CN112725306B - 热盐性改变的菊粉酶突变体MutY119T及其应用 - Google Patents

热盐性改变的菊粉酶突变体MutY119T及其应用 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种热盐性改变的菊粉酶突变体MutY119T及其应用，该菊粉酶突变体MutY119T的氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示，该突变体MutY119T的氨基酸序列是将野生外切菊粉酶InuAMN8的第119位酪氨酸突变为苏氨酸获得的。与野生酶InuAMN8相比，本发明的突变酶MutY119T的低温活性提高，热稳定性降低，在氯化钠中的活性和稳定性降低，有利于酶的安全性使用和应用于低温环境要求下的生物技术领域。本发明的低温外切菊粉酶突变体MutY119T可应用于食品、酿酒和洗涤等行业。

Description

热盐性改变的菊粉酶突变体MutY119T及其应用
技术领域
本发明涉及一种菊粉酶突变体，具体涉及一种热盐性改变的菊粉酶突变体MutY119T及其应用。
背景技术
菊粉主要存在于菊芋、菊苣、蒲公英、牛蒡和朝鲜蓟等植物体的根部或茎部，是一种来源丰富的可再生资源。菊芋价格低廉、产量高，更重要的是菊芋属于非粮作物，这些特点使菊芋的有效利用成为关注的焦点。
菊粉经外切菊粉酶水解，可得到糖含量高达95％的果糖浆。果糖甜度是蔗糖的1.5～2.0倍，并且热量低、风味好，可作为天然甜味剂替代蔗糖；果糖代谢不受胰岛素的制约，可以供糖尿病患者食用；果糖经酵母等发酵后可以用来生产生物乙醇、2,3-丁二醇等。因而，外切菊粉酶可应用于食品、酿酒和生物能源等行业中(Singh RS et al.InternationalJournal of Biological Macromolecules,2017,96:312～322)。
低温酶在低温下具有高的催化活性，可应用于低温环境要求下的生物技术领域，如清酒和葡萄酒的发酵温度一般<25℃，水产养殖环境、洗涤、污水处理通常在低温下进行。另外，低温下的处理(如果汁澄清)可防止微生物的污染、营养损失和食品品质降低，将中温或者高温处理方式转为低温处理方式还可起到降低能耗的作用(Cavicchioli etal.Microbial Biotechnology,2011,4(4):449～460)。因此，提高酶在低温下的催化活性将有利于酶在食品、酿酒和洗涤等行业中的应用。
对热和盐越敏感的酶越容易变性，变性又使酶容易被降解，该特性使酶的催化反应得以简易控制，简单的热处理或者盐处理就可以使酶失活，操作简便又有效，同时使酶的使用更具安全性；热处理和盐处理还可以有效防止微生物的污染。因此，获得热和盐敏感的突变酶，将有利于酶在食品、酿酒和洗涤等行业中的应用。
发明内容
本发明的目的是提供一种热盐性改变的菊粉酶突变体MutY119T及其应用，该突变酶MutY119T的低温活性提高，热稳定性降低，在氯化钠中的活性和稳定性降低。
为了达到上述目的，本发明提供了热盐性改变的菊粉酶突变体MutY119T，该菊粉酶突变体MutY119T的氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示。与GenBank记录的外切菊粉酶序列AGC01505(SEQ ID NO.3)相比，MutY119T的第119位氨基酸为苏氨酸，而AGC01505的119位氨基酸为酪氨酸。
本发明的突变体MutY119T的最适温度为30℃，在0℃、10℃、20℃和40℃时分别具有19％、41％、73％和56％的活性；50℃处理60min后，MutY119T剩余41％的酶活；在酶促反应体系中添加5.0～25.0％(w/v)的NaCl，MutY119T的活性从59％降到24％；经5.0～25.0％(w/v)的NaCl处理60min后，MutY119T的酶活从97％降到89％；MutY119T可水解菊粉产生果糖。
本发明的另一目的是提供所述的菊粉酶突变体MutY119T的编码基因mutY119T。
优选地，该编码基因mutY119T的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示。
本发明的另一目的是提供包含所述的编码基因mutY119T的重组载体。
本发明的另一目的是提供包含所述的编码基因mutY119T的重组菌。
本发明的另一目的是提供所述的菊粉酶突变体MutY119T的制备方法，该制备方法包含：
(1)将野生外切菊粉酶基因inuAMN8和表达载体pEasy-E1相连接，获得包含inuAMN8的重组表达质粒pEasy-E1-inuAMN8；
(2)以质粒pEasy-E1-inuAMN8为模板，采用的引物的核苷酸序列如S EQ ID NO.7和SEQ ID NO.8所示，通过PCR扩增得到包含mutY119T的重组表达质粒pEasy-E1-mutY119T；
(3)将重组表达质粒pEasy-E1-mutY119T转化大肠杆菌BL21(DE3)，获得包含mutY119T的重组菌株；
(4)培养重组菌株，诱导重组外切菊粉酶突变体MutY119T表达；
(5)回收并纯化所表达的重组外切菊粉酶突变体MutY119T。
优选地，所述包含mutY119T的重组菌株的制备为，将所述重组表达质粒pEasy-E1-mutY119T经DpnI酶消化，利用Mut
Figure BDA0002896069960000031
II FastMutagenesis Kit试剂盒将消化产物进行连接，再通过热激方式转化到大肠杆菌BL21(DE3)中。
优选地，所述诱导采用IPTG进行诱导。
优选地，所述包含mutY119T的重组菌株的表达产物经Nickel-NTA Agarose和0～500mM的咪唑分别亲和和纯化，获得重组外切菊粉酶突变体MutY119T。
本发明的另一目的是提供所述的突变体MutY119T在食品、酿酒及洗涤中的应用。
本发明的热盐性改变的菊粉酶突变体MutY119T及其应用，具有以下优点：
与野生酶InuAMN8相比，本发明的突变酶MutY119T的低温活性得到提高，热稳定性降低，在氯化钠中的活性和稳定性降低。野生酶InuAMN8的最适温度为35℃，在0℃、10℃、20℃和40℃时分别具有15％、32％、58％和94％的活性；而本发明的突变酶MutY119T的最适温度为30℃，在0℃、10℃、20℃和40℃时分别具有19％、41％、73％和56％的活性；50℃处理60min后，野生酶InuAMN8剩余82％的酶活，突变酶MutY119T剩余41％的酶活；在酶促反应体系中添加5.0～25.0％(w/v)的NaCl，野生酶InuAMN8的活性从79％降到15％，突变酶MutY119T的活性从59％降到24％；经5.0～25.0％(w/v)的NaCl处理60min后，野生酶InuAMN8的酶活几乎没有损失，而本发明的突变酶MutY119T的酶活从97％降到89％。因此，本发明的低温外切菊粉酶突变体MutY119T可应用于食品、酿酒和洗涤等行业。
附图说明
图1为野生酶InuAMN8和突变酶MutY119T的SDS-PAGE分析。
图2为纯化的野生酶InuAMN8和突变酶MutY119T的热活性。
图3为纯化的野生酶InuAMN8和突变酶MutY119T在50℃时的稳定性。
图4为纯化的野生酶InuAMN8和突变酶MutY119T在NaCl中的活性。
图5为纯化的野生酶InuAMN8和突变酶MutY119T在NaCl的稳定性。
图6为纯化的野生酶InuAMN8和突变酶MutY119T水解菊粉的产物分析。
标号：图1中，M：蛋白质Marker；图6中，W：野生酶InuAMN8水解菊粉的产物；CK：对照组，含菊粉和失活的野生酶InuAMN8(煮沸10min)；F：果糖；G：葡萄糖；Mut：突变酶MutY119T水解菊粉的产物。
具体实施方式
下面将对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述，显然，所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例，都属于本发明保护的范围。
本发明以下实施例中的实验材料和试剂：
1、菌株及载体：
大肠杆菌Escherichia coli BL21(DE3)和表达载体pEasy-E1可购自北京全式金生物技术有限公司；节杆菌(Arthrobacter sp.)由云南师范大学提供。
2、酶类及其它生化试剂：
Nickel-NTAAgarose购自QIAGEN公司，DNA聚合酶、dNTP及Mut
Figure BDA0002896069960000041
II FastMutagenesis Kit试剂盒购自南京诺维赞公司，菊粉购自Alfa Aesar公司，细菌基因组DNA提取试剂盒购自天根生化科技(北京)有限公司，其它都为国产试剂(均可从普通生化试剂公司购买得到)。
3、培养基
LB培养基：Peptone 10g，Yeast extract 5g，NaCl 10g，加蒸馏水至1000mL，pH自然(约为7)。固体培养基在此基础上加2.0％(w/v)琼脂。
说明：以下实施例中未作具体说明的分子生物学实验方法，均参照《分子克隆实验指南》(第三版)J.萨姆布鲁克一书中所列的具体方法进行，或者按照试剂盒和产品说明书进行。
实施例1野生酶InuAMN8表达载体的构建和转化
(1)提取节杆菌基因组DNA：将液体培养2d(天)的菌液离心取菌体，加入1mL溶菌酶，37℃处理60min，然后按照细菌基因组DNA提取试剂盒(购自天根生化科技(北京)有限公司)说明书提取节杆菌基因组DNA，置于-20℃备用。
(2)根据GenBank记录的外切菊粉酶核苷酸序列JQ863111(SEQ ID NO.4)，设计引物5'-ATGAATTCATTGACGACGGC-3'(SEQ ID NO.5)和5'-TCAACGGCCGACGACGTCGA-3'(SEQ IDNO.6)，以节杆菌基因组D NA为模板进行PCR扩增，PCR反应参数为：95℃变性5min；然后95℃变性30sec，58℃退火30sec，72℃延伸1min 30sec，30个循环后72℃保温5min。PCR结果得到野生外切菊粉酶InuAMN8的编码基因inuAMN8。根据外切菊粉酶核苷酸序列JQ863111，inuAMN8也可以通过基因合成得到。
(3)将外切菊粉酶基因inuAMN8和表达载体pEasy-E1相连接，获得包含inuAMN8的重组表达质粒pEasy-E1-inuAMN8。
(4)通过热激方式，将pEasy-E1-inuAMN8转化大肠杆菌BL21(DE3)，获得包含inuAMN8的重组大肠杆菌菌株BL21(DE3)/inuAMN8。
实施例2突变酶MutY119T表达载体的构建和转化
(1)设计引物5'-TTACACCAGTGCCACCAGTGACGCCGCGCCGCTT-3'(SEQ ID NO.7)和5'-TGGTGGCACTGGTGTAAATGGCCACCAGCGGG-3'(SEQ ID NO.8)，以质粒pEasy-E1-inuAMN8为模板进行PCR扩增，PC R反应参数为：95℃变性30sec；然后95℃变性15sec，70℃退火15sec，72℃延伸3min 30sec，30个循环后72℃保温5min。PCR结果得到包含mut Y119T(SEQ ID NO.2)的重组表达线性化质粒pEasy-E1-mutY119T。mutY119T和pEasy-E1-mutY119T也可以通过基因合成得到。
(2)在50μL线性化质粒pEasy-E1-mutY119T的PCR产物中，加入1μL DpnI酶，于37℃消化1h。
(3)利用Mut
Figure BDA0002896069960000051
II Fast Mutagenesis Kit试剂盒，将步骤(2)中的消化产物置于37℃下连接30min。
(4)将步骤(3)中的连接产物通过热激方式转化到大肠杆菌BL21(DE3)中，获得包含mutY119T的重组菌株BL21(DE3)/mutY119T。
实施例3重组野生酶InuAMN8和突变酶MutY119T的制备
(1)将重组菌株BL21(DE3)/inuAMN8和BL21(DE3)/mutY119T以0.1％的接种量分别接种于LB(含100μg·mL-1Amp)培养液中，37℃快速振荡16h。
(2)然后将此活化的菌液以1％接种量分别接种到新鲜的LB(含100μg·mL-1Amp)培养液中，快速振荡培养约2～3h(OD600达到0.6～1.0)后，加入终浓度0.7mM的IPTG进行诱导，于20℃继续振荡培养约20h。12000r pm离心5min，收集菌体。用适量的pH＝7.0McIlvainebuffer悬浮菌体后，于低温水浴下超声波破碎菌体。以上胞内浓缩的粗酶液经13,000rpm离心10min后，吸取上清并用Nickel-NTA Agarose和0～500mM的咪唑分别亲和和纯化目的蛋白。
(3)SDS-PAGE结果(图1)表明，重组InuAMN8(SEQ ID NO.3)和MutY119T(SEQ IDNO.1)都获得了纯化，产物为单一条带。
实施例4纯化的重组野生酶InuAMN8和突变酶MutY119T的性质测定
1、纯化的重组野生酶InuAMN8和突变酶MutY119T的活性分析
活性测定方法采用3,5－二硝基水杨酸(DNS)法：将底物菊粉溶于缓冲液中，使其终浓度为0.5％(w/v)；反应体系含50μL适量酶液，450μL底物；底物在反应温度下预热5min后，加入酶液后再反应10min，然后加750μL DNS终止反应，沸水煮5min，冷却至室温后在540nm波长下测定OD值；1个酶活单位(U)定义为在给定的条件下每分钟分解底物产生1μmol还原糖(以果糖计)所需的酶量。
2、纯化的重组野生酶InuAMN8和突变酶MutY119T的热活性测定
在pH＝7.0的缓冲液中，于0～60℃下进行酶促反应。以菊粉为底物，反应10min，测定重组野生酶InuAMN8和突变酶MutY119T的酶学性质。
结果表明：野生酶InuAMN8的最适温度为35℃，在0℃、10℃、20℃和40℃时分别具有15％、32％、58％和94％的活性；突变酶MutY119T的最适温度为30℃，在0℃、10℃、20℃和40℃时分别具有19％、41％、73％和56％的活性(参见图2)。
3、纯化的重组野生酶InuAMN8和突变酶MutY119T的热稳定性测定
将同样酶量的酶液置于50℃处理10～60min后，在pH＝7.0及37℃下进行酶促反应，以未处理的酶液作为对照。以菊粉为底物，反应10min，测定重组野生酶InuAMN8和突变酶MutY119T的酶学性质。
结果表明：50℃处理60min后，野生酶InuAMN8剩余82％的酶活，突变酶MutY119T剩余41％的酶活(参见图3)。
4、纯化的重组野生酶InuAMN8和突变酶MutY119T在NaCl中的活性测定
在酶促反应体系中加入5.0～25.0％(w/v)NaCl，于pH7.0及37℃下进行酶促反应。以菊粉为底物，反应10min，测定重组野生酶InuAMN8和突变酶MutY119T的酶学性质。
结果表明：在酶促反应体系中添加5.0～25.0％(w/v)的NaCl，野生酶InuAMN8的活性从79％降到15％，突变酶MutY119T的活性从59％降到24％(参见图4)。
5、纯化的重组野生酶InuAMN8和突变酶MutY119T在NaCl中的稳定性测定
将纯化的酶液置于5.0～25.0％(w/v)的NaCl水溶液中，在37℃下处理60min，然后在pH7.0及37℃下进行酶促反应，以未处理的酶液作为对照。以菊粉为底物，反应10min，测定重组野生酶InuAMN8和突变酶MutY119T的酶学性质。
结果表明：经5.0～25.0％(w/v)的NaCl处理60min后，野生酶InuAMN8的酶活几乎没有损失，而突变酶MutY119T的酶活从97％降到89％(参见图5)。
6、纯化的重组野生酶InuAMN8和突变酶MutY119T水解菊粉的产物分析
产物分析反应体系含450μL 0.5％(w/v)的菊粉，50μL适当稀释酶液(共0.1U酶液)。在pH7.0及37℃下，酶促反应4h后终止反应。产物分析采用薄层层析法(使用青岛海洋化工有限公司的高效薄层层析硅胶板G型)。
薄层层析步骤如下所示：
(1)配制展开剂(冰醋酸20mL，双蒸水20mL，正丁醇40mL，混匀)，取适量倒入展开槽，静置30min左右；
(2)将硅胶板放在110℃烘箱中活化30min，冷却后划线，点样(每次0.5μL，吹干，共点3次)；
(3)将点样的一端硅胶板朝下放入展开槽中，点样点不要没入展开剂；
(4)待展开剂到距硅胶板上沿1.5cm时，取出硅胶板，吹干，再展开一次；
(5)第二次展开结束后，硅胶板直接浸入适量显色剂(1g二苯胺溶于50mL丙酮中，溶解后加入1mL苯胺及5mL 85％的磷酸，混匀，现用现配)；
(6)几秒钟后，立即取出硅胶板并放置于90℃烘箱中10–15min，使斑点显色。
结果表明：野生酶InuAMN8和突变酶MutY119T水解菊粉的产物几乎都为果糖(参见图6)。
尽管本发明的内容已经通过上述优选实施例作了详细介绍，但应当认识到上述的描述不应被认为是对本发明的限制。在本领域技术人员阅读了上述内容后，对于本发明的多种修改和替代都将是显而易见的。因此，本发明的保护范围应由所附的权利要求来限定。
序列表
<110> 云南师范大学
<120> 热盐性改变的菊粉酶突变体MutY119T及其应用
<160> 8
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 505
<212> PRT
<213> 突变酶(MutY119T)
<400> 1
Met Asn Ser Leu Thr Thr Ala Ala Gly Ala Thr Leu Ala Ala Thr Asp
1 5 10 15
Gln Tyr Arg Pro Ala Phe His Tyr Thr Ala Glu Arg Asn Trp Leu Asn
20 25 30
Asp Pro Asn Gly Leu Val Tyr Leu Asn Gly Thr Tyr His Leu Phe Tyr
35 40 45
Gln His Asn Pro Phe Gly Ala Asp Trp Gly Asn Met Ser Trp Gly His
50 55 60
Ala Thr Ser Arg Asp Leu Leu His Trp Asp Glu Gln Pro Val Ala Ile
65 70 75 80
Pro Cys Asp Glu His Glu Ala Ile Phe Ser Gly Ser Ala Val Phe Asp
85 90 95
Gln His Asn Thr Ser Gly Leu Gly Thr Ala Ala Asn Pro Pro Leu Val
100 105 110
Ala Ile Tyr Thr Ser Ala Thr Ser Asp Ala Ala Pro Leu Pro Gly Arg
115 120 125
Gln Ala Gln Ser Leu Ala Tyr Ser Leu Asp Glu Gly Arg Thr Trp Thr
130 135 140
Lys Tyr His Gly Asn Pro Val Leu Asp Arg Ala Ser Ala Asp Phe Arg
145 150 155 160
Asp Pro Lys Val Phe Trp Tyr Asp Gly Gly Ala Gly Ser Tyr Trp Val
165 170 175
Met Val Ala Val Glu Ala Val Gln Arg Gln Val Val Leu Tyr Lys Ser
180 185 190
Ala Asp Leu Lys Ala Trp Glu His Leu Ser Thr Phe Gly Pro Ala Asn
195 200 205
Ala Thr Gly Gly Val Trp Glu Cys Pro Asp Leu Phe Glu Leu Pro Val
210 215 220
Asp Gly Asn Pro Glu Asp Asn Arg Trp Val Leu Ile Val Asn Ile Asn
225 230 235 240
Pro Gly Gly Ile Ala Gly Gly Ser Ala Gly Gln Tyr Phe Val Gly Glu
245 250 255
Phe Asp Gly Val Ala Phe His Ser Gly Ser Thr Val Thr Glu Gly Leu
260 265 270
Gln Lys Asp Ser Ser Arg Met Arg Glu Tyr Gly Trp Leu Asp Trp Gly
275 280 285
Arg Asp Tyr Tyr Ala Ala Val Ser Phe Ser Asn Val Pro Asp Gly Arg
290 295 300
Arg Ile Met Ile Gly Trp Met Asn Asn Trp Asp Tyr Ala Arg Glu Thr
305 310 315 320
Pro Thr Gly Gly Trp Arg Ser Ala Met Ser Leu Pro Arg Glu Val Ser
325 330 335
Leu Thr Arg Val Asp Gly Lys Val Met Leu Arg Gln Gln Ala Ile Asp
340 345 350
Pro Leu Pro Glu Arg Glu Thr Gly His Val Arg Leu Gly Pro Gln Pro
355 360 365
Leu Ala Ser Gly Val Leu Asp Val Pro Ala Ala Ala Ser Val Ala Arg
370 375 380
Ile Asp Val Glu Leu Glu Pro Gly Ala Ala Ala Gly Val Gly Leu Val
385 390 395 400
Leu Arg Ala Gly Asp Asp Glu Arg Thr Val Leu Arg Tyr Asp Thr Ser
405 410 415
Asp Gly Met Leu Arg Leu Asp Arg Arg Glu Ser Gly Gln Val Ala Phe
420 425 430
His Glu Thr Phe Pro Ser Ile Glu Ala Met Ala Val Pro Leu Gln Gly
435 440 445
Gly Arg Leu Arg Leu Arg Val Tyr Leu Asp Arg Cys Ser Val Glu Val
450 455 460
Phe Ala Gln Asp Gly Leu Ala Thr Leu Thr Asp Leu Val Phe Pro Gly
465 470 475 480
Glu Ala Ser Thr Gly Leu Ala Ile Phe Ala Glu Gly Glu Gly Ala His
485 490 495
Leu Val Val Leu Asp Val Val Gly Arg
500 505
<210> 2
<211> 1518
<212> DNA
<213> 突变酶基因(mutY119T)
<400> 2
atgaattcat tgacgacggc ggcgggcgcc acgttggctg ccaccgacca gtaccggccc 60
gcgttccact acaccgccga acggaactgg ttgaacgatc cgaacgggct ggtgtacctc 120
aacggcacct accacctctt ctaccagcac aacccgttcg gcgctgactg gggcaacatg 180
tcctgggggc acgccacctc gcgggacctg ctgcactggg acgagcagcc cgtggccatt 240
ccgtgcgacg aacacgaggc catcttctcc ggctcggcgg tattcgatca gcacaacacc 300
agcggcctcg gcacagcggc caatcccccg ctggtggcca tttacaccag tgccaccagt 360
gacgccgcgc cgcttccggg ccggcaggcg cagtcgctcg cctacagcct cgacgaaggc 420
cggacctgga ccaagtacca cggcaatccc gtgctggacc gcgcgtccgc tgacttccgc 480
gatccaaagg ttttttggta cgacggcggc gccggaagtt actgggtgat ggtcgccgtc 540
gaggcggtgc agcgccaggt agtgctgtac aagtcggccg acctgaaggc gtgggaacac 600
ctgagcacct ttggccctgc caacgccacc ggcggcgtct gggaatgccc ggacctgttt 660
gagctgcccg tggacgggaa tccggaggac aaccggtggg tcctcattgt gaacatcaac 720
ccgggcggca ttgccggcgg ctccgcggga cagtacttcg tgggagagtt cgacggcgtg 780
gcgttccatt ccggatcgac tgtcaccgag ggcctccaga aggacagcag ccggatgcgg 840
gagtacggct ggctggactg ggggcgggac tactacgccg ccgtttcgtt cagcaacgtg 900
ccggacgggc gccggatcat gatcggctgg atgaacaact gggactacgc ccgcgagacg 960
cccaccggcg gctggcgcag cgccatgtcc ctgccgcggg aggtgtcgct gacccgggta 1020
gacgggaaag tgatgcttcg gcagcaagcc attgatccgt tgccggagcg ggaaacaggg 1080
cacgtccggc tggggccgca gcccttggcg tccggcgttc tggacgttcc ggccgccgca 1140
tccgtggcgc ggatcgacgt tgagctggag ccgggcgctg ccgcgggagt gggactggtg 1200
cttcgggcgg gggacgatga gcggacggtc ctccgctacg acacttcgga cgggatgctg 1260
cggctggacc gccgcgaatc cgggcaggtt gccttccacg aaaccttccc gtcgatcgaa 1320
gccatggccg tgcccttgca gggaggccgg ctgcgcctgc gggtctacct ggaccgctgc 1380
tcggtggagg ttttcgccca ggacgggctc gccacgctca ctgacctggt gttccccggg 1440
gaggcgagca cgggcctggc catcttcgcc gaaggtgagg gggcgcacct cgtggtgctc 1500
gacgtcgtcg gccgttga 1518
<210> 3
<211> 505
<212> PRT
<213> 野生酶InuAMN8(AGC01505)
<400> 3
Met Asn Ser Leu Thr Thr Ala Ala Gly Ala Thr Leu Ala Ala Thr Asp
1 5 10 15
Gln Tyr Arg Pro Ala Phe His Tyr Thr Ala Glu Arg Asn Trp Leu Asn
20 25 30
Asp Pro Asn Gly Leu Val Tyr Leu Asn Gly Thr Tyr His Leu Phe Tyr
35 40 45
Gln His Asn Pro Phe Gly Ala Asp Trp Gly Asn Met Ser Trp Gly His
50 55 60
Ala Thr Ser Arg Asp Leu Leu His Trp Asp Glu Gln Pro Val Ala Ile
65 70 75 80
Pro Cys Asp Glu His Glu Ala Ile Phe Ser Gly Ser Ala Val Phe Asp
85 90 95
Gln His Asn Thr Ser Gly Leu Gly Thr Ala Ala Asn Pro Pro Leu Val
100 105 110
Ala Ile Tyr Thr Ser Ala Tyr Ser Asp Ala Ala Pro Leu Pro Gly Arg
115 120 125
Gln Ala Gln Ser Leu Ala Tyr Ser Leu Asp Glu Gly Arg Thr Trp Thr
130 135 140
Lys Tyr His Gly Asn Pro Val Leu Asp Arg Ala Ser Ala Asp Phe Arg
145 150 155 160
Asp Pro Lys Val Phe Trp Tyr Asp Gly Gly Ala Gly Ser Tyr Trp Val
165 170 175
Met Val Ala Val Glu Ala Val Gln Arg Gln Val Val Leu Tyr Lys Ser
180 185 190
Ala Asp Leu Lys Ala Trp Glu His Leu Ser Thr Phe Gly Pro Ala Asn
195 200 205
Ala Thr Gly Gly Val Trp Glu Cys Pro Asp Leu Phe Glu Leu Pro Val
210 215 220
Asp Gly Asn Pro Glu Asp Asn Arg Trp Val Leu Ile Val Asn Ile Asn
225 230 235 240
Pro Gly Gly Ile Ala Gly Gly Ser Ala Gly Gln Tyr Phe Val Gly Glu
245 250 255
Phe Asp Gly Val Ala Phe His Ser Gly Ser Thr Val Thr Glu Gly Leu
260 265 270
Gln Lys Asp Ser Ser Arg Met Arg Glu Tyr Gly Trp Leu Asp Trp Gly
275 280 285
Arg Asp Tyr Tyr Ala Ala Val Ser Phe Ser Asn Val Pro Asp Gly Arg
290 295 300
Arg Ile Met Ile Gly Trp Met Asn Asn Trp Asp Tyr Ala Arg Glu Thr
305 310 315 320
Pro Thr Gly Gly Trp Arg Ser Ala Met Ser Leu Pro Arg Glu Val Ser
325 330 335
Leu Thr Arg Val Asp Gly Lys Val Met Leu Arg Gln Gln Ala Ile Asp
340 345 350
Pro Leu Pro Glu Arg Glu Thr Gly His Val Arg Leu Gly Pro Gln Pro
355 360 365
Leu Ala Ser Gly Val Leu Asp Val Pro Ala Ala Ala Ser Val Ala Arg
370 375 380
Ile Asp Val Glu Leu Glu Pro Gly Ala Ala Ala Gly Val Gly Leu Val
385 390 395 400
Leu Arg Ala Gly Asp Asp Glu Arg Thr Val Leu Arg Tyr Asp Thr Ser
405 410 415
Asp Gly Met Leu Arg Leu Asp Arg Arg Glu Ser Gly Gln Val Ala Phe
420 425 430
His Glu Thr Phe Pro Ser Ile Glu Ala Met Ala Val Pro Leu Gln Gly
435 440 445
Gly Arg Leu Arg Leu Arg Val Tyr Leu Asp Arg Cys Ser Val Glu Val
450 455 460
Phe Ala Gln Asp Gly Leu Ala Thr Leu Thr Asp Leu Val Phe Pro Gly
465 470 475 480
Glu Ala Ser Thr Gly Leu Ala Ile Phe Ala Glu Gly Glu Gly Ala His
485 490 495
Leu Val Val Leu Asp Val Val Gly Arg
500 505
<210> 4
<211> 1518
<212> DNA
<213> 野生酶基因inuAMN8(JQ863111)
<400> 4
atgaattcat tgacgacggc ggcgggcgcc acgttggctg ccaccgacca gtaccggccc 60
gcgttccact acaccgccga acggaactgg ttgaacgatc cgaacgggct ggtgtacctc 120
aacggcacct accacctctt ctaccagcac aacccgttcg gcgctgactg gggcaacatg 180
tcctgggggc acgccacctc gcgggacctg ctgcactggg acgagcagcc cgtggccatt 240
ccgtgcgacg aacacgaggc catcttctcc ggctcggcgg tattcgatca gcacaacacc 300
agcggcctcg gcacagcggc caatcccccg ctggtggcca tttacaccag tgcctacagt 360
gacgccgcgc cgcttccggg ccggcaggcg cagtcgctcg cctacagcct cgacgaaggc 420
cggacctgga ccaagtacca cggcaatccc gtgctggacc gcgcgtccgc tgacttccgc 480
gatccaaagg ttttttggta cgacggcggc gccggaagtt actgggtgat ggtcgccgtc 540
gaggcggtgc agcgccaggt agtgctgtac aagtcggccg acctgaaggc gtgggaacac 600
ctgagcacct ttggccctgc caacgccacc ggcggcgtct gggaatgccc ggacctgttt 660
gagctgcccg tggacgggaa tccggaggac aaccggtggg tcctcattgt gaacatcaac 720
ccgggcggca ttgccggcgg ctccgcggga cagtacttcg tgggagagtt cgacggcgtg 780
gcgttccatt ccggatcgac tgtcaccgag ggcctccaga aggacagcag ccggatgcgg 840
gagtacggct ggctggactg ggggcgggac tactacgccg ccgtttcgtt cagcaacgtg 900
ccggacgggc gccggatcat gatcggctgg atgaacaact gggactacgc ccgcgagacg 960
cccaccggcg gctggcgcag cgccatgtcc ctgccgcggg aggtgtcgct gacccgggta 1020
gacgggaaag tgatgcttcg gcagcaagcc attgatccgt tgccggagcg ggaaacaggg 1080
cacgtccggc tggggccgca gcccttggcg tccggcgttc tggacgttcc ggccgccgca 1140
tccgtggcgc ggatcgacgt tgagctggag ccgggcgctg ccgcgggagt gggactggtg 1200
cttcgggcgg gggacgatga gcggacggtc ctccgctacg acacttcgga cgggatgctg 1260
cggctggacc gccgcgaatc cgggcaggtt gccttccacg aaaccttccc gtcgatcgaa 1320
gccatggccg tgcccttgca gggaggccgg ctgcgcctgc gggtctacct ggaccgctgc 1380
tcggtggagg ttttcgccca ggacgggctc gccacgctca ctgacctggt gttccccggg 1440
gaggcgagca cgggcctggc catcttcgcc gaaggtgagg gggcgcacct cgtggtgctc 1500
gacgtcgtcg gccgttga 1518
<210> 5
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 5
atgaattcat tgacgacggc 20
<210> 6
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 6
tcaacggccg acgacgtcga 20
<210> 7
<211> 34
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 7
ttacaccagt gccaccagtg acgccgcgcc gctt 34
<210> 8
<211> 32
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 8
tggtggcact ggtgtaaatg gccaccagcg gg 32

Claims (11)

1.热盐性改变的菊粉酶突变体MutY119T，其特征在于，该菊粉酶突变体MutY119T的氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示。
2.如权利要求1所述的菊粉酶突变体MutY119T的编码基因mutY119T。
3.根据权利要求2所述的编码基因mutY119T，其特征在于，该编码基因mutY119T的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示。
4.包含如权利要求2或3所述的编码基因mutY119T的重组载体。
5.包含如权利要求2或3所述的编码基因mutY119T的重组菌。
6.如权利要求1所述的菊粉酶突变体MutY119T的制备方法，其特征在于，该制备方法包含：
（1）将核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示的野生外切菊粉酶基因inuAMN8和表达载体pEasy-E1相连接，获得包含inuAMN8的重组表达质粒pEasy-E1-inuAMN8；
（2）以质粒pEasy-E1-inuAMN8为模板，采用的引物的核苷酸序列如SEQ ID NO.7和SEQID NO.8所示，通过PCR扩增得到包含mutY119T的重组表达质粒pEasy-E1-mutY119T；
（3）将重组表达质粒pEasy-E1-mutY119T转化大肠杆菌BL21(DE3)，获得包含mutY119T的重组菌株；
（4）培养重组菌株，诱导重组外切菊粉酶突变体MutY119T表达；
（5）回收并纯化所表达的重组外切菊粉酶突变体MutY119T。
7.根据权利要求6所述的制备方法，其特征在于，所述包含mutY119T的重组菌株的制备为，将所述重组表达质粒pEasy-E1-mutY119T经DpnI酶消化，利用Mut Express® II FastMutagenesis Kit试剂盒将消化产物进行连接，再通过热激方式转化到大肠杆菌BL21(DE3)中。
8.根据权利要求6所述的制备方法，其特征在于，所述诱导采用IPTG进行诱导。
9.根据权利要求6所述的制备方法，其特征在于，所述包含mutY119T的重组菌株的表达产物经Nickel-NTA Agarose亲和，再经0~500mM且不为0mM的咪唑洗脱纯化，获得重组外切菊粉酶突变体MutY119T。
10.如权利要求1所述的突变体MutY119T在食品行业的应用。
11.根据权利要求10所述的应用，其特征在于，所述的食品行业包含：酿酒行业。
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