CN111733125B - 基于3d打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法 - Google Patents

基于3d打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法 Download PDF

Info

Publication number
CN111733125B
CN111733125B CN202010078215.0A CN202010078215A CN111733125B CN 111733125 B CN111733125 B CN 111733125B CN 202010078215 A CN202010078215 A CN 202010078215A CN 111733125 B CN111733125 B CN 111733125B
Authority
CN
China
Prior art keywords
solution
pouring
printing
printing technology
hydrogel
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN202010078215.0A
Other languages
English (en)
Other versions
CN111733125A (zh
Inventor
张耀鹏
陈杰
宋鲁杰
苑炜
范苏娜
傅强
姚响
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Donghua University
Shanghai Sixth Peoples Hospital
Original Assignee
Donghua University
Shanghai Sixth Peoples Hospital
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Donghua University, Shanghai Sixth Peoples Hospital filed Critical Donghua University
Priority to CN202010078215.0A priority Critical patent/CN111733125B/zh
Publication of CN111733125A publication Critical patent/CN111733125A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN111733125B publication Critical patent/CN111733125B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/069Vascular Endothelial cells
    • C12N5/0691Vascular smooth muscle cells; 3D culture thereof, e.g. models of blood vessels
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B29WORKING OF PLASTICS; WORKING OF SUBSTANCES IN A PLASTIC STATE IN GENERAL
    • B29CSHAPING OR JOINING OF PLASTICS; SHAPING OF MATERIAL IN A PLASTIC STATE, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; AFTER-TREATMENT OF THE SHAPED PRODUCTS, e.g. REPAIRING
    • B29C64/00Additive manufacturing, i.e. manufacturing of three-dimensional [3D] objects by additive deposition, additive agglomeration or additive layering, e.g. by 3D printing, stereolithography or selective laser sintering
    • B29C64/10Processes of additive manufacturing
    • B29C64/106Processes of additive manufacturing using only liquids or viscous materials, e.g. depositing a continuous bead of viscous material
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B33ADDITIVE MANUFACTURING TECHNOLOGY
    • B33YADDITIVE MANUFACTURING, i.e. MANUFACTURING OF THREE-DIMENSIONAL [3-D] OBJECTS BY ADDITIVE DEPOSITION, ADDITIVE AGGLOMERATION OR ADDITIVE LAYERING, e.g. BY 3-D PRINTING, STEREOLITHOGRAPHY OR SELECTIVE LASER SINTERING
    • B33Y10/00Processes of additive manufacturing
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08JWORKING-UP; GENERAL PROCESSES OF COMPOUNDING; AFTER-TREATMENT NOT COVERED BY SUBCLASSES C08B, C08C, C08F, C08G or C08H
    • C08J3/00Processes of treating or compounding macromolecular substances
    • C08J3/02Making solutions, dispersions, lattices or gels by other methods than by solution, emulsion or suspension polymerisation techniques
    • C08J3/03Making solutions, dispersions, lattices or gels by other methods than by solution, emulsion or suspension polymerisation techniques in aqueous media
    • C08J3/075Macromolecular gels
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08JWORKING-UP; GENERAL PROCESSES OF COMPOUNDING; AFTER-TREATMENT NOT COVERED BY SUBCLASSES C08B, C08C, C08F, C08G or C08H
    • C08J2305/00Characterised by the use of polysaccharides or of their derivatives not provided for in groups C08J2301/00 or C08J2303/00
    • C08J2305/04Alginic acid; Derivatives thereof
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08JWORKING-UP; GENERAL PROCESSES OF COMPOUNDING; AFTER-TREATMENT NOT COVERED BY SUBCLASSES C08B, C08C, C08F, C08G or C08H
    • C08J2305/00Characterised by the use of polysaccharides or of their derivatives not provided for in groups C08J2301/00 or C08J2303/00
    • C08J2305/08Chitin; Chondroitin sulfate; Hyaluronic acid; Derivatives thereof
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C08ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08JWORKING-UP; GENERAL PROCESSES OF COMPOUNDING; AFTER-TREATMENT NOT COVERED BY SUBCLASSES C08B, C08C, C08F, C08G or C08H
    • C08J2389/00Characterised by the use of proteins; Derivatives thereof
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2513/003D culture

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Materials Engineering (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Manufacturing & Machinery (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Optics & Photonics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Mechanical Engineering (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)

Abstract

本发明涉及一种基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,先利用3D打印技术制备内含三维立体通道和生长因子的水凝胶,再将内皮细胞接种至通道中培养一段时间后,得到浇筑成型仿生毛细血管网,其中,三维立体通道为人体动脉或静脉血管网络状结构,由多个圆柱状通道组成,相邻两个圆柱状通道的中心距小于等于5mm,水凝胶为可被内皮细胞及其分化出的细胞侵入的水凝胶。本发明的一种基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,简单易行,成本低廉,具有环境普适性,可以通过利用水凝胶的多孔性和控制生长因子的浓度使血管网络主干长出支干,从而更形象地模拟生物体内血液流动,还能有效提高整体水凝胶微流体的机械性能。

Description

基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法
技术领域
本发明属于水凝胶微流体血管网络技术领域,涉及一种基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法。
背景技术
微流体目前已经实现了精确的流体操作和极小体积控制,以应对高通量生物分子分析、疾病诊断和综合细胞研究领域的挑战。以往的微流体系统以聚二甲基硅氧烷(PDMS)作为细胞间融合、交融的媒介,由于其光学透明性、低毒性、生物惰性,使其在微流体凝胶系统中得到广泛的生物和化学应用。但是,PDMS微流体装置存在如下缺点:
(1)PDMS微流体装置由有机硅预聚物制成,在其制备过程中受高温加工影响使得具有生物功能的组件失效;
(2)PDMS不支持细胞直接表面附着,需要进行物理和化学手段修饰,如利用细胞外基质(EMC,纤维连接蛋白、胶原蛋白等)将PDMS包被后再让细胞附着在其表面;
(3)PDMS微流体水凝胶装置通常不能进行含水试剂或细胞渗透的实验,且质量传递和功能化仅限于微通道的表面;
(4)PDMS在生物体内不可降解,因此在临床试验中PDMS不能做到与生物体相融合。
现如今,更多的生物相关的天然水凝胶材料已用于微流体制造。然而,现有的3D微流体网络水凝胶采取多层组装,导致水凝胶内部网络单一,制造过程复杂,还不具备环境普适性,且最终的水凝胶还存有尺寸变化的现象,同时制备得到的微流体血管网络只含有通道主干,无血管支干,进而无法更形象地模拟生物体内血液流动;此外,当前多层组装的水凝胶微流体的相邻层之间的强度及整体水凝胶的刚度也亟待解决。
因此,研究一种网络管路形态多样、机械强度优异的水凝胶微流体血管网络的简单且具有环境普适性的制备方法,具有十分重要的意义。
发明内容
本发明的目的是解决现有技术中水凝胶微流体血管网络制造过程复杂、不具备环境普适性以及制得的微流体血管网络组成简单、机械强度差的问题,提供一种基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法。
为达到上述目的,本发明采用的方案如下:
基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,先利用3D打印技术制备内含三维立体通道和生长因子的水凝胶,再将内皮细胞(具体为人脐静脉内皮细胞(HUVEC)或人微血管内皮细胞(HMVEC))接种至通道中培养一段时间后,得到浇筑成型仿生毛细血管网,其中,三维立体通道为人体动脉或静脉血管网络状结构,由多个圆柱状通道组成,相邻两个圆柱状通道的中心距小于等于5mm(具体为0.3~5mm),水凝胶为可被内皮细胞及其分化出的细胞侵入的水凝胶。相邻两个圆柱通道的中心距是受生长因子浓度的影响,当两个相邻的圆柱通道过近,会导致中间水凝胶厚度很薄,在给与较高压力促使血液在微流体水凝胶中流动,存在血管破裂的潜在因素;当两个相邻的圆柱通道过远,会造成血管支路生长天数增长,在同样的细胞培养天数下,增加通道距离,会使血管间可能并不互通,血管周围仅长有无数的毛细血管。
作为优选的技术方案:
如上所述的基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,水凝胶为丝素水凝胶,本发明水凝胶的种类包括但不仅限于此,其他种类的生物质水凝胶也在本发明的保护范围。
如上所述的基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,内含三维立体通道和生长因子的水凝胶的制备步骤如下:
(1)利用3D打印技术构建由多个圆柱体组成的人体动脉或静脉血管网络模型,圆柱体的材质为明胶、海藻酸钠或壳聚糖;
(2)将模型置于注模容器中;
(3)向注模容器中注入丝素蛋白、生长因子、催化剂和交联剂的混合溶液(催化剂和交联剂为辣根过氧化物酶(HRP)与H2O2,或者为钌催化剂与过硫酸铵),丝素蛋白、生长因子、催化剂和交联剂的混合溶液由含丝素蛋白、催化剂和交联剂的溶液与生长因子溶液混合而成,含丝素蛋白、催化剂和交联剂的溶液由丝素蛋白溶液、催化剂和交联剂混合而成;
(4)固化;
(5)去除圆柱体,并用水冲洗通道,圆柱体的材质为明胶时,采用加热至30℃以上后倾倒的方式去除,明胶的熔点约在30℃左右,加热后可熔化;圆柱体的材质为壳聚糖时,采用浓度为2~5wt%的冰乙酸溶液溶解的方式去除;圆柱体的材质为海藻酸钠时,采用浓度为2~5wt%的碳酸钠溶液溶解的方式去除。
如上所述的基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,圆柱体的直径为0.05~0.8mm;
人体动脉或静脉血管网络模型的构建过程为:
首先将明胶、海藻酸钠或壳聚糖溶解配制成浓度为10~20%(w/v)的3D打印溶液,然后将3D打印溶液倒入3D打印装置的料管中,由3D打印装置对构建好的模型进行线形逐层打印,最后对打印得到的产物进行冻干处理(打印产物类似于果冻,如过没有经过冻干处理,在后续浇注过程中容易变形),其中,构建好的模型为圆柱体模型,冻干处理后将打印得到的3D圆柱体进行组装即得到人体动脉或静脉血管网络模型,或者构建好的模型为三维立体血管网模型,冻干处理后即得到人体动脉或静脉血管网络模型。
如上所述的基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,打印参数为:注射压力1.0~2.0bar,打印速度3.0~5.2mm/s,打印喷嘴直径0.26~0.8mm。
如上所述的基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,注模容器的内表面涂有脱模剂(5wt%Pluronic F127溶液),注模容器的材质为PDMS或PMMA(聚甲基丙烯酸甲酯,俗称有机玻璃),注模容器的要求为具有光学透明性且疏水,具有光学透明性便于在制备血管网络过程中观察制备情况,疏水便于脱模。
如上所述的基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,丝素蛋白溶液的制备过程为:在温度为27~40℃的条件下,将蚕丝纤维(配制丝素蛋白溶液前,先将蚕丝在浓度为0.5wt%的碳酸钠溶液中煮沸两次以除去丝胶,再在去离子水中漂洗并通过强制空气流干燥)在浓度为9.0~9.3M的溴化锂溶液中溶解1~3h后在水中透析除盐并浓缩。
如上所述的基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,丝素蛋白溶液的浓度为5~15wt%,生长因子溶液的浓度为50~100ng/ml,丝素蛋白溶液与生长因子溶液的体积比为1~5:1,由于圆柱通道的中心距不同,在同样的圆柱通道中心距和培养天数下,过低的生长因子浓度会使血管间可能并不互通,血管周围仅长有无数的毛细血管,生长因子浓度过高,相邻近的通道则存在融合为一个血管通道的潜在影响。此外,不同的生长因子对内皮细胞入侵水凝胶的作用强度大小不同。
如上所述的基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,生长因子为VEGF(血管内皮生长因子)、MCP-1(单核细胞趋化蛋白-1)、bFGF(碱性成纤维细胞生长因子)、PMA(佛波醇12-肉豆蔻酸酯13-乙酸酯)和S1P(1-磷酸鞘氨醇)中的一种以上,或者为HGF(肝细胞生长因子)与VEGF、MCP-1、bFGF、S1P和PMA中的一种以上的组合;在同样的浓度条件下,使用不同生长因子时作用强度大小关系为:S1P>PMA>VEGF>=MCP-1>bFGF>HGF=0(HGF不能单独使用,需要配合其他生长因子使用),上述生长因子混合使用,作用效果会增强。
如上所述的基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,接种过程为:将浓度为50~150cells/ml的内皮细胞分散液灌注到通道中,震荡5~20min,以使内皮细胞紧贴血管通道内壁;一段时间为7~14d。
本发明的基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,在现有技术的制备方法的基础上进行如下改进:
(1)采取3D打印血管网络主体后利用浇注一次成形,从而解决了多层网络制备过程中涉及上下层通道衔接不良或繁琐的问题,且所形成的血管转角处不存在形态尺寸与设计不一致的现象;同时,采取浇注一次成形避免了相邻层水凝胶粘合不牢的现象,提升了整体水凝胶微流体机械性能,还避免了多层制备后水凝胶存在漏浆的现象;
(2)水凝胶搭载生长因子,利用水凝胶的多孔性和控制生长因子的浓度使血管网络主干长出支干,最终可形成三维立体交叉网络,本发明的方法所做到的支干的精度也远高于多层组装方法;
(3)本发明的基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,丝素水凝胶微流体仿生血管化网络制造成品无PDMS作外围支撑边界,成品可以直接植入生物体内。
有益效果:
(1)本发明的基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,简单易行,成本低廉,具有环境普适性;
(2)本发明的基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,可以通过利用水凝胶的多孔性和控制生长因子的浓度使血管网络主干长出支干,从而更形象地模拟生物体内血液流动;
(3)本发明的基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,有效提高了整体水凝胶微流体的机械性能。
附图说明
图1为实施例1的人体静脉血管网络模型的结构三视图,其中图(a)为俯视图,图(b)为轴测图,图(c)为正视图,图(d)为左视图;
图2为实施例2的人体静脉血管网络模型的结构三视图,其中图(a)为俯视图,图(b)为轴测图,图(c)为正视图,图(d)为左视图;
图3为实施例4的人体静脉血管网络模型的构筑过程三视图,其中图(a)为俯视图,图(b)为轴测图,图(c)为正视图,图(d)为左视图;
图4为实施例4的浇筑成型仿生毛细血管网的截面三视图,其中图(a)为俯视图,图(b)为轴测图,图(c)为正视图,图(d)为左视图;
图5为图4的局部放大示意图;
图6为实施例5的人体静脉血管网络模型的结构三视图,其中图(a)为俯视图,图(b)为轴测图,图(c)为正视图,图(d)为左视图;
图7为实施例7的人体静脉血管网络模型的结构三视图,其中图(a)为俯视图,图(b)为轴测图,图(c)为正视图,图(d)为左视图;
图8为实施例8构建的三维立体血管网模型的结构三视图,其中图(a)为俯视图,图(b)为轴测图,图(c)为正视图,图(d)为左视图。
具体实施方式
下面结合具体实施方式,进一步阐述本发明。应理解,这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。此外应理解,在阅读了本发明讲授的内容之后,本领域技术人员可以对本发明作各种改动或修改,这些等价形式同样落于本申请所附权利要求书所限定的范围。
实施例1
基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其制备步骤如下:
(1)利用3D打印技术制备内含三维立体通道和生长因子的水凝胶,具体为:
(1.1)构建如图1所示的由多个圆柱体组成的人体静脉血管网络模型,具体过程为:首先将明胶溶解在去离子水中配制成浓度为10%(w/v)的3D打印溶液,然后将3D打印溶液倒入3D打印装置的料管中,由3D打印装置对圆柱体模型进行线形逐层打印,最后对打印得到的产物进行冻干处理,然后将打印得到的3D圆柱体进行组装即得到人体静脉血管网络模型;其中,圆柱体的直径为0.05mm;打印参数为:注射压力1bar,打印速度3mm/s,打印喷嘴直径0.26mm;
(1.2)将步骤(1.1)中得到的模型置于注模容器中;其中,注模容器的内表面涂有脱模剂(5wt%Pluronic F127溶液),注模容器的材质为PDMS;
(1.3)含丝素蛋白、催化剂和交联剂的溶液的制备:先将蚕丝在浓度为0.5wt%的碳酸钠溶液中煮沸两次以除去丝胶,再在去离子水中漂洗并通过强制空气流干燥,然后,在温度为27℃的条件下,将蚕丝纤维在浓度为9M的溴化锂溶液中溶解1h后在水中透析除盐并浓缩,得到浓度为5wt%的丝素蛋白溶液,再向5wt%的丝素蛋白溶液中加入HRP以及H2O2得到含丝素蛋白、催化剂和交联剂的溶液,其中,含丝素蛋白、催化剂和交联剂的溶液中HRP的浓度为20unit/ml,H2O2的浓度为0.01wt%;
(1.4)向步骤(1.2)中的注模容器中注入步骤(1.3)得到的含丝素蛋白、催化剂和交联剂的溶液以及VEGF溶液;其中,VEGF溶液的浓度为50ng/ml,步骤(1.3)中的丝素蛋白溶液与VEGF溶液的体积比为1:1;
(1.5)在37℃下加热固化20min;
(1.6)采用倾倒的方式去除圆柱体,并用水冲洗通道;
(2)将HUVEC接种至通道中,接种过程为:将浓度为50cells/ml的HUVEC分散液灌注到通道中,震荡5min,以使内皮细胞紧贴血管通道内壁,培养7d后,得到浇筑成型仿生毛细血管网,其中,相邻两个圆柱状通道的中心距为0.3mm。
实施例2
基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其制备步骤如下:
(1)利用3D打印技术制备内含三维立体通道和生长因子的水凝胶,具体为:
(1.1)构建如图2所示的由多个圆柱体组成的人体静脉血管网络模型,具体过程为:首先将海藻酸钠溶解在去离子水中配制成浓度为14%(w/v)的3D打印溶液,然后将3D打印溶液倒入3D打印装置的料管中,由3D打印装置对三维立体血管网模型进行线形逐层打印,冻干处理后即得到人体静脉血管网络模型;其中,圆柱体的直径为0.3mm;打印参数为:注射压力1.3bar,打印速度3.7mm/s,打印喷嘴直径0.45mm;
(1.2)将步骤(1.2)中得到的模型置于注模容器中;其中,注模容器的内表面涂有脱模剂(5wt%Pluronic F127溶液),注模容器的材质为PDMS;
(1.3)含丝素蛋白、催化剂和交联剂的溶液的制备:先将蚕丝在浓度为0.5wt%的碳酸钠溶液中煮沸两次以除去丝胶,再在去离子水中漂洗并通过强制空气流干燥,然后,在温度为35℃的条件下,将蚕丝纤维在浓度为9.1M的溴化锂溶液中溶解1.5h后在水中透析除盐并浓缩,得到浓度为10wt%的丝素蛋白溶液,再向10wt%的丝素蛋白溶液中加入氯化三(2,2'-联吡啶)钌(II)六水合物和过硫酸铵得到含丝素蛋白、催化剂和交联剂的溶液,其中,含丝素蛋白、催化剂和交联剂的溶液中氯化三(2,2'-联吡啶)钌(II)六水合物的浓度为10mM,过硫酸铵的浓度为20mM;
(1.4)向步骤(1.2)中的注模容器中注入步骤(1.3)得到的含丝素蛋白、催化剂和交联剂的溶液与MCP-1溶液;其中,MCP-1溶液的浓度为65ng/ml,步骤(1.3)中的丝素蛋白溶液与MCP-1溶液的体积比为3:1;
(1.5)四周在250W的光源下10min,确保丝素水凝胶完全固化;
(1.6)采用浓度为5wt%的碳酸钠溶液溶解的方式去除圆柱体,并用水冲洗通道;
(2)将HUVEC接种至通道中,接种过程为:将浓度为80cells/ml的HUVEC分散液灌注到通道中,震荡10min,以使内皮细胞紧贴血管通道内壁,培养9d后,得到浇筑成型仿生毛细血管网,其中,相邻两个圆柱状通道的中心距为0.4mm。
实施例3
基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其制备步骤如下:
(1)利用3D打印技术制备内含三维立体通道和生长因子的水凝胶,具体为:
(1.1)构建由多个圆柱体组成的人体静脉血管网络模型,具体过程为:首先将壳聚糖溶解在2%(w/w)的冰乙酸中配制成浓度为17%(w/v)的3D打印溶液,然后将3D打印溶液倒入3D打印装置的料管中,由3D打印装置对三维立体血管网模型进行线形逐层打印,冻干处理后即得到人体静脉血管网络模型;其中,圆柱体的直径为0.7mm;打印参数为:注射压力1.6bar,打印速度4.5mm/s,打印喷嘴直径0.67mm;
(1.2)将步骤(1.2)中得到的模型置于注模容器中;其中,注模容器的内表面涂有脱模剂(5wt%Pluronic F127溶液),注模容器的材质为PDMS;
(1.3)含丝素蛋白、催化剂和交联剂的溶液的制备:先将蚕丝在浓度为0.5wt%的碳酸钠溶液中煮沸两次以除去丝胶,再在去离子水中漂洗并通过强制空气流干燥,然后,在温度为37℃的条件下,将蚕丝纤维在浓度为9.2M的溴化锂溶液中溶解2.5h后在水中透析除盐并浓缩,得到浓度为13wt%的丝素蛋白溶液,再向13wt%的丝素蛋白溶液中加入HRP以及H2O2得到含丝素蛋白、催化剂和交联剂的溶液,其中,含丝素蛋白、催化剂和交联剂的溶液中HRP的浓度为50unit/ml,H2O2的浓度为0.01wt%;
(1.4)向步骤(1.2)中的注模容器中注入步骤(1.3)得到的含丝素蛋白、催化剂和交联剂的溶液与bFGF溶液;其中,bFGF溶液的浓度为85ng/ml,步骤(1.3)中的丝素蛋白溶液与bFGF溶液的体积比为4:1;
(1.5)在37℃下加热固化20min;
(1.6)采用浓度为2wt%的冰乙酸溶液溶解的方式去除圆柱体,并用水冲洗通道;
(2)将HMVEC接种至通道中,接种过程为:将浓度为120cells/ml的HMVEC分散液灌注到通道中,震荡15min,以使内皮细胞紧贴血管通道内壁;培养12d后,得到如8所示的浇筑成型仿生毛细血管网,其中,相邻两个圆柱状通道的中心距为0.35mm。
实施例4
基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其制备步骤与实施例1基本相同,不同之处在于将VEGF溶液替换为HGF和PMA的混合溶液,将人体静脉血管网络模型替换为图3结构,最终得到的浇筑成型仿生毛细血管网的结构示意图如图4和图5所示。
实施例5
基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其制备步骤与实施例2基本相同,不同之处在于将MCP-1溶液替换为PMA溶液,将人体静脉血管网络模型替换为图6结构。
实施例6
基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其制备步骤与实施例3基本相同,不同之处在于将bFGF溶液替换为S1P溶液。
实施例7
基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其制备步骤与实施例1基本相同,不同之处在于将注模容器的材质PDMS替换为PMMA,将人体静脉血管网络模型替换为图7结构。
实施例8
基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其制备步骤如下:
(1)利用3D打印技术制备内含三维立体通道和生长因子的水凝胶,具体为:
(1.1)构建由多个圆柱体组成的人体静脉血管网络模型,具体过程为:首先将明胶溶解在去离子水中配制成浓度为20%(w/v)的3D打印溶液,然后将3D打印溶液倒入3D打印装置的料管中,由3D打印装置对圆柱体模型进行线形逐层打印,最后对打印得到的产物进行冻干处理,然后将打印得到的3D圆柱体进行组装即得到人体静脉血管网络模型;其中,圆柱体的直径为0.8mm;打印参数为:注射压力2bar,打印速度5.2mm/s,打印喷嘴直径0.8mm;
(1.2)将步骤(1.1)中得到的模型置于注模容器中;其中,注模容器的内表面涂有脱模剂(5wt%Pluronic F127溶液),注模容器的材质为PDMS;
(1.3)含丝素蛋白、催化剂和交联剂的溶液的制备:先将蚕丝在浓度为0.5wt%的碳酸钠溶液中煮沸两次以除去丝胶,再在去离子水中漂洗并通过强制空气流干燥,然后,在温度为40℃的条件下,将蚕丝纤维在浓度为9.3M的溴化锂溶液中溶解3h后在水中透析除盐并浓缩,得到浓度为15wt%的丝素蛋白溶液,再向15wt%的丝素蛋白溶液中加入氯化三(2,2'-联吡啶)钌(II)六水合物和过硫酸铵得到含丝素蛋白、催化剂和交联剂的溶液,其中,含丝素蛋白、催化剂和交联剂的溶液中氯化三(2,2'-联吡啶)钌(II)六水合物的浓度为10mM,过硫酸铵的浓度为20mM;
(1.4)向步骤(1.2)中的注模容器中注入步骤(1.3)得到的含丝素蛋白、催化剂和交联剂的溶液与VEGF和MCP-1的混合溶液;其中,混合溶液的浓度为100ng/ml,VEGF和MCP-1的体积比为1:1,步骤(1.3)中的丝素蛋白溶液与VEGF和MCP-1的混合溶液的体积比为5:1;
(1.5)在250W的光源下放置10min,确保丝素水凝胶完全固化;
(1.6)采用加热至37℃后倾倒的方式去除圆柱体,并用水冲洗通道;
(2)将HUVEC接种至通道中,接种过程为:将浓度为150cells/ml的HUVEC分散液灌注到通道中,震荡20min,以使内皮细胞紧贴血管通道内壁,培养14d后,得到如图8所示浇筑成型仿生毛细血管网,其中,相邻两个圆柱状通道的中心距为0.5mm。
实施例9
基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其制备步骤与实施例3基本相同,不同之处在于将bFGF溶液替换为bFGF和PMA的混合溶液。
实施例10
基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其制备步骤与实施例3基本相同,不同之处在于将bFGF溶液替换为MCP-1和PMA的混合溶液。
实施例11
基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其制备步骤与实施例3基本相同,不同之处在于将bFGF溶液替换为S1P和VEGF的混合溶液。
实施例12
基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其制备步骤与实施例3基本相同,不同之处在于将bFGF溶液替换为S1P和MCP-1的混合溶液。
实施例13
基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其制备步骤与实施例3基本相同,不同之处在于将bFGF溶液替换为S1P和bFGF的混合溶液。
实施例14
基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其制备步骤与实施例3基本相同,不同之处在于将bFGF溶液替换为S1P和HGF的混合溶液。
实施例15
基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其制备步骤与实施例3基本相同,不同之处在于将bFGF溶液替换为S1P和PMA的混合溶液。
实施例16
基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其制备步骤与实施例3基本相同,不同之处在于将bFGF溶液替换为生长因子的混合溶液;其中,生长因子包含HGF、VEGF、MCP-1、bFGF和S1P。
实施例17
基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其制备步骤与实施例3基本相同,不同之处在于将bFGF溶液替换为生长因子的混合溶液;其中,生长因子包含VEGF、MCP-1、PMA和S1P。

Claims (7)

1.基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其特征是:先利用3D打印技术制备内含三维立体通道和生长因子的水凝胶,再将内皮细胞接种至通道中培养一段时间后,得到浇筑成型仿生毛细血管网,其中,三维立体通道为人体动脉或静脉血管网络状结构,由多个圆柱状通道组成,相邻两个圆柱状通道的中心距小于等于5mm,水凝胶为可被内皮细胞及其分化出的细胞侵入的水凝胶;水凝胶为丝素水凝胶;
内含三维立体通道和生长因子的水凝胶的制备步骤如下:
(1)利用3D打印技术构建由多个圆柱体组成的人体动脉或静脉血管网络模型,圆柱体的材质为明胶、海藻酸钠或壳聚糖;
(2)将模型置于注模容器中;
(3)向注模容器中注入丝素蛋白、生长因子、催化剂和交联剂的混合溶液,丝素蛋白、生长因子、催化剂和交联剂的混合溶液由含丝素蛋白、催化剂和交联剂的溶液与生长因子溶液混合而成,含丝素蛋白、催化剂和交联剂的溶液由丝素蛋白溶液、催化剂和交联剂混合而成;丝素蛋白溶液的浓度为5~15wt%,生长因子溶液的浓度为50~100ng/ml,丝素蛋白溶液与生长因子溶液的体积比为1~5:1;
(4)固化;
(5)去除圆柱体,并用水冲洗通道。
2.根据权利要求1所述的基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其特征在于,圆柱体的直径为0.05~0.8mm;
人体动脉或静脉血管网络模型的构建过程为:
首先将明胶、海藻酸钠或壳聚糖溶解配制成浓度为10~20%(w/v)的3D打印溶液,然后将3D打印溶液倒入3D打印装置的料管中,由3D打印装置对构建好的模型进行线形逐层打印,最后对打印得到的产物进行冻干处理,其中,构建好的模型为圆柱体模型,冻干处理后将打印得到的3D圆柱体进行组装即得到人体动脉或静脉血管网络模型,或者构建好的模型为三维立体血管网模型,冻干处理后即得到人体动脉或静脉血管网络模型。
3.根据权利要求2所述的基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其特征在于,打印参数为:注射压力1.0~2.0bar,打印速度3.0~5.2mm/s,打印喷嘴直径0.26~0.8mm。
4.根据权利要求1所述的基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其特征在于,注模容器的内表面涂有脱模剂,注模容器的材质为PDMS或PMMA。
5.根据权利要求1所述的基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其特征在于,丝素蛋白溶液的制备过程为:在温度为27~40℃的条件下,将蚕丝纤维在浓度为9.0~9.3M的溴化锂溶液中溶解1~3h后在水中透析除盐并浓缩。
6.根据权利要求1所述的基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其特征在于,生长因子为VEGF、MCP-1、bFGF、S1P和PMA中的一种以上,或者为HGF与VEGF、MCP-1、bFGF、S1P和PMA中的一种以上的组合。
7.根据权利要求1所述的基于3D打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法,其特征在于,接种过程为:将浓度为50~150cells/ml的内皮细胞分散液灌注到通道中,震荡5~20min;一段时间为7~14d。
CN202010078215.0A 2020-02-03 2020-02-03 基于3d打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法 Active CN111733125B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202010078215.0A CN111733125B (zh) 2020-02-03 2020-02-03 基于3d打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202010078215.0A CN111733125B (zh) 2020-02-03 2020-02-03 基于3d打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN111733125A CN111733125A (zh) 2020-10-02
CN111733125B true CN111733125B (zh) 2021-11-26

Family

ID=72646199

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202010078215.0A Active CN111733125B (zh) 2020-02-03 2020-02-03 基于3d打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN111733125B (zh)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN113144285B (zh) * 2021-03-09 2022-09-16 东华大学 一种三维打印复合无机纳米纤维支架及其制备和应用
CN114404394B (zh) * 2022-01-20 2024-01-02 西安交通大学 一种干细胞水凝胶及制备方法、冷冻保存方法和复苏方法

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106635954A (zh) * 2016-10-12 2017-05-10 武汉枫霖科技有限公司 一种基于3d生物打印构建三维血管组织的方法
CN107693846A (zh) * 2017-09-29 2018-02-16 清华大学 一种具有多层血管结构的仿生血管化软组织及其制备方法

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105983134A (zh) * 2015-03-05 2016-10-05 刘畅 一种人工血管及其制备方法
US10676712B2 (en) * 2015-07-22 2020-06-09 Inventia Life Science Pty Ltd Process for printing 3D tissue culture models

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106635954A (zh) * 2016-10-12 2017-05-10 武汉枫霖科技有限公司 一种基于3d生物打印构建三维血管组织的方法
CN107693846A (zh) * 2017-09-29 2018-02-16 清华大学 一种具有多层血管结构的仿生血管化软组织及其制备方法

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
"3D打印技术制备明胶纳米微球基复合凝胶支架";许杜亮 等;《东华大学学报(自然科学版)》;20141231;第40卷(第6期);第718-722、757页 *
"Controlled Growth Factor Release in 3D-Printed Hydrogels";Pengrui Wang 等;《Advanced Healthcare Materials》;20191107;第1-34页 *
"Thermal inkjet bioprinting triggers the activation of the VEGF pathway in human microvascular endothelial cells in vitro";Luis H Solis 等;《Biofabrication》;20190708;第11卷;第1-14页 *
"丝素蛋白纤维及功能化材料的设计与构筑";范苏娜 等;《高分子学报》;20210131;第52卷(第1期);第29-46页 *

Also Published As

Publication number Publication date
CN111733125A (zh) 2020-10-02

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Ren et al. Developments and opportunities for 3D bioprinted organoids
Thayer et al. History and trends of 3D bioprinting
JP6710000B2 (ja) マイクロファイバ
CN107320780B (zh) 一种中空管结构的多层水凝胶及其制备方法与应用
JP5674442B2 (ja) 血管様構造物を含む三次元細胞培養物
CN111733125B (zh) 基于3d打印技术的浇筑成型仿生毛细血管网的制法
CN105311683A (zh) 一种含内通道网络和定向孔隙结构的仿生组织工程支架及其制备方法与应用
Hu et al. Microfluidic technologies for vasculature biomimicry
CN106963979B (zh) 一种多级结构仿生血管网络组织工程支架的制备方法
CN111471641B (zh) 多片层单元水凝胶包被的仿生毛细血管网的3d打印制法
CN106397819B (zh) 一种用于调控细胞三维微图案化生长的水凝胶及其制备方法
Nguyen et al. Microfluidic approach for the fabrication of cell-laden hollow fibers for endothelial barrier research
CN108149342A (zh) 基于微流控技术的复合空腔微纤维的制备方法
WO2011011962A1 (zh) 一种多层结构的复杂组织器官前体的制备方法
CN105754857A (zh) 三维毛细血管网络生物芯片的制造方法
Shao et al. Hierarchically inverse opal porous scaffolds from droplet microfluidics for biomimetic 3D cell co-culture
Sudo Multiscale tissue engineering for liver reconstruction
Li et al. Rapid fabrication of ready-to-use gelatin scaffolds with prevascular networks using alginate hollow fibers as sacrificial templates
CN105985925A (zh) 一种全功能人工器官拟合体及其制备和培养方法
Perez-Castillejos Replication of the 3D architecture of tissues
Lan et al. Facile fabrication of hollow hydrogel microfiber via 3D printing-assisted microfluidics and its application as a biomimetic blood capillary
Sun et al. Tailoring biomaterials for biomimetic organs-on-chips
Pei et al. Cellulose-based hydrogels with excellent microstructural replication ability and cytocompatibility for microfluidic devices
CN111283998B (zh) 基于3d打印技术的特定生长的仿生毛细血管网的制法
Visconti et al. Cardiovascular tissue engineering I. Perfusion bioreactors: a review

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant