CN113736697A - 一株预防或治疗结肠炎的乳双歧杆菌及其应用 - Google Patents
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Abstract
本发明提供了乳双歧杆菌XLTG11及其应用。该菌株属于Bifidobacterium lactis,分类命名Bifidobacterium lactis XLTG11,保藏编号为CGMCC No.18738,于2019年10月25日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心。本发明提供的乳双歧杆菌XLTG11可通过抑制TLR4/MYD88/NF‑κB信号通路的激活调节炎症细胞因子、改善肠道屏障功能并调节肠道微生物群,从而缓解DSS诱导的结肠炎。此外,乳双歧杆菌XLTG11对环磷酰胺(CTX)所致小鼠免疫抑制模型小鼠具有增强免疫作用。
Description
技术领域:本发明涉及一株乳双歧杆菌及其应用,其属于生物技术领域。
背景技术:炎症性肠病(IBD)是一种慢性且易复发的自身免疫性疾病,包括溃疡性结肠炎(ulcerative colitis,UC)和克罗恩病(crohn's disease,CD)两种疾病类型。虽然IBD在西方国家发病率最高,而近年来随着工业的发展,亚洲、非洲及南美洲等国家的IBD发病率急剧上升。IBD的具体发病机制尚不清楚,但越来越多的数据表明,遗传易感性、免疫反应异常、肠道屏障受损和肠道菌群失衡在IBD的发展中起着重要作用。氨基水杨酸盐、免疫抑制剂和生物药物等传统治疗药物通常会产生严重的副作用,如头痛、恶心和感染,因此,开发一种安全有效的治疗方法来缓解IBD症状是很重要的。
肠道微生物在人类能量代谢和免疫过程中起着至关重要的作用,越来越多的证据表明,肠道微生物失调与某些人类疾病有关,如肥胖、过敏、IBD和2型糖尿病等疾病。肠道微生物的组成与宿主免疫系统密切相关,厚壁菌门和拟杆菌门是肠道微生物中含量最高的两个菌门,与肠道健康有着紧密的联系。研究发现IBD患者肠道中厚壁菌门的相对丰度增加,而拟杆菌门的相对丰度下降。且有研究证明,与健康受试者相比,UC患者的潜在致病菌(大肠杆菌和变形菌门)相对丰度增加。致病菌入侵肠上皮细胞,刺激炎症,破坏肠上皮屏障的完整性,并触发肠道炎症反应,因此,肠道微生物可能是UC治疗的一个重要潜在靶点。
益生菌是一类定植于人类肠道的活的微生物,对肠道健康有益,尤其是具有干预肠道炎症作用的乳酸菌和双歧杆菌。双歧杆菌在减少条件病原体的丰度和定植、维持宿主微生物稳态、保护肠道黏膜屏障的完整性和调节肠道炎症方面发挥其特定作用。既往研究发现,短双歧杆菌可通过抑制炎症细胞因子、增强肠上皮屏障功能和调节肠道微生物群有效减轻DSS诱导的结肠炎。Din等人表明双歧杆菌ATCC29521可通过调节miRNA相关的紧密连接蛋白和NF-κB通路以及在一定程度上恢复菌群失调来缓解DSS引起的溃疡性结肠炎。然而,乳双歧杆菌改善结肠炎以及增强机体免疫方面却鲜见报道。
发明内容:
本发明自健康儿童肠道筛选获得一株新的乳双歧杆菌XLTG11,该乳双歧杆菌属于Bifidobacterium lactis,分类命名Bifidobacterium lactis XLTG11,保藏编号为CGMCCNo.18738,于2019年10月25日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心。保藏单位的地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号,中国科学院微生物研究所。
本发明的所述乳双歧杆菌XLTG11生物学特征如下:革兰氏阳性,厌氧,不运动,无芽孢,菌落光滑,凸圆,边缘完整,乳脂呈白色。
所述乳双歧杆菌XLTG11在pH2.5的人工胃液中消化3小时(存活率75.01%),之后继续在pH8.0的人工消化液中消化11小时,其存活率高达89.75%,具有良好的胃肠道消化液耐受性,能够以活的状态进入人体肠道,发挥健康功效。
本发明所述乳双歧杆菌XLTG11,其对DSS诱导的小鼠结肠炎具有缓解作用,显著缓解了小鼠体重减轻、DAI评分和结肠缩短情况,显著降低了MPO活性、脾脏重量和结肠组织损伤程度,且具有剂量依赖性。
乳双歧杆菌XLTG11可显著降低促炎细胞因子(TNF-α、IL-1β和IL-6)水平,提高抗炎细胞因子IL-10水平;高剂量乳双歧杆菌XLTG11可显著上调紧密连接蛋白(claudin-1、occludin和ZO-1)的表达,抑制TLR4/MYD88/NF-κB信号通路的激活。
补充乳双歧杆菌XLTG11使肠道微生物群的多样性有所增加,并对DSS引起的肠道微生物群紊乱进行调节。
乳双歧杆菌XLTG11可通过抑制TLR4/MYD88/NF-κB信号通路的激活调节炎症细胞因子、改善肠道屏障功能并调节肠道微生物群,从而缓解DSS诱导的结肠炎。
乳双歧杆菌XLTG11可提高小鼠足跖肿胀程度,可以增加CTX小鼠胸腺指数及细胞因子IL-2、TNF-α水平,增强淋巴细胞功能发挥免疫调节作用。
乳双歧杆菌XLTG11具有增强机体免疫功能。通过对环磷酰胺(cyclophosphamide,CTX)致免疫低下小鼠模型灌服乳双歧杆菌XLTG11探讨其对机体胸腺及脾脏指数、细胞免疫功能、小肠黏膜组织病理变化及炎症因子的影响。
进一步,本发明提供了一种预防和/或治疗结肠炎、或增强免疫调节功能的产品,所述产品优选为药物,也可以为食品等,所述产品包括权利要求1所述的乳双歧杆菌XLTG11。所述产品使用时,乳双歧杆菌XLTG11的剂量为1×106-1×109cfu。
本发明还提供了一种含有权利要求1所述乳双歧杆菌XLTG11的菌剂以及所述菌剂的制备方法,所述菌剂的制备方法包括:将乳双歧杆菌XLTG11在添加了0.05%半胱氨酸盐酸盐的改良MRS培养基中37℃条件下厌氧培养18h,传代培养,乳双歧杆菌XLTG11通过离心获得,用无菌磷酸盐缓冲盐水洗涤3次后分别以1×107和1×108CFU/mL浓度重悬于PBS缓冲液中。
本发明所述乳双歧杆菌XLTG11以及所述菌剂还可以与其他益生菌等混合使用,共同预防和/或治疗结肠炎、或增强免疫调节功能。所述结肠炎优选溃疡性结肠炎。
附图说明:
图1乳双歧杆菌XLTG119对DSS诱导小鼠结肠炎症状的影响。(A)体重;(B)DAI评分;(C)结肠长度;(D)MPO活性;(E)脾脏指数。NC:正常对照组;MC:模型对照组;BL:低剂量乳双歧杆菌XLTG11;BH:高剂量乳双歧杆菌XLTG11。所有数据均以平均值±SD表示。不同字母表示各组间有统计学差异(P<0.05)。
图2乳双歧杆菌XLTG11对结肠组织病理学分析的影响。(A)组织学图像;(B)组织学评分。NC:正常对照组;MC:模型对照组;BL:低剂量乳双歧杆菌XLTG11;BH:高剂量乳双歧杆菌XLTG11。所有数据均以平均值±SD表示。不同字母表示各组间有统计学差异(P<0.05)。
图3乳双歧杆菌XLTG11对炎症细胞因子的影响。(A)IL-10;(B)IL-1β;(C)TNF-α和(D)IL-6.NC,NC:正常对照组;MC:模型对照组;BL:低剂量乳双歧杆菌XLTG11;BH:高剂量乳双歧杆菌XLTG11。所有数据均以平均值±SD表示。不同字母表示各组间有统计学差异(P<0.05)。
图4 qRT-PCR检测乳双歧杆菌XLTG11对结肠组织中claudin-1(A)、occlusion(B)和ZO-1(C)mRNA表达的影响。NC:正常对照组;MC:模型对照组;BL:低剂量乳双歧杆菌XLTG11;BH:高剂量乳双歧杆菌XLTG11。所有数据均以平均值±SD表示。不同字母表示各组间有统计学差异(P<0.05)。
图5 qRT-PCR检测乳双歧杆菌XLTG11对结肠组织中TLR4(A)、MYD88(B)和NF-κB(C)mRNA表达的影响。NC:正常对照组;MC:模型对照组;BL:低剂量乳双歧杆菌XLTG11;BH:高剂量乳双歧杆菌XLTG11。所有数据均以平均值±SD表示。不同字母表示各组间有统计学差异(P<0.05)。
图6乳双歧杆菌XLTG11对肠道菌群结构和组成的影响。(A)可观察的物种数;(B)辛普森指数;(C)门水平上的肠道微生物群组成;(D)属水平上的肠道菌群组成。NC:正常对照组;MC:模型对照组;BL:低剂量乳双歧杆菌XLTG11;BH:高剂量乳双歧杆菌XLTG11。
图7 Spearman对UC相关症状、相关基因表达与显性肠道菌群的相关性分析。*和**表示相关性显著(分别为P<0.05和P<0.01)。
图8 XLTG11不同剂量组对CTX小鼠胸腺和脾指数的影响。*P<0.05vs Controlgroup;#P<0.05,##P<0.01,###P<0.001vs Model group
图9光学显微镜下观察小肠黏膜组织苏木精-伊红(HE)染色(×100)
图10小肠黏膜组织病理变化(绒毛高度)。*P<0.05vs Control group;#P<0.05,##P<0.01,###P<0.001vs Model group
图11小肠杯状细胞数目。*P<0.05vs Control group;#P<0.05,##P<0.01,###P<0.001vs Model group
图12各组小鼠血清IgA、IgG、IL-2、IL-6、IFN-γ、TNF-α水平。*P<0.05vs Controlgroup;#P<0.05,##P<0.01,###P<0.001vs Model group
具体实施方式:
实施例1乳双歧杆菌的筛选与鉴定
自健康儿童肠道中分离一株菌株,经16s rRNA全长测序鉴定和质谱鉴定,该菌株属于Bifidobacterium lactis,分类命名Bifidobacterium lactis XLTG11,保藏编号为CGMCC No.18738,于2019年10月25日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心。保藏单位的地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号,中国科学院微生物研究所。
乳双歧杆菌XLTG11的生物学特征如下:革兰氏阳性,厌氧,不运动,无芽孢,菌落光滑,凸圆,边缘完整,乳脂呈白色。
测试乳双歧杆菌XLTG11的人工胃液和肠液耐受性,在pH2.5的人工胃液中消化3小时(存活率75.01%),之后继续在pH8.0的人工消化液中消化11小时,其存活率高达89.75%,具有良好的胃肠道消化液耐受性,能够以活的状态进入人体肠道,发挥健康功效。
实施例2菌悬液制备
菌株在添加了0.05%半胱氨酸盐酸盐的改良MRS培养基(中国青岛希望生物公司,HB0384-5)中37℃条件下厌氧培养18h,实验前传代培养2次。乳双歧杆菌XLTG11通过离心获得(6000×g,4℃10min),用无菌磷酸盐缓冲盐水(PBS)洗涤3次后分别以1×107和1×108CFU/mL浓度重悬于PBS缓冲液中。
实施例3乳双歧杆菌XLTG11对DSS诱导的结肠炎症状的影响
8周龄无特定病原体(SPF)C57BL/6雄性小鼠购自北京维塔尔河实验动物科技有限公司,所有动物在实验前均适应环境一周,期间饲养温度为23±2℃,湿度为50%±10%,12h光-暗循环。将小鼠随机分为四组:正常对照组(NC)、模型对照组(MC)、低剂量乳双歧杆菌XLTG11组(BL)和高剂量乳双歧杆菌XLTG11组(BH)。实验过程中,BL和BH组分别每日口服一次低剂量的乳双歧杆菌XLTG11(1×107CFU/d)和高剂量乳双歧杆菌XLTG11(1×108CFU/d)。NC组和MC组以相同的喂养频率每日注射200μLPBS一次。从第15天至第21天,除NC组外,所有小鼠均饮用含2.5%DSS的饮用水中以诱导结肠炎。在DSS处理期间,每天测量所有小鼠的体重,并根据体重减轻情况、大便稠度和总血量记录DAI评分。实验结束后,小鼠禁食12h,麻醉处死。所有小鼠取眼球采血并于4℃、3500rpm条件下离心15分钟取血清,于-80℃保存。在无菌条件下收集结肠内容物,于-80℃贮存,用于肠道微生物分析。测量结肠长度并用生理盐水冲洗,切除的结肠组织立即固定在4%多聚甲醛中进行组织病理学分析,其余组织保存在-80℃进行实时定量PCR。取脾脏并称重,脾指数计算如下:脏器重量(g)/体重(g)×100。
DSS诱导期间的体重如图1A中所示:对照组体重稳定增加,而其他组小鼠的体重从第17天到实验结束均呈下降趋势,低剂量和高剂量处理组则在一定程度上减缓了这一趋势。DAI评分的变化如图1B所示:对照组的DAI评分保持在0,而模型组的DAI评分较对照组相比呈现快速上升趋势,低剂量组和高剂量组的DAI评分增量则显著小于模型组。四组小鼠的结肠长度如图1C所示:与对照组相比,模型组结肠长度显著减少(P<0.05),微生物干预后,DSS引起的结肠缩短症状明显减轻(P<0.05)。如图1D所示,与对照组相比,模型组小鼠的MPO活性显著升高(P<0.05),与模型组相比,低剂量组和高剂量组小鼠的MPO显著降低(P<0.05)并呈剂量依赖性,对照组和高剂量组比较差异无统计学意义(P>0.05)。各处理组脾脏指数见图1E:,模型组小鼠的脾脏指数显著高于对照组(P<0.05),且两种剂量的微生物给药均缓解了这些变化。以上结果表明乳双歧杆菌XLTG11有效地缓解了DSS诱导的结肠炎症状。
实施例4乳双歧杆菌XLTG11对结肠组织病理学分析的影响
远端结肠用4%多聚甲醛固定48h,石蜡包埋后切成5μm切片。切片经二甲苯脱蜡,然后用苏木精和伊红(H&E)染色进行观察(组织学评分的计算方法参考Tan,Y.et.al.,TheAmerican journal of the medical sciences 2018,355,377-386;Zhao,H.W.et.al.,World journal of gastroenterology 2017,23,999-1009)。
各处理组小鼠的结肠组织学变化如图2A所示,对照组小鼠结肠组织显示杯状细胞及上皮组织完整,而模型组小鼠结肠组织的隐窝结构和杯状细胞消失,炎症细胞浸润。经乳双歧杆菌XLTG11处理后,低剂量组和高剂量组小鼠结肠组织结构损伤改善,炎症细胞浸润减少。此外,如图2B所示,与模型组相比,两种剂量的乳双歧杆菌均显著降低了DSS引起的组织学评分(P<0.05),尤其与低剂量组相比,高剂量组表现出更强的降低病理评分的能力。这些结果表明,高剂量乳双歧杆菌XLTG11显著改善了DSS诱导的组织形态学变化,并降低了组织学评分。
实施例5乳双歧杆菌XLTG11对炎症细胞因子的影响、对claudin-1、occludin和ZO-1 mRNA表达的影响、对TLR4/MYD88/NF-κB信号通路的影响
对不同处理组小鼠的结肠组织进行称重,以配置好的试剂为匀浆介质,按重量体积比1:19按进行研磨,用于MPO的测定,根据说明,使用ELISA试剂盒(中国泉州凯努奥迪生物技术有限公司)检测血清中白细胞介素IL-1β、IL-10、IL-6和肿瘤坏死因子TNF-α的水平。
各处理组小鼠血清中炎症细胞因子的水平如图3所示,模型组小鼠血清中促炎细胞因子(IL-1β、TNF-α和IL-6)水平显著高于对照组。而经两种剂量乳双歧杆菌处理的小鼠血清中IL-1β和IL-6的水平低于模型组(P<0.05),且高剂量组小鼠血清中IL-6水平与对照组相比无显著差异(P>0.05),DC组血清IL-10水平明显低于对照组(P<0.05),而高剂量可显著逆转IL-10水平(P<0.05),但低剂量组和模型组变化不显著(P>0.05),上述数据显示相比于低剂量组,给予高剂量乳双歧杆菌XLTG11可有效抑制DSS引起的炎症症状。
结肠紧密连接蛋白(claudin-1、occludin、ZO-1)mRNA表达量如图4所示,与对照组相比,模型组claudin-1、ZO-1的表达水平显著降低(p<0.05),表明上皮完整性已受损。与模型组相比,高剂量组显著提高了claudin-1和ZO-1的mRNA表达水平(P<0.05),但在低剂量组和模型组中变化显著(P>0.05)。此外,模型组occludin-1的mRNA表达水平与对照组相比无显著差异(P>0.05)。值得注意的是,高剂量组经过大剂量补充乳双歧杆菌XLTG11后occludin-1的表达水平明显高于模型组。这些结果表明,补充高剂量的乳双歧杆菌XLTG11可以减轻DSS诱导的肠道屏障功能损伤。
为了研究TLR4/MYD88/NF-κB信号通路是否在乳双歧杆菌XLTG11的抗炎机制中发挥重要作用,对其相关基因的mRNA表达水平进行测量,结果如图5所示,与对照组相比,DSS给药显著增加了TLR4、MYD88和NF-κB的mRNA表达水平(P<0.05)。相反,高剂量组中TLR4和NF-κB基因表达明显下调(P<0.05),但低剂量组和模型组之间没有显著差异(P>0.05)。此外,与模型组相比,两种剂量乳双歧杆菌XLTG11都显著下调了MYD88的mRNA表达(P<0.05),特别是高剂量组经过乳酸双歧杆菌XLTG11处理后,其水平与NC组相似(P>0.05)。结果表明,高剂量的乳双歧杆菌XLTG11可通过抑制TLR4/MYD88/NF-κB信号通路的激活发挥其抗炎功能。
实施例6乳双歧杆菌XLTG11对肠道微生物群结构和组成的影响
通过定量实时聚合酶链反应(qRT-PCR)检测紧密连接蛋白基因(claudin-1、occlusion和ZO-1)和TLR4信号通路相关基因(TLR4、MYD88和NF-κB)的相对mRNA水平,GAPDH基因作为内参基因。用RNAiso Plus((Takara Biotechnology,大连,中国)提取结肠总RNA,用2000C超微紫外分光光度计(Thermo Fisher Scientific Inc.,美国)进行定量,将提取好的RNA参照Transcriptor First Strand cDNA Synthesis Kit RNA试剂盒(Roche,德国,04897030001).。进行反转录。qRT-PCR按照Bio-RadCFX96实时PCR系统(Bio-Rad,福斯特市,CA,美国)上的说明进行,上机检测参照试剂盒Stormstar SybrGreen qPCR Master Mix(DBI Bioscience,德国,DBI-2143)说明书进行,数据结果采用2–ΔΔCt法进行分析。
使用试剂盒(Omega Bio-Tek,Norcross,GA,USA)提取每组小鼠(n=3)的结肠微生物群基因DNA。对细菌16S rDNA的V3-V4区域使用338F和806R引物进行PCR扩增:(5'-ACTCCTACGGGAGGCAGCAG-3')(正向引物)和(5'-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3')(反向引物)。使用AxyPrep DNA凝胶提取试剂盒(Axygen Biosciences,Union City,CA,USA)纯化得到的PCR产物,并使用Qubit2.0荧光计(Life Technologies,Carlsbad,CA,USA)进行定量。测序在IlluminaMiseq平台(Illumina Inc.,San Diego,CA,USA)上进行。原始数据与Flash(版本1.2.11)软件合并,并由QIIME(V1.9.1)过滤以收集高质量标签。有效标签由UCLUST(版本1.2.22)聚类为相似度≥97%OTU[25]。通过PyNAST软件(版本1.2)对OTU基于Greengenes数据库进行分析,并在门和属水平上标注分类信息。
所有数据均使用SPSS 22.0软件进行分析,表示为平均值±标准差(SD)。使用单向方差分析确定统计差异,然后采用Duncan多范围检验。优势肠道微生物与UC相关症状之间的关系通过spearman相关系数评价,P<0.05为统计学上有显著差异。
本研究对16S rDNA基因的V3-V4高变区进行测序,分析了不同组结肠内容物的肠道微生物群。如图6A与图6B所示,模型组小鼠的可观察到的物种数低对照组,且辛普森指数高于对照组,表明DSS摄入导致微生物多样性下降,而乳双歧杆菌XLTG11的补充在一定程度上缓解了这些变化。
如图6C所示,在门水平上,与对照组相比,模型组小鼠拟杆菌门的相对丰度降低,而厚壁菌门、大肠杆菌和变形杆菌的相对丰度增加。然而,在低剂量组和高剂量组中,这些变化恢复到与对照组相似的水平。此外与模型组相比,两种剂量的乳双歧杆菌XLTG11干预措施中疣微菌的相对丰度均以剂量依赖性方式增加。如图6D所示,在属水平上模型组的志贺氏杆菌、罗姆布茨菌、ASF356、葡萄球菌和螺杆菌的相对丰度高于对照组。然而,低剂量和高剂量组都在一定程度上扭转了这一趋势。此外,低剂量和高剂量乳双歧杆菌增加了Muribaculaceae、瘤胃菌UCG-014、毛螺菌NK4A136组和阿克曼氏菌的相对丰度,相比于模型组,只有高剂量乳双歧杆菌XLTG11降低了拟普雷沃菌的相对丰度。特别是与对照组相比,模型组中Alistipes和Turicibacter的相对丰度显著增加,而这种趋势仅在高剂量组中有所缓解。有趣的是,低剂量和高剂量的乳双歧杆菌XLTG11都降低了乳杆菌的水平。
为了确定肠道微生物在减少炎症生物标志物方面的作用,本研究在属水平上分析了UC相关症状、相关基因表达于肠道优势菌群之间的相关性。如图7所示,拟杆菌的相对丰度与IL-1β、TNF-α、TLR4、NF-κB呈显著正相关,与IL-10、ZO-1呈显著负相关。未分类的Muribaculaceae菌属相对丰度与IL-10和ZO-1呈正相关,而与IL-1β、TNF-α、TLR4、MYD88和NF-κB呈负相关。IL-10和ZO-1水平与Alistipes菌属呈显著负相关,与TLR4和NF-κB呈显著正相关。螺杆菌的相对丰度与IL-1β呈正相关。乳杆菌相对丰度与TNF-α呈显著负相关,与ZO-1呈显著正相关。ASF356的相对丰度与促炎细胞因子(IL-1β、TNF-α和IL-6)和TLR4/MYD88/NF-κB信号通路呈正相关,与IL-10呈负相关。毛螺菌科NK4A136的相对丰度与IL-1β和TNF-α呈正相关,与ZO-1呈负相关。罗姆布茨菌属的相对丰度与IL-6和NF-κB呈正相关,与Claudin-1和ZO-1呈负相关。Turicibacter菌属的相对丰度与ZO-1呈显著负相关。
实施例7免疫抑制模型建立
SPF级BALB/c小鼠,6到8周龄,雄性,体重18-22g。由辽宁长生生物技术股份有限公司提供,动物许可证号:SCXK(辽)2020-0001。BALB/c小鼠随机分为7组,每组8只。空白组和模型组小鼠每只灌服生理盐水0.4mL,阳性对照组小鼠每只灌服LEV(10mg·kg-1),乳双歧杆菌XLTG11不同剂量组小鼠每只分别灌胃给予0.4mL乳双歧杆菌XLTG11溶液1×109、1×108、1×107、1×106cfu,各组小鼠均连续灌服28d,期间自由饮食。在灌胃给予后第23,24天,模型组,阳性对照组和乳双歧杆菌XLTG11不同剂量组小鼠腹腔注射CTX(40mg·kg-1),空白组腹腔注射等体积的生理盐水。
实施例8免疫器官指数的测定
于灌胃给予后第28天,各组小鼠称重后脊椎脱臼处死,摘取胸腺和脾脏称重,计算胸腺和脾脏指数。胸腺或脾脏指数=胸腺或脾脏质量(mg)/小鼠体质量(g)。
XLTG11不同剂量组对CTX小鼠胸腺和脾指数的影响如表1、图8所示。与空白组比较,模型组小鼠胸腺指数和脾指数显著降低(P<0.05)。与模型组比较,阳性对照组小鼠胸腺指数增加(P<0.05),XLTG11各剂量组小鼠胸腺指数均增加(P<0.05),且呈剂量依赖性。
表1 XLTG11不同剂量组对CTX小鼠胸腺和脾指数的影响(n=8)Tab.1Effectof different dose groups of XLTG11 on thymus and spleen indexes in CTX mice(n=8)
Note:*P<0.05,***P<0.001,vs Control group;#P<0.05,##P<0.01,###P<0.001vsModel group
实施例9迟发型变态反应(delayed type hypersensitivity,DTH)的测定
于灌胃给予后第23天,各组小鼠腹腔注射2%(v/v)的绵羊红细胞(SRBC)0.2mL致敏。于灌胃给予后第27天,用游标卡尺测量左后足趾厚度,在测量部位皮下注射20%(V/V)的SRBC每只20μL,24h后再次测量左后足趾部位厚度,同一部位多次测量取平均值。以注射前后的足趾厚度差值来表示DTH的反应程度。
XLTG11不同剂量组对CTX小鼠足跖厚度的影响如表2所示。与空白组比较,模型组小鼠足跖厚度显著降低(P<0.05),XLTG11(1×109cfu)组小鼠足跖厚度显著增加(P<0.05)。与模型组比较,阳性对照组小鼠足跖厚度显著增加(P<0.01),XLTG11各剂量组小鼠足跖厚度均增加(P<0.05)。
Note:*P<0.05,vs Control group;#P<0.05,##P<0.01,###P<0.001vs Model group
实施例10小肠黏膜组织病理变化
颈椎脱臼法处死小鼠后,采集各组小鼠的小肠黏膜组织,4%多聚甲醛固定,经脱水、包埋、切片等步骤制作石蜡切片,进行常规HE染色,光学显微镜下观察小肠黏膜组织病理变化。
各组小鼠HE染色结果见图9。空白组小鼠小肠黏膜组织结构完整,绒毛粗细均匀,排列整齐。模型组小鼠小肠黏膜组织损伤,肠壁变薄,绒毛变细,绒毛长短不一且排列稀疏。阳性对照组和XLTG11各剂量组小鼠小肠黏膜组织损伤均有改善,绒毛病变程度减轻。随着剂量增加,小鼠的小肠黏膜损伤情况得到缓解,呈剂量依赖性,以XLTG11(1×109cfu)效果最明显。
实施例11小肠黏膜绒毛高度的测定
使用实施例10的小肠黏膜组织切片,选取小肠组织的目的区域进行100倍成像,使用Image-Pro Plus 6.0分析软件,以毫米作为标准单位,分别测量每张切片中5根完整肠绒毛高度(Villus height),并求出平均值。
各组小鼠小肠黏膜绒毛高度测定结果见图10。与空白组比较,模型组小鼠小肠绒毛高度显著降低(P<0.001)。与模型组比较,阳性对照组小鼠小肠绒毛高度增加(P<0.05),XLTG11各剂量组小鼠小肠绒毛高度增加(P<0.05)。
实施例12小肠杯状细胞数目的测定
制片步骤同实施例11,将切片经过碘酸雪夫氏(PAS)染色,光镜下观察小肠上皮内杯状细胞(Goblet cell number)形态分布,选取小肠组织的目的区域进行100倍成像,使用Image-Pro Plus 6.0分析软件,以毫米作为标准单位,计数每张切片中5根肠绒毛上的杯状细胞数量以及对应的上皮长度,并计算出单位长度杯状细胞数量=杯状细胞数量/长度。
各组小鼠杯状细胞数目结果见表3、图11。与空白组相比,模型组小鼠杯状细胞数目降低(P<0.05)。与模型组相比,阳性对照组小鼠杯状细胞数目明显增加(P<0.01),XLTG11各剂量组小鼠杯状细胞数目增加(P<0.05)。
Note:*P<0.05,vs Control group;#P<0.05,##P<0.01vs Model group
实施例13血清中细胞因子水平的测定
各组小鼠在末次灌胃30min后摘眼球取全血,3000r·min-1离心10min,取血清分装-80℃冰箱冷冻待测。采用ELISA试剂盒检测血清IgA、IgG、IL-2、IL-6、IFN-γ、TNF-α水平,具体操作步骤按说明书进行。
各组小鼠血清中细胞因子结果见表4、图12。与空白组比较,模型组小鼠血清中IgA、IgG、IL-2、IL-6、IFN-γ、TNF-α水平降低(P<0.05)。与模型组比较,阳性对照组小鼠血清中IgA、IgG、IL-2、IL-6、IFN-γ、TNF-α水平增加(P<0.05),实验1组和实验2组小鼠IgA、IgG、IL-2、IL-6、IFN-γ、TNF-α水平增加(P<0.05),实验3组小鼠IgA、IgG、IL-2、TNF-α水平增加(P<0.05),XLTG11(1×106cfu),实验4组小鼠IgA、IL-2、TNF-α水平增加(P<0.05)。
Note:*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001,vs Control group;#P<0.05,##P<0.01,###P<0.001,vs Model group
Claims (10)
1.一株乳双歧杆菌Bifidobacterium lactis XLTG11,其特征在于:保藏编号为CGMCCNo.18738。
2.权利要求1所述乳双歧杆菌XLTG11在制备预防和/或治疗结肠炎的产品中的应用。
3.如权利要求2所述的应用,其特征在于,所述结肠炎为溃疡性结肠炎。
4.权利要求1所述乳双歧杆菌XLTG11在制备调节肠道微生物群的产品中的应用。
5.权利要求1所述乳双歧杆菌XLTG11在制备抑制TLR4/MYD88/NF-κB信号通路的激活调节炎症细胞因子的产品中的应用。
6.权利要求1所述乳双歧杆菌XLTG11在制备增强免疫功能产品中的应用。
7.如权利要求2-6所述的应用,所述产品为药物。
8.一种预防和/或治疗结肠炎、或增强免疫调节功能的药物,其特征在于,所述药物包括权利要求1所述的乳双歧杆菌XLTG11。
9.权利要求8所述的药物,其特征在于,乳双歧杆菌XLTG11的剂量为1×106-1×109cfu。
10.一种含有权利要求1所述乳双歧杆菌XLTG11的菌剂,其特征在于,所述菌剂的制备方法包括:将乳双歧杆菌XLTG11在添加了0.05%半胱氨酸盐酸盐的改良MRS培养基中37℃条件下厌氧培养18h,传代培养,乳双歧杆菌XLTG11通过离心获得,用无菌磷酸盐缓冲盐水洗涤3次后分别以1×107和1×108CFU/mL浓度重悬于PBS缓冲液中。
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