CN112655559A - 一种茶树的组培快速繁殖方法 - Google Patents
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Abstract
本发明属于茶树组织培养技术领域,公开了一种茶树的组培快速繁殖方法,所述茶树的组培快速繁殖方法的新生枝条腋芽茎段采用初代培养基0.1mg/L IBA+0.01mg/L TDZ+MS培养基;无菌外植体接种于继代增殖培养基0.1mg/L IBA+2mg/L 6‑BA+1.0mg/L GA3+MS培养基;小苗接种于无糖生根培养基1.0mg/L IBA+1/2MS+蛭石。本发明以提高茶树‘平阳特早’丛生芽的增殖率以及成苗率为目的,优化了茶树平阳特早组培快繁培养基的激素组合,使每月一个周期的增殖率可达到3倍以上,超过20%的芽能长成高度5cm以上、适合移栽的小苗。
Description
技术领域
本发明属于茶树组织培养技术领域,尤其涉及一种茶树的组培快速繁殖方法。
背景技术
目前,最接近的现有技术:现有技术是在组织培养中进行生根,1.生长条件:常规组织培养采用的是240ml或者300ml的小组培瓶,虽然可以透光但是利用率较低,瓶盖的遮挡也占大部分原因。组培瓶内有较高的相对湿度,低的光照强度,稀薄的CO2浓度,这些条件均不利于茶苗生长及生根。无糖生根培养的环境类似于在自然环境下,透光性好,增加光强,便于气体交换,增加容器内的换气次数,气体分布均匀,而且可采取强制性换气。2.根际环境:常规组织培养加入蔗糖,而糖的存在极易造成污染以致生根率降低,生长发育迟缓甚至死亡,也将导致叶片表层结构发育差,气孔开闭功能不强,抑制和降低茶苗的光合作用力。在琼脂中生根,根系瘦小脆弱,在移栽的过程中容易损伤或死亡。幼苗在移栽驯化前需要将组培苗根部的琼脂洗去,防止定植后病菌的侵染而影响驯化成活率,难以清洗,造成损伤,而无糖生根培养就没有这一步骤,节省了劳动力,从而降低生产成本。无糖生根培养可以改变碳源的供应方式,将常规组织培养的异养变为兼养或自养。无糖生根培养采用的培养基质是蛭石,多空的无机材料(良好的空气扩散系数)有利于根系的萌发和伸长生长。茶树的组织培养研究从二十世纪80年代就已经开始了,外植体通常采用叶片、腋芽等。但由于茶树是多年生的木本植物,生长速度慢,因此存在增殖率、成苗率较低的问题。
茶树的组织培养从19世纪80年代左右就已经有科学家开始研究了,近几年国外也有科学家对茶树的组织培养体系进行了研究,而国内相关的研究报告很少。在培养基中加入大量蔗糖,导致微生物滋生,产生大量污染。无糖生根改变碳源的提供方式可以很大程度的减少污染。直到现在也是存在增殖率低,生长速度慢,生根培养周期长的问题,在茶树栽培方面,无糖生根技术几乎没有成熟的体系,仍旧是组织培养技术用于茶树生产性育苗的瓶颈。
综上所述,现有技术存在的问题是:目前的茶树的组织培养存在增殖率低,生长速度慢,生根培养周期长。
解决上述技术问题的意义:摸索适合茶树生根条件,解决问题后可以缩短生周期。
发明内容
针对现有技术存在的问题,本发明提供了一种茶树的组培快速繁殖方法。
本发明是这样实现的,一种茶树的组培快速繁殖方法,所述茶树的组培快速繁殖方法的新生枝条腋芽茎段采用初代培养基0.1mg/L IBA+0.01mg/L TDZ+MS培养基;无菌外植体接种于继代增殖培养基0.1mg/L IBA+2mg/L6-BA+1.0mg/L GA3+MS培养基;小苗接种于无糖生根培养基1.0mg/L IBA+1/2MS+蛭石。初代培养基可以使茶苗出芽,继代增殖培养基可以增大扩繁系数为3,大量扩繁茶树组培苗,生根培养基可以提供良好的环境和营养促进茶树生根。
进一步,所述茶树的组培快速繁殖方法具体包括以下步骤:
第一步,材料于温室基质培养,采新生枝条,顶芽以下三个腋芽为标准,去掉叶片,自来水冲洗,无菌水震荡洗涤,75%酒精消毒,无菌水洗一次,HgCL2灭菌,无菌水震荡洗涤,切成1cm带腋芽茎段,插入0.1mg/L IBA+0.01mg/L TDZ+MS培养基中,暗培养,进入光培养;
第二步,将无菌外植体接种于继代培养基0.1mg/L IBA+2mg/L 6-BA+1.0mg/L GA3+MS培养基,暗培养后,继续培养;
第三步,将继代培养苗接种于增殖扩繁培养基0.1mg/L IBA+0.02mg/L TDZ+1.0mg/L AdSO4+MS培养基,暗培养后,继续培养;
第四步,选择长势一致,生命力旺盛的组培苗,切去根部愈伤,为2cm高的小苗,接种于无糖生根培养1/2MS+1.5mg/L IBA+蛭石,暗培养,继续培养。
进一步,所述第一步采新生枝条,顶芽以下三个腋芽为标准,去掉叶片,自来水冲洗2h,无菌水震荡洗涤10min,75%酒精消毒30s,无菌水洗一次。
进一步,所述第一步HgCL2灭菌8-10min,无菌水震荡洗涤6次,切成1cm带腋芽茎段。
进一步,所述第一步继续培养条件光照2000-3000lx,温度23±1℃。
进一步,所述第二步暗培养24h后,在光照2500-7500lx,温度23±1℃的条件下培养。
进一步,所述第三步暗培养24h后,在光照2500-7500lx,温度23±1℃条件下培养。
进一步,所述第四步暗培养3d,在光照2500-7500lx,温度25±1℃条件下培养。
综上所述,本发明的优点及积极效果为:本发明采用的初代培养基为0.1mg/L IBA+0.01mg/L TDZ+MS培养基,继代增殖培养基为0.1mg/L IBA+2mg/L6-BA+1.0mg/L GA3+MS培养基,无糖生根培养基为1.0mg/L IBA+1/2MS+蛭石。不仅仅加快了‘平阳特早’的繁殖速度,也缩短了‘平阳特早’生根移栽周期,更保证了茶树的优良特性,为茶产业的发展和进一步扩大提供了更便捷的途径和方法。
本发明以提高茶树‘平阳特早’丛生芽的增殖率以及成苗率为目的,优化了茶树平阳特早组培快繁培养基的激素组合,使每月一个周期的增殖率可达到3倍以上,超过20%的芽能长成高度5cm以上、适合移栽的小苗。
附图说明
图1是本发明实施例提供的茶树的组培快速繁殖方法流程图。
图2是本发明实施例提供的壮苗示意图。
图3是本发明实施例提供的无糖生根示意图。
图4是本发明实施例提供的根长示意图。
图5是本发明实施例提供的根表面积示意图。
图6是本发明实施例提供的根体积示意图。
具体实施方式
为了使本发明的目的、技术方案及优点更加清楚明白,以下结合实施例,对本发明进行进一步详细说明。应当理解,此处所描述的具体实施例仅仅用以解释本发明,并不用于限定本发明。
针对现有技术存在的问题,本发明提供了一种茶树的组培快速繁殖方法,下面结合附图对本发明作详细的描述。
如图1所示,本发明实施例提供的茶树的组培快速繁殖方法包括以下步骤:
S101:以‘平阳特早’为材料,本材料于温室基质培养,采新生枝条,顶芽以下三个腋芽为标准,去掉叶片,自来水冲洗2h,无菌水震荡洗涤10min,75%酒精消毒30s,无菌水洗一次,HgCL2灭菌8-10min(视材料情况定),无菌水震荡洗涤6次,切成1cm带腋芽茎段,插入0.1mg/L IBA+0.01mg/L TDZ+MS培养基中,暗培养48h,进入光培养。培养条件光照2000-3000lx,温度23±1℃。
S102:将无菌外植体接种于继代培养基0.1mg/L IBA+2mg/L 6-BA+1.0mg/L GA3+MS培养基,暗培养24h后,在光照2500-7500lx,温度23±1℃的条件下培养。
S103:将继代培养苗接种于增殖扩繁培养基0.1mg/L IBA+0.02mg/L TDZ+1.0mg/LAdSO4+MS培养基,暗培养24h后,在光照2500-7500lx,温度23±1℃条件下培养,30天后统计增殖率和成苗率。
S104:选择长势一致,生命力旺盛的组培苗,切去根部愈伤,为2cm高的小苗,接种于无糖生根培养1/2MS+1.5mg/L IBA+蛭石,暗培养3d,在光照2500-7500lx,温度25±1℃条件下培养。
下面结合试验对本发明的技术效果作详细的描述。
1、材料与方法
试验材料为茶树‘平阳特早’春季新萌发枝条,采自西北农林科技大学科研温室。将采集的新枝条去叶清洗干净、消毒,切成带一个腋芽的1cm长的茎段,接种培养基中进行萌发,萌发以后在新的培养基接种3-4次,即得到丛生芽团,作为实验材料。无糖生根激素IBA的浓度是1.0mg/L。
2、实验条件继代方法是将丛生芽团切开成每个带1-2个芽团的新芽团,接种到新的继代培养基。
3、细胞分裂素浓度对增殖及生长的影响,共设4个浓度梯度,为1.5、2.0、2.5、3.0。每个处理设置3个重复,每个重复接种10瓶材料。在接种后的第30天,分别对每个芽团的芽团的芽头数目及高的适合移栽的小苗进行统计,计算增殖率(观察时的芽数/接种时的芽数)以及成苗率。
培养条件是温度为23±1℃,光照时间为12h,光强2000-3000lx。实验培养基为MS基础培养基。激素浓度单位均为mg/L。
生长素采用IBA0.1 mg/L,细胞分裂素采用BA(6-苄氨基腺嘌呤)。
本发明茶树‘平阳特早’组培及无糖生根方法,与现有技术相比较具有以下优点:激素对茶树组织培养中芽增殖和生长的影响,发现对于茶组培苗的增殖,6-BA浓度在2.0mg/L左右比较合适;IBA在0.1mg/L左右较好,促进增殖的效果较明显。GA3对增殖和生长也有促进作用,特别是能够较好的促进芽头成为小苗,其浓度为1.0mg/L的时候效果最好。茶苗在组培过程中的生长变化为静止,生长快,有缓慢,所以设6-8周为周期。本发明的另一个优势是缩短炼苗的时间,直接进行无糖生根技术培养,移栽,由兼养变自养,同时也提高了幼苗成活率。
以上所述仅为本发明的较佳实施例而已,并不用以限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内所作的任何修改、等同替换和改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
Claims (8)
1.一种茶树的组培快速繁殖方法,其特征在于,所述茶树的组培快速繁殖方法的新生枝条腋芽茎段采用初代培养基0.1mg/L IBA+0.01mg/L TDZ+MS培养基;无菌外植体接种于继代增殖培养基0.1mg/L IBA+2mg/L 6-BA+1.0mg/L GA3+MS培养基;小苗接种于无糖生根培养基1.0mg/L IBA+1/2MS+蛭石。
2.如权利要求1所述的茶树的组培快速繁殖方法,其特征在于,所述茶树的组培快速繁殖方法具体包括以下步骤:
第一步,材料于温室基质培养,采新生枝条,顶芽以下三个腋芽为标准,去掉叶片,自来水冲洗,无菌水震荡洗涤,75%酒精消毒,无菌水洗一次,HgCL2灭菌,无菌水震荡洗涤,切成1cm带腋芽茎段,插入0.1mg/L IBA+0.01mg/L TDZ+MS培养基中,暗培养,进入光培养;
第二步,将无菌外植体接种于继代培养基0.1mg/L IBA+2mg/L 6-BA+1.0mg/L GA3+MS培养基,暗培养后,继续培养;
第三步,将继代培养苗接种于增殖扩繁培养基0.1mg/L IBA+0.02mg/L TDZ+1.0mg/LAdSO4+MS培养基,暗培养后,继续培养;
第四步,选择长势一致,生命力旺盛的组培苗,切去根部愈伤,为2cm高的小苗,接种于无糖生根培养1/2MS+1.5mg/L IBA+蛭石,暗培养,继续培养。
3.如权利要求2所述的茶树的组培快速繁殖方法,其特征在于,所述第一步采新生枝条,顶芽以下三个腋芽为标准,去掉叶片,自来水冲洗2h,无菌水震荡洗涤10min,75%酒精消毒30s,无菌水洗一次。
4.如权利要求2所述的茶树的组培快速繁殖方法,其特征在于,所述第一步HgCL2灭菌8-10min,无菌水震荡洗涤6次,切成1cm带腋芽茎段。
5.如权利要求2所述的茶树的组培快速繁殖方法,其特征在于,所述第一步继续培养条件光照2000-3000lx,温度23±1℃。
6.如权利要求2所述的茶树的组培快速繁殖方法,其特征在于,所述第二步暗培养24h后,在光照2500-7500lx,温度23±1℃的条件下培养。
7.如权利要求2所述的茶树的组培快速繁殖方法,其特征在于,所述第三步暗培养24h后,在光照2500-7500lx,温度23±1℃条件下培养。
8.如权利要求2所述的茶树的组培快速繁殖方法,其特征在于,所述第四步暗培养3d,在光照2500-7500lx,温度25±1℃条件下培养。
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