CN111748542A - 一种内切木聚糖酶突变体s07a11及制备方法和应用 - Google Patents

一种内切木聚糖酶突变体s07a11及制备方法和应用 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种内切木聚糖酶突变体S07A11及制备方法和应用,突变体S07A11的氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示,其最适pH为5.0,最适温度为70℃。与野生酶相比,突变内切木聚糖酶S07A11在10.0mM的β‑Mercaptoethanol、ZnSO4和FeSO4中的活性、在3.0~25.0%(w/v)的NaCl和Na2SO4中的活性、在3.0~30.0%(w/v)的NaNO3中活性得到了改良。本发明的突变内切木聚糖酶S07A11可应用于酱油酿造、清洁剂添加剂和污水处理等生物技术领域。

Description

一种内切木聚糖酶突变体S07A11及制备方法和应用
技术领域
本发明属于基因工程技术领域,涉及蛋白质改造技术,具体为一种内切木聚糖酶突变体S07A11及制备方法和应用。
背景技术
木质纤维素是植物通过光合作用产生的主要干物质,也是地球上最丰富的生物质。木质纤维素是由木质素(18–30%)、纤维素(28–50%)和半纤维素(20–30%)构成的高分子复合物。木聚糖是半纤维素的主要组成成分,是半纤维素中最丰富的一类异质多聚糖。内切木聚糖酶是木聚糖降解过程中发挥重要的作用的酶类,产生低聚木糖,可应用于食品、饲料、造纸、洗涤、环保及能源等领域(Collins et al.FEMS Microbiol Rev,2005,29:3–23.)。氯化钠、硫酸盐、磺酸盐、碳酸盐等盐类广泛存在于在自然界和各种生产实践中,良好盐抗性的木聚糖酶能够具有更好的适应复杂的催化环境,如海产品处理、高盐稀态酱油发酵和洗涤等领域(Warden和Williams,Nat Commun,2015,6:10278.)。
按照糖苷水解酶家族分类,目前,所发现的内切木聚糖酶主要分为GH10和11家族,基因资源丰富。但是,多数酶缺乏盐抗性的功能研究,尤其是高浓度盐对其催化活性的影响,耐盐性的机理还有待阐述。定向进化是一种不依赖于机理的蛋白质分子改造常用手段。本专利从DNA家族改组(DNA Family shuffling)的突变库中筛选到盐抗性改良的突变体,有利于推动木聚糖酶在高盐环境领域的应用,亦为阐释酶耐盐性机理的提供了参考依据。
发明内容
本发明的目的在于提供一种内切木聚糖酶突变体S07A11,可应用于酱油酿造、清洁剂添加剂和污水处理等生物技术领域。
本发明具体通过以下技术方案实现:
本发明提供了一种内切木聚糖酶突变体S07A11,所述的突变体S07A11的氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示。
所述的氨基酸序列SEQ ID NO.1经修饰、缺失或添加一或几个氨基酸获得氨基酸序列,且保持只有90%的同源性的序列也在本发明的保护范围内。
在本发明另一方面,还提供了所述的内切木聚糖酶突变体S07A11的编码基因s07a11,其核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示。
与所述的编码基因s07a11编码相同蛋白质,但因遗传密码的简并性而与SEQ IDNO.2所示的核苷酸序列或其互补序列不同的核苷酸序列也在本发明的保护范围内。
在本发明的另一方面,还提供了包含携带有编码基因序列为SEQ ID NO.2的重组载体。
在本发明的另一方面,还提供了一种内切木聚糖酶突变体基因的工程菌,所述的工程菌含有具有SEQ ID NO.2所示基因的载体。
在本发明的另一方面,还提供了一种内切木聚糖酶突变体S07A11的制备方法,包括以下步骤:
1)将编码基因s07a11和表达载体pEasy-E2相连接,并将连接产物转化大肠杆菌BL21-Gold(DE3),获得包含编码基因s07a11的重组菌株;
2)培养重组菌株,诱导重组突变内切木聚糖酶表达;
3)回收并纯化所表达的突变内切木聚糖酶S07A11;
4)活性测定。
在本发明的另一方面,所述的内切木聚糖酶突变体S07A11及其编码基因s07a11在食品制备、制备清洁剂和污水处理中的应用也在本发明的保护范围之内。
本发明的有益效果为:
与野生酶相比,突变内切木聚糖酶S07A11的盐适应性发生了改变。纯化的突变酶S07A11、野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3的最适pH分别为5.0、5.5和6.0,最适温度分别为70℃、50℃和75℃。在10.0mM的β-Mercaptoethanol、ZnSO4和FeSO4中,突变体S07A11酶活力比野生酶rXynAHJ3的酶活力分别高15%、13%和13%;在3.0~25.0%(w/v)的NaCl和Na2SO4中,突变体S07A11酶活力比野生酶rXynAGN16L酶活力分别高7%~38%和11%~28%,比rXynAHJ3酶活力分别高11~37%和2%~19%;在3.0~30.0%(w/v)的NaNO3中,突变体S07A11酶活力比野生酶rXynAGN16L酶活力分别高2%~19%,比rXynAHJ3酶活力分别高8~36%。本发明的突变内切木聚糖酶S07A11可应用于酱油酿造、清洁剂添加剂和污水处理等生物技术领域。
附图说明
图1是本发明在大肠杆菌中表达的重组内切木聚糖酶rXynAGN16L、rXynAHJ3及其突变体S07A11的SDS-PAGE分析,其中,CK:蛋白质Marker;
图2是本发明重组内切木聚糖酶rXynAGN16L、rXynAHJ3及其突变体S07A11在NaCl中的活性;
图3是本发明重组内切木聚糖酶rXynAGN16L、rXynAHJ3及其突变体S07A11在Na2SO4中的活性;
图4是本发明重组内切木聚糖酶rXynAGN16L、rXynAHJ3及其突变体S07A11在NaNO3中的活性。
具体实施方式
下面将结合本发明具体的实施例,对本发明技术方案进行清楚、完整地描述,显然,所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例,而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例,本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例,都属于本发明保护的范围。
试验材料和试剂
1、菌株及载体:大肠杆菌Escherichia coli BL21-Gold(DE3)和表达载体pEasy-E2购自北京全式金生物技术有限公司;节杆菌(Arthrobacter sp.)和列舍瓦里尔菌(Lechevalieria sp.)由云南师范大学提供。
2、酶类及其它生化试剂:DNA聚合酶及dNTP购自北京全式金生物技术有限公司,山毛榉木聚糖购自Sigma公司,玉米芯木聚糖购自上海源叶生物科技有限公司,易错PCR试剂盒购自北京天恩泽基因科技有限公司,细菌基因组提取试剂盒购自GENE STAR公司,PopCultureTM细胞裂解液购自德国默克集团有限公司,其它都为国产试剂(均可从普通生化试剂公司购买得到)。
3、培养基:
LB培养基:Peptone 10g,Yeast extract 5g,NaCl 10g,加蒸馏水至1000mL,pH自然(约为7)。固体培养基在此基础上加2.0%(w/v)琼脂。
说明:以下实施例中未作具体说明的分子生物学实验方法,均参照《分子克隆实验指南》(第三版)J.萨姆布鲁克一书中所列的具体方法进行,或者按照试剂盒和产品说明书进行。
实施例1突变文库的构建
1)按照GENE STAR公司细菌基因组提取试剂盒说明书提取节杆菌(Arthrobactersp.)和列舍瓦里尔菌(Lechevalieria sp.)基因组。
2)根据GenBank记录的节杆菌(Arthrobacter sp.)内切木聚糖酶核苷酸序列JQ863105(SEQ ID No.3),设计引物5'GTGCAGC CGGAGGAAAAACG 3'和5'GATGAAGGCAGGATCCGGGGT 3',以节杆菌(Arthrobacter sp.)基因组为模板进行PCR扩增,获得内切木聚糖酶基因xynAGN16L;另根据GenBank记录的列舍瓦里尔菌(Lechevalieriasp.)内切木聚糖酶核苷酸序列JF745868(SEQ ID No.4),设计引物5'GTCTCGGCCCCGCCGGACGT 3'和5'GGCTC GCTTCGCCAGCGTGG 3',以列舍瓦里尔菌(Lechevalieria sp.)基因组为模板进行PCR扩增,获得内切木聚糖酶基因xynAHJ3。
PCR反应参数为:94℃变性5min;然后94℃变性30sec,55℃退火30sec,72℃延伸1min 30sec,30个循环后72℃保温10min。
3)以上述PCR产物为模板,利用易错PCR试剂盒,按照试剂盒说明书进行基因突变。
4)用超声打断仪Biorupter对易错PCR产物进行超声随机打断,打断产物经2%琼脂糖凝胶电泳后切胶纯化。
5)纯化后的小片段DNA自身互为引物和模板进行DNA家族改组PCR,PCR反应参数为:96℃变性1min 30sec;然后94℃变性30sec,依次65℃退火90sec、62℃退火90sec、59℃退火90sec、56℃退火90sec、53℃退火90sec、50℃退火90sec、47℃退火90sec、44℃退火90sec、41℃退火90sec,72℃延伸1min 30sec,35个循环后72℃保温7min。
6)以纯化的DNA家族改组PCR产物为模板,用内切木聚糖酶基因xynAHJ3和xynAGN16L扩增引物和反应条件进行序列全长扩增,扩增产物含突变序列和未突变序列。
7)将序列全长扩增产物和表达载体pEasy-E2相连接,并将连接产物转化大肠杆菌BL21-Gold(DE3),经过夜培养,从转化平板中挑取单菌落于含有150μL液体LB培养液(含100μg mL-1Amp)的96孔细胞培养板中,于37℃,快速振荡培养约16h后,每孔加入40%(w/w)的甘油50μL,混匀后于-70℃保存。
实施例2突变体的筛选
1)从保存突变文库的96孔细胞培养板中取2μL菌液,接种于含200μL/孔液体LB培养液(含100μg mL-1Amp)的96深孔板中,于37℃,200rpm振荡培养至OD600>1.0(约20h),加入含2mM IPTG和100μg mL-1Amp的200μL液体LB培养液,于20℃,160rpm过夜诱导。
2)诱导结束后加入40μL/孔的PopCultureTM细胞裂解液,在25℃下,震荡裂解细胞30min。
3)取50μL含1.0%(w/v)山毛榉木聚糖的McIlvaine缓冲液(pH=7.0)及50μL细胞裂解产物,在96深孔板中于70℃恒温箱中反应2h。反应结束后加入150μL DNS试剂终止反应,于140℃恒温箱中保温20min以上并冷却至室温,使用酶标仪读取OD540nm的值,以只含有pEASY-E2空载体的E.coli BL21-Gold(DE3)菌株裂解液反应组作为对照。
4)取有内切木聚糖酶活性的突变体细胞裂解产物10μL,另取90μL含0.5%(w/v)山毛榉木聚糖的McIlvaine缓冲液(pH=7.0),加入10%(w/v)和25%(w/v)的NaCl,在96深孔板中于70℃恒温箱中反应10min。
5)反应结束后加入150μL DNS试剂终止反应,于140℃恒温箱中保温20min以上并冷却至室温,使用酶标仪读取OD540nm的值,以不含NaCl的对应突变体裂解液反应组作为对照。
6)比较突变体与野生重组酶rXynAGN16L和rXynAHJ3的酶活大小,获得在10%(w/v)和25%(w/v)NaCl中酶活提高的1个突变体,编号为S07A11,该突变体氨基酸序列如SEQID NO.1所示,其是两个野生酶的改组杂合体,该突变体核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示。
实施例3突变体S07A11及野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3的酶制备
将含突变体S07A11、野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3的重组菌株以0.1%的接种量分别接种于LB(含100μg mL-1Amp)培养液中,37℃快速振荡16h。
然后将此活化的菌液以1%接种量接种到新鲜的LB(含100μg mL-1Amp)培养液中,快速振荡培养约2~3h(OD600达到0.6~1.0)后,加入终浓度0.1mM的IPTG进行诱导,于20℃继续振荡培养约20h。12000rpm离心5min,收集菌体。用适量的pH=7.0Tris–HCl缓冲液悬浮菌体后,于低温水浴下超声波破碎菌体。以上胞内浓缩的粗酶液经13,000rpm离心10min后,吸取上清并用Nickel-NTAAgarose和0~500mM的咪唑分别亲和和纯化目的蛋白。
SDS-PAGE结果(图1)表明,突变酶S07A11、野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3都获得了纯化,产物为单一条带。
实施例4突变体S07A11及野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3的纯化酶的性质测定
1)突变体S07A11及野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3的纯化酶的活性分析
活性测定方法采用3,5-二硝基水杨酸(DNS)法:将底物溶于缓冲液中,使其终浓度为0.5%(w/v);反应体系含100μL适量酶液,900μL底物;底物在反应温度下预热5min后,加入酶液后再反应10min,然后加1.5mL DNS终止反应,沸水煮5min,冷却至室温后在540nm波长下测定OD值;1个酶活单位(U)定义为在给定的条件下每分钟分解底物产生1μmol还原糖(以木糖计)所需的酶量。
2)突变体S07A11及野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3的纯化酶的pH活性和pH稳定性测定
酶的最适pH测定:将酶液置于37℃下和pH=4.0–12.0的缓冲液中进行酶促反应。酶的pH稳定性测定:将酶液置于pH=3.0~12.0的缓冲液中,在37℃下处理1h,然后在pH=7.0及37℃下进行酶促反应,以未处理的酶液作为对照。缓冲液为:McIlvaine buffer(pH=3.0~8.0)和0.1M glycine–NaOH(pH=9.0~12.0)。以山毛榉木聚糖或玉米芯木聚糖为底物,反应10min,测定纯化的内切木聚糖酶的酶学性质。
结果表明:突变酶S07A11、野生纯化酶rXynAGN16L和rXynAHJ3的最适pH分别为5.0、5.5和6.0;在pH=5.5~10时,突变体S07A11、野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3稳定。
3)突变体S07A11及野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3的纯化酶的热活性及热稳定性测定
酶的热活性测定:在pH=7.0的缓冲液中,于0~90℃下进行酶促反应。酶的热稳定性测定:将同样酶量的酶液置于37℃处理0~60min后,在pH=7.0及37℃下进行酶促反应,以未处理的酶液作为对照。以山毛榉木聚糖或玉米芯木聚糖为底物,反应10min,测定纯化的内切木聚糖酶的酶学性质。
结果表明:S07A11、rXynAGN16L和rXynAHJ3的最适温度分别为70℃、50℃和75℃,在70℃分别具有100%、17.7%和97.7%的酶活;S07A11和rXynAHJ3在50℃时稳定,rXynAGN16L在50℃时极不稳定。
4)不同金属离子及化学试剂对突变体S07A11及野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3的纯化酶活力的影响
在酶促反应体系中加入10.0mM的金属离子及化学试剂,研究其对酶活性的影响。在37℃及pH=7.0条件下,以山毛榉木聚糖或玉米芯木聚糖为底物测定酶活性。
结果(表1)表明:10.0mM的HgCl2可完全抑制S07A11、rXynAGN16L和rXynAHJ3;在10.0mM的β-Mercaptoethanol、ZnSO4和FeSO4中,突变体S07A11酶活力比野生酶rXynAHJ3的酶活力分别高15%、13%和13%。
表1金属离子及化学试剂对突变体S07A11及野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3活力的影响
Figure BDA0002584392570000101
5)突变体S07A11及野生酶rXynAGN16L和rXynAHJ3的纯化酶在NaCl、Na2SO4和NaNO3中的活性
酶在NaCl中的活性测定:在酶促反应体系中加入3.0~30.0%(w/v)NaCl,于pH7.0及37℃下进行酶促反应。以山毛榉木聚糖或玉米芯木聚糖为底物,反应10min,测定纯化的内切木聚糖酶的酶学性质。
结果表明:在3.0~25.0%(w/v)的NaCl,突变体S07A11酶活力比野生酶rXynAGN16L酶活力分别高7%~38%,比rXynAHJ3酶活力分别高11~37%(图2)。
酶在Na2SO4中的活性测定:在酶促反应体系中加入3.0~30.0%(w/v)Na2SO4,于pH7.0及37℃下进行酶促反应。以山毛榉木聚糖或玉米芯木聚糖为底物,反应10min,测定纯化的内切木聚糖酶的酶学性质。
结果表明:在3.0~25.0%(w/v)的Na2SO4,突变体S07A11酶活力比野生酶rXynAGN16L酶活力分别高11%~28%,比rXynAHJ3酶活力分别高2%~19%(图3)。
酶在NaNO3中的活性测定:在酶促反应体系中加入3.0~30.0%(w/v)NaNO3,于pH7.0及37℃下进行酶促反应。以山毛榉木聚糖或玉米芯木聚糖为底物,反应10min,测定纯化的内切木聚糖酶的酶学性质。
结果表明:在3.0~30.0%(w/v)的NaNO3中,突变体S07A11酶活力比野生酶rXynAGN16L酶活力分别高2%~19%,比rXynAHJ3酶活力分别高8~36%(图4)。
尽管已经示出和描述了本发明的实施例,对于本领域的普通技术人员而言,可以理解在不脱离本发明的原理和精神的情况下可以对这些实例进行多种变化、修改、替换和变型,本发明的范围由所附权利要求及其等同物限定。
序列表
<110> 云南师范大学
<120> 一种内切木聚糖酶突变体S07A11及制备方法和应用
<160> 8
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 347
<212> PRT
<213> 内切木聚糖酶突变体(S07A11)
<400> 1
Val Gln Pro Glu Glu Lys Arg Pro Pro Gly Gln Ser Lys Gln Asp Thr
1 5 10 15
Leu Arg Arg Ala Ala Pro Lys Asp Phe Lys Ile Gly Ser Ala Val Ala
20 25 30
Gly Gly Gly His His Glu Ala Gln Asp Tyr Pro Asp Pro Phe Thr Phe
35 40 45
Asp Lys Glu Tyr Arg Arg Gln Leu Ala Ala Glu Phe Asn Ser Val Ser
50 55 60
Pro Glu Asn Gln Ser Lys Trp Glu Phe Ile His Pro Glu Lys Asp Val
65 70 75 80
Tyr Arg Phe Thr Glu Met Asp Ala Ile Val Arg Ser Ala Gln Lys Asn
85 90 95
Lys Gln Val Val Arg Gly His Thr Leu Phe Trp His Ser Gln Asn Pro
100 105 110
Gln Trp Leu Glu Gln Gly Asn Phe Ser Lys Glu Glu Leu Arg Gly Ile
115 120 125
Leu Lys Asp His Val Gln Thr Val Val Gly Arg Tyr Ala Gly Lys Ile
130 135 140
Gln Gln Trp Asp Val Ala Asn Glu Ile Phe Asn Asp Asp Gly Thr Leu
145 150 155 160
Arg Ala Thr Glu Asn Ile Trp Leu Arg Glu Leu Gly Pro Asp Ile Ile
165 170 175
Ala Asp Val Phe Arg Trp Ala His Glu Ala Asp Pro Lys Ala Lys Leu
180 185 190
Phe Phe Asn Asp Tyr Asn Val Glu Ser Val Asn Ala Lys Ser Asp Ala
195 200 205
Tyr Tyr Ala Leu Ile Lys Glu Leu Arg Ala Ala Gly Val Pro Val His
210 215 220
Gly Phe Ser Ala Gln Ala His Leu Ser Leu Asp Tyr Gly Phe Pro Asp
225 230 235 240
Asp Leu Glu Arg Asn Leu Lys Arg Phe Ala Asp Leu Arg Leu Glu Thr
245 250 255
Ala Ile Thr Glu Leu Asp Val Arg Met Thr Leu Pro Ala Ser Gly Val
260 265 270
Pro Thr Ala Ala Gln Leu Gln Gln Gln Ala Asp Tyr Tyr Gln Arg Thr
275 280 285
Leu Ala Ala Cys Leu Lys Val Arg Thr Cys Lys Ser Phe Thr Ile Trp
290 295 300
Gly Phe Thr Asp Lys Tyr Ser Trp Val Pro Val Phe Phe Gln Gly Gln
305 310 315 320
Gly Ala Ala Thr Val Met Trp Asn Asp Phe Gly Arg Lys Gln Ala Tyr
325 330 335
Tyr Ala Leu Arg Ser Thr Leu Ala Lys Arg Ala
340 345
<210> 2
<211> 1041
<212> DNA
<213> 内切木聚糖酶突变体(s07a11)
<400> 2
gtgcagccgg aggaaaaacg tcctccgggc cagtccaaac aggacacgct gcgccgtgca 60
gcccccaaag acttcaagat tggttccgcc gttgcgggcg gaggccatca tgaggcccag 120
gactaccccg atccttttac gttcgataag gaataccgcc ggcaactggc cgccgagttc 180
aattcggtgt caccggagaa ccagtcgaag tgggaattca tccacccgga aaaggatgtc 240
taccgcttca cggaaatgga cgccattgtc cgctccgccc aaaaaaacaa gcaggtggtg 300
cgcggccaca ccctcttttg gcacagccag aatcctcagt ggctggagca gggaaacttc 360
tccaaagaag aactgcgcgg aatcctcaaa gaccacgtcc agactgtagt gggcaggtac 420
gccggcaaaa tccagcagtg ggacgtcgcc aacgaaatct tcaatgatga cggaaccctg 480
cgcgccaccg agaacatttg gcttcgtgaa ctgggcccgg acatcattgc cgacgttttc 540
cgctgggcgc acgaggccga ccccaaggcg aagctgttct tcaacgacta caacgtcgaa 600
agcgtcaacg cgaagagcga cgcgtactac gcgctgatca aggagctgcg cgccgcgggt 660
gtgcccgtgc acggcttctc cgcccaggcg cacctcagcc tggactacgg cttcccggac 720
gacctggagc gcaacctgaa gcggttcgcc gacctccggc tggagaccgc gatcaccgag 780
ctcgacgtgc ggatgaccct gcccgcgagc ggcgtgccga cggcggccca gctgcagcag 840
caggccgact actaccagcg cacgctcgcg gcctgcctga aggtcaggac ctgcaagtcg 900
ttcaccatct ggggcttcac cgacaagtac tcgtgggtgc cggtcttctt ccaggggcag 960
ggtgcggcca cggtgatgtg gaacgacttc ggtcgcaagc aggcgtacta cgcgctgcgg 1020
tccacgctgg cgaagcgagc c 1041
<210> 3
<211> 3639
<212> DNA
<213> 节杆菌(Arthrobacter sp.)
<400> 3
atgaaggttc cgcgtttatt aaccgctctg gctgtaacct cggcgctgct gctgccggcg 60
gttccggcgc ttgccgtgca gccggaggaa aaacgtcctc cgggccagtc caaacaggac 120
acgctgcgcc gtgcagcccc caaagacttc aagattggtt ccgccgttgc gggcggaggc 180
catcatgagg cccaggacta ccccgatcct tttacgttcg ataaggaata ccgccggcaa 240
ctggccgccg agttcaattc ggtgtcaccg gagaaccagt cgaagtggga attcatccac 300
ccggaaaagg atgtctaccg cttcacggaa atggacgcca ttgtccgctc cgcccaaaaa 360
aacaagcagg tggtgcgcgg ccacaccctc ttttggcaca gccagaatcc tcagtggctg 420
gagcagggaa acttctccaa agaagaactg cgcggaatcc tcaaagacca cgtccagact 480
gtagtgggca ggtacgccgg caaaatccag cagtgggacg tcgccaacga aatcttcaat 540
gatgacggaa ccctgcgcgc caccgagaac atttggcttc gtgaactggg cccggacatc 600
attgccgacg ttttccgctg ggcgcacgag gccgacccca aggccaagct gttcttcaat 660
gatttcggcg ttgaggacat taatgccaag agtgatgcct acctcgaact catcccccgg 720
cttcaggcac agggcgtgca ggttgacggg tttgccatcc agggccatct gagcacccgc 780
tacggtttcc cttcagggct gcaggccaac ctgcagcgct ttgacgacct ggggctggaa 840
actgccatta cggaaataga cgtccgcatg gatattgcag ccggcacgga gccgacggcc 900
gagcagcttg agcagcaggc ggactactac cagcgcgccc ttgaggcctg cctgtccgtt 960
gcagactgca attcgttcac catttggggc ttcacggaca agtactcgtg ggttccggtc 1020
ttctttgccg gcgagggcga ggcgacagtc atggaggaag acttcacgcg caagcctgcc 1080
tactttgccc tgcgggaaac actgaagcgt ccggtgccga agcccgacga cggcggcccg 1140
tcccagccaa ccccggatcc tgccttcatc cccggcggcg ccgccaaccc gacagcgacg 1200
ccgatcgcag catcccgcgg caccggcaac tccgtggcgc tcaccttcga tgacgggccc 1260
gagcccggcg aaaccacagc tgtcctcgat ttcctcaagg acaagggcat cactgccacc 1320
ttctgcgtca tcggagcgaa catccaggcc cccggcggag ccgagctggt gaagcgcatg 1380
gtcgaggagg gccacacgct gtgcaaccac ggcaccacgt atgcggacat gggttcgtgg 1440
acccaggaac agattaaggc cgacctggtg gaaaacctcc gcatcatccg tgaagccgcc 1500
ggcacgcctg atctgcaggt cccctatttc cgggcaccga acggaagctg gggagtcacg 1560
ggcgaagtag ccgcagcgct tggtatgcag ccgctgggcc tgggcaatgt catctttgac 1620
tgggacggca atgacctcag cgaagccacc ctcacggcaa acctccgtgc cgcgttcacc 1680
cccggcgcgg tggtgctggc gcacgtcggc ggcggtgacc ggaccaacac agtgaaggca 1740
gttacgacgg tcgtgaccga aaagctcgcc caggggtgga cgttcgccct tccgcagggc 1800
ggtgccccgg aggaaccttc cggcggtgtg ccctcggact tcgagaccgg aaccgacggc 1860
tggaccgcgc gcggggactc agtggcggtc aacctcagct ccgacgcccg caccggatcc 1920
ggaagcctgc tggtcacgaa ccggacccag gactggcacg gtgccgcact cgacgtcacg 1980
ggcgccctac cggtcggctc ggccgtaaag atgtccgtct gggccaagct cgcccccggg 2040
cagcagccgg cggcactgaa aatgtccgtt cagcgggaca acggcggcgg gagtgcctat 2100
gaaggcgttg ccggagccgg ggcttcggtc accgccgacg gctggaccga acttgccggg 2160
acttacaccc tcggcgcagc agcggacaaa gcccaggtgt acatcgaagg tgctgtcggc 2220
gtggggttcc tgctcgatga cttcagcctc gccgcatatg ttgagcctcc ccttcaggag 2280
gacatacccg ggttgaaaga cgtccttggc ctgcagggca tcgagcacgt gggagcagca 2340
atcgacgcac gcgagacagc gggcaccgca gcgaacctcc tgcggaaaca cttcaatgcc 2400
ttcactcccg agaacgccgg caggcccgag agcgtgcagc cggtggaggg tcagttcacc 2460
cttacccagc tggaccagct gctggacttc gcagccgcca acaatgtcaa ggtgtacgga 2520
catgtgctgg tctggcattc ccagacccct gagtggttct tcaaggacgg gacccgggac 2580
ctgaccggca accggtccga ccgggcgctg ctgagggcac gcatggaggc acatatcaag 2640
ggcatcgcag atcacatcaa tgcccgctac ccggaggggg acagccccat ttgggcctgg 2700
gacgttgtca acgagaccat tgcggacggt gacacggcca acccgcacga catgcgggac 2760
agccgctggt tccaggtcct cggtgaacgt tttgtcgatg atgccttccg tctcgcggac 2820
aagtacttcc cggaggcaaa gctcttcatc aacgactaca acaccgagat gccccagaaa 2880
cgggccgact atctcgagct gattcgtgcc ctggaagccc ggggcgtacc catcgacggc 2940
gtgggccacc aggcgcacgt cgacgtggca cgtccggtgc agtggctcga ggactcgatc 3000
aaggccgttg agaaggtcaa tcctgacctg atgcaggcga tcactgagct cgacgtgaac 3060
gcgtccaccg agaatcaggg cgcggacgtg gacggtgccc cggtggatcc gtaccagccg 3120
gcattcggga acgacgggga cgccgccgcg gaagtcggat actactaccg cgacttgttc 3180
gccatgctgc gcaagcacag ttcggctatt gattcggtga ccgtctgggg catcagcaac 3240
gcccgcagct ggctgcggac ctggccgatg gcccggccct gggagcagcc gcttccattc 3300
gacgatgatc tgcaggctgc accggcctac tggggaatcg tggatcccgc gaaactgccg 3360
gcccggcctg ccgacgtgct ggcaccccgc atcgccgatc agccggacgt ggtggccttt 3420
tcaaagcgcg ccggacgggt gaaggtggct tacccgttgc cctcggcgat cgacaccctc 3480
gacggcaaag tgccggtgga ctgttctccg cgccgcggca gcacctttgc cgtggggacc 3540
actgcggtca cctgcacggc cacggatgcc gccggcaaca cgaggaccag cagcttcgac 3600
gtggtggtga agaagcaccg gcaccacgga aggcactga 3639
<210> 4
<211> 1104
<212> DNA
<213> 列舍瓦里尔菌(Lechevalieria sp.)
<400> 4
atgaggtcgg ctcgtctggt catcgctttg ttcgctgccg tggcgttgtc ggcgccaccg 60
gcttcggcgg tctcggcccc gccggacgtg agcggccaca aacagacgtt gcgctcggca 120
gcgcccaagg gtttccacat cggcacggcc gtcgcgggcg gcggccacca cgagaaccag 180
ccgtacccgg accccttcac ctcggacagc gagtaccgga aggtgctggc cgcggagttc 240
aactcggtct cgcccgagaa ccagatgaag tgggagtaca tccacccgga gcgcggccgg 300
tacaacttcg gcatggccga cgccatcgtc cggttcgcca agcagaaccg gcaggtggtc 360
cgcgggcaca ccctgatgtg gcacagccag aacccggagt ggctggagca gggcgacttc 420
accgcggccg aactgcgcga gatcctgcgc gagcacatca tgaccgtggt cggccggtac 480
aagggcaagg tccagcagtg ggacgtggcc aacgagatct tcaccgacgc cggcgctctg 540
cggaccacgg agaacatctg gatccgtgaa ctcggtccgg gcatcgtggc ggacgcgttc 600
cgctgggcgc accaggccga ccccaaggcg aagctgttct tcaacgacta caacgtcgaa 660
agcgtcaacg cgaagagcga cgcgtactac gcgctgatca aggagctgcg cgccgcgggt 720
gtgcccgtgc acggcttctc cgcccaggcg cacctcagcc tggactacgg cttcccggac 780
gacctggagc gcaacctgaa gcggttcgcc gacctccggc tggagaccgc gatcaccgag 840
ctcgacgtgc ggatgaccct gcccgcgagc ggcgtgccga cggcggccca gctgcagcag 900
caggccgact actaccagcg cacgctcgcg gcctgcctga aggtcaggac ctgcaagtcg 960
ttcaccatct ggggcttcac cgacaagtac tcgtgggtgc cggtcttctt ccaggggcag 1020
ggtgcggcca cggtgatgtg gaacgacttc ggtcgcaagc aggcgtacta cgcgctgcgg 1080
tccacgctgg cgaagcgagc ctga 1104
<210> 5
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 5
gtgcagccgg aggaaaaacg 20
<210> 6
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 6
gatgaaggca ggatccgggg t 21
<210> 7
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 7
gtctcggccc cgccggacgt 20
<210> 8
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 8
ggctcgcttc gccagcgtgg 20

Claims (6)

1.一种内切木聚糖酶突变体S07A11,其特征在于,所述的突变体S07A11的氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示。
2.权利要求1所述的内切木聚糖酶突变体S07A11的编码基因s07a11,其特征在于,所述的编码基因s07a11的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示。
3.一种重组载体,其特征在于,包含权利要求2所述的编码基因s07a11。
4.一种重组菌,其特征在于,包含权利要求2所述的编码基因s07a11。
5.权利要求1所述的内切木聚糖酶突变体S07A11的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
1)将编码基因s07a11和表达载体pEasy-E2相连接,并将连接产物转化大肠杆菌BL21-Gold(DE3),获得包含编码基因s07a11的重组菌株;
2)培养重组菌株,诱导重组突变内切木聚糖酶表达;
3)回收并纯化所表达的突变内切木聚糖酶S07A11。
6.权利要求1所述的内切木聚糖酶突变体S07A11或权利要求2所述的编码基因s07a11在食品制备、制备清洁剂和污水处理中的应用。
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