CN112813050B - 热稳定性降低的外切菊粉酶突变体MutP126Q - Google Patents

Abstract

本发明公开了一种热稳定性降低的外切菊粉酶突变体MutP126Q，该突变体MutP126Q具有如SEQIDNO.1所示的氨基酸序列。与野生酶InuAMN8相比，突变酶MutP126Q更容易热变性。55℃处理20–60min后，纯化的野生酶InuAMN8的酶活从50％降至17％，而突变酶MutP126Q的酶活从39％降至10％，两者的酶活始终相差在10％左右。本发明的热稳定性降低的外切菊粉酶突变体MutP126Q可应用于食品、酿酒和医药等行业。

Description

热稳定性降低的外切菊粉酶突变体MutP126Q

技术领域

本发明涉及一种外切菊粉酶突变体，具体涉及一种热稳定性降低的外切菊粉酶突变体MutP126Q。

背景技术

菊粉是带有一分子葡萄糖残基的果聚糖，是菊芋块茎的主要成分，可占其湿重的19％或干重的70％。菊芋是替代粮食类淀粉质原料的重要作物，具有易种植、产量高、耐寒、耐贫瘠及耐干旱等优良性能。

外切型菊粉酶从菊粉的非还原端逐个水解β-2,1糖苷键，最终生成果糖和少部分的葡萄糖，该果糖浆中果糖含量可达到总糖量的95％。果糖广泛用于食品、医药、生物能源等行业，可作为天然甜味剂替代蔗糖，可以供糖尿病患者食用，可以用来生产生物乙醇等。因而，外切菊粉酶可应用于食品、酿酒和医药等行业中(Singh RS et al.InternationalJournal of Biological Macromolecules,2017,96:312–322)。

对热越敏感的酶越容易变性，热变性又使酶容易被降解，该特性使酶的催化反应得以简易控制，同时使酶的使用更具安全性，在食品、酿酒和医药等行业中具有应用的价值。因此，获得热稳定性降低的突变酶，将有利于酶在食品、酿酒和医药等行业中的应用。

发明内容

本发明的目的是提供一种热稳定性降低的外切菊粉酶突变体MutP126Q，该突变酶MutP126Q更容易热变性，有利于通过温度变化控制酶的催化反应，能应用于食品、酿酒和医药等行业。

为了达到上述目的，本发明提供了热稳定性降低的外切菊粉酶突变体MutP126Q，该突变体MutP126Q具有如SEQ ID NO.1所示的氨基酸序列。与GenBank记录的外切菊粉酶序列AGC01505(SEQ ID NO.3)相比，MutP126Q的第126位氨基酸为谷氨酰胺，而AGC01505的第126位氨基酸为脯氨酸。

本发明的突变体MutP126Q，最适温度为35℃，在20℃具有52％的酶活；50℃处理10–60min后，MutP126Q的酶活保持在81％以上；55℃处理10–60min后，MutP126Q的酶活从66％降至10％。

本发明的另一目的是提供所述的突变体MutP126Q的编码基因mutP126Q。

优选地，所述编码基因mutP126Q具有如SEQ ID NO.2所示的核苷酸序列。

本发明的另一目的是提供包含所述的编码基因mutP126Q的重组载体。

本发明的另一目的是提供包含所述的编码基因mutP126Q的重组菌。

本发明的另一目的是提供所述的突变体MutP126Q的制备方法，该方法包含：将具有如SEQ ID NO.4所示核苷酸序列的野生外切菊粉酶基因inuAMN8和表达载体pEasy-E1相连接，获得包含inuAMN8的重组表达质粒pEasy-E1-inuAMN8；以质粒pEasy-E1-inuAMN8为模板，以如SEQ ID NO.7和SEQ ID NO.8所示核苷酸序列的突变引物，通过PCR扩增得到包含mutP126Q的重组表达质粒pEasy-E1-mutP126Q；将重组表达质粒pEasy-E1-mutP126Q转化大肠杆菌BL21(DE3)，获得包含mutP126Q的重组菌株；培养重组菌株，诱导重组外切菊粉酶突变体MutP126Q表达，以获得重组外切菊粉酶突变体MutP126Q。

优选地，所述包含mutP126Q的重组菌株的制备为，将所述重组表达质粒pEasy-E1-mutP126Q经DpnI酶消化，利用Mut

II FastMutagenesis Kit试剂盒将消化产物进行连接，再通过热激方式转化到大肠杆菌BL21(DE3)中。

优选地，所述诱导采用IPTG进行诱导。

优选地，所述重组外切菊粉酶突变体MutP126Q表达的产物经Nickel-NTAAgarose和0–500mM的咪唑分别亲和和纯化，获得重组外切菊粉酶突变体MutP126Q。

所述的突变体MutP126Q在食品、酿酒及医药中的应用。

本发明的热稳定性降低的外切菊粉酶突变体MutP126Q，具有以下优点：

与野生酶InuAMN8相比，突变酶MutP126Q更容易热变性，有利于通过温度变化控制酶的催化反应。55℃处理20–60min后，纯化的野生酶InuAMN8的酶活从50％降至17％，而突变酶MutP126Q的酶活从39％降至10％，两者的酶活始终相差在10％左右。本发明的热稳定性降低的外切菊粉酶突变体MutP126Q可应用于食品、酿酒和医药等行业。

附图说明

图1为野生酶InuAMN8和突变酶MutP126Q的SDS-PAGE分析。

图2为纯化的野生酶InuAMN8和突变酶MutP126Q的热活性。

图3为纯化的野生酶InuAMN8和突变酶MutP126Q在50℃时的稳定性。

图4为纯化的野生酶InuAMN8和突变酶MutP126Q在55℃时的稳定性。

具体实施方式

下面将对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述，显然，所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例，都属于本发明保护的范围。

以下实施例中的实验材料和试剂：

1、菌株及载体

大肠杆菌Escherichia coli BL21(DE3)和表达载体pEasy-E1可购自北京全式金生物技术有限公司；节杆菌(Arthrobacter sp.)由云南师范大学提供，保藏于云南省微生物研究所菌种保藏中心，保藏号为YMF 4.00006。

2、酶类及其它生化试剂

Nickel-NTAAgarose购自QIAGEN公司，DNA聚合酶、dNTP及Mut

II FastMutagenesis Kit试剂盒购自南京诺维赞公司，菊粉购自Alfa Aesar公司，细菌基因组DNA提取试剂盒购自天根生化科技(北京)有限公司，其它都为国产试剂(均可从普通生化试剂公司购买得到)。

3、培养基

LB培养基：Peptone 10g，Yeast extract 5g，NaCl 10g，加蒸馏水至1000mL，pH自然(约为7)。固体培养基在此基础上加2.0％(w/v)琼脂。

说明：以下实施例中未作具体说明的分子生物学实验方法，均参照《分子克隆实验指南》(第三版)J.萨姆布鲁克一书中所列的具体方法进行，或者按照试剂盒和产品说明书进行。

实施例1野生酶InuAMN8表达载体的构建和转化

(1)提取节杆菌基因组DNA：将液体培养2d的菌液离心取菌体，加入1mL溶菌酶，37℃处理60min，然后按照细菌基因组DNA提取试剂盒(天根生化科技(北京)有限公司)说明书提取节杆菌基因组DNA，置于-20℃备用。

(2)根据GenBank记录的外切菊粉酶核苷酸序列JQ863111(SEQ ID NO.4)，设计引物5'-ATGAATTCATTGACGACGGC-3'(SEQ ID NO.5)和5'-TCAACGGCCGACGACGTCGA-3'(SEQ IDNO.6)，以节杆菌基因组DNA为模板进行PCR扩增，PCR反应参数为：95℃变性5min；然后95℃变性30sec，58℃退火30sec，72℃延伸1min 30sec，30个循环后72℃保温5min。PCR结果得到野生外切菊粉酶InuAMN8的编码基因inuAMN8。根据外切菊粉酶核苷酸序列JQ863111，inuAMN8也可以通过基因合成得到。

(3)将外切菊粉酶基因inuAMN8和表达载体pEasy-E1相连接，获得包含inuAMN8的重组表达质粒pEasy-E1-inuAMN8。

(4)通过热激方式，将pEasy-E1-inuAMN8转化大肠杆菌BL21(DE3)，获得包含inuAMN8的重组大肠杆菌菌株BL21(DE3)/inuAMN8。

实施例2突变酶MutP126Q表达载体的构建和转化

(1)设计引物5'-CCGCTTCAGGGCCGGCAGGCGCAGTCGCTCGC-3'(SEQ ID NO.7)和5'-TGCCGGCCCTGAAGCGGCGCGGCGTCACTGTA-3'(SEQ ID NO.8)，以质粒pEasy-E1-inuAMN8为模板进行PCR扩增，PCR反应参数为：95℃变性30sec；然后95℃变性15sec，70℃退火15sec，72℃延伸3min 30sec，30个循环后72℃保温5min。PCR结果得到包含mutP126Q(SEQ ID NO.2)的重组表达线性化质粒pEasy-E1-mutP126Q。mutP126Q和pEasy-E1-mutP126Q也可以通过基因合成得到。

(2)在50μL线性化质粒pEasy-E1-mutP126Q的PCR产物中，加入1μL DpnI酶，于37℃消化1h。

(3)利用Mut

II Fast Mutagenesis Kit试剂盒，将步骤(2)中的消化产物置于37℃下连接30min。

(4)将步骤(3)中的连接产物通过热激方式转化到大肠杆菌BL21(DE3)中，获得包含mutP126Q的重组菌株BL21(DE3)/mutP126Q。

实施例3重组野生酶InuAMN8和突变酶MutP126Q的制备

(1)将重组菌株BL21(DE3)/inuAMN8和BL21(DE3)/mutP126Q以0.1％的接种量分别接种于LB(含100μg·mL^-1Amp)培养液中，37℃快速振荡16h。

(2)然后将此活化的菌液以1％接种量分别接种到新鲜的LB(含100μg·mL^-1Amp)培养液中，快速振荡培养约2–3h(OD₆₀₀达到0.6-1.0)后，加入终浓度0.7mM的IPTG进行诱导，于20℃继续振荡培养约20h。12000r pm离心5min，收集菌体。用适量的pH＝7.0McIlvainebuffer悬浮菌体后，于低温水浴下超声波破碎菌体。以上胞内浓缩的粗酶液经13,000rpm离心10min后，吸取上清并用Nickel-NTA Agarose和0–500mM的咪唑分别亲和和纯化目的蛋白。

(3)SDS-PAGE结果(参见图1，M：蛋白质Marker)表明，重组InuAMN8(SEQ ID NO.3)和MutP126Q(SEQ ID NO.1)都获得了纯化，产物为单一条带。

实施例4纯化的重组野生酶InuAMN8和突变酶MutP126Q的性质测定

1、纯化的重组野生酶InuAMN8和突变酶MutP126Q的活性分析

活性测定方法采用3,5－二硝基水杨酸(DNS)法：将底物菊粉溶于缓冲液中，使其终浓度为0.5％(w/v)；反应体系含50μL适量酶液，450μL底物；底物在反应温度下预热5min后，加入酶液后再反应10min，然后加750μL DNS终止反应，沸水煮5min，冷却至室温后在540nm波长下测定OD值；1个酶活单位(U)定义为在给定的条件下每分钟分解底物产生1μmol还原糖(以果糖计)所需的酶量。

2、纯化的重组野生酶InuAMN8和突变酶MutP126Q的热活性测定

在pH＝7.0的缓冲液中，于0–60℃下进行酶促反应。以菊粉为底物，反应10min，测定重组野生酶InuAMN8和突变酶MutP126Q的酶学性质。

结果表明：野生酶InuAMN8和突变酶MutP126Q具有相似的热活性曲线，最适温度都为35℃；但InuAMN8和MutP126Q在50℃时的酶活分别为40％和26％(参见图2)。

3、纯化的重组野生酶InuAMN8和突变酶MutP126Q的热稳定性测定

将同样酶量的酶液分别置于50℃和55℃处理10–60min后，在pH＝7.0及37℃下进行酶促反应，以未处理的酶液作为对照。以菊粉为底物，反应10min，测定重组野生酶InuAMN8和突变酶MutP126Q的酶学性质。

结果表明：50℃处理10–60min后，野生酶InuAMN8和突变酶MutP126Q都能保持81％以上的酶活(参见图3)；55℃处理20–60min后，野生酶InuAMN8的酶活从50％降至17％，而突变酶MutP126Q的酶活从39％降至10％，两者的酶活始终相差在10％左右(参见图4)。

尽管本发明的内容已经通过上述优选实施例作了详细介绍，但应当认识到上述的描述不应被认为是对本发明的限制。在本领域技术人员阅读了上述内容后，对于本发明的多种修改和替代都将是显而易见的。因此，本发明的保护范围应由所附的权利要求来限定。

序列表

<110> 云南师范大学

<120> 热稳定性降低的外切菊粉酶突变体MutP126Q

<160> 8

<170> SIPOSequenceListing 1.0

<210> 1

<211> 505

<212> PRT

<213> 突变酶(MutP126Q)

<400> 1

Met Asn Ser Leu Thr Thr Ala Ala Gly Ala Thr Leu Ala Ala Thr Asp

1 5 10 15

Gln Tyr Arg Pro Ala Phe His Tyr Thr Ala Glu Arg Asn Trp Leu Asn

20 25 30

Asp Pro Asn Gly Leu Val Tyr Leu Asn Gly Thr Tyr His Leu Phe Tyr

35 40 45

Gln His Asn Pro Phe Gly Ala Asp Trp Gly Asn Met Ser Trp Gly His

50 55 60

Ala Thr Ser Arg Asp Leu Leu His Trp Asp Glu Gln Pro Val Ala Ile

65 70 75 80

Pro Cys Asp Glu His Glu Ala Ile Phe Ser Gly Ser Ala Val Phe Asp

85 90 95

Gln His Asn Thr Ser Gly Leu Gly Thr Ala Ala Asn Pro Pro Leu Val

100 105 110

Ala Ile Tyr Thr Ser Ala Tyr Ser Asp Ala Ala Pro Leu Gln Gly Arg

115 120 125

Gln Ala Gln Ser Leu Ala Tyr Ser Leu Asp Glu Gly Arg Thr Trp Thr

130 135 140

Lys Tyr His Gly Asn Pro Val Leu Asp Arg Ala Ser Ala Asp Phe Arg

145 150 155 160

Asp Pro Lys Val Phe Trp Tyr Asp Gly Gly Ala Gly Ser Tyr Trp Val

165 170 175

Met Val Ala Val Glu Ala Val Gln Arg Gln Val Val Leu Tyr Lys Ser

180 185 190

Ala Asp Leu Lys Ala Trp Glu His Leu Ser Thr Phe Gly Pro Ala Asn

195 200 205

Ala Thr Gly Gly Val Trp Glu Cys Pro Asp Leu Phe Glu Leu Pro Val

210 215 220

Asp Gly Asn Pro Glu Asp Asn Arg Trp Val Leu Ile Val Asn Ile Asn

225 230 235 240

Pro Gly Gly Ile Ala Gly Gly Ser Ala Gly Gln Tyr Phe Val Gly Glu

245 250 255

Phe Asp Gly Val Ala Phe His Ser Gly Ser Thr Val Thr Glu Gly Leu

260 265 270

Gln Lys Asp Ser Ser Arg Met Arg Glu Tyr Gly Trp Leu Asp Trp Gly

275 280 285

Arg Asp Tyr Tyr Ala Ala Val Ser Phe Ser Asn Val Pro Asp Gly Arg

290 295 300

Arg Ile Met Ile Gly Trp Met Asn Asn Trp Asp Tyr Ala Arg Glu Thr

305 310 315 320

Pro Thr Gly Gly Trp Arg Ser Ala Met Ser Leu Pro Arg Glu Val Ser

325 330 335

Leu Thr Arg Val Asp Gly Lys Val Met Leu Arg Gln Gln Ala Ile Asp

340 345 350

Pro Leu Pro Glu Arg Glu Thr Gly His Val Arg Leu Gly Pro Gln Pro

355 360 365

Leu Ala Ser Gly Val Leu Asp Val Pro Ala Ala Ala Ser Val Ala Arg

370 375 380

Ile Asp Val Glu Leu Glu Pro Gly Ala Ala Ala Gly Val Gly Leu Val

385 390 395 400

Leu Arg Ala Gly Asp Asp Glu Arg Thr Val Leu Arg Tyr Asp Thr Ser

405 410 415

Asp Gly Met Leu Arg Leu Asp Arg Arg Glu Ser Gly Gln Val Ala Phe

420 425 430

His Glu Thr Phe Pro Ser Ile Glu Ala Met Ala Val Pro Leu Gln Gly

435 440 445

Gly Arg Leu Arg Leu Arg Val Tyr Leu Asp Arg Cys Ser Val Glu Val

450 455 460

Phe Ala Gln Asp Gly Leu Ala Thr Leu Thr Asp Leu Val Phe Pro Gly

465 470 475 480

Glu Ala Ser Thr Gly Leu Ala Ile Phe Ala Glu Gly Glu Gly Ala His

485 490 495

Leu Val Val Leu Asp Val Val Gly Arg

500 505

<210> 2

<211> 1518

<212> DNA

<213> 突变酶基因(mutP126Q)

<400> 2

atgaattcat tgacgacggc ggcgggcgcc acgttggctg ccaccgacca gtaccggccc 60

gcgttccact acaccgccga acggaactgg ttgaacgatc cgaacgggct ggtgtacctc 120

aacggcacct accacctctt ctaccagcac aacccgttcg gcgctgactg gggcaacatg 180

tcctgggggc acgccacctc gcgggacctg ctgcactggg acgagcagcc cgtggccatt 240

ccgtgcgacg aacacgaggc catcttctcc ggctcggcgg tattcgatca gcacaacacc 300

agcggcctcg gcacagcggc caatcccccg ctggtggcca tttacaccag tgcctacagt 360

gacgccgcgc cgcttcaggg ccggcaggcg cagtcgctcg cctacagcct cgacgaaggc 420

cggacctgga ccaagtacca cggcaatccc gtgctggacc gcgcgtccgc tgacttccgc 480

gatccaaagg ttttttggta cgacggcggc gccggaagtt actgggtgat ggtcgccgtc 540

gaggcggtgc agcgccaggt agtgctgtac aagtcggccg acctgaaggc gtgggaacac 600

ctgagcacct ttggccctgc caacgccacc ggcggcgtct gggaatgccc ggacctgttt 660

gagctgcccg tggacgggaa tccggaggac aaccggtggg tcctcattgt gaacatcaac 720

ccgggcggca ttgccggcgg ctccgcggga cagtacttcg tgggagagtt cgacggcgtg 780

gcgttccatt ccggatcgac tgtcaccgag ggcctccaga aggacagcag ccggatgcgg 840

gagtacggct ggctggactg ggggcgggac tactacgccg ccgtttcgtt cagcaacgtg 900

ccggacgggc gccggatcat gatcggctgg atgaacaact gggactacgc ccgcgagacg 960

cccaccggcg gctggcgcag cgccatgtcc ctgccgcggg aggtgtcgct gacccgggta 1020

gacgggaaag tgatgcttcg gcagcaagcc attgatccgt tgccggagcg ggaaacaggg 1080

cacgtccggc tggggccgca gcccttggcg tccggcgttc tggacgttcc ggccgccgca 1140

tccgtggcgc ggatcgacgt tgagctggag ccgggcgctg ccgcgggagt gggactggtg 1200

cttcgggcgg gggacgatga gcggacggtc ctccgctacg acacttcgga cgggatgctg 1260

cggctggacc gccgcgaatc cgggcaggtt gccttccacg aaaccttccc gtcgatcgaa 1320

gccatggccg tgcccttgca gggaggccgg ctgcgcctgc gggtctacct ggaccgctgc 1380

tcggtggagg ttttcgccca ggacgggctc gccacgctca ctgacctggt gttccccggg 1440

gaggcgagca cgggcctggc catcttcgcc gaaggtgagg gggcgcacct cgtggtgctc 1500

gacgtcgtcg gccgttga 1518

<210> 3

<211> 505

<212> PRT

<213> 野生酶InuAMN8(AGC01505)

<400> 3

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20 25 30

Asp Pro Asn Gly Leu Val Tyr Leu Asn Gly Thr Tyr His Leu Phe Tyr

35 40 45

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50 55 60

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65 70 75 80

Pro Cys Asp Glu His Glu Ala Ile Phe Ser Gly Ser Ala Val Phe Asp

85 90 95

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100 105 110

Ala Ile Tyr Thr Ser Ala Tyr Ser Asp Ala Ala Pro Leu Pro Gly Arg

115 120 125

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130 135 140

Lys Tyr His Gly Asn Pro Val Leu Asp Arg Ala Ser Ala Asp Phe Arg

145 150 155 160

Asp Pro Lys Val Phe Trp Tyr Asp Gly Gly Ala Gly Ser Tyr Trp Val

165 170 175

Met Val Ala Val Glu Ala Val Gln Arg Gln Val Val Leu Tyr Lys Ser

180 185 190

Ala Asp Leu Lys Ala Trp Glu His Leu Ser Thr Phe Gly Pro Ala Asn

195 200 205

Ala Thr Gly Gly Val Trp Glu Cys Pro Asp Leu Phe Glu Leu Pro Val

210 215 220

Asp Gly Asn Pro Glu Asp Asn Arg Trp Val Leu Ile Val Asn Ile Asn

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Pro Gly Gly Ile Ala Gly Gly Ser Ala Gly Gln Tyr Phe Val Gly Glu

245 250 255

Phe Asp Gly Val Ala Phe His Ser Gly Ser Thr Val Thr Glu Gly Leu

260 265 270

Gln Lys Asp Ser Ser Arg Met Arg Glu Tyr Gly Trp Leu Asp Trp Gly

275 280 285

Arg Asp Tyr Tyr Ala Ala Val Ser Phe Ser Asn Val Pro Asp Gly Arg

290 295 300

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Pro Leu Pro Glu Arg Glu Thr Gly His Val Arg Leu Gly Pro Gln Pro

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500 505

<210> 4

<211> 1518

<212> DNA

<213> 野生酶基因inuAMN8(JQ863111)

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<210> 5

<211> 20

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 5

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<210> 6

<211> 20

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 6

tcaacggccg acgacgtcga 20

<210> 7

<211> 32

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 7

ccgcttcagg gccggcaggc gcagtcgctc gc 32

<210> 8

<211> 32

<212> DNA

<213> 人工序列(Artificial Sequence)

<400> 8

tgccggccct gaagcggcgc ggcgtcactg ta 32

Claims (11)

1.热稳定性降低的外切菊粉酶突变体MutP126Q，其特征在于，该突变体MutP126Q的氨基酸序列如SEQ ID NO. 1所示。

2.如权利要求1所述的突变体MutP126Q的编码基因mutP126Q。

3.根据权利要求2所述的编码基因mutP126Q，其特征在于，所述编码基因mutP126Q的核苷酸序列如SEQ ID NO. 2所示。

4.包含如权利要求2或3所述的编码基因mutP126Q的重组载体。

5.包含如权利要求2或3所述的编码基因mutP126Q的重组菌。

6.如权利要求1所述的突变体MutP126Q的制备方法，其特征在于，该方法包含：

将核苷酸序列如SEQ ID NO. 4所示的野生外切菊粉酶基因inuAMN8和表达载体pEasy-E1相连接，获得包含inuAMN8的重组表达质粒pEasy-E1-inuAMN8；

以质粒pEasy-E1-inuAMN8为模板，以如SEQ ID NO. 7和SEQ ID NO. 8所示核苷酸序列的突变引物，通过PCR扩增得到包含mutP126Q的重组表达质粒pEasy-E1-mutP126Q；

将重组表达质粒pEasy-E1-mutP126Q转化大肠杆菌BL21(DE3)，获得包含mutP126Q的重组菌株；

培养重组菌株，诱导重组外切菊粉酶突变体MutP126Q表达，以获得重组外切菊粉酶突变体MutP126Q。

7.根据权利要求6所述的制备方法，其特征在于，所述包含mutP126Q的重组菌株的制备为，将所述重组表达质粒pEasy-E1-mutP126Q经DpnI酶消化，利用Mut Express® II FastMutagenesis Kit试剂盒将消化产物进行连接，再通过热激方式转化到大肠杆菌BL21(DE3)中。

8.根据权利要求6所述的制备方法，其特征在于，所述诱导采用IPTG进行诱导。

9.根据权利要求6所述的制备方法，其特征在于，所述重组外切菊粉酶突变体MutP126Q表达的产物经Nickel-NTA Agarose亲和，再经0–500mM且不为0mM的咪唑洗脱纯化，获得重组外切菊粉酶突变体MutP126Q。

10.如权利要求1所述的突变体MutP126Q在食品行业的应用。

11.根据权利要求10所述的应用，其特征在于，所述食品行业为酿酒行业。

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