CN113150043B - 一种分离纯化生物表面活性剂鼠李糖脂的方法 - Google Patents

一种分离纯化生物表面活性剂鼠李糖脂的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN113150043B
CN113150043B CN202110398316.0A CN202110398316A CN113150043B CN 113150043 B CN113150043 B CN 113150043B CN 202110398316 A CN202110398316 A CN 202110398316A CN 113150043 B CN113150043 B CN 113150043B
Authority
CN
China
Prior art keywords
rhamnolipid
precipitate
purifying
supernatant
separating
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN202110398316.0A
Other languages
English (en)
Other versions
CN113150043A (zh
Inventor
罗志刚
杨欢
齐亮
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
South China University of Technology SCUT
Guangzhou Institute of Modern Industrial Technology
Original Assignee
South China University of Technology SCUT
Guangzhou Institute of Modern Industrial Technology
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by South China University of Technology SCUT, Guangzhou Institute of Modern Industrial Technology filed Critical South China University of Technology SCUT
Priority to CN202110398316.0A priority Critical patent/CN113150043B/zh
Publication of CN113150043A publication Critical patent/CN113150043A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN113150043B publication Critical patent/CN113150043B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07H—SUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
    • C07H1/00—Processes for the preparation of sugar derivatives
    • C07H1/06—Separation; Purification
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07H—SUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
    • C07H15/00—Compounds containing hydrocarbon or substituted hydrocarbon radicals directly attached to hetero atoms of saccharide radicals
    • C07H15/02—Acyclic radicals, not substituted by cyclic structures
    • C07H15/04—Acyclic radicals, not substituted by cyclic structures attached to an oxygen atom of the saccharide radical
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C09—DYES; PAINTS; POLISHES; NATURAL RESINS; ADHESIVES; COMPOSITIONS NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; APPLICATIONS OF MATERIALS NOT OTHERWISE PROVIDED FOR
    • C09K—MATERIALS FOR MISCELLANEOUS APPLICATIONS, NOT PROVIDED FOR ELSEWHERE
    • C09K23/00—Use of substances as emulsifying, wetting, dispersing, or foam-producing agents

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Materials Engineering (AREA)
  • Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明公开了一种分离纯化生物表面活性剂鼠李糖脂的方法，所述方法为：将鼠李糖脂发酵液离心取上清液，加酸调节pH后再离心取沉淀，沉淀重悬洗涤后所得上清液再用酸调节pH然后离心取沉淀，用有机溶剂对沉淀进行萃取，最后用磷酸盐缓冲溶液进行反萃取得到纯化后的鼠李糖脂溶液。本发明在现有鼠李糖脂分离纯化方法的基础上进行改进，优化提取工艺，从而提高了鼠李糖脂的纯化浓度。

Description

一种分离纯化生物表面活性剂鼠李糖脂的方法
技术领域
本发明属于分离纯化技术领域，具体涉及一种分离纯化生物表面活性剂鼠李糖脂的方法。
背景技术
鼠李糖脂主要是由铜绿假单胞菌菌株产生的一类生物表面活性剂，由一个或两个鼠李糖分子与一个或两个多羟基脂肪酸连接而成。目前已经有60多种不同结构的鼠李糖脂，可以根据鼠李糖基数目的不同将其分为单鼠李糖脂和双鼠李糖脂。在鼠李糖脂发酵生产过程中，鼠李糖脂混合物的多样性(种类及其比例)取决于多种因素，如铜绿假单胞菌自身性质、碳源类型、培养条件、培养时间等。
与化学表面活性剂相比，鼠李糖脂除了具有降低表面张力、乳化性、起泡性外，还具生物降解性、低毒性、可再生资源生产和抗菌(特别是抗真菌)活性等特点，这些特点使其具有广泛的商业应用前景，在环境保护、原油回收、日化、医疗保健和食品加工等领域显示出巨大的应用潜力，此外，鼠李糖脂也逐步应用于纳米粒子和微乳液的制备。
目前，鼠李糖脂的分离纯化方法主要有萃取法、柱层析法、膜分离法等，鼠李糖脂是由疏油亲水的极性基团和疏水亲油的碳氢链组成的非极性基团组成。所以鼠李糖脂既具有亲水性又具有亲油性，能够溶于水和氯仿、乙醚、甲醇、乙酸乙酯等有机溶剂中，目前绝大部分实验室规模下使用萃取法分离纯化鼠李糖脂，而单纯的萃取法需要用到大量的有机试剂，且所得到的鼠李糖脂粗品纯度极低；柱层析法过程中需要用到氯仿、甲醇等存在安全隐患的强毒性化学试剂；膜分离过程中，较高粘度的发酵液会对膜造成损害，极大程度降低膜的使用寿命，且总体回收率低。鼠李糖脂下游分离纯化的复杂程度及其高成本极大地限制了鼠李糖脂的大规模生产应用，目前关于鼠李糖脂的分离多处于实验室阶段，很少形成工业化的规模。
发明内容
为解决现有技术的缺点和不足之处，本发明的目的在于提供一种分离纯化生物表面活性剂鼠李糖脂的方法。
本发明对现有的鼠李糖脂分离纯化方法进行改进，优化提取工艺，从而提高了鼠李糖脂的纯化浓度。
本发明目的通过以下技术方案实现：
一种分离纯化生物表面活性剂鼠李糖脂的方法，包括以下步骤：
(1)将鼠李糖脂发酵液过滤，收集滤液，离心，取上清液；
(2)用酸调节步骤(1)上清液的pH，使鼠李糖脂析出，静置，离心，收集沉淀；
(3)用碳酸氢钠溶液重悬步骤(2)的沉淀，自然沉降，收集上清液；
(4)用酸调节步骤(3)上清液的pH，使鼠李糖脂析出，静置，离心，收集沉淀；
(5)将步骤(4)的沉淀加入有机溶剂中进行萃取，收集有机相，将有机相与磷酸盐缓冲溶液混匀，静置分层，使有机相中的鼠李糖脂反萃取到水相中，下层水相即为纯化后的鼠李糖脂溶液。
优选地，步骤(1)所述鼠李糖脂发酵液由鼠李糖脂生产菌，利用玉米油为碳源发酵得到的含鼠李糖脂的发酵液，按质量分数计，发酵培养基为：碳源玉米油4～8％，氮源硝酸钠0.4～0.8％、磷酸二氢钠0.2～0.4％、磷酸氢二钾0.3～0.6％、无水氯化钙0.001～0.004％、硫酸亚铁0.002～0.004％，硫酸镁0.02～0.04％，余量为水，pH 7～7.2。
优选地，步骤(1)所述过滤指用纱布过滤除去发酵液中大颗粒物质。
优选地，步骤(1)所述离心指收集到的鼠李糖脂发酵液在8000～10000rpm下离心10～15min。离心的目的在于除菌。
优选地，步骤(2)和(4)所述酸均为磷酸、盐酸和硫酸中的至少一种，所述酸以溶液的形式加入，酸溶液的浓度为4～6mol/L，将上清液的pH调至2～3。步骤(2)和(4)所述静置均可在4℃环境中静置8～12h。
优选地，步骤(2)和(4)所述离心均指在4000～10000rpm下离心8～10min。
优选地，步骤(3)所述碳酸氢钠溶液的浓度为0.05～0.1mol/L，溶剂为水。
优选地，步骤(3)所述碳酸氢钠溶液与步骤(2)沉淀的质量比为10：1～20：1。
优选地，步骤(3)所述重悬、自然沉降和收集上清液的操作重复1～3次，重复1次的操作即是将所得的上清液用碳酸氢钠溶液重悬，自然沉降后收集上清液。步骤(3)的目的在于洗涤纯化鼠李糖脂。
优选地，步骤(5)所述有机溶剂为氯仿和乙酸乙酯中的至少一种。
优选地，步骤(5)所述有机溶剂与步骤(4)沉淀的质量比为10：1～20：1。
优选地，步骤(5)所述有机溶剂萃取1～5次。
优选地，步骤(5)所述磷酸盐缓冲溶液的pH为7～8；磷酸盐缓冲溶液的体积为有机相体积的1～3倍。所述磷酸盐缓冲溶液的浓度为0.1～0.2mol/L。
与现有技术相比，本发明具有以下优点及有益效果：
(1)本发明在现有的方法上进行改进，利用缓冲溶液将有机溶剂中的鼠李糖脂反萃取到水相中，该方法最终得到澄清透明的鼠李糖脂水溶液，可以根据需要进行稀释或浓缩。
(2)本发明使用相对较少的有机溶剂即可实现鼠李糖脂分离纯化，使用的有机溶剂乙酸乙酯毒性低，且可循环利用，使用的设备简单易得。
(3)本发明从发酵液中分离纯化得到鼠李糖脂，也可以对鼠李糖脂粗品进行进一步纯化，根据本发明所述方法得到的鼠李糖脂比化学表面活性剂十二烷基硫酸钠具有更好的表面性质和起泡性，对大肠杆菌、金黄色葡萄球菌、白色念珠菌的抑菌效果显著优于壳聚糖。
附图说明
图1为本发明所分离纯化得到的鼠李糖脂外观图。
图2为本发明所分离纯化得到的鼠李糖脂的临界胶束浓度图。
图3为本发明所分离纯化得到的鼠李糖脂和SDS、吐温80、CTAC对三种疏水化合物乳化指数图。
图4为本发明所分离纯化得到的鼠李糖脂和SDS的起泡性图。
具体实施方式
下面结合实施例和附图对本发明作进一步详细的描述，但本发明的实施方式不限于此。
本发明实施例中未注明具体条件者，按照常规条件或者制造商建议的条件进行。所用未注明生产厂商者的原料、试剂等，均为可以通过市售购买获得的常规产品。
本发明实施例和对比例所用的鼠李糖脂发酵液由鼠李糖脂生产菌，利用玉米油为碳源发酵得到的含鼠李糖脂的发酵液，按质量分数计，发酵培养基为：碳源玉米油6％，氮源硝酸钠0.68％、磷酸二氢钠0.32％、磷酸氢二钾0.48％、无水氯化钙0.002％、硫酸亚铁0.0024％，硫酸镁0.04％，余量为水，pH 7。
对比例1
(1)将420mL鼠李糖脂发酵液纱布过滤后均匀的分装于4个离心杯中，高速离心机8000rpm离心10min，收集上清液。
(2)将步骤(1)中收集的上清液倒入量筒中，准确量体积测得剩余体积为410mL，用6mol/L的盐酸将除菌发酵上清液的pH调为2，将调完pH的上清液置于4℃的冰箱中静置12h，鼠李糖脂沉淀析出。
(3)将步骤(2)中的产生沉淀的发酵液用高速离心机在8000rpm的条件下离心10min，富集沉淀。
(4)将(3)中的沉淀用20mL浓度为0.05mol/L的碳酸氢钠水溶液重悬洗涤，自然沉降，收集上清液，重复重悬-自然沉降-收集上清液的操作3次。
(5)将(4)中的上清液用6mol/L的盐酸调pH调为2，置于4℃的冰箱中静置12h，鼠李糖脂沉淀析出，并在8000rpm的条件下离心10min，收集沉淀。
(6)将(5)中的沉淀中加入20mL乙酸乙酯，对沉淀进行萃取，收集有机相，重复萃取3次。
(7)将(6)中的有机相用旋转蒸发仪在40℃的条件下蒸发浓缩，得到鼠李糖脂粗品。
对比例2
(1)将420mL鼠李糖脂发酵液纱布过滤后均匀的分装于4个离心杯中，高速离心机8000rpm离心10min，收集上清液。
(2)将步骤(1)中收集的上清液倒入量筒中，准确量体积测得剩余体积为410mL，用6mol/L的盐酸将除菌发酵上清液的pH调为2，将调完pH的上清液置于4℃的冰箱中静置12h，鼠李糖脂沉淀析出。
(3)将步骤(2)中的产生沉淀的发酵液用高速离心机在8000rpm的条件下离心10min，富集沉淀。
(4)将(3)中的沉淀用20mL浓度为0.05mol/L的碳酸氢钠水溶液重悬洗涤，自然沉降，收集上清液，重复重悬-自然沉降-收集上清液的操作3次。
(5)将(4)中的上清液用6mol/L的盐酸调pH调为2，置于4℃的冰箱中静置12h，鼠李糖脂沉淀析出，并在8000rpm的条件下离心10min，收集沉淀。
(6)将(5)中的沉淀中加入20mL乙酸乙酯，对沉淀进行萃取，收集有机相，重复萃取3次。
(7)将(6)中的有机相与0.2mol/L的pH为8的硼砂盐酸缓冲溶液等体积混合，使乙酸乙酯中的鼠李糖脂反萃取到磷酸盐缓冲溶液中，得到鼠李糖脂溶液。
实施例1
(1)将420mL鼠李糖脂发酵液纱布过滤后均匀的分装于4个离心杯中，高速离心机8000rpm离心10min，收集上清液。
(2)将步骤(1)中收集的上清液倒入量筒中，准确量体积测得剩余体积为410mL，用6mol/L的盐酸将除菌发酵上清液的pH调为2，将调完pH的上清液置于4℃的冰箱中静置12h，鼠李糖脂沉淀析出。
(3)将步骤(2)中的产生沉淀的发酵液用高速离心机在8000rpm的条件下离心10min，富集沉淀。
(4)将(3)中的沉淀用20mL浓度为0.05mol/L的碳酸氢钠水溶液重悬洗涤，自然沉降，收集上清液，重复重悬-自然沉降-收集上清液的操作3次。
(5)将(4)中的上清液用6mol/L的盐酸调pH调为2，置于4℃的冰箱中静置12h，鼠李糖脂沉淀析出，并在8000rpm的条件下离心10min，收集沉淀。
(6)将(5)中的沉淀中加入20mL乙酸乙酯，对沉淀进行萃取，收集有机相，重复萃取3次。
(7)将(6)中的有机相与0.2mol/L的pH为8的磷酸盐缓冲溶液(0.2mol/L)等体积混合，使乙酸乙酯中的鼠李糖脂反萃取到磷酸盐缓冲溶液中，得到鼠李糖脂溶液。
对比例1得到的鼠李糖脂为粘稠状液体，纯度为50％左右，溶于水时是乳白色的溶液；对比例2中得到的鼠李糖脂为乳白色水溶液，纯度不高于66％；实施例1得到的鼠李糖脂外观如图1所示，纯度为90％左右，溶于水是澄清透明的溶液。
表1对比例1～2和实施例1所得鼠李糖脂溶液性质
Figure BDA0003019414460000061
Figure BDA0003019414460000071
本发明分离的鼠李糖脂表面性质评价方法与结果
临界胶束浓度(CMC)由表面张力法确定。制备不同浓度(c,0-1000mg/L)的鼠李糖脂溶液，利用表面张力仪测定其表面张力(γ)，并绘制γ-lgc曲线，曲线的转折点即为鼠李糖脂临界胶束浓度(CMC)，其结果如图2所示。
从图2可以看出本发明得到的鼠李糖脂临界胶束浓度为80mg/mL而十二烷基磺酸钠(SDS)的临界胶束浓度在600至1500mg/mL之间，说明鼠李糖脂的表面性质明显优于SDS。
本发明分离的鼠李糖脂乳化性评价方法与结果
鼠李糖脂的乳化能力由乳化指数(E24)表示。制备浓度为1g/L的鼠李糖脂溶液，测定其乳化指数。将3mL的疏水性有机物(大豆油、液体石蜡或正己烷与3mL的鼠李糖脂溶液混合，将混合液于8000r/min条件下均质2min，然后静置24h并测量乳状液层高度，根据公式(1)计算乳化指数(E24，％)：
乳化指数(％)＝乳化层高度/混合物总高度×％ (1)
对照组将鼠李糖脂分别改成SDS、十六烷基三甲基氯化铵(CTAC)、吐温80，其他条件不变，其结果如图3所示。
从图3实验结果可知，本发明得到的鼠李糖脂对液体石蜡、大豆油、正己烷的乳化指数接近于SDS、CTAC、吐温80。
本发明分离的鼠李糖脂起泡性评价方法与结果
泡沫性能可用起泡比表示，用泡沫分析仪测定鼠李糖脂在硬水中的起泡性。在泡沫分析仪的样品玻璃罐中分别加入250mL(试样体积)浓度为2g/L的鼠李糖脂溶液和SDS溶液(硬水配制)，然后在1000r/min条件下搅拌5min，每隔15s记录泡沫体积。并用式(2)计算起泡比。
起泡比(％)＝V/试样体积×100％ (2)
式中V为搅拌停止时的泡沫体积。
通过计算，鼠李糖脂的起泡比为280.4％，SDS的起泡比为113.7％，从结果可以看出，本发明得到的鼠李糖脂在硬水中起泡性显著优于SDS。
本发明分离的鼠李糖脂抑菌活性评价方法与结果(抑菌圈及最低抑菌浓度)
采用琼脂打孔法测定鼠李糖脂的抑菌活性。将供试菌种(金黄色葡萄球菌ATCC6538(Staphylococcus aureus)、大肠杆菌ATCC25922(Escherichia coli)、白色念珠菌ATCC10231(Candida albicans))在37℃的LB或YPD培养基中培养至对数期，将培养好的菌液稀释到106CFU/mL，往直径为90mm的平板中注入1mL菌液，然后注入约50℃的琼脂培养基30mL(金黄色葡萄球菌及大肠杆菌使用LB琼脂培养基，白色念珠菌使用YPD琼脂培养基)，充分混合均匀，冷却凝固后备用。用已灭菌的打孔器(孔径6mm)在试验琼脂平板上打孔，往圆孔中注入20μL的鼠李糖脂(10mg/mL)，以化学防腐剂甲基异噻唑啉酮(MIT)及天然抑菌剂壳聚糖(10mg/mL)为阳性对照，无菌水为阴性对照。将平板在37℃(细菌)及28℃(真菌)下培养24小时，并使用透明公制尺测量观察到的抑制区直径(mm)，测量其抑菌圈直径。进行三次平行实验，取平均值，结果如表2所示。
采用微量肉汤稀释法测定鼠李糖脂的最低抑菌浓度(MIC)。用培养基(LB培养基或YPD培养基)在96孔板中将鼠李糖脂通过二倍稀释法进行稀释，使后一排鼠李糖脂的浓度是前排的一半，再分别加入菌液100μL(106CFU/mL)，使各孔鼠李糖脂浓度分别为10、5、2.5、1.25、0.63、0.313、0.156、0.078、0.039、0.02、0.01、0.005mg/mL，并以化学防腐剂甲基异噻唑啉酮(MIT)及天然抑菌剂壳聚糖作阳性对照，培养基作阴性对照。将96孔板置于37℃(细菌)或28℃(真菌)下培养24h并加以观察，以不出现浑浊的最后一孔对应的浓度即为相应抑菌剂对供试菌的MIC值，结果如表3所示。
表2抑菌圈实验结果
Figure BDA0003019414460000091
表3最低抑菌浓度实验结果
Figure BDA0003019414460000092
从抑菌圈直径及最低抑菌浓度实验结果来看，本发明分离的鼠李糖脂抗菌性接近于化学防腐剂MIT，并明显优于壳聚糖。
上述实施例为本发明较佳的实施方式，但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制，其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化，均应为等效的置换方式，都包含在本发明的保护范围之内。

Claims (8)

1.一种分离纯化生物表面活性剂鼠李糖脂的方法，其特征在于，包括以下步骤：
(1)将鼠李糖脂发酵液过滤，收集滤液，离心，取上清液；
(2)用酸调节步骤(1)上清液的pH，使鼠李糖脂析出，静置，离心，收集沉淀；
(3)用碳酸氢钠溶液重悬步骤(2)的沉淀，自然沉降，收集上清液；
(4)用酸调节步骤(3)上清液的pH，使鼠李糖脂析出，静置，离心，收集沉淀；
(5)将步骤(4)的沉淀加入有机溶剂中进行萃取，收集有机相，将有机相与磷酸盐缓冲溶液混匀，静置分层，使有机相中的鼠李糖脂反萃取到水相中，下层水相即为纯化后的鼠李糖脂溶液；
步骤(5)所述磷酸盐缓冲溶液的pH为7～8；磷酸盐缓冲溶液的体积为有机相体积的1～3倍；所述磷酸盐缓冲溶液的浓度为0.1～0.2mol/L；
步骤(5)所述有机溶剂为氯仿和乙酸乙酯中的至少一种；步骤(5)所述有机溶剂与步骤(4)沉淀的质量比为10：1～20：1。
2.根据权利要求1所述一种分离纯化生物表面活性剂鼠李糖脂的方法，其特征在于，步骤(3)所述碳酸氢钠溶液的浓度为0.05～0.1mol/L，溶剂为水。
3.根据权利要求1所述一种分离纯化生物表面活性剂鼠李糖脂的方法，其特征在于，步骤(3)所述碳酸氢钠溶液与步骤(2)沉淀的质量比为10：1～20：1。
4.根据权利要求1所述一种分离纯化生物表面活性剂鼠李糖脂的方法，其特征在于，步骤(2)和(4)所述酸均为磷酸、盐酸和硫酸中的至少一种，所述酸以溶液的形式加入，酸溶液的浓度为4～6mol/L，将上清液的pH调至2～3。
5.根据权利要求1所述一种分离纯化生物表面活性剂鼠李糖脂的方法，其特征在于，步骤(3)所述重悬、自然沉降和收集上清液的操作重复1～3次，重复1次的操作即是将所得的上清液用碳酸氢钠溶液重悬，自然沉降后收集上清液。
6.根据权利要求1所述一种分离纯化生物表面活性剂鼠李糖脂的方法，其特征在于，步骤(2)和(4)所述静置均为在4℃环境中静置8～12h。
7.根据权利要求1所述一种分离纯化生物表面活性剂鼠李糖脂的方法，其特征在于，步骤(1)所述离心指收集到的鼠李糖脂发酵液在8000～10000rpm下离心10～15min；步骤(2)和(4)所述离心均指在4000～10000rpm下离心8～10min。
8.根据权利要求1所述一种分离纯化生物表面活性剂鼠李糖脂的方法，其特征在于，步骤(5)所述有机溶剂萃取1～5次。
CN202110398316.0A 2021-04-14 2021-04-14 一种分离纯化生物表面活性剂鼠李糖脂的方法 Active CN113150043B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202110398316.0A CN113150043B (zh) 2021-04-14 2021-04-14 一种分离纯化生物表面活性剂鼠李糖脂的方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202110398316.0A CN113150043B (zh) 2021-04-14 2021-04-14 一种分离纯化生物表面活性剂鼠李糖脂的方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN113150043A CN113150043A (zh) 2021-07-23
CN113150043B true CN113150043B (zh) 2022-10-18

Family

ID=76890473

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202110398316.0A Active CN113150043B (zh) 2021-04-14 2021-04-14 一种分离纯化生物表面活性剂鼠李糖脂的方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN113150043B (zh)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN114249779B (zh) * 2021-10-27 2023-10-03 南京理工大学 一种鼠李糖脂的分离方法

Also Published As

Publication number Publication date
CN113150043A (zh) 2021-07-23

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CA2984762C (en) A semi-continuous process for the production of rhamnolipids at high yield and titer
CN102061327B (zh) 一种枯草菌脂肽钠的制备方法
CN106750056B (zh) 一种三氯生两亲性聚合物纳米粒子及其制法与抗菌应用
CN113150043B (zh) 一种分离纯化生物表面活性剂鼠李糖脂的方法
CN113336807B (zh) 一种酸型槐糖脂的制备及纯化方法
WO2015153476A1 (en) Methods of producing glycolipids
CN112156719B (zh) 一种两性糖脂生物表面活性剂及其制备方法
CN113621444B (zh) 一种鼠李糖脂复合表面活性剂的制备方法和应用
Lv et al. The impact of particulate and soluble organic matter on physicochemical properties of extracellular polymeric substances in a microalga Neocystis mucosa SX
EP4335858A1 (en) Method for purifying sophorolipid
KR102376108B1 (ko) 락톤형 소포로리피드의 정제방법
US20220364128A1 (en) Methods of preparing biosurfactants using carbon dioxide and/or lignocellulose as substrate
DE19628454A1 (de) Rhamnolipid-Alginatpolymer-Komplexe, deren mikrobielle Herstellung mit dafür geeigneten Mikroorganismen und ihre Anwendung
CN105859911B (zh) 一种透明质酸分离纯化的方法
JP2003277416A (ja) 糖類を含むアクリルアミド水溶液
CN109913516B (zh) 一种驱油活性剂
CN111233948A (zh) 一种鼠李糖脂钙、制备方法及用途
CN113801186A (zh) 一种提取枯草芽孢杆菌发酵液中抗菌脂肽类化合物的方法
CN101012152A (zh) 一种从发酵液中分离2,3－丁二醇的双水相萃取方法
CN103342760B (zh) 一种从微生物发酵液中制备透明质酸的方法
CN113897407B (zh) 一株铜绿假单胞菌及其应用
CN103525884A (zh) 一种糖脂类生物表面活性剂及其生产工艺
LU501700B1 (en) Marine bacterium aerococcus urinaeequi hz and polysaccharide produced by the same
EP0103177B1 (de) Abtrennung mikrobieller Polysaccharide als Amin-Addukte und deren Verwendung
TW201331369A (zh) 利用類芽孢桿菌生產界面活性劑和胞外多醣的方法

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant