CN113881649A - 糖基转移酶OsUGT91C1突变体及其用途 - Google Patents

糖基转移酶OsUGT91C1突变体及其用途 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种糖基转移酶OsUGT91C1突变体及其用途，其氨基酸序列如SEQ ID No.1或SEQ ID No.2所示。它是在糖基转移酶OsUGT91C1氨基酸的基础上将93位的His突变为Trp或将379位的Phe突变为Ala，其中两个突变体的第1‑14位氨基酸具有冗余性，可以完全去除或改变而不影响正常酶活性。本发明的突变体，去除了OsUGT91C1原始酶存在副反应的劣势，保留和原始酶相同或提高了催化相同正常反应的能力，即在甜菊糖苷底物C13‑羟基或(和)C‑19羧基方向添加2号葡萄糖基的正常反应，可催化生成包括Reb E的一系列甜菊糖苷产物。

Description

糖基转移酶OsUGT91C1突变体及其用途
技术领域
本发明属于酶学领域，具体涉及一种糖基转移酶OsUGT91C1突变体及其用途。
背景技术
原产于南美的甜叶菊在当地作为天然甜味来源已有超过百年的历史。甜菊糖苷是从甜叶菊叶片中提取的高甜度、低热量天然甜味剂，以其健康、安全的特点，近年来逐渐成为一种取代蔗糖的首选天然甜味剂。糖尿病人可以食用甜菊糖苷，而且动物实验表明甜菊糖苷对糖尿病还有治疗的效果。根据Mintel数据，在全球范围内，从2015年到2019年上市的含有甜菊糖苷的产品复合年增长率为15％。有数据显示，2019年全球食品饮料新品中，甜菊糖苷作为甜味剂的使用量已仅次于三氯蔗糖和安赛蜜。
甜菊糖苷具有相似的结构模式，即在通用的甜菊醇(Steviol，CAS 471-80-7)核心骨架 C13-羟基(为了简化，在附图中也用R1代表)和(或)C19-羧基(为了简化，在附图中也用R2代表)存在不同的葡萄糖基修饰(图1中a)。根据C13-羟基和C19-羧基的糖基组成和糖苷键的组合情况，可对甜菊糖苷分子进行命名。其中含量最多并得到商品化的有甜菊苷(Stevioside，CAS 57817-89-7占比57％，用ST表示)和甜菊糖苷A(Rebaudioside A， CAS58543-16-1，含量可达甜菊糖苷的32％，用Reb A表示)。二者都带有一定的后苦味，影响了甜菊糖苷的口感和市场的接受度。最近发现甜菊糖苷D(Rebaudioside D，CAS 63279-13-0，Reb D代表)和M(Rebaudioside M，CAS 1220616-44-3，Reb M代表)甜度是蔗糖的200-300倍，口感非常接近于甜味标准品蔗糖，成为甜菊糖苷品质最好的组分，也是甜菊糖苷生产商研发的重点。
甜菊糖苷D和M在天然甜叶菊叶片中的含量低于1％，不能直接从天然种植的甜叶菊提取。常用的方法是通过酶促反应在生物体内(不一定是甜叶菊)或生物体外利用前体物质进行合成转化，或通过酶促反应对含量最丰富的甜菊苷(ST)和甜菊糖苷A(Reb A)或其他可利用的甜菊糖苷分子在其特定位置添加葡萄糖基，转化生成甜菊糖苷D和M(Reb D 和RebM)。在甜菊糖苷D和M酶促转化过程中，一种水稻来源的糖基转移酶OsUGT91C1 (也可称为EUGT11)，可在甜菊糖苷的C13-羟基和C19-羧基方向添加2号葡萄糖基(2号葡萄糖基是与1号葡萄糖基形成β(1-2)糖苷键的葡萄糖基，1号葡萄糖基特指直接与C13- 羟基或C19-羧基形成β-糖苷键的葡萄糖基)(图1中b，c，d)。糖基转移酶OsUGT91C1是甜菊糖苷D和M酶促转化的多步过程中最为关键的糖基转移酶，决定了能否最终生成甜菊糖苷D和M。
但发明人首次发现糖基转移酶OsUGT91C1在催化甜菊糖苷D、M转化过程中的特异性不好，除了添加2号葡萄糖基外(这是酶促转化生成甜菊糖苷D、M所需的反应，称为正常反应)，还存在明显的副反应，即在C13-羟基方向或C19-羧基方向添加6号葡萄糖基(或4 号葡萄糖基)，二者与1号葡萄糖基形成β(1-6)糖苷键(或β(1-4)糖苷键)(本发明后面提到的副反应均指添加6号葡萄糖基(或4号葡萄糖基)的反应)(图1中b，c，d)。副反应将浪费酶催化资源和底物，形成明显的副产物，既影响了甜菊糖苷D和M的生成效率，还带来杂质，给获得高品质甜菊糖苷D、M纯品带来很大困难。
发明内容
本发明所要解决的技术问题为：如何解决糖基转移酶OsUGT91C1催化甜菊糖苷的C13- 羟基和C19-羧基方向添加2号葡萄糖基过程中存在副反应的问题。
基于发明人独立发现的糖基转移酶OsUGT91C1三维空间结构，理性优化糖基转移酶 OsUGT91C1原有氨基酸序列，发明人将第93位的组氨酸改为色氨酸(His93Trp)，或将第379位的苯丙氨酸改为丙氨酸(Phe379Ala)。通过上述两个氨基酸的改变，可得到两个新酶，在本专利中，命名为新酶1(His93Trp)和新酶2(Phe379Ala)。通过大肠杆菌蛋白表达系统，纯化制备两个新酶，它们都可去除OsUGT91C1原始状态下会催化添加6号葡萄糖基 (或4号葡萄糖基)，形成β(1-6)糖苷键(或β(1-4)糖苷键)副反应的缺陷。其中新酶 1(His93Trp)(第93位的组氨酸被改为色氨酸)不影响OsUGT91C1原始状态下催化正常酶促转化所需要的催化能力，即在甜菊糖苷的C13-羟基或/和C19-羧基方向添加2号葡萄糖基 (形成β(1-2)糖苷键)的催化能力；新酶2(Phe379Ala)(第379位的苯丙氨酸被改为丙氨酸)对添加2号葡萄糖基的正常酶促反应可达2倍以上的增强作用。
进一步地的研究发现，在上述突变的基础上，删除或改变糖基转移酶OsUGT91C1前端 1-14个氨基酸(MDSGYSSSYAAAAG)均不影响突变后的酶性质。说明前端的14个氨基酸具有冗余性，可以完全去除或改变。
本发明的技术方案为：糖基转移酶OsUGT91C1突变体，其氨基酸序列为以下a、b、c、d中的任一种：
a、SEQ ID No.1所示，它是在糖基转移酶OsUGT91C1氨基酸的基础上将93位的His突变为Trp；
b、SEQ ID No.2所示，它是在糖基转移酶OsUGT91C1氨基酸的基础上将379位的Phe突变为Ala；
c、在SEQ ID No.1所示氨基酸序列的基础上任意删除或改变第1-14位氨基酸；
d、在SEQ ID No.2所示氨基酸序列的基础上任意删除或改变第1-14位氨基酸。
编码上述所述糖基转移酶OsUGT91C1突变体的基因。
含有上述所述编码基因的表达载体。
携带上述所述表达载体的重组菌或细胞。
糖基转移酶OsUGT91C1突变体在甜菊糖苷D或M及其他甜菊糖苷分子的酶促合成或转化过程的用途。
进一步地，所述糖基转移酶OsUGT91C1突变体在甜菊糖苷D或M及其他甜菊糖苷分子的酶促合成或转化过程的用途，是指在甜菊糖苷的C13-羟基或/和C19-羧基方向添加2号葡萄糖基。所述2号葡萄糖基是与1号葡萄糖基形成β(1-2)糖苷键的葡萄糖基，1号葡萄糖基特指直接与C13-羟基或C19-羧基形成β-糖苷键的葡萄糖基。
本专利的副反应定义为，在甜菊醇或甜菊糖苷的C13-羟基，C19-羧基两个方向添加6 号葡萄糖基(或4号葡萄糖基)，与1号葡萄糖基形成β(1-6)糖苷键(或β(1-4)糖苷键)的副反应；本专利的正常反应的定义是在甜菊醇或甜菊糖苷的C13-羟基，C19-羧基两个方向添加2号葡萄糖基，与1号葡萄糖基形成β(1-2)糖苷键的反应。
本发明的实施例，利用了液相色谱-质谱联用验证了两个新酶不出现副反应；通过液相色谱-质谱联用、荧光转化法等方法测定了两个新酶催化反应的米氏动力学参数，验证了新酶1不明显影响添加2号葡萄糖基的正常催化能力；新酶2有超过两倍的增强加速作用。新酶可催化酶促转化，得到添加了2号葡萄糖基的正常产物(包括甜菊糖苷E(Reb E)的一系列甜菊糖苷产物)，不含副产物，可用于甜菊糖苷D和M的进一步酶促转化。
除了可在大肠杆菌中表达、纯化、制备天然状态OsUGT91C1或本发明的两个新酶，还可在其他生物系统、非生物系统、细胞、非细胞(Cell-free)等其他表达体系中进行表达和制备；将这些消除了副反应的新酶，通过转基因或其他基因导入手段，引入生物体、非生物体、细胞、非细胞(cell-free)进行甜菊糖苷的酶促转化，以及在酶、酶固定化等体外体系，用于在甜菊糖苷添加2号葡萄糖基的酶促转化，包括制备但不限于甜菊糖苷D和M的酶促转化过程，达到消除副反应的目的。
与现有技术相比，本发明具有以下有益效果：
本发明的糖基转移酶OsUGT91C1突变体去除了OsUGT91C1原始酶存在副反应的劣势，保留和原始酶相同或提高了催化相同正常反应的能力，即在甜菊糖苷底物C13-羟基或(和) C-19羧基方向添加2号葡萄糖基的正常反应，可催化生成包括Reb E(RebaudiosideE，CAS 63279-14-1)的一系列甜菊糖苷产物，用于甜菊糖苷D和M的酶促合成或酶促转化过程。在此基础上，利用糖基转移酶UGT76G1接力，继续在C13-羟基或(和)C-19羧基方向添加3号葡萄糖基，则可获得甜菊糖苷D和M(Rebaudioside D，CAS 63279-13-0和 RebaudiosideM，CAS 1220616-44-3)。
附图说明
图1与本专利相关的部分甜菊糖苷结构，结构的简化表示及OsUGT91C1酶促转化生成甜菊糖苷D和M过程中正常反应和副反应的示意图；
a部分甜菊糖苷的结构，包括甜菊醇、甜菊糖苷D和M的结构及结构的简化形式。甜菊醇用完整的化学结构表示，甜菊糖苷D和M用完整的化学结构和简化图两种方法表示，括号内为二者相比于蔗糖的甜度倍数。简化图中C13-羟基(用R1简化表示)，C19-羧基 (用R2简化表示)。葡萄糖基用六边形表示，每个葡萄糖的1-羟基用黑点标注，每个葡萄糖中间的数字代表是几号葡萄糖基，同时也表示该葡萄糖基与1号葡萄糖基形成的糖苷键的类型，如2代表β(1-2)糖苷键，3代表β(1-3)糖苷键，4代表β(1-4)糖苷键，6代表β(1-6)糖苷键。
b OsUGT91C1在甜菊糖苷底物C13-羟基(用R1简化表示)或(和)C19-羧基(用R2 简化表示)两端催化添加2号葡萄糖基正常反应及添加6号葡萄糖基(或4号葡萄糖基)副反应的示意图。
c OsUGT91C1在甜菊糖苷底物C13-羟基(用R1简化表示)催化添加2号葡萄糖基正常反应及添加6号葡萄糖基(或4号葡萄糖基)副反应的示意图。
d OsUGT91C1在甜菊糖苷底物C19-羧基(用R2简化表示)催化添加2号葡萄糖基正常反应及添加6号葡萄糖基(或4号葡萄糖基)副反应的示意图。
图2新酶1(His93Trp)、天然状态OsUGT91C1、新酶2(Phe379Ala)的SDS-PAGE 分析；
a新酶1(His93Trp)的SDS-PAGE分析。M,Marker；1，菌体裂解液沉淀；2，Ni柱流穿样品；3-7，Ni柱洗脱蛋白样品；8，Q柱上样前样品；9-12，Q柱洗脱蛋白样品；
b天然状态OsUGT91C1和新酶2(Phe379Ala)的SDS-PAGE分析。M,Marker；1，天然状态OsUGT91C1；2，Q柱流穿样品；3-7，Q柱洗脱蛋白样品。两个图右侧箭头表示目的蛋白条带的位置。
图3天然状态OsUGT91C1在底物STB和Reb E添加6号葡萄糖基(或4号葡萄糖基) 副反应的情况；
a,b利用LC-MS检测OsUGT91C1在甜菊糖苷底物STB(a)及Reb E(b)添加6号葡萄糖基的副反应。液相图从上至下的反应条件依次为：加0.75mg/mL酶反应0小时作为对照，0.15mg/mL酶反应2小时和18小时，0.75mg/mL酶反应2小时和18小时，显示副反应产物随时间和酶量的增加而增多；a,b液相图下方分别为OsUGT91C1催化STB和Reb E副反应的示意图。
图4天然状态OsUGT91C1、新酶1(His93Trp)、新酶2(Phe379Ala)在底物STB添加6号葡萄糖基(或4号葡萄糖基)副反应的对比；
天然状态的OsUGT91C1(a)、新酶1(His93Trp)(b)、新酶2(Phe379Ala)(c)与底物STB反应的液相分析。液相图从上至下的反应条件依次为：加0.75mg/mL酶反应0小时作为对照，0.15mg/mL酶反应2小时和18小时，0.75mg/mL酶反应2小时和18小时。显示天然状态的OsUGT91C1副反应产物随时间和酶量的增加而增多，而新酶1(His93Trp)、新酶2(Phe379Ala)无副反应产物的生成。d,天然状态OsUGT91C1催化STB的副反应示意图，e,新酶1(His93Trp)、新酶2(Phe379Ala)无副反应的进行。
图5天然状态OsUGT91C1、新酶1(His93Trp)、新酶2(Phe379Ala)催化在底物 Rubu的C13-羟基(R1)和(或)C19-羧基(R2)端分别添加2号葡萄糖基，形成β(1-2) 糖苷键正常酶促反应的对比；
天然状态的OsUGT91C1(a)、新酶1(His93Trp)(b)、新酶2(Phe379Ala)(c)与 Rubu反应的液相分析。液相图从上至下的反应条件依次为：加0.75mg/mL酶反应0小时作为对照，0.15mg/mL酶反应2小时和18小时，0.75mg/mL酶反应2小时和18小时。显示天然状态的OsUGT91C1在Rubu的C13-羟基(R1)和C19-羧基(R2)端分别添加2号葡萄糖基的产物随时间和酶量的增加而增多，而新酶1(His93Trp)、新酶2(Phe379Ala)具有同样的酶促催化反应和能力。d,天然状态OsUGT91C1催化底物Rubu的C13-羟基(R1) 和C19-羧基(R2)端分别添加2号葡萄糖基，生成Reb E的反应示意图，新酶1 (His93Trp)、新酶2(Phe379Ala)可进行同样的正常目标催化反应，且不产生副产物。
图6天然状态OsUGT91C1、新酶1(His93Trp)、新酶2(Phe379Ala)催化在底物Reb A的C19-羧基(R2)端添加2号葡萄糖基，形成β(1-2)糖苷键，生成Reb D的正常酶促反应的对比；
天然状态的OsUGT91C1(a)、新酶1(His93Trp)(b)、新酶2(Phe379Ala)(c)与 Reb A反应的液相分析。液相图从上至下的反应条件依次为：加0.75mg/mL酶反应0小时作为对照，0.15mg/mL酶反应2小时和18小时，0.75mg/mL酶反应2小时和18小时。显示天然状态的OsUGT91C1在Reb A的C19-羧基(R2)端添加2号葡萄糖基，生成产物Reb D随时间和酶量的增加而增多，而新酶1(His93Trp)、新酶2(Phe379Ala)具有同样的酶促催化反应和能力。d,天然状态OsUGT91C1催化底物Reb A的C19-羧基(R2)端添加2 号葡萄糖基，生成Reb D的反应示意图，新酶1(His93Trp)、新酶2(Phe379Ala)可进行同样的正常目标催化反应，且不产生副产物。
表3天然状态OsUGT91C1、新酶1(His93Trp)、新酶2(Phe379Ala)催化在底物C13-羟基(R1)和C19-羧基(R2)端分别添加2号葡萄糖基(正常酶促反应)的动力学参数
图7利用新酶1和新酶2催化获得的甜菊糖苷底物Reb E，进一步利用糖基转移酶UGT76G1在C13-羟基或(和)C-19羧基方向继续添加3号葡萄糖基，获得甜菊糖苷D和 M；
a,以新酶1(His93Trp)和新酶2(Phe379Ala)催化获得的甜菊糖苷底物Reb E(不产生副产物)的基础上，再利用糖基转移酶UGT76G1转化形成Reb D和Reb M的反应示意图。方框显示两个新酶不发生副反应，只在C13-羟基或(和)C-19羧基方向正常添加2号葡萄糖基，形成甜菊糖苷E(Reb E)；然后糖基转移酶UGT76G1接力，继续催化在C13-羟基或 (和)C-19羧基方向添加3号葡萄糖基，形成甜菊糖苷D和M(Reb D和Reb M)的过程。 b,利用新酶1(His93Trp)和新酶2(Phe379Ala)催化获得的甜菊糖苷底物Reb E(不产生副产物)，进一步利用糖基转移酶UGT76G1催化从Reb E到Reb D和Reb M的转化过程。在液相图从上至下的反应条件依次为：加0.03mg/mL的糖基转移酶UGT76G1反应0小时作为对照，0.03mg/mL糖基转移酶UGT76G1反应2小时和18小时，0.15mg/mL糖基转移酶UGT76G1反应2小时和18小时。
图8新酶2(Phe379Ala)去除第1-14位氨基酸后的截短体的SDS-PAGE分析；
新酶2(Phe379Ala)和新酶2去除第1-14位氨基酸后的截短体的SDS-PAGE的比较分析。M,Marker；1-3，新酶2的Ni柱洗脱样品；4，新酶2的截短体凝胶过滤层析上样前样品；5-9，新酶2的截短体的凝胶过滤层析洗脱样品，根据新酶2及其截短体在SDS-PAGE 上的位置，可明显看出新酶2的截短体比新酶2的分子量小。
图9天然状态OsUGT91C1、新酶2去除第1-14位氨基酸后的截短体催化在底物Rubu的C13-羟基(R1)和(或)C19-羧基(R2)端分别添加2号葡萄糖基，形成β(1-2)糖苷键正常酶促反应的对比；
天然状态的OsUGT91C1(a)、新酶2去除第1-14位氨基酸后的截短体(b)与Rubu反应的液相分析比较。液相图从上至下的反应条件依次为：加0.25mg/mL酶反应0小时作为对照，0.05mg/mL酶反应2小时和18小时，0.25mg/mL酶反应2小时和18小时。显示天然状态的OsUGT91C1在Rubu的C13-羟基(R1)和C19-羧基(R2)端分别添加2号葡萄糖基的产物随时间和酶量的增加而增多，而新酶2截短体具有同样的酶促催化反应和能力。 c,天然状态OsUGT91C1和新酶2截短体可进行同样催化在底物Rubu的C13-羟基(R1)和 C19-羧基(R2)端分别添加2号葡萄糖基的正常目标反应，生成Reb E的反应示意图，进一步验证第1-14位氨基酸的冗余性，可以完全去除或改变。
具体实施方式
下述实施例中的实验方法，如无特殊说明，均为常规方法。下述实施例中所用的试验材料，如无特殊说明，均为从商业渠道购买得到的。
一、天然状态OsUGT91C1蛋白表达载体的构建
1、获取OsUGT91C1的氨基酸序列(NCBI Reference Sequence:XP_015629141.1)，根据蛋白表达系统的要求对OsUGT91C1编码密码子进行优化和合成。发明人根据大肠杆菌的表达体系优化后的编码密码子如下。由于密码子的兼并性，密码子优化的选择可有多种。
为了防止通过替换OsUGT91C1的非重要氨基酸序列，达到规避本专利权利要求的目的，本专利认为只要翻译后的蛋白氨基酸序列和OsUGT91C1的氨基酸序列相同度在50％及以上，则认为属于OsUGT91C1。
不管是在OsUGT91C1的氨基酸序列还是空间结构上，改变同第93和379位氨基酸等效的位点或其他位点(由于氨基酸冗余性的原因，通过去除第1-14位的一个或任意个氨基酸，导致第93和379位氨基酸不一定一直是第93和379位的编号)，达到消除OsUGT91C1 副反应的目的，都属于本专利的权利要求。
OsUGT91C1的氨基酸序列(加粗的氨基酸是本专利进行改动的氨基酸位点，划线部分是人为添加的氨基酸序列，其中LE是为了方便连接进入大肠杆菌表达载体pET21b，HHHHHH(6个组氨酸标签)是为了方便后期的纯化)：
MDSGYSSSYAAAAGMHVVICPWLAFGHLLPCLDLAQRLASRGHRVSFVSTPRNISRLP PVRPALAPLVAFVALPLPRVEGLPDGAESTNDVPHDRPDMVELHRRAFDGLAAPFSEFLGT ACADWVIVDVFHHWAAAAALEHKVPCAMMLLGSAHMIASIADRRLERAETESPAAAGQG RPAAAPTFEVARMKLIRTKGSSGMSLAERFSLTLSRSSLVVGRSCVEFEPETVPLLSTLRGKPI TFLGLMPPLHEGRREDGEDATVRWLDAQPAKSVVYVALGSEVPLGVEKVHELALGLELAG TRFLWALRKPTGVSDADLLPAGFEERTRGRGVVATRWVPQMSILAHAAVGAFLTHCGWNS TIEGLMFGHPLIMLPIFGDQGPNARLIEAKNAGLQVARNDGDGSFDREGVAAAIRAVAVEEE SSKVFQAKAKKLQEIVADMACHERYIDGFIQQLRSYKDLEHHHHHH
OsUGT91C1密码子优化后的核苷酸序列(划线序列为上述人为添加氨基酸序列的编码区)：
atgGATAGCGGTTATAGTAGCAGTTATGCCGCAGCCGCCGGCATGCATGTTGTGATTT GCCCGTGGCTGGCCTTTGGTCATCTGCTGCCGTGCTTAGACCTGGCCCAGCGTCTGGCC AGCCGTGGTCACCGTGTTAGCTTTGTGAGCACCCCGCGTAATATCAGCCGTCTGCCGCC GGTTCGTCCGGCATTAGCCCCGCTGGTGGCATTTGTGGCCTTACCGCTGCCGCGTGTTGA GGGTCTGCCTGATGGCGCCGAAAGTACCAACGACGTGCCGCATGACCGCCCGGATATGG TGGAGCTGCATCGTCGCGCCTTTGATGGTCTGGCAGCCCCGTTTAGCGAGTTTCTGGGC ACAGCCTGCGCCGATTGGGTGATCGTTGACGTGTTTCATCACTGGGCAGCCGCAGCCGC CCTGGAACATAAAGTTCCGTGCGCAATGATGCTGCTGGGTAGCGCCCACATGATTGCCA GCATTGCCGATCGTCGCCTGGAACGCGCAGAGACCGAAAGCCCGGCAGCAGCAGGTCA AGGTCGTCCTGCCGCAGCCCCGACCTTTGAAGTGGCCCGCATGAAACTGATCCGTACCA AAGGTAGTAGCGGCATGAGCCTGGCCGAACGCTTTAGCCTGACCCTGAGCCGCAGTAGC CTGGTGGTTGGTCGCAGTTGTGTGGAATTCGAGCCGGAAACAGTGCCGCTGCTGAGCA CCCTGCGCGGCAAACCGATCACCTTTCTGGGCCTGATGCCGCCGTTACATGAAGGCCGT CGTGAAGATGGTGAAGATGCCACAGTGCGTTGGCTGGATGCACAGCCGGCCAAAAGCG TTGTGTACGTTGCCCTGGGTAGCGAAGTTCCTCTGGGTGTGGAAAAGGTGCACGAACTG GCACTGGGTCTGGAACTGGCCGGTACCCGCTTCCTGTGGGCCTTACGTAAACCTACCGG TGTTAGCGATGCCGATCTGCTGCCGGCAGGTTTTGAGGAACGTACCCGTGGTCGCGGTG TTGTGGCAACACGCTGGGTTCCGCAGATGAGCATTCTGGCCCATGCCGCCGTGGGTGCC TTTCTGACCCATTGTGGCTGGAATAGCACCATCGAAGGCCTGATGTTCGGCCATCCTCTG ATCATGCTGCCTATCTTCGGTGATCAGGGTCCGAACGCACGCCTGATTGAAGCAAAGAA TGCCGGTCTGCAGGTGGCACGTAACGATGGCGACGGTAGCTTCGATCGTGAAGGCGTTG CCGCCGCAATTCGCGCCGTTGCAGTTGAAGAAGAGAGCAGCAAGGTGTTCCAGGCCAA AGCCAAAAAACTGCAGGAGATCGTGGCCGATATGGCATGCCATGAGCGCTACATCGATG GCTTCATCCAGCAGCTGCGCAGCTATAAAGATctcgagcaccaccaccaccaccac
2、对合成得到的OsUGT91C1编码区用表1所列的引物进行扩增，扩增片段的5’和3’端将分别带上Nde I和Xho I的限制酶位点。
表1 pET21b-OsUGT91C1的引物序列
Figure BDA0003355544170000081
Figure 1
3、用Nde I和Xho I对pET21b表达载体和步骤2的OsUGT91C1编码区扩增片段进行双酶切，将OsUGT91C1编码区用T4连接酶连接进pET21b载体的Nde I和Xho I酶切位点之间，组成在大肠杆菌可表达糖基转移酶OsUGT91C1的表达载体pET21b-OsUGT91C1。
4、将连接产物全部转入100μL E.coli DH5α感受态细胞中，挑取平板上的阳性单克隆菌落接种于10mL的LB培养基中，200rpm 37℃培养12-16小时后提取质粒，测序验证表达质粒的正确性，完成天然状态OsUGT91C1糖基转移酶表达载体的构建。
二、为了消除添加6号葡萄糖基(或4号葡萄糖基)的副反应，改变两个氨基酸位点，构建新酶1(His93Trp)和新酶2(Phe379Ala)的表达载体
1、以天然状态PET21b-OsUGT91C1为模板，设计两个新酶His93Trp和Phe379Ala所使用的定点突变引物如表2。
表2突变体引物序列如下：(下划线部分表示突变位点)
Figure BDA0003355544170000092
2、用ddH2O溶解表2的引物，稀释引物浓度为10μM。用两对突变引物分别以PET21b-OsUGT91C1为模板进行PCR扩增，体系同为：dNTP 4μL，5×PS buffer 10μL，上下游引物各2μL，模板1μL(约10ng)，PCR扩增酶Primer star 0.5μL，剩余用ddH2O补齐至50μL。混匀后用PCR扩增，扩增程序：98℃预变性2min，98℃变性30s，69℃ (新酶1(His93Trp))退火30s或68℃(新酶2(Phe379Ala))退火30s，72℃延伸8 min，扩增20个循环，72℃再延伸10min，最后4℃保存。
3、从上述扩增产物各取出10μL进行琼脂糖胶验证PCR的扩增效果，剩余的40μL体系里各加1μL DpnI酶，37℃孵育1-2小时后取10μL分别转入100μL E.coli DH5α感受态细胞中，冰浴30min，42℃热激2min，再冰浴3min后加入新鲜LB 300μL，200rpm 37℃摇床孵育1小时后，分别取150μL均匀涂布于Amp抗性的固体LB平板上，37℃静置培养过夜。
4、挑取两个平板上的单克隆菌落接种于10mL的LB培养基中，200rpm 37℃培养12-16小时后提取质粒，DNA测序验证两个突变位点His93Trp和Phe379Ala的正确性，其氨基酸序列分别如SEQ ID No.1和SEQ ID No.2所示。
三、天然状态OsUGT91C1和新酶1(His93Trp)、新酶2(Phe379Ala)的诱导表达和纯化
1、将对应的表达质粒转化至E.coli BL21(DE3)表达菌株，第二天挑取单克隆接种于10 mL新鲜的LB培养基中，200rpm 37℃培养过夜后加入终浓度为8％的甘油保种，该菌种可在-80℃长期保存。
2、挑取上一步保存的E.coli BL21(DE3)甘油菌接种于含Amp 50μg/mL的100mL新鲜 LB培养基中，200rpm 37℃过夜培养。第二天以1％的接种比例接种于含Amp 50μg/mL的1L新鲜LB培养基，180rpm 37℃培养至OD600＝1.0后，菌液降温至16℃，添加终浓度为0.5mM的IPTG，160rpm 16℃–20℃诱导表达18小时。
3、完成诱导表达后，4000rpm离心15min弃上清，收集菌体。菌体用重悬缓冲液(20mM Tris-HCl buffer pH 7.8,0.5M NaCl,30mM imidazole)重悬后，用高压破碎仪在1000bar 压力下反复破碎3次。13500rpm 4℃离心60min，离心后的上清上样到NTA-Ni柱，用上述重悬缓冲液洗去非特异性结合的杂蛋白，带组氨酸标签的目的蛋白可被洗脱缓冲液(20 mM Tris-HCl buffer pH 7.8,0.5M NaCl,250mM imidazole)洗脱下来。洗脱下来的蛋白进一步置换到20mM HEPES buffer pH 7.2,50mM NaCl里，经液氮速冻后，可长期保存于-80℃。上述步骤可纯化得到天然状态的OsUGT91C1、新酶1、新酶2，并通过SDS-PAGE检测纯度(图2)。
四、天然状态OsUGT91C1、新酶1(His93Trp)和新酶2(Phe379Ala)的酶活性测定
1、酶促产物分析，表明两个新酶已经消除了添加6号葡萄糖基(或4号葡萄糖基)的副反应
(1)以OsUGT91C1的底物STB(Steviolbioside，CAS 41093-60-1)，Reb E(Rebaudioside E,CAS 63279-14-1)为实施例，天然状态的OsUGT91C1可分别在底物STB、Reb E上催化添加6号葡萄糖基(或4号葡萄糖基)的副反应(图3)，而两个新酶1(His93Trp)，新酶2(Phe379Ala)不会发生上述副反应，不产生副产物。
(2)副反应的实施例反应条件如下：在20℃-40℃，200μL反应体系包括：1mM UDP-Glucose,20mM Tris-HCl缓冲液pH 7.2，浓度分别为0.15mg/mL(1×)和0.75mg/mL(5×) 的酶样品(天然状态或者新酶1(His93Trp)，新酶2(Phe379Ala))，0.3mM STB或Reb E。通过加入酶样品启动反应，分别于0，2，18小时取样60μL，与等体积的正丁醇混合涡旋振荡，终止反应并萃取对应的酶促反应产物，室温17000rpm离心10min，室温静置1min，取上层正丁醇的萃取相50μL真空干燥后，用等体积的25％乙腈重悬后，利用HPLC检测酶促产物。本实施例所列的反应条件不唯一，只要能使OsUGT91C1发生酶促反应，都可得到同样的结果。检测手段也不唯一，只要能区分每个酶促产物，可得到相同的检测结果。天然状态的OsUGT91C1催化副反应的底物不唯一，包括但不限于对以下甜菊糖苷底物发生副反应，STB(Steviolbioside，CAS 41093-60-1)，Reb E(Rebaudioside E，CAS 63279-14-1) 等，只要在C13-羟基或C-19羧基方向存在1号和2号葡萄糖基，但不存在3号葡萄糖基 (3号葡萄糖基指与1号葡萄糖基形成β(1-3)糖苷键的葡萄糖基)，就可发生在对应的 C13-羟基或C-19羧基方向添加6号葡萄糖基(或4号葡萄糖基)的副反应(图3)。
(3)比较天然状态OsUGT91C1和新酶1(His93Trp)，新酶2(Phe379Ala)针对STB 的副反应产物，可见新酶1和新酶2无副产物生成，已完全消除添加6号葡萄糖(或4号葡萄糖基)的副反应(图4)。天然状态的OsUGT91C1催化副反应的底物不唯一，包括但不限于对以下甜菊糖苷底物发生副反应，STB(Steviolbioside，CAS 41093-60-1)，Reb E (RebaudiosideE，CAS 63279-14-1)等，只要在C13-羟基或C-19羧基方向存在1号和2号葡萄糖基，但不存在3号葡萄糖基(3号葡萄糖基指与1号葡萄糖基形成β(1-3)糖苷键的葡萄糖基)，就可发生在对应的C13-羟基或C-19羧基方向添加6号葡萄糖基(或4号葡萄糖基)的副反应，而新酶1和新酶2不发生相应的副反应。
2、两个新酶在消除副反应的前提下，不影响在甜菊糖苷底物的C13-羟基和C-19羧基两个方向添加第2号葡萄糖基的正常反应
(1)以OsUGT91C1的底物Rubu(Rubusoside,CAS 64849-39-4)为实施例，天然状态的OsUGT91C1可在底物Rubu的C13-羟基、C19-羧基两个方向添加2号葡萄糖基(与1号葡萄糖基形成β(1-2)糖苷键)(正常反应)(图5中a)，而新酶1(His93Trp)、新酶2 (Phe379Ala)同样可在底物Rubu的C13-羟基、C19-羧基两个方向添加2号葡萄糖基(图5 中b,c)。
(2)实施例的反应体系如下：在20℃-40℃，200μL反应体系包括：1mM UDP-Glucose,20mM Tris-HCl缓冲液pH 7.2，浓度分别为0.15mg/mL(1×)和0.75mg/mL(5×)的酶样品(天然状态或者新酶1(His93Trp)、新酶2(Phe379Ala))，0.3mM底物Rubu。通过加入酶样品启动反应，分别于0，2，18小时取样60μL，与等体积的正丁醇混合涡旋振荡，终止反应并萃取对应的酶促反应产物，室温17000rpm离心10min，室温静置1min，取上层正丁醇的萃取相50μL真空干燥后，用等体积的25％乙腈重悬后，利用HPLC检测酶促产物。本实施例所列的反应条件不唯一，只要能使OsUGT91C1发生酶促反应，都可得到同样的结果。检测手段也不唯一，只要能区分每个酶促产物，可得到相同的检测结果。
(3)天然状态的OsUGT91C1和新酶1(His93Trp)、新酶2(Phe379Ala)催化在C13- 羟基或C-19羧基方向添加2号葡萄糖基的正常反应的底物不唯一，包括但不限于，Rubu(Rubusoside，CAS 64849-39-4)、S13G(Steviol-13-O-monoglucoside，CAS 60129-60-4)及Reb A(Rebaudioside A,CAS 58543-16-1)等甜菊糖苷底物，只要在C13-羟基或C-19羧基方向存在1号葡萄糖基，但不存在3号葡萄糖基，就可发生在C13-羟基或C-19羧基方向添加 2号葡萄糖基的正常反应。
3、两个新酶在消除副反应的前提下，不影响在甜菊糖苷底物的C-19羧基添加第2号葡萄糖基的正常反应
(1)以OsUGT91C1的底物Reb A(Rebaudioside A,CAS 58543-16-1)为实施例，天然状态的OsUGT91C1可在底物Reb A的C19-羧基方向添加2号葡萄糖基(与1号葡萄糖基形成β(1-2)糖苷键)(正常反应)(图6中a)，而新酶1(His93Trp)、新酶2(Phe379Ala)同样可在底物Reb A的C19-羧基方向添加2号葡萄糖基(图6中b,c)。
(2)实施例的反应体系如下：在20℃-40℃，200μL反应体系包括：1mM UDP-Glucose,20mM Tris-HCl缓冲液pH 7.2，浓度分别为0.15mg/mL(1×)和0.75mg/mL(5×)的酶样品(天然状态或者新酶1(His93Trp)、新酶2(Phe379Ala))，0.3mM底物Reb A。通过加入酶样品启动反应，分别于0，2，18小时取样60μL，与等体积的正丁醇混合涡旋振荡，终止反应并萃取对应的酶促反应产物，室温17000rpm离心10min，室温静置1min，取上层正丁醇的萃取相50μL真空干燥后，用等体积的25％乙腈重悬后，利用HPLC检测酶促产物。本实施例所列的反应条件不唯一，只要能使OsUGT91C1发生酶促反应，都可得到同样的结果。检测手段也不唯一，只要能区分每个酶促产物，可得到相同的检测结果。
(3)天然状态的OsUGT91C1和新酶1(His93Trp)、新酶2(Phe379Ala)催化在C13- 羟基或C-19羧基方向添加2号葡萄糖基的正常反应的底物不唯一，包括但不限于，Rubu(Rubusoside，CAS 64849-39-4)、S13G(Steviol-13-O-monoglucoside，CAS 60129-60-4)及Reb A(Rebaudioside A,CAS 58543-16-1)等甜菊糖苷底物，只要在C13-羟基或C-19羧基方向存在1号葡萄糖基，但不存在3号葡萄糖基，就可发生在C13-羟基或C-19羧基方向添加 2号葡萄糖基的正常反应。
4、两个新酶在消除副反应的前提下，通过荧光转化的方法，测定新酶1和新酶2催化在甜菊糖苷底物添加2号葡萄糖基(与1号葡萄糖基形成β(1-2)糖苷键)正常反应的速度
新酶1(His93Trp)和天然状态OsUGT91C1的活性相当，新酶2(Phe379Ala)是天然状态OsUGT91C1活性的2倍以上(表3)。
表3天然状态OsUGT91C1、新酶1(His93Trp)、新酶2(Phe379Ala)催化在底物 C13-羟基(R1)和C19-羧基(R2)端分别添加2号葡萄糖基(正常酶促反应)的动力学参数
Figure BDA0003355544170000131
(1)该测定直接利用商品化的糖基转移酶活性试剂盒完成，实施例使用Promega公司的UDP-GloTMGlycosyltransferase Assay试剂盒，其他可用于糖基转移酶反应速度检测方法可得到同样结果。Promega公司的UDP-GloTMGlycosyltransferase Assay试剂盒用于检测以 UDP-Glucose为糖基供体的葡萄糖基转移酶反应速度，OsUGT91C1原始酶及本发明涉及的两个突变新酶均适用。
在葡萄糖基转移酶的作用下，糖基供体UDP-Glucose将葡萄糖转移给底物后生成UDP。该检测方法将生成UDP等物质的量(1:1)转化为ATP，ATP可使荧光素酶发出定量的荧光，因此通过测定荧光量可检测酶促糖基转移反应生成UDP的量。当生成UDP在0-25μM浓度范围内，产生的荧光强度和UDP的摩尔浓度成线性关系。根据UDP浓度和荧光强度对应关系的标准曲线，计算UDP的生成量，可转化为糖基转移酶的催化反应速度。
(2)配制UDP不同浓度的一系列溶液，根据上述转化的反应，测定对应的荧光强度。天然状态OsUGT91C1及本发明涉及的两个新酶，以不同底物检测各种催化反应的速度及酶动力学常数等信息，用于评价本发明的新酶1(His93Trp)和新酶2(Phe379Ala)在促进添加2号葡萄糖基正常反应上的效果。利用Rubu(Rubusoside，CAS 64849-39-4)、S13G (Steviol-13-O-monoglucoside，CAS 60129-60-4)及Reb A(Rebaudioside A,CAS 58543-16-1) 为底物分别检测新酶1和新酶2在C13-羟基，C19-羧基添加2号葡萄糖基的催化能力，并和天然状态OsUGT91C1的催化能力进行比较。天然状态的OsUGT91C1及新酶1，新酶2 催化在C13-羟基或C-19羧基方向添加2号葡萄糖基的正常反应的底物不唯一，包括但不限于，Rubu(Rubusoside，CAS 64849-39-4)、S13G(Steviol-13-O-monoglucoside，CAS 60129-60-4)及Reb A(Rebaudioside A,CAS 58543-16-1)等甜菊糖苷底物，只要在C13-羟基或C-19羧基方向存在1号葡萄糖基，但不存在3号葡萄糖基，就可发生在C13-羟基或C- 19羧基方向添加2号葡萄糖基的正常反应。
(3)天然状态OsUGT91C1与新酶1(His93Trp)和新酶2(Phe379Ala)针对不同底物的酶动力学常数表3所示，可见新酶1(His93Trp)和新酶2(Phe379Ala)在消除添加6号葡萄糖基(或4号葡萄糖基)副反应的前提下，新酶1(His93Trp)不明显影响添加2号葡萄糖基的正常反应，新酶2(Phe379Ala)对添加2号葡萄糖基的正常反应有两倍以上的增强效应。
5、新酶1和新酶2无副反应的发生，可催化完成在甜菊糖苷底物C13-羟基或(和)C-19羧基方向添加2号葡萄糖基的正常反应，生成包括Reb E(Rebaudioside E，CAS 63279-14-1)的一系列甜菊糖苷产物。在此条件下，利用糖基转移酶UGT76G1在C13-羟基或(和) C-19羧基方向继续添加3号葡萄糖基，则可获得甜菊糖苷D和M(Rebaudioside D，CAS 63279-13-0和Rebaudioside M，CAS 1220616-44-3)(图7)。
五、新酶1(His93Trp)、新酶2(Phe379Ala)的氨基酸序列具有冗余性，可以去除或改变第1-14位的任一氨基酸。
以新酶2(Phe379Ala)为实施例，对新酶2去除第1-14位的全部氨基酸(MDSGYSSSYAAAAG)得到新酶2截短体，该截短体仍能正常表达、纯化，并显示出在甜菊糖苷底物C13-羟基或C-19羧基方向添加2号葡萄糖基的正常反应的活性。
1、为了验证第1-14位氨基酸(MDSGYSSSYAAAAG)的冗余性，在新酶2 (Phe379Ala)的表达载体上构建去除第1-14位的全部氨基酸(MDSGYSSSYAAAAG)(新酶2截短体)的表达载体
(1)以新酶2(Phe379Ala)的表达质粒为模板，设计去除第1-14位的全部氨基酸的截短体的引物如表4。
表4突变体引物序列如下：
Figure BDA0003355544170000141
Figure BDA0003355544170000151
(2)用ddH2O溶解表4的引物，稀释引物浓度为10μM。用去除1-14-F和去除1-14-R的一对引物分别以新酶2(Phe379Ala)的表达质粒为模板进行PCR扩增，体系同为：dNTP 4μL，5×PS buffer 10μL，上下游引物各2μL，模板1μL(约10ng)，PCR扩增酶Primer star 0.5μL，剩余用ddH2O补齐至50μL。混匀后用PCR扩增，扩增程序：98℃预变性2 min，98℃变性30s，69℃退火30s，72℃延伸8min，扩增20个循环，72℃再延伸 10min，最后4℃保存。
(3)从上述扩增产物各取出10μL进行琼脂糖胶验证PCR的扩增效果，剩余的40μL体系里各加1μL DpnI酶，37℃孵育1-2小时后取10μL分别转入100μL E.coli DH5α感受态细胞中，冰浴30min，42℃热激2min，再冰浴3min后加入新鲜LB 300μL，200rpm 37℃摇床孵育1小时后，分别取150μL均匀涂布于Amp抗性的固体LB平板上，37℃静置培养过夜。
(4)挑取两个平板上的单克隆菌落接种于10mL的LB培养基中，200rpm 37℃培养12-16小时后提取质粒，DNA测序验证新酶2截短体的表达质粒，成功去除了第1-14位的全部氨基酸，除了第1-14位氨基酸被去除，其余位点氨基酸序列同SEQ ID No.2维持一致。
2、新酶2(Phe379Ala)去除第1-14位的全部氨基酸后截短体的诱导表达和纯化
(1)将对应的表达质粒转化至E.coli BL21(DE3)表达菌株，第二天挑取单克隆接种于 10mL新鲜的LB培养基中，200rpm 37℃培养过夜后加入终浓度为8％的甘油保种，该菌种可在-80℃长期保存。
(2)挑取上一步保存的E.coli BL21(DE3)甘油菌接种于含Amp 50μg/mL的100mL新鲜LB培养基中，200rpm 37℃过夜培养。第二天以1％的接种比例接种于含Amp 50μg/mL 的1L新鲜LB培养基，180rpm 37℃培养至OD600＝1.0后，菌液降温至16℃，添加终浓度为0.5mM的IPTG，160rpm 16℃–20℃诱导表达18小时。
(3)完成诱导表达后，4000rpm离心15min弃上清，收集菌体。菌体用重悬缓冲液(20mM Tris-HCl buffer pH 7.8,0.5M NaCl,30mM imidazole)重悬后，用高压破碎仪在1000bar压力下反复破碎3次。13500rpm 4℃离心60min，离心后的上清上样到NTA-Ni 柱，用上述重悬缓冲液洗去非特异性结合的杂蛋白，带组氨酸标签的目的蛋白可被洗脱缓冲液(20mM Tris-HCl buffer pH 7.8,0.5M NaCl,250mM imidazole)洗脱下来。洗脱下来的蛋白进一步置换到20mM HEPES buffer pH 7.2,50mM NaCl里，经液氮速冻后，可长期保存于-80℃。上述步骤可纯化得到新酶2的截短体，并通过SDS-PAGE检测纯度(图8)。由图8 可见，根据新酶2及其截短体在SDS-PAGE上的位置，新酶2的截短体比新酶2的分子量小；同时当新酶2去除第1-14位氨基酸的截短体可以进行正常的表达和纯化。由于新酶1 和新酶2具有同样的第1-14位氨基酸，对新酶2完全去除第1-14位氨基酸的实施例，显示第1-14位氨基酸具有冗余性。同理，新酶1的第1-14位氨基酸也具有冗余性。
3、新酶2的截短体不影响在甜菊糖苷底物的C13-羟基和C-19羧基两个方向添加第2 号葡萄糖基的正常反应，进一步显示第1-14位氨基酸在新酶1和新酶2中的冗余性。
(1)以甜菊糖苷底物Rubu(Rubusoside,CAS 64849-39-4)为实施例，天然状态的OsUGT91C1可在底物Rubu的C13-羟基、C19-羧基两个方向添加2号葡萄糖基(与1号葡萄糖基形成β(1-2)糖苷键)(正常反应)(图9中a)，新酶2的截短体同样可在底物Rubu的 C13-羟基、C19-羧基两个方向添加2号葡萄糖基(图9中b)。
(2)实施例的反应体系如下：在20℃-40℃，200μL反应体系包括：1mM UDP-Glucose,20mM Tris-HCl缓冲液pH 7.2，浓度分别为0.05mg/mL(1×)和0.25mg/mL(5×)的酶样品(天然状态或者新酶2截短体)，0.3mM底物Rubu。通过加入酶样品启动反应，分别于0，2，18小时取样60μL，与等体积的正丁醇混合涡旋振荡，终止反应并萃取对应的酶促反应产物，室温17000rpm离心10min，室温静置1min，取上层正丁醇的萃取相50μL 真空干燥后，用等体积的25％乙腈重悬后，利用HPLC检测酶促产物。本实施例所列的反应条件不唯一，只要能使OsUGT91C1发生酶促反应，都可得到同样的结果。检测手段也不唯一，只要能区分每个酶促产物，可得到相同的检测结果。
(3)天然状态的OsUGT91C1和新酶2截短体催化在C13-羟基或C-19羧基方向添加2号葡萄糖基的正常反应的底物不唯一，包括但不限于，Rubu(Rubusoside，CAS 64849-39-4)、S13G(Steviol-13-O-monoglucoside，CAS 60129-60-4)及Reb A(Rebaudioside A,CAS58543-16-1)等甜菊糖苷底物，只要在C13-羟基或C-19羧基方向存在1号葡萄糖基，但不存在3号葡萄糖基，就可发生在C13-羟基或C-19羧基方向添加2号葡萄糖基的正常反应。
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Met Asp Ser Gly Tyr Ser Ser Ser Tyr Ala Ala Ala Ala Gly Met His
1 5 10 15
Val Val Ile Cys Pro Trp Leu Ala Phe Gly His Leu Leu Pro Cys Leu
20 25 30
Asp Leu Ala Gln Arg Leu Ala Ser Arg Gly His Arg Val Ser Phe Val
35 40 45
Ser Thr Pro Arg Asn Ile Ser Arg Leu Pro Pro Val Arg Pro Ala Leu
50 55 60
Ala Pro Leu Val Ala Phe Val Ala Leu Pro Leu Pro Arg Val Glu Gly
65 70 75 80
Leu Pro Asp Gly Ala Glu Ser Thr Asn Asp Val Pro Trp Asp Arg Pro
85 90 95
Asp Met Val Glu Leu His Arg Arg Ala Phe Asp Gly Leu Ala Ala Pro
100 105 110
Phe Ser Glu Phe Leu Gly Thr Ala Cys Ala Asp Trp Val Ile Val Asp
115 120 125
Val Phe His His Trp Ala Ala Ala Ala Ala Leu Glu His Lys Val Pro
130 135 140
Cys Ala Met Met Leu Leu Gly Ser Ala His Met Ile Ala Ser Ile Ala
145 150 155 160
Asp Arg Arg Leu Glu Arg Ala Glu Thr Glu Ser Pro Ala Ala Ala Gly
165 170 175
Gln Gly Arg Pro Ala Ala Ala Pro Thr Phe Glu Val Ala Arg Met Lys
180 185 190
Leu Ile Arg Thr Lys Gly Ser Ser Gly Met Ser Leu Ala Glu Arg Phe
195 200 205
Ser Leu Thr Leu Ser Arg Ser Ser Leu Val Val Gly Arg Ser Cys Val
210 215 220
Glu Phe Glu Pro Glu Thr Val Pro Leu Leu Ser Thr Leu Arg Gly Lys
225 230 235 240
Pro Ile Thr Phe Leu Gly Leu Met Pro Pro Leu His Glu Gly Arg Arg
245 250 255
Glu Asp Gly Glu Asp Ala Thr Val Arg Trp Leu Asp Ala Gln Pro Ala
260 265 270
Lys Ser Val Val Tyr Val Ala Leu Gly Ser Glu Val Pro Leu Gly Val
275 280 285
Glu Lys Val His Glu Leu Ala Leu Gly Leu Glu Leu Ala Gly Thr Arg
290 295 300
Phe Leu Trp Ala Leu Arg Lys Pro Thr Gly Val Ser Asp Ala Asp Leu
305 310 315 320
Leu Pro Ala Gly Phe Glu Glu Arg Thr Arg Gly Arg Gly Val Val Ala
325 330 335
Thr Arg Trp Val Pro Gln Met Ser Ile Leu Ala His Ala Ala Val Gly
340 345 350
Ala Phe Leu Thr His Cys Gly Trp Asn Ser Thr Ile Glu Gly Leu Met
355 360 365
Phe Gly His Pro Leu Ile Met Leu Pro Ile Phe Gly Asp Gln Gly Pro
370 375 380
Asn Ala Arg Leu Ile Glu Ala Lys Asn Ala Gly Leu Gln Val Ala Arg
385 390 395 400
Asn Asp Gly Asp Gly Ser Phe Asp Arg Glu Gly Val Ala Ala Ala Ile
405 410 415
Arg Ala Val Ala Val Glu Glu Glu Ser Ser Lys Val Phe Gln Ala Lys
420 425 430
Ala Lys Lys Leu Gln Glu Ile Val Ala Asp Met Ala Cys His Glu Arg
435 440 445
Tyr Ile Asp Gly Phe Ile Gln Gln Leu Arg Ser Tyr Lys Asp
450 455 460
<210> 2
<211> 462
<212> PRT
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
Met Asp Ser Gly Tyr Ser Ser Ser Tyr Ala Ala Ala Ala Gly Met His
1 5 10 15
Val Val Ile Cys Pro Trp Leu Ala Phe Gly His Leu Leu Pro Cys Leu
20 25 30
Asp Leu Ala Gln Arg Leu Ala Ser Arg Gly His Arg Val Ser Phe Val
35 40 45
Ser Thr Pro Arg Asn Ile Ser Arg Leu Pro Pro Val Arg Pro Ala Leu
50 55 60
Ala Pro Leu Val Ala Phe Val Ala Leu Pro Leu Pro Arg Val Glu Gly
65 70 75 80
Leu Pro Asp Gly Ala Glu Ser Thr Asn Asp Val Pro His Asp Arg Pro
85 90 95
Asp Met Val Glu Leu His Arg Arg Ala Phe Asp Gly Leu Ala Ala Pro
100 105 110
Phe Ser Glu Phe Leu Gly Thr Ala Cys Ala Asp Trp Val Ile Val Asp
115 120 125
Val Phe His His Trp Ala Ala Ala Ala Ala Leu Glu His Lys Val Pro
130 135 140
Cys Ala Met Met Leu Leu Gly Ser Ala His Met Ile Ala Ser Ile Ala
145 150 155 160
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165 170 175
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180 185 190
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195 200 205
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325 330 335
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340 345 350
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355 360 365
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370 375 380
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405 410 415
Arg Ala Val Ala Val Glu Glu Glu Ser Ser Lys Val Phe Gln Ala Lys
420 425 430
Ala Lys Lys Leu Gln Glu Ile Val Ala Asp Met Ala Cys His Glu Arg
435 440 445
Tyr Ile Asp Gly Phe Ile Gln Gln Leu Arg Ser Tyr Lys Asp
450 455 460

Claims (6)

1.糖基转移酶OsUGT91C1突变体，其氨基酸序列为以下a、b、c、d中的任一种：
a、SEQ ID No.1所示；
b、SEQ ID No.2所示；
c、在SEQ ID No.1所示氨基酸序列的基础上任意删除或改变第1-14位氨基酸；
d、在SEQ ID No.2所示氨基酸序列的基础上任意删除或改变第1-14位氨基酸。
2.编码权利要求1所述糖基转移酶OsUGT91C1突变体的基因。
3.含有权利要求2所述编码基因的表达载体。
4.携带权利要求3所述表达载体的重组菌或细胞。
5.权利要求1所述的糖基转移酶OsUGT91C1突变体在甜菊糖苷D或M及其他甜菊糖苷分子的酶促合成或转化过程的用途。
6.根据权利要求5所述的用途，其特征在于，所述甜菊糖苷D或M及其他甜菊糖苷分子的酶促合成或转化过程是指在甜菊糖苷的C13-羟基或/和C19-羧基方向添加2号葡萄糖基，所述2号葡萄糖基是与1号葡萄糖基形成β(1-2)糖苷键的葡萄糖基，1号葡萄糖基特指直接与C13-羟基或C19-羧基形成β-糖苷键的葡萄糖基。
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* Cited by examiner, † Cited by third party
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CN112080480A (zh) * 2019-06-14 2020-12-15 中国科学院分子植物科学卓越创新中心 糖基转移酶突变体及其应用

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