyr
130 135 140
Ser Ser Gly Ala Phe Leu Ala Ser Ala Phe Asp Tyr Ile Trp Lys Asn
145 150 155 160
Phe Asp Leu Leu Arg Cys Leu Asp Glu Ile Glu Phe Ser Asp Phe Pro
165 170 175
Arg Lys Pro Arg Phe Leu Lys Glu His Leu Pro Ser Val Phe Arg Arg
180 185 190
Tyr Arg Asp Ser Asp Pro Asp Trp Val Ile Val Arg Lys Ser Met Val
195 200 205
Ala Asn Ser Ser Ser Trp Gly Ala Val Ile Asn Thr Phe Asp Ala Met
210 215 220
Glu Ser Glu Phe Cys Glu Tyr Phe Lys Arg Leu Met Gly His Glu Arg
225 230 235 240
Val Tyr Ser Ile Gly Pro Val Asn Leu Leu Ser Gly Ala Asp Arg Glu
245 250 255
Gly Asp Pro Thr Ser Glu Val Leu Ser Trp Leu Asp Gln Cys Val Asn
260 265 270
Arg Ser Val Leu Tyr Val Cys Phe Gly Ser Gln Thr Val Leu Ser Gln
275 280 285
Ala Gln Ile Asp Ser Leu Cys Ser Ala Leu Asp Gly Ser Gly Val Lys
290 295 300
Phe Val Phe Val Thr Lys Pro Ile Thr Glu Gln Gln Lys Thr Glu Gly
305 310 315 320
Tyr Gly Ser Val Pro Ile Glu Phe Asp Thr Arg Val Asn Ser Arg Gly
325 330 335
Leu Ile Ile Arg Gly Trp Ala Pro Gln Val Ser Ile Leu Ser His Arg
340 345 350
Ala Val Gly Gly Phe Leu Ser His Cys Gly Trp Asn Ser Val Leu Glu
355 360 365
Ala Val Val Gly Gly Val Met Ile Leu Ala Trp Pro Met Glu Ala Asp
370 375 380
Gln Tyr Ile Asn Ala Arg Leu Leu Val Asp Tyr Met Gly Ala Ala Val
385 390 395 400
Gln Val Cys Gly Gly Arg Asp Thr Val Pro Asn Ser Phe Glu Leu Ala
405 410 415
Arg Thr Ile Phe Glu Ser Met Gln Gly Asp Ile Ile Gln Lys Ala Lys
420 425 430
Ala Asn Gly Leu Arg Asp Gln Ala Leu Glu Ala Ile Arg Ser Gly Gly
435 440 445
Ser Ser Ala Asn Asp Met Glu Thr Leu Val Arg Glu Ile Ser Glu
450 455 460
<210> 8
<211> 507
<212> PRT
<213> Artificial sequence
<400> 8
Met Glu Ala Leu Gly Glu Ile Ile Val Leu Pro Phe Phe Gly Gln Gly
1 5 10 15
His Leu Asn Pro Cys Met Glu Leu Cys Lys Gln Phe Ala Lys Leu Asn
20 25 30
Tyr Lys Ala Ile Leu Ile Ile Pro Ser Thr Leu Ser Ser Ser Val Pro
35 40 45
Thr Thr His Asn Pro Leu Val Glu Val Val Glu Leu Pro Asn Pro Ser
50 55 60
Pro Pro Gln Glu Thr Ala Ile Val Thr Val Ala Gly Leu Lys Asn Glu
65 70 75 80
Asn Gly Ala Gly Leu Tyr Pro Ser Arg Asp Ser Phe Ser Thr Pro Leu
85 90 95
Gly Arg Ala Ile Asp Asn Phe Leu Ser Glu Arg Tyr Arg Ser Ser Gly
100 105 110
Gln Ile Pro Leu Ile Cys Ala Val Val Asp Ala Met Met Arg Trp Ser
115 120 125
Ala Asp Ile Phe Ala Lys Leu Asn Val Pro Ile Ala Ser Phe Phe Thr
130 135 140
Ser Gly Ala Cys His Tyr Ala Ile Glu Tyr Ala Arg Trp Lys Ala Asp
145 150 155 160
Val Asp Ser Ile Gln Pro Gly Glu Val Arg Phe Leu Pro Gly Leu Pro
165 170 175
Asp Asn Met Ala Val Asn Tyr Ala Asp Phe Ile Arg Asn Arg Arg Ile
180 185 190
Ile Gly Gly Arg Glu Ala Thr Lys Thr Asp Gln His Glu Pro Ala Ser
195 200 205
Thr Pro Gly Glu Ser Arg His Gly Pro Pro Gly Ala Ser Arg Arg Leu
210 215 220
Pro Trp Trp Glu Glu Glu Arg Ser Thr Val Leu Leu Phe Asn Thr Cys
225 230 235 240
Asp Asp Leu Glu Glu Val Ile Ile Lys Cys Ile Ala Asp Gln Thr Gly
245 250 255
Lys Pro Val Tyr Gly Val Gly Pro Leu Leu Pro Glu Gln Tyr Trp Lys
260 265 270
Ser Thr Gly Ser Val Val His Asp His Glu Val Arg Ser Asn Lys Ala
275 280 285
Thr Ser Val Thr Glu Asp Glu Val Met Arg Trp Leu Ser Ser Lys Pro
290 295 300
Glu Gln Ser Val Ile Tyr Ile Ser Phe Gly Ser Glu Val Ser Pro Met
305 310 315 320
Ser Glu Glu Leu Gly Glu Leu Ala Asn Ala Leu Glu Glu Ser Asn Gln
325 330 335
Ala Phe Ile Trp Val Ile Pro Pro Gly Ser Gly Thr Pro Gly Pro Pro
340 345 350
Arg Ser Ile Lys Thr Leu Met Gly Arg Glu Asp Glu Gly Gly Phe Tyr
355 360 365
Pro Tyr Gly Met Asp Glu Lys Ile Gly Asn Arg Gly Leu Leu Ile Lys
370 375 380
Gly Trp Ala Pro Gln Leu Leu Ile Leu Ser His Pro Ser Val Gly Gly
385 390 395 400
Phe Leu Ser His Cys Gly Trp Asn Ser Thr Val Glu Ala Val Gly Arg
405 410 415
Gly Val Pro Ile Leu Ala Trp Pro Ile Gly Gly Asp Gln Phe Asn Asn
420 425 430
Ala Lys Leu Ile Val Asn His Leu Gly Val Gly His Thr Leu Tyr Thr
435 440 445
Ser Asp Asp Ser Phe Glu Pro Met Lys Lys Glu Gln Ile Met Lys Gly
450 455 460
Ile Glu Met Met Met Ala Asp Gln Glu Val His Lys Lys Gly Lys Glu
465 470 475 480
Leu Ala Ala Lys Phe Gln Gly Gly Tyr Pro Ser Met Ala Ser Leu Lys
485 490 495
Ala Ile Ile His Arg Val Ser Asp Ser Ser Ser
500 505
<210> 9
<211> 469
<212> PRT
<213> Artificial sequence
<400> 9
Met Gly Glu Asp Gln Leu His Ile Met Phe Phe Pro Phe Met Ala Ala
1 5 10 15
Gly His Ile Ile Pro Thr Leu Asp Met Val Lys Leu Phe Ser Ser Arg
20 25 30
Gly Asn Val Lys Ile Thr Leu Val Ile Thr His Ser Asn Ser Ser Met
35 40 45
Val Ala Gln Gln Leu Glu Asn Gln Glu Asn Ile Asn Phe Lys Gln Ile
50 55 60
Glu Phe Pro Asp Gln Asp Ser Gly Leu Pro Lys Glu Tyr Asp Thr Val
65 70 75 80
Asp Lys Ile Lys Gly Ala Pro Glu Leu Phe Pro Lys Phe Leu Lys Ala
85 90 95
Leu Glu Leu Met Gln Asn Pro Phe Glu Lys Ile Leu Gln Glu Phe Ser
100 105 110
Pro Asp Cys Leu Val Ala Asp Met Phe Tyr Pro Trp Ala Thr Asn Ala
115 120 125
Ala Ala Lys Phe Asp Ile Pro Arg Leu Val Phe His Gly Val Ser Leu
130 135 140
Phe Ala Leu Cys Gly Ser Glu Val Met Arg Arg Asp Lys Pro Phe Lys
145 150 155 160
Asn Val Ser Ser Asp Thr Glu His Phe Val Ile Pro Asn Ile Pro His
165 170 175
Glu Ile Val Phe Thr Arg Gln Gln Leu Ser Asp Thr Asp Arg Glu Glu
180 185 190
Phe Glu Thr Asp Met Thr Arg Leu Met Arg Arg Val Leu Glu Thr Asp
195 200 205
Lys Lys Ser Tyr Gly Ile Leu Ile Asn Ser Phe Leu Glu Leu Asp Pro
210 215 220
Val Tyr Thr Glu Tyr Tyr Lys Thr Val Phe Gly Arg Arg Ala Trp Asn
225 230 235 240
Ile Gly Pro Leu Leu Leu Cys Arg Arg Gln Gly Arg Glu Leu Gln Ser
245 250 255
Ser Gly Asp Asp Asn Asn Val Cys Leu Arg Trp Leu Asp Gly Lys Lys
260 265 270
Pro Asn Ser Val Ile Tyr Leu Cys Phe Gly Ser Gly Ser Val Phe Thr
275 280 285
Thr Ala Gln Leu Gln Asp Ile Ala Phe Gly Leu Glu Ala Ala Gly Gln
290 295 300
Gln Phe Ile Trp Val Val Arg Gln Glu Val Asp Glu Asn Trp Leu Pro
305 310 315 320
Glu Gly Phe Glu Glu Lys Ile Leu Ser Asp Asn Arg Gly Leu Ile Ile
325 330 335
Lys Gly Trp Ala Pro Gln Val Arg Ile Leu Glu His Lys Ala Val Gly
340 345 350
Ala Phe Leu Thr His Cys Gly Trp Asn Ser Ile Leu Glu Ala Ile Cys
355 360 365
Ala Gly Val Pro Met Val Thr Trp Pro Leu Phe Ala Glu Gln Phe Tyr
370 375 380
Asn Glu Arg Phe Val Thr Arg Ile Leu Gly Ile Gly Ile Pro Val Gly
385 390 395 400
Ala Pro Lys Tyr Gly Met Ile Ser Ser Gly Val Ser Lys Glu Ala Ile
405 410 415
Ala Lys Ala Leu Lys Ala Ile Met Glu Gly Glu Lys Ala Leu Glu Val
420 425 430
Arg Asn Lys Ala Asn Glu Ser Lys Lys Met Ala Trp Lys Ala Val Glu
435 440 445
Lys Gly Gly Ser Ser Tyr Asn Glu Leu Ser Ala Leu Leu Glu Glu Ile
450 455 460
Arg Gln Leu Asn Arg
465
<210> 10
<211> 481
<212> PRT
<213> Artificial sequence
<400> 10
Met Thr Thr Ile Met Gly Gln Lys Thr Gln Leu Val Phe Ile Pro Thr
1 5 10 15
Pro Ala Arg Gly His Leu Ile Ala Ser Val Asp Met Ala Lys Met Leu
20 25 30
Ile Asn Arg Asp Ala Asn Leu Ser Ile Thr Ile Leu Leu Ile Lys Arg
35 40 45
Pro Asn Tyr Pro Ala Leu Asp Ser Phe Leu Asn Ser Leu Ala Thr Leu
50 55 60
His Ile Pro His Leu Asn Phe Val Gln Leu Pro Ser Ala Glu Pro Thr
65 70 75 80
Ala Pro Leu Ser Phe Asn Ile Phe Met Ser Lys Leu Val Asp Asn His
85 90 95
Lys Asp Pro Val Arg Asp Phe Val Asn Gly Phe Leu Lys Ser Gln Gly
100 105 110
Glu Thr Lys Leu Ala Gly Phe Val Ile Asp Met Phe Cys Thr Gly Met
115 120 125
Ile Ala Val Ala Asp Glu Phe Gly Leu Pro Thr Tyr Val Phe Ser Thr
130 135 140
Ser Gly Thr Ala Met Leu Gly Leu Ile Phe His Leu Gln Asn Leu Arg
145 150 155 160
Asp Glu Phe Asn Gln Asp Ile Thr Arg Phe Lys Asp Ser Asp Gln Glu
165 170 175
Ala Asp Leu Ser Val Ser Thr Tyr Ile Asn Lys Val Pro Ala Lys Val
180 185 190
Leu Pro Ser Pro Ala Ile Asp Lys Asp Gly Ser Asn His Phe Leu Asn
195 200 205
His Ala Lys Gly Ile Lys Gly Thr Arg Gly Ile Leu Val Asn Ser Phe
210 215 220
Leu Glu Leu Glu Ser His Ala Val Lys Ser Leu Phe Glu Asp Asp Asn
225 230 235 240
Val Pro Pro Ile Tyr Pro Val Gly Pro Ile Leu Asn Val Gln Glu Glu
245 250 255
Ser Gly Gly Asp Glu Asn Glu Lys Asn Arg Glu Ile Leu Lys Trp Leu
260 265 270
Asp Asp Gln Pro Asp Ser Ser Val Val Phe Leu Cys Phe Gly Thr Ile
275 280 285
Gly Cys Phe Glu Ala Glu Gln Val Lys Glu Ile Ala His Ala Leu Glu
290 295 300
Gly Ser Gly Tyr Arg Phe Leu Trp Ser Leu Arg Gln Pro Pro Pro Lys
305 310 315 320
Gly Val Thr Gly Ile Pro Glu Glu Tyr Glu Asn Pro Gln Gln Val Leu
325 330 335
Pro Glu Gly Phe Leu Lys Arg Thr Ala Gly Val Gly Lys Ile Ile Gly
340 345 350
Trp Ala Pro Gln Leu Ala Val Leu Ser His Ser Ala Val Gly Gly Phe
355 360 365
Val Ser His Cys Gly Trp Asn Ser Thr Leu Glu Ser Val Trp Cys Gly
370 375 380
Val Pro Met Ala Ala Trp Pro Gln Tyr Ala Glu Gln Gln Met Asn Ala
385 390 395 400
Phe Gln Leu Val Glu Asp Leu Glu Leu Ala Val Glu Ile Gln Met Asp
405 410 415
Tyr Arg Met Gly Ser Ser Ser Leu Val Lys Ala Gln Glu Ile Glu Thr
420 425 430
Lys Val Lys Gln Leu Met Asp Pro Asn Ser Glu Met Arg Phe Lys Val
435 440 445
Lys Ala Met Lys Glu Lys Ser Arg Met Ala Leu Met Glu Gly Gly Ser
450 455 460
Ser Tyr Asn Phe Leu Asp Gly Phe Leu Gln Asp Ile Lys Lys Asn Ile
465 470 475 480
Ser

Claims (10)

1.蛋白质或成套蛋白质,其特征在于:
所述蛋白质为蛋白AeUGT_01、蛋白AeUGT_02、蛋白AeUGT_03、蛋白AeUGT_04或蛋白AeUGT_05;
所述成套蛋白质由所述蛋白AeUGT_01、所述蛋白AeUGT_02、所述蛋白AeUGT_03、所述蛋白AeUGT_04和所述蛋白AeUGT_05中的全部或任意四项或任意三项或任意两项组成;
所述蛋白AeUGT_01为如下(A1)-(A4)中任一:
(A1)氨基酸序列如SEQ ID No.6所示的蛋白质;
(A2)将(A1)所限定的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的蛋白质;
(A3)与(A1)或(A2)所限定的氨基酸序列具有99%以上、95%以上、90%以上、85%以上或者80%以上同源性且具有相同功能的蛋白质;
(A4)在(A1)-(A3)中任一所限定的蛋白质的N端和/或C端连接标签后得到的融合蛋白;
所述蛋白AeUGT_02为如下(B1)-(B4)中任一:
(B1)氨基酸序列如SEQ ID No.7所示的蛋白质;
(B2)将(B1)所限定的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的蛋白质;
(B3)与(B1)或(B2)所限定的氨基酸序列具有99%以上、95%以上、90%以上、85%以上或者80%以上同源性且具有相同功能的蛋白质;
(B4)在(A1)-(B3)中任一所限定的蛋白质的N端和/或C端连接标签后得到的融合蛋白;
所述蛋白AeUGT_03为如下(C1)-(C4)中任一:
(C1)氨基酸序列如SEQ ID No.8所示的蛋白质;
(C2)将(C1)所限定的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的蛋白质;
(C3)与(C1)或(C2)所限定的氨基酸序列具有99%以上、95%以上、90%以上、85%以上或者80%以上同源性且具有相同功能的蛋白质;
(C4)在(C1)-(C3)中任一所限定的蛋白质的N端和/或C端连接标签后得到的融合蛋白;
所述蛋白AeUGT_04为如下(D1)-(D4)中任一:
(D1)氨基酸序列如SEQ ID No.9所示的蛋白质;
(D2)将(D1)所限定的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的蛋白质;
(D3)与(D1)或(D2)所限定的氨基酸序列具有99%以上、95%以上、90%以上、85%以上或者80%以上同源性且具有相同功能的蛋白质;
(D4)在(D1)-(D3)中任一所限定的蛋白质的N端和/或C端连接标签后得到的融合蛋白;
所述蛋白AeUGT_05为如下(E1)-(E4)中任一:
(E1)氨基酸序列如SEQ ID No.10所示的蛋白质;
(E2)将(E1)所限定的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且具有相同功能的蛋白质;
(E3)与(E1)或(E2)所限定的氨基酸序列具有99%以上、95%以上、90%以上、85%以上或者80%以上同源性且具有相同功能的蛋白质;
(E4)在(E1)-(E3)中任一所限定的蛋白质的N端和/或C端连接标签后得到的融合蛋白。
2.核酸分子或成套核酸分子,其特征在于:
所述核酸分子为核酸分子A、核酸分子B、核酸分子C、核酸分子D或核酸分子E;
所述成套核酸分子由所述核酸分子A、所述核酸分子B、所述核酸分子C、所述核酸分子D和所述核酸分子E中的全部或任意四项或任意三项或任意两项组成;
所述核酸分子A为编码权利要求1中所述蛋白AeUGT_01的核酸分子;
所述核酸分子B为编码权利要求1中所述蛋白AeUGT_02的核酸分子;
所述核酸分子C为编码权利要求1中所述蛋白AeUGT_03的核酸分子;
所述核酸分子D为编码权利要求1中所述蛋白AeUGT_04的核酸分子;
所述核酸分子E为编码权利要求1中所述蛋白AeUGT_05的核酸分子。
3.根据权利要求2所述的核酸分子或成套核酸分子,其特征在于:所述核酸分子A为如下(a1)-(a3)中任一:
(a1)核苷酸序列如SEQ ID No.1所示的DNA分子;
(a2)在严格条件下与(a1)限定的DNA分子杂交且编码权利要求1中所述蛋白AeUGT_01的DNA分子;
(a3)与(a1)或(a2)所限定的DNA序列具有99%以上、95%以上、90%以上、85%以上或者80%以上同源性且编码权利要求1中所述蛋白AeUGT_01的DNA分子;
所述核酸分子B为如下(b1)-(b3)中任一:
(b1)核苷酸序列如SEQ ID No.2所示的DNA分子;
(b2)在严格条件下与(b1)限定的DNA分子杂交且编码权利要求1中所述蛋白AeUGT_02的DNA分子;
(b3)与(b1)或(b2)所限定的DNA序列具有99%以上、95%以上、90%以上、85%以上或者80%以上同源性且编码权利要求1中所述蛋白AeUGT_02的DNA分子;
所述核酸分子C为如下(c1)-(c3)中任一:
(c1)核苷酸序列如SEQ ID No.3所示的DNA分子;
(c2)在严格条件下与(c1)限定的DNA分子杂交且编码权利要求1中所述蛋白AeUGT_03的DNA分子;
(c3)与(c1)或(c2)所限定的DNA序列具有99%以上、95%以上、90%以上、85%以上或者80%以上同源性且编码权利要求1中所述蛋白AeUGT_03的DNA分子;
所述核酸分子D为如下(d1)-(d3)中任一:
(d1)核苷酸序列如SEQ ID No.4所示的DNA分子;
(d2)在严格条件下与(d1)限定的DNA分子杂交且编码权利要求1中所述蛋白AeUGT_04的DNA分子;
(d3)与(d1)或(d2)所限定的DNA序列具有99%以上、95%以上、90%以上、85%以上或者80%以上同源性且编码权利要求1中所述蛋白AeUGT_04的DNA分子;
所述核酸分子E为如下(e1)-(e3)中任一:
(e1)核苷酸序列如SEQ ID No.1所示的DNA分子;
(e2)在严格条件下与(e1)限定的DNA分子杂交且编码权利要求1中所述蛋白AeUGT_05的DNA分子;
(e3)与(e1)或(e2)所限定的DNA序列具有99%以上、95%以上、90%以上、85%以上或者80%以上同源性且编码权利要求1中所述蛋白AeUGT_05的DNA分子。
4.如下任一生物材料:
P1、重组载体或成套重组载体;
所述重组载体为重组载体A、重组载体B、重组载体C、重组载体D或重组载体E;
所述成套重组载体由所述重组载体A、所述重组载体B、所述重组载体C、所述重组载体D和所述重组载体E中的全部或任意四项或任意三项或任意两项组成;
所述重组载体A为含有权利要求2或3中所述核酸分子A的重组载体;
所述重组载体B为含有权利要求2或3中所述核酸分子B的重组载体;
所述重组载体C为含有权利要求2或3中所述核酸分子C的重组载体;
所述重组载体D为含有权利要求2或3中所述核酸分子D的重组载体;
所述重组载体E为含有权利要求2或3中所述核酸分子E的重组载体;
P2、表达盒或成套表达盒;
所述表达盒为表达盒A、表达盒B、表达盒C、表达盒D或表达盒E;
所述成套表达盒由所述表达盒A、所述表达盒B、所述表达盒C、所述表达盒D和所述表达盒E中的全部或任意四项或任意三项或任意两项组成;
所述表达盒A为含有权利要求2或3中所述核酸分子A的表达盒;
所述表达盒B为含有权利要求2或3中所述核酸分子B的表达盒;
所述表达盒C为含有权利要求2或3中所述核酸分子C的表达盒;
所述表达盒D为含有权利要求2或3中所述核酸分子D的表达盒;
所述表达盒E为含有权利要求2或3中所述核酸分子E的表达盒;
P3、转基因细胞系或成套转基因细胞系;
所述转基因细胞系为转基因细胞系A、转基因细胞系B、转基因细胞系C、转基因细胞系D或转基因细胞系E;
所述成套转基因细胞系由所述转基因细胞系A、所述转基因细胞系B、所述转基因细胞系C、所述转基因细胞系D和所述转基因细胞系E中的全部或任意四项或任意三项或任意两项组成;
所述转基因细胞系A为含有权利要求2或3中所述核酸分子A的转基因细胞系;
所述转基因细胞系B为含有权利要求2或3中所述核酸分子B的转基因细胞系;
所述转基因细胞系C为含有权利要求2或3中所述核酸分子C的转基因细胞系;
所述转基因细胞系D为含有权利要求2或3中所述核酸分子D的转基因细胞系;
所述转基因细胞系E为含有权利要求2或3中所述核酸分子E的转基因细胞系;
P4、重组菌或成套重组菌;
所述重组菌为重组菌A、重组菌B、重组菌C、重组菌D或重组菌E;
所述成套重组菌由所述重组菌A、所述重组菌B、所述重组菌C、所述重组菌D和所述重组菌E中的全部或任意四项或任意三项或任意两项组成;
所述重组菌A为含有权利要求2或3中所述核酸分子A的重组菌;
所述重组菌B为含有权利要求2或3中所述核酸分子B的重组菌;
所述重组菌C为含有权利要求2或3中所述核酸分子C的重组菌;
所述重组菌D为含有权利要求2或3中所述核酸分子D的重组菌;
所述重组菌E为含有权利要求2或3中所述核酸分子E的重组菌。
5.权利要求1所述的蛋白质或成套蛋白质在作为糖基转移酶中的应用。
6.权利要求1所述的蛋白质或成套蛋白质或权利要求2或3所述的核酸分子或成套核酸分子或权利要求4所述的生物材料在制备具有糖基转移酶活性的产品中的应用。
7.根据权利要求5或6所述的应用,其特征在于:所述应用中,以咖啡酸或迷迭香酸作为糖基化的受体底物。
8.根据权利要求7所述的应用,其特征在于:当所述糖基转移酶为权利要求1中所述蛋白AeUGT_01时,所述受体底物为迷迭香酸或咖啡酸;
当所述糖基转移酶为权利要求1中所述蛋白AeUGT_02时,所述受体底物为咖啡酸或迷迭香酸;
当所述糖基转移酶为权利要求1中所述蛋白AeUGT_03时,所述受体底物为迷迭香酸;
当所述糖基转移酶为权利要求1中所述蛋白AeUGT_04时,所述受体底物为迷迭香酸;
当所述糖基转移酶为权利要求1中所述蛋白AeUGT_05时,所述受体底物为迷迭香酸或咖啡酸。
9.根据权利要求8所述的应用,其特征在于:当所述糖基转移酶为权利要求1中所述蛋白AeUGT_01时,催化迷迭香酸生成单糖基化产物和双糖基化产物,催化咖啡酸生成单糖基化产物;
当所述糖基转移酶为权利要求1中所述蛋白AeUGT_02时,催化咖啡酸生成单糖基化产物,催化迷迭香酸生成单糖基化产物;
当所述糖基转移酶为权利要求1中所述蛋白AeUGT_03时,催化迷迭香酸生成单糖基化产物;
当所述糖基转移酶为权利要求1中所述蛋白AeUGT_04时,催化迷迭香酸生成单糖基化产物;
当所述糖基转移酶为权利要求1中所述蛋白AeUGT_05时,催化迷迭香酸生成单糖基化产物,催化咖啡酸生成单糖基化产物。
10.如下任一方法:
方法1:一种制备迷迭香酸单糖基化产物和双糖基化产物的方法,包括如下步骤:以权利要求1中所述蛋白AeUGT_01为糖基转移酶,以迷迭香酸为糖基化的受体底物,以UDP-葡萄糖作为糖基供体,进行酶促反应;
方法2:一种制备咖啡酸单糖基化产物的方法,包括如下步骤:以权利要求1中所述蛋白AeUGT_01为糖基转移酶,以咖啡酸为糖基化的受体底物,以UDP-葡萄糖作为糖基供体,进行酶促反应;
方法3:一种制备咖啡酸单糖基化产物的方法,包括如下步骤:以权利要求1中所述蛋白AeUGT_02为糖基转移酶,以咖啡酸为糖基化的受体底物,以UDP-葡萄糖作为糖基供体,进行酶促反应;
方法4:一种制备迷迭香酸单糖基化产物的方法,包括如下步骤:以权利要求1中所述蛋白AeUGT_02为糖基转移酶,以迷迭香酸为糖基化的受体底物,以UDP-葡萄糖作为糖基供体,进行酶促反应;
方法5:一种制备迷迭香酸单糖基化产物的方法,包括如下步骤:以权利要求1中所述蛋白AeUGT_03为糖基转移酶,以迷迭香酸为糖基化的受体底物,以UDP-葡萄糖作为糖基供体,进行酶促反应;
方法6:一种制备迷迭香酸单糖基化产物的方法,包括如下步骤:以权利要求1中所述蛋白AeUGT_04为糖基转移酶,以迷迭香酸为糖基化的受体底物,以UDP-葡萄糖作为糖基供体,进行酶促反应;
方法7:一种制备迷迭香酸单糖基化产物的方法,包括如下步骤:以权利要求1中所述蛋白AeUGT_05为糖基转移酶,以迷迭香酸为糖基化的受体底物,以UDP-葡萄糖作为糖基供体,进行酶促反应;
方法8:一种制备咖啡酸单糖基化产物的方法,包括如下步骤:以权利要求1中所述蛋白AeUGT_05为糖基转移酶,以咖啡酸为糖基化的受体底物,以UDP-葡萄糖作为糖基供体,进行酶促反应。
CN202010764505.0A 2020-07-30 2020-07-30 新疆紫草咖啡酸及迷迭香酸糖基转移酶及编码基因与应用 Active CN114058602B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202010764505.0A CN114058602B (zh) 2020-07-30 2020-07-30 新疆紫草咖啡酸及迷迭香酸糖基转移酶及编码基因与应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202010764505.0A CN114058602B (zh) 2020-07-30 2020-07-30 新疆紫草咖啡酸及迷迭香酸糖基转移酶及编码基因与应用

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN114058602A true CN114058602A (zh) 2022-02-18
CN114058602B CN114058602B (zh) 2023-08-22

Family

ID=80231327

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202010764505.0A Active CN114058602B (zh) 2020-07-30 2020-07-30 新疆紫草咖啡酸及迷迭香酸糖基转移酶及编码基因与应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN114058602B (zh)

Citations (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5859334A (en) * 1992-07-30 1999-01-12 International Flower Developments Pty. Ltd. Genetic sequences encoding glycosyltransferase enzymes and uses therefor
US5994623A (en) * 1997-04-09 1999-11-30 E. I. Du Pont De Nemours And Company Corn 4-α-glucanotransferase
WO2005121331A2 (en) * 2004-06-03 2005-12-22 Neose Technologies, Inc. Truncated galnact2 polypeptides and nucleic acids
CN107058253A (zh) * 2017-01-12 2017-08-18 中国中医科学院中药研究所 一种参与紫草素生物合成的AePGT‑6蛋白及其编码基因与应用
CN108728422A (zh) * 2018-03-19 2018-11-02 中国中医科学院中药研究所 参与新穿心莲内酯生物合成的糖基转移酶及其编码基因与应用
CN108795897A (zh) * 2018-05-29 2018-11-13 首都医科大学 一种糖基转移酶ugte1、其编码基因和应用
CN108823178A (zh) * 2018-06-08 2018-11-16 中国中医科学院中药研究所 大黄素糖基转移酶蛋白FtUGT73BE5及其编码基因与应用
CN109068604A (zh) * 2016-03-09 2018-12-21 以色列国家农业部、农村发展农业研究组织·沃尔卡尼中心 辨识与鉴别来自栽培种苹果的尿苷二磷酸葡萄糖:根皮素的4’-o-葡萄糖基转移酶的方法
CN109402080A (zh) * 2018-11-07 2019-03-01 中国中医科学院中药研究所 蛋白质ugt142及其编码基因与应用
CN109957555A (zh) * 2017-12-29 2019-07-02 中国科学院天津工业生物技术研究所 一种糖基转移酶突变体及其在催化天麻素生物合成中的应用
CN111041056A (zh) * 2019-12-13 2020-04-21 中国科学院植物研究所 用莲类黄酮c-糖基转移酶ugt708n2合成类黄酮c-糖苷的方法

Patent Citations (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5859334A (en) * 1992-07-30 1999-01-12 International Flower Developments Pty. Ltd. Genetic sequences encoding glycosyltransferase enzymes and uses therefor
US5994623A (en) * 1997-04-09 1999-11-30 E. I. Du Pont De Nemours And Company Corn 4-α-glucanotransferase
WO2005121331A2 (en) * 2004-06-03 2005-12-22 Neose Technologies, Inc. Truncated galnact2 polypeptides and nucleic acids
CN109068604A (zh) * 2016-03-09 2018-12-21 以色列国家农业部、农村发展农业研究组织·沃尔卡尼中心 辨识与鉴别来自栽培种苹果的尿苷二磷酸葡萄糖:根皮素的4’-o-葡萄糖基转移酶的方法
CN107058253A (zh) * 2017-01-12 2017-08-18 中国中医科学院中药研究所 一种参与紫草素生物合成的AePGT‑6蛋白及其编码基因与应用
CN109957555A (zh) * 2017-12-29 2019-07-02 中国科学院天津工业生物技术研究所 一种糖基转移酶突变体及其在催化天麻素生物合成中的应用
CN108728422A (zh) * 2018-03-19 2018-11-02 中国中医科学院中药研究所 参与新穿心莲内酯生物合成的糖基转移酶及其编码基因与应用
CN108795897A (zh) * 2018-05-29 2018-11-13 首都医科大学 一种糖基转移酶ugte1、其编码基因和应用
CN108823178A (zh) * 2018-06-08 2018-11-16 中国中医科学院中药研究所 大黄素糖基转移酶蛋白FtUGT73BE5及其编码基因与应用
CN109402080A (zh) * 2018-11-07 2019-03-01 中国中医科学院中药研究所 蛋白质ugt142及其编码基因与应用
CN111041056A (zh) * 2019-12-13 2020-04-21 中国科学院植物研究所 用莲类黄酮c-糖基转移酶ugt708n2合成类黄酮c-糖苷的方法

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
TERRETT OM等: "Covalent interactions between lignin and hemicelluloses in plant secondary cell walls", 《CURR OPIN BIOTECHNOL》, vol. 56, pages 97 - 104 *
王升等: "紫草素及其衍生物合成相关基因及信号传导研究进展", 《中草药》, vol. 43, no. 6, pages 1219 - 1225 *
王瑞杉等: "新疆紫草咖啡酸及迷迭香酸糖基转移酶的克隆及功能研究", vol. 46, no. 1 *

Also Published As

Publication number Publication date
CN114058602B (zh) 2023-08-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR101983115B1 (ko) 사프란 화합물의 재조합 생성을 위한 방법 및 물질
CA3137100A1 (en) Materials and methods for protein production
WO2020048523A1 (zh) 合成黄芩素和野黄芩素的微生物、其制备方法及其应用
CN107267474B (zh) 一种二氢硫辛酰胺脱氢酶突变体蛋白及其制备方法和应用
CN115335514A (zh) 罗汉果甙的生物合成
US7033806B2 (en) HY2 family of bilin reductases
CN114058602B (zh) 新疆紫草咖啡酸及迷迭香酸糖基转移酶及编码基因与应用
CN109971803B (zh) 一种l-赤藓酮糖和赤藓糖醇生产方法
CN114806913B (zh) 具有线粒体定位还原tca途径的高产琥珀酸酵母工程菌株及其构建方法和应用
CN114774399B (zh) 一种人工改造脱氨酶辅助的dna中5-羟甲基胞嘧啶修饰单碱基分辨率定位分析方法
KR20240032944A (ko) 람노스가 고도로 특이적인 글리코실트랜스퍼라제 및 이의 응용
WO2021135796A1 (zh) D-木酮糖4-差向异构酶、其突变体及其用途
KR102472270B1 (ko) 메탄 및 자일로스를 동시 대사하는 메탄자화균의 개발 및 이를 이용한 시노린 생산방법
US9441256B2 (en) Lignases and aldo-keto reductases for conversion of lignin-containing materials to fermentable products
CN114686547A (zh) 一种以双醋瑞因为供体的酶促合成乙酰辅酶a的方法
CN111100848B (zh) 碳-碳环合酶及其编码基因与应用
CN117586976A (zh) 新疆紫草3″-羟基-香叶基对苯二酚脱氢酶及编码基因与应用
CN116410949A (zh) 茜草1,4-二羟基-2-萘甲酸异戊烯基转移酶及编码基因与应用
WO2022148377A1 (zh) 异源合成黄酮类化合物的宿主细胞及其应用
CN108676080B (zh) 出芽短梗霉碳响应转录因子Cat8及其重组表达载体和应用
EP1010763A1 (en) Enhanced expression of heterologous proteins in recombinant bacteria through reduced growth temperature and co-expression of rare tRNA&#39;s
JP4655648B2 (ja) ユビキノンの製造方法
CN117106742A (zh) 来源于粉防己的一个甲基转移酶及其在制备异汉防己甲素中的应用
CN116656642A (zh) 延胡索来源的氧甲基转移酶Cy4’OMT及其应用
CN115074302A (zh) 一种产(-)-α-红没药醇的重组基因工程菌及其制备方法和用途

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant