CN113230264B - 单糖类衍生物在制备抗炎药物方面的应用 - Google Patents
单糖类衍生物在制备抗炎药物方面的应用 Download PDFInfo
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Abstract
单糖类衍生物在制备抗炎药物方面的应用。本发明属于医药应用技术领域,具体涉及单糖类衍生物(如,乙基‑α‑D‑呋喃阿拉伯糖ethyl‑α‑D‑furaarabinose和/或乙基‑β‑D‑呋喃果糖苷ethyl‑β‑D‑fructofuranoside)的新应用,即其在制备抗炎药物方面的应用。本发明通过试验发现了单糖类衍生物的新用途,其能抑制LPS诱导的RAW264.7巨噬细胞引起的NO过量生成及iNOS mRNA水平的过度表达、下调LPS刺激的RAW264.7细胞中p‑IκBα及p‑NF‑κB‑p65蛋白的过度表达,其通过NF‑κB信号通路来发挥抗炎功能,可被用作抗炎药物。
Description
技术领域
本发明属于医药技术领域,具体涉及一种单糖类衍生物(如,乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖ethyl-α-D-furaarabinose和/或乙基-β-D-呋喃果糖苷ethyl-β-D-fructofuranoside等)在制备抗炎药物方面的新应用,化合物可能是通过抑制NF-κB信号通路来实现其抗炎作用。
背景技术
炎症是指机体或组织对损伤因子正常的防御作用。一般情况下,炎症会激活巨噬细胞分泌一系列免疫细胞因子,进而杀灭病原体、消灭损伤因子、清除和吞噬坏死细胞。因此,作为机体的防御性反应,适度的炎症反应是对机体有利的。然而,过度的炎症反应会影响机体正常的代谢过程,引起感染性休克、导致多器官功能障碍,甚至危及生命。正常状态下,细胞或机体内的促炎因子与抗炎因子之间维持着动态平衡。而LPS刺激巨噬细胞活化后,这种平衡被打破,一方面,引起促炎因子长期高度表达导致组织或器官损伤,另一方面,促炎因子大量释放的同时,短期内机体会合成和分泌一定的抗炎因子进行防御。其中,促炎因子主要包括NO、iNOS、COX-2、TNF-α、IL-6、ROS等,这些参与调控机体炎症发生发展过程的炎症介质的含量,可以间接地反映出炎症反应的程度。抗炎因子主要包括IL-4、IL-10等,其大量分泌可以抑制炎症的进一步发展。
NF-κB转录因子控制凋亡、细胞衰老、免疫和炎症相关基因的活性。NF-κB作为二聚体存在于细胞质中,并被NF-κB抑制蛋白α (IκB-α)分离。在刺激下,IκB-α蛋白经过一系列磷酸化、泛素化和降解,从而释放NF-κB二聚体激活其靶基因的转录。
单糖类衍生物如乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和乙基-β-D-呋喃果糖苷均为无色油状液体。目前,较多的是对该类衍生物的提取方法的研究,而针对该类衍生物功效应用的研究较少。检索文献发现,尚未见对单糖类衍生物如乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和乙基-β-D-呋喃果糖苷等抗炎活性的研究。本发明以RAW264.7 巨噬细胞为研究对象,采用MTT、ELISA、qRT-PCR、Western blot等方法研究了单糖类衍生物如乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和乙基-β-D-呋喃果糖苷对LPS刺激后RAW264.7细胞的抗炎活性,并探讨其作用机制,以期对抗炎类新药具有一定的开发价值。
发明内容
本发明目的在于克服现有技术缺陷,提供一种单糖类衍生物(如,乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖ethyl-α-D-furaarabinose和/或乙基-β-D-呋喃果糖苷ethyl-β-D-fructofuranoside等)在制备抗炎药物方面的新应用。
为实现上述目的,本发明采用如下技术方案:
本发明提供了一种单糖类衍生物在制备抗炎药物方面的新应用,其中,所述单糖类衍生物可以为乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和/或乙基-β-D-呋喃果糖苷等。
所述乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖(ethyl-α-D-furaarabinose)和乙基-β-D-呋喃果糖苷(ethyl-β-D-fructofuranoside),结构式分别如下式1、2所示。
性状:无色油状液体。乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖、乙基-β-D-呋喃果糖苷可以直接购买普通市售产品,或者采用现有方法制备获得。
上述的应用,进一步的,单糖类衍生物可抑制LPS刺激的RAW264.7巨噬细胞分泌NO,抑制iNOS和COX-2 mRNA表达水平,以及抑制细胞核内p65和IκBα蛋白磷酸化水平。
上述的应用,进一步的,单糖类衍生物通过抑制NF-κB信号通路来调节抗炎功能。
本发明还提供了一种含上述单糖类衍生物的复方制剂,其由所述单糖类衍生物与本领域常规辅料复配制成复方制剂,具体的,可以是乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和/或乙基-β-D-呋喃果糖苷与本领域常规辅料复配制成具有抗炎作用的复方制剂。
进一步的,上述复方制剂的剂型可以为片剂、颗粒剂、丸剂、胶囊剂或注射剂等。
本发明进行了如下单糖类衍生物的抗炎应用的验证实验:
1)对RAW264.7细胞毒活性检测;
2)采用一氧化氮试剂盒检测LPS刺激后RAW264.7细胞内NO含量;
3)实时定量PCR法检测LPS刺激后RAW264.7细胞中iNOS和COX-2 mRNA表达水平;
4)Western blot法分析LPS刺激后RAW264.7细胞核内p65和IκBα蛋白磷酸化水平。
本发明经常规实验验证后,发现:单糖类衍生物(如,乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和/或乙基-β-D-呋喃果糖苷等)可以抑制LPS刺激后RAW264.7细胞分泌大量的NO,并且抑制了NF-κB信号通路的过度激活,说明本发明所述单糖类衍生物具有抗炎作用,可用于抗炎剂或抗炎药物的制备,对抗炎类新药具有一定的开发价值。
与现有技术相比,本发明的有益效果如下:
本发明通过大量研究和试验发现了单糖类衍生物(如,乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和/或乙基-β-D-呋喃果糖苷等)的一种新用途。本发明研究结果表明:对于LPS刺激后RAW264.7细胞,单糖类衍生物可抑制细胞分泌NO,抑制iNOS和COX-2 mRNA表达水平,以及抑制细胞核内p65和IκBα蛋白磷酸化水平。说明本发明单糖类衍生物能够抑制NF-κB信号通路的过度激活,起到抗炎的功效。因此,本发明单糖类衍生物(如,乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和/或乙基-β-D-呋喃果糖苷等)可被用于制作抗炎药物或抗炎剂,对抗炎类新药物具有一定的开发价值。
附图说明
图1为乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖(1)和乙基-β-D-呋喃果糖苷(2)对RAW264.7细胞的细胞活力及吞噬能力的影响;注:与空白组比较,*P<0.05,**P<0.01,***P < 0.001;
图2为乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖(1)和乙基-β-D-呋喃果糖苷(2)对LPS诱导的RAW264.7细胞分泌NO的影响;注:与空白组比较,*P<0.05,**P<0.01,***P < 0.001;与LPS组比较,# P<0.05,## P<0.01,### P < 0.001;
图3为乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖(1)和乙基-β-D-呋喃果糖苷(2)对LPS诱导的RAW264.7细胞iNOS和COX-2 mRNA表达的影响;注:与空白组比较,*P<0.05,**P<0.01,***P < 0.001;与LPS组比较,# P<0.05,## P<0.01,### P < 0.001;
图4为乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖(1)和乙基-β-D-呋喃果糖苷(2)对RAW264.7细胞内IκBα和p65蛋白表达的影响;注:与空白对照组比较,*P<0.05,**P<0.01,***P < 0.001;与LPS组比较,# P<0.05,## P<0.01,### P < 0.001。
具体实施方式
以下结合实施例对本发明的技术方案作进一步地详细介绍,但本发明的保护范围并不局限于此。
应用实施例:单糖类衍生物(如,乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和/或乙基-β-D-呋喃果糖苷等)对RAW264.7细胞的抗炎作用及机制研究
1.实验细胞
RAW264.7 巨噬细胞,购于中国科学院典型培养物保藏委员会细胞库。
仪器与试剂
分析天平 (赛多利斯科学仪器有限公司);
全波长酶标仪 (Thermo Fisher,1510型);
二氧化碳培养箱 (Thermo scientific,3111型);
离心机 (上海手术器械厂,800型);
多色荧光、化学发光和可见光成像仪 (ProteinsiMple FluorcheM Q);
微型台式冷冻离心机 (D-37520 TherMo);
电泳仪 (EPS600 Tanon);
转印槽 (Mini-PROTEAN Tetra SysteM, BIO-RAD);
梯度PCR仪 (MyCyclerTMThermal Cycler);
实时荧光定量PCR(Thermo Fisher);
倒置显微镜 (Nikon ECLiPES TS100);
96孔、24孔、6孔细胞培养板(Corning);
改良Eagle培养基(DMEM,Solarbio);
青霉素链霉素混合液(Solarbio);
澳洲胎牛血清(FBS,Gibco);
脂多糖(LPS,Sigma);
PBS缓冲液(博士德);
噻唑蓝(MTT,华蓝化学);
二甲基亚砜(DMSO,Sigma);
RIPA细胞裂解液(弱)(碧云天生物科技);
一氧化氮试剂盒(南京建成生物工程研究所);
Trizol Reagent(康为世纪生物科技有限公司);
PCR引物(Thermo Fisher);
PrimeScriptTMRT reagent kit with gDNA Eraser 试剂盒 (TaKaRa);
SYBR® Green Pro Taq HS预混型qPCR试剂盒(含Rox)(艾科瑞生物工程有限公司);
BCA蛋白质定量试剂盒(Solarbio);
蛋白酶磷酸酶抑制剂(Solarbio);
PMSF蛋白酶抑制剂(Solarbio)
5×蛋白上样缓冲液(Solarbio);
脱脂奶粉(Amresco);
PVDF膜(Solarbio);
IκBα、p-IκBα、p65、p-p65、β-actin一抗(Cell signaling technology);
辣根过氧化物酶标记的二抗(Cell signaling technology);
ECL发光液(Solarbio)。
实验方法
(1)细胞培养与传代
在无菌环境下配制含10% FBS和1%双抗(青霉素和链霉素)的DMEM培养基(下述简称“DMEM完全培养基”)。给予RAW264.7细胞一定量的DMEM完全培养基,置于37℃、5%CO2的培养箱中孵育,待细胞密度达到70%~80%时进行细胞传代。用吹打管均匀吹散瓶壁上的细胞,然后吸取适量转移到培养瓶中。待细胞生长处于对数生长期时进行各项细胞实验,LPS(1 μg/mL)用作炎症模型。
(2)MTT 法测定细胞活力
取细胞,混匀后计数,以密度为1×104个/孔接种到96孔板中,置于37℃、5%CO2的培养箱中,孵育24 h,而后弃掉上清,设置空白组和实验组。实验组每孔分别给予100 μL 不同浓度的乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖(400、200、100、50、25、12.5、6.25 μM)和乙基-β-D-呋喃果糖苷(400、200、100、50、25、12.5、6.25 μM),空白组给予等量的DMEM完全培养基,每组设置6个复孔,培养箱中孵育 24 h。每孔避光加入10 μL MTT(5 mg/mL)溶液,继续孵育4 h,弃掉上清,每孔加入 100 μL 二甲基亚砜,37℃避光反应10 min,并在490 nm处测定吸光度值。根据公式计算细胞存活率:细胞存活率%=(加药组细胞OD值-空白OD值/正常组的OD值-空白组OD值)×100%。
(3)一氧化氮试剂盒检测RAW264.7细胞释放的NO含量
将对数生长期的RAW264.7细胞接种于24孔板中(1×105个/孔),在37℃、5%CO2的培养箱中孵育24小时,吸弃上清,空白组给予等量的DMEM完全培养基,LPS组给予1 µg/mLLPS,实验组分别给予500 μL不同浓度乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖(200、100、50 μM)和乙基-β-D-呋喃果糖苷(200、100、50 μM),1 h后给予终浓度为1 µg/mL LPS,每组设4个复孔。在37℃、5%CO2的培养箱内孵育24 h后,收集培养液上清,按照一氧化氮试剂盒说明检测NO含量。
(4)实时荧光定量PCR法检测iNOS和COX-2的 mRNA表达
将RAW264.7细胞接种于6孔板中(8×106个/孔),在37℃、5%CO2的培养箱中孵育24h后弃去上清,同上设置空白组、LPS组和实验组,24 h后收集细胞,PBS清洗三次。用TrizolReagent试剂提取总RNA,用PrimeScriptTMRT reagent kit with gDNA Eraser 试剂盒,根据说明书将RNA逆转录成cDNA。用SYBR® Green Pro Taq HS预混型qPCR试剂盒将反转录得到的cDNA进行qPCR 扩增反应,反应条件为:95℃预变性3 min;95℃ 5s,60℃ 30s 并读取荧光值,40次循环。反应结束,得出cycle threshold(Ct值),双⊿⊿法计算出基因的相对表达量。GAPDH为内参。GAPDH、COX-2、iNOS的引物序列如下表1所示。
表1 引物序列
(5)Western blot法检测NF-κB信号通路中相关蛋白的表达
将 RAW264.7细胞接种于6孔板中(8×106个/孔),37℃、5%CO2的培养箱中孵育24 h后弃去上清,同上设置空白组、LPS组和实验组,24 h后收集细胞,PBS清洗三次。加入细胞裂解液(RIPA 细胞裂解液:蛋白酶磷酸酶抑制剂:PMSF蛋白酶抑制剂=100:1:1)在冰上裂解10min。裂解产物于4℃离心机以12000 r/min离心10 min。BCA蛋白质定量试剂盒测定蛋白浓度,定量后的蛋白质样品加入一定比例的5× 蛋白上样缓冲液使缓冲液稀释成1×,在100℃下高温变性,-20℃保存。蛋白质样品与10% SDS-聚丙烯凝胶电泳浓缩分离,分离后,蛋白质被转移到聚偏二氟乙烯膜(PVDF膜),用5%的脱脂奶粉封闭2 h。用TBST(TBS:吐温20=200:1)按1000:1 比例稀释一抗(IκBα、p-IκBα、p65、p-p65及β-actin),将PVDF 膜用一抗溶液杂交孵育,4℃冰箱过夜。TBST洗膜5次,每次5 min。用TBST按5000:1 比例稀释辣根过氧化物酶标记的二抗,进行二抗杂交,室温孵育2 h,用TBST洗膜4次,每次5 min。最后用ECL发光液显现 IκBα、p-IκBα、p65、p-p65及β-actin蛋白。
数据处理
结果采用均值±SD值表示,数据统计采用SPSS19.0软件单因素方差分析法(One-Way ANOVA)比较其显著性差异。
试验结果
(1)乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和乙基-β-D-呋喃果糖苷对RAW264.7细胞活力的影响
不同浓度的乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和乙基-β-D-呋喃果糖苷对RAW264.7巨噬细胞活力的影响结果如图1所示。从图1中可以看出:与空白组相比(图中为Black,下同),在浓度为6.25~200 μM的浓度范围内,乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和乙基-β-D-呋喃果糖苷对细胞活力均无显著性影响(P>0.05)。综合考虑,选择50、100、200 μM三个浓度作为后续的实验浓度。
(2)乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和乙基-β-D-呋喃果糖苷对LPS诱导的RAW264.7细胞分泌NO的影响
乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和乙基-β-D-呋喃果糖苷对LPS诱导的RAW264.7细胞分泌NO的影响如图2所示。从图2中可以看出:与空白组相比,LPS刺激后RAW264.7细胞分泌NO的含量明显增加,而不同浓度(200μM、100μM、50μM)的乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和乙基-β-D-呋喃果糖苷实验组在LPS刺激后显著抑制了NO的分泌(P<0.05),可见,本发明单糖类衍生物均可抑制LPS诱导的RAW264.7细胞NO的分泌。
(3)乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和乙基-β-D-呋喃果糖苷对LPS诱导的RAW264.7细胞iNOS和COX-2 mRNA表达的影响
乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和乙基-β-D-呋喃果糖苷对LPS诱导的RAW264.7细胞iNOS和COX-2 mRNA表达的影响如图3所示。从图3中可以看出:与空白组相比,LPS刺激后可显著促进RAW264.7细胞iNOS和COX-2 mRNA的表达,而不同浓度(200μM、100μM、50μM)的乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和乙基-β-D-呋喃果糖苷实验组在LPS刺激后显著抑制了iNOS和COX-2mRNA的表达(P<0.05)。说明,本发明单糖类衍生物通过抑制LPS诱导的RAW264.7细胞中iNOS和COX-2 mRNA表达而抑制NO的分泌。
(4)乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和乙基-β-D-呋喃果糖苷对LPS诱导的RAW264.7细胞内NF-κB信号通路的影响
图4给出了乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和乙基-β-D-呋喃果糖苷对LPS诱导的RAW264.7细胞内p65和IκBα蛋白表达的影响。如图4所示,与空白组相比,LPS可刺激RAW264.7细胞中IκBα和p65蛋白磷酸化明显上调(P<0.05),乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和乙基-β-D-呋喃果糖苷可以抑制LPS诱导后RAW264.7细胞内p65和IκBα蛋白表达。可见,本发明单糖类衍生物的抗炎作用可能与抑制RAW264.7细胞内NF-κB信号通路有关。
综上:本发明经试验证明了乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和乙基-β-D-呋喃果糖苷对LPS诱导的RAW264.7巨噬细胞具有抗炎作用。乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和乙基-β-D-呋喃果糖苷能抑制LPS刺激的RAW264.7细胞的NO及iNOS mRNA表达;此外证明了其能抑制NF-κB信号通路关键蛋白的表达。表明乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和乙基-β-D-呋喃果糖苷的抗炎作用是通过抑制NF-κB信号通路来实现的。
Claims (3)
1.单糖类衍生物在制备抗炎药物方面的应用,其特征在于,所述单糖类衍生物为乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖、或乙基-α-D-呋喃阿拉伯糖和乙基-β-D-呋喃果糖苷的混合物。
2.根据权利要求1所述单糖类衍生物在制备抗炎药物方面的应用,其特征在于,单糖类衍生物可抑制LPS刺激的RAW264.7巨噬细胞分泌NO,抑制iNOS和COX-2 mRNA表达水平,以及抑制细胞核内p65和IκBα蛋白磷酸化水平。
3.根据权利要求1所述单糖类衍生物在制备抗炎药物方面的应用,其特征在于,单糖类衍生物通过抑制NF-κB信号通路来调节抗炎功能。
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SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
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GR01 | Patent grant | ||
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