CN111593019A - 胎盘间充质干细胞无血清培养基 - Google Patents

胎盘间充质干细胞无血清培养基 Download PDF

Info

Publication number
CN111593019A
CN111593019A CN202010490802.0A CN202010490802A CN111593019A CN 111593019 A CN111593019 A CN 111593019A CN 202010490802 A CN202010490802 A CN 202010490802A CN 111593019 A CN111593019 A CN 111593019A
Authority
CN
China
Prior art keywords
mesenchymal stem
growth factor
culture medium
serum
stem cells
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CN202010490802.0A
Other languages
English (en)
Other versions
CN111593019B (zh
Inventor
张印
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Guangzhou Tongkang Biological Technology Co ltd
Original Assignee
Guangzhou Tongkang Biological Technology Co ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Guangzhou Tongkang Biological Technology Co ltd filed Critical Guangzhou Tongkang Biological Technology Co ltd
Priority to CN202010490802.0A priority Critical patent/CN111593019B/zh
Publication of CN111593019A publication Critical patent/CN111593019A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN111593019B publication Critical patent/CN111593019B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0603Embryonic cells ; Embryoid bodies
    • C12N5/0605Cells from extra-embryonic tissues, e.g. placenta, amnion, yolk sac, Wharton's jelly
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0652Cells of skeletal and connective tissues; Mesenchyme
    • C12N5/0662Stem cells
    • C12N5/0668Mesenchymal stem cells from other natural sources
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/05Inorganic components
    • C12N2500/10Metals; Metal chelators
    • C12N2500/20Transition metals
    • C12N2500/24Iron; Fe chelators; Transferrin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/90Serum-free medium, which may still contain naturally-sourced components
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10Growth factors
    • C12N2501/11Epidermal growth factor [EGF]
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10Growth factors
    • C12N2501/135Platelet-derived growth factor [PDGF]
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10Growth factors
    • C12N2501/15Transforming growth factor beta (TGF-β)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/30Hormones
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/998Proteins not provided for elsewhere
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/999Small molecules not provided for elsewhere

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Reproductive Health (AREA)
  • Gynecology & Obstetrics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Pregnancy & Childbirth (AREA)
  • Rheumatology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

本发明涉及干细胞技术领域,具体涉及一种胎盘间充质干细胞无血清培养基,其包括包括DMEM低糖培养基和补充剂,补充剂包括以下浓度的组分:人血清白蛋白1~5mg/mL、转铁蛋白5~10μg/mL、表皮细胞生长因子5~10ng/mL、转化生长因子10~30ng/mL、血小板衍生生长因子10~25ng/mL、谷胱甘肽1~5μg/mL、普鲁兰尼克F68 10~20μg/mL和木脂素5~10μg/mL。本发明制备的无血清培养基可以显著提高胎盘间充质干细胞的扩增能力,胎盘间充质干细胞存活率高,培养成本低,且缩短了细胞的培养时间,适用范围广,可用于工业化生产。

Description

胎盘间充质干细胞无血清培养基
技术领域
本发明涉及干细胞技术领域,尤其是涉及一种胎盘间充质干细胞无血清培养基。
背景技术
胎盘间充质干细胞(MSC),是一种多功能干细胞,具有强大的增殖能力和多向分化潜能的多潜能细胞。MSC在适宜的体内或体外环境下具有分化为:上皮干细胞、神经干细胞、肝干细胞,肌细胞、成骨细胞、软骨细胞、基质细胞等多种细胞的能力。MSC具有免疫调节作用,通过负性免疫调节功能,抑制机体亢进的免疫反应,使机体免疫功能恢复平衡,从而可以用来治疗造血干细胞移植之后的免疫排斥反应以及克隆氏病、红斑狼疮,硬皮病等自身免疫系统疾病。MSC是人体微环境的重要组成部分,移植间充质干细胞可以改变造血微环境,重建免疫系统,促进造血功能恢复,与造血干细胞共移植能显著提高白血病和难治性贫血等的治疗效果。近年来,胎盘间充质干细胞具有取材方便和数量多的优点,有利于间充质干细胞在科学研究和临床中的应用。
传统的间充质干细胞的培养方法是使用含有动物血清的培养基培养,主要是为了给间充质干细胞的生长繁殖提供养分如激素、生长因子、转运蛋白等,但是,血清是一种非常复杂的混合物,成分可能多达几百种,目前对其准确的成分、含量及其作用机制仍不清楚,血清各批次之间的质量差别较大,受到生产商原料来源地的影响较大,要保证每批的一致性很困难,不利于实验室研究或产品生产的标准化,血清中可能含有一些未知的或未检测出的支原体、病毒等有害微生物,对细胞产生潜在的影响,并且血清中存在的一些抗体、补体及细菌毒素等物质,也对细胞的生长产生不利影响,甚至造成细胞的死亡。
中国专利申请CN201911219419.5公开了一种无血清培养基及其制备方法,培养基包括了非必需氨基酸、谷氨酰胺、氢化可的松、地塞米松,聚乙烯醇、重组人胰岛素,重组人转铁蛋白、重组人表皮生长因子、重组碱性成纤维细胞生长因子等,该培养基包括了20多种组分,成本昂贵,并且该无血清培养基仅仅适合某一类的细胞培养,适用范围小,因此,还有改进的空间。
发明内容
针对现有技术存在的不足,本发明的目的之一是提供一种胎盘间充质干细胞无血清培养基,显著提高胎盘间充质干细胞的扩增能力,胎盘间充质干细胞存活率高,培养成本低,且缩短了细胞的培养时间,适用范围广,可用于工业化生产。
本发明的上述发明目的是通过以下技术方案得以实现的:
一种胎盘间充质干细胞无血清培养基,包括DMEM低糖培养基和补充剂,所述补充剂包括以下浓度的组分:人血清白蛋白1~5mg/mL、转铁蛋白5~10μg/mL、表皮细胞生长因子5~10ng/mL、转化生长因子10~30ng/mL、血小板衍生生长因子10~25ng/mL、谷胱甘肽1~5μg/mL、普鲁兰尼克F68 10~20μg/mL和木脂素5~10μg/mL。
进一步地,所述DMEM低糖培养基和补充剂的质量比为5~8:1。
进一步地,所述补充剂包括以下浓度的组分:人血清白蛋白1~4mg/mL、转铁蛋白5~8μg/mL、表皮细胞生长因子5~9ng/mL、转化生长因子10~25ng/mL、血小板衍生生长因子10~20ng/mL、谷胱甘肽1~4μg/mL、普鲁兰尼克F68 15~20μg/mL和木脂素5~8μg/mL。
更进一步地,所述补充剂包括以下浓度的组分:人血清白蛋白3.5mg/mL、转铁蛋白6μg/mL、表皮细胞生长因子8ng/mL、转化生长因子14ng/mL、血小板衍生生长因子10ng/mL、谷胱甘肽2μg/mL、普鲁兰尼克F68 18μg/mL和木脂素6μg/mL。
进一步地,所述谷胱甘肽为还原型谷胱甘肽。
进一步地,所述血小板衍生生长因子为血小板生长因子。
进一步地,所述转化生长因子为转化生长因子-β。
本发明目的之二是提供一种胎盘间充质干细胞无血清培养基的制备方法,包括以下步骤:在DMEM低糖培养基中添加人血清白蛋白、转铁蛋白、表皮细胞生长因子、转化生长因子、血小板衍生生长因子、谷胱甘肽、普鲁兰尼克F68和木脂素,混匀,经滤膜过滤除菌,得到胎盘间充质干细胞无血清培养基。
进一步地,所述滤膜滤径为0.1~0.2μm。
上述组分及其浓度是本发明人经过大量的试验筛选得到,本发明以DMEM低糖培养基为基础,然后以DMEM低糖培养基和补充剂的质量比为5~8:1添加补充剂至DMEM低糖培养基,其中DMEM低糖培养基提供氨基酸、无机盐、糖类等基本营养物质;人血清白蛋白能够提供细胞生长所需的营养物质,还可以调节渗透压,保护细胞免受机械损伤;转铁蛋白是血浆中主要的铁传递蛋白,为细胞内化和细胞代谢提供所需的铁;表皮细胞生长因子是一种多功能的生长因子,可以促进细胞的生长;转化生长因子-β和血小板生长因子则起到间充质干细胞生存维持和增殖刺激的作用,还原型谷胱甘肽是一种细胞内重要的调节代谢物质,在维持细胞生物功能起重要作用。
普鲁兰尼克F68,属于非穿透性低温冻存剂,具有无毒,无抗原性,无溶血性,可静脉注射等优点,可用于红细胞的低温保存,木脂素属于一种植物雌激素,分子式为C7H23O15,具有清除体内自由基、抗氧化的效果,本发明采用普鲁兰尼克F68和木脂素复配,不仅可以促进细胞的快速增殖,提高细胞的增殖能力,细胞的活力高,减少细胞在培养过程的损伤,还可以缩短细胞的培养时间,提高工作效率。
本发明还提供了一种胎盘间充质干细胞无血清培养基在胎盘间充质干细胞培养中的用途。
综上所述,本发明包括以下至少一种有益技术效果:
1.本发明提供一种胎盘间充质干细胞无血清培养基,组分清晰,排除了动物来源的病原体污染,重现性和可控性与血清培养基效果更佳,显著提高了胎盘间充质干细胞的扩增能力,胎盘间充质干细胞存活率高,细胞培养过程中损伤小;
2.本发明提供一种胎盘间充质干细胞无血清培养基,培养成本低,且缩短了细胞的培养时间,提高了工作效率,培养基适用范围广;
3.本发明提供一种胎盘间充质干细胞无血清培养基的制备方法,制备方法简单,安全性较佳,可用于工业化生产。
具体实施方式
以下对本发明作进一步详细说明。
以下部分原料:普鲁兰尼克F68购于sigma公司,木脂素购于陕西斯诺特生物技术有限公司。所涉及的组分、试剂均为常规市售产品,或可通过本领域的常规技术手段获得。DMEM低糖培养基来源于赛默飞世尔科技(中国)有限公司。
实施例1、含有不同浓度普鲁兰尼克F68的培养基对细胞增殖的影响
取普鲁兰尼克F68加入至生理盐水中得100mM的普鲁兰尼克F68母液,分别用DMEM低糖培养基将普鲁兰尼克F68母液稀释成5μg/mL、10μg/mL、15μg/mL、18μg/mL、20μg/mL的药物溶液,再向药物溶液其中添加等量等浓度(6μg/mL)的木脂素。
将P1代胎盘间充质干细胞以104个/mL的密度接种于96孔板中,分别用含不同浓度普鲁兰尼克F68的培养基,每孔100μL,以不加普鲁兰尼克F68和木脂素的胎盘间充质干细胞的无血清培养基为空白组,置于37℃、5%CO2的细胞培养箱中继续培养,分别于6h、8h和12h之后,用MTT检测方法,测定每孔的吸光值,将加有普鲁兰尼克F68和木脂素的处理组的吸光值与不加普鲁兰尼克F68和木脂素的空白组的吸光值相比,计算每孔的细胞存活率,见表1。
表1
时间 5μg/mL 10μg/mL 15μg/mL 18μg/mL 20μg/mL
6h 100.59% 115.47% 128.41% 158.41% 139.45%
8h 99.84% 117.27% 129.88% 162.24% 139.97%
12h 102.36% 112.56% 117.76% 165.89% 140.18%
在12h,以浓度为18μg/mL普鲁兰尼克F68+6μg/mL木脂素的胎盘间充质干细胞的无血清培养基为试验A组,以含有(6μg/mL木脂素)不加普鲁兰尼克F68的胎盘间充质干细胞的无血清培养基为试验B组,以含有(18μg/mL普鲁兰尼克F68)不加木脂素的胎盘间充质干细胞的无血清培养基为试验C组,试验A、B、C组吸光值相比,计算每孔的细胞存活率。见表2。
表2
组别 存活率
试验A组 165.89%
试验B组 100.57%
试验C组 108.46%
结果如下:当普鲁兰尼克F68的浓度为10~18μg/mL时,存活率呈现升高的趋势,并随着浓度的增加而升高,当浓度为18μg/mL,存活率达到峰值,并随着浓度的增加而降低,并且本发明仅需要培养6~12h,便可达到胎盘间充质干细胞的高存活率,缩短了细胞的培养时间,提高了工作效率,并且普鲁兰尼克F68和木脂素复配还可以提高细胞的活力,减少细胞在培养过程的损伤。
实施例2、本发明的胎盘间充质干细胞无血清培养基
本发明胎盘间充质干细胞无血清培养基包括DMEM低糖培养基和补充剂,补充剂包括以下浓度的组分:人血清白蛋白1mg/mL、转铁蛋白5μg/mL、表皮细胞生长因子5ng/mL、转化生长因子-β10ng/mL、血小板生长因子10ng/mL、还原型谷胱甘肽1μg/mL、普鲁兰尼克F6810μg/mL和木脂素5μg/mL。
本发明胎盘间充质干细胞无血清培养基的制备方法,包括以下步骤:在DMEM低糖培养基中添加人血清白蛋白、转铁蛋白、表皮细胞生长因子、转化生长因子-β、血小板生长因子、还原型谷胱甘肽、普鲁兰尼克F68和木脂素,搅拌均匀,搅拌速度为800rpm/min,搅拌时间为20min,经滤径为0.1μm滤膜过滤除菌,得到胎盘间充质干细胞无血清培养基。
在本实施例中,DMEM低糖培养基和补充剂的质量比为5:1。
实施例3、本发明的胎盘间充质干细胞无血清培养基
本发明胎盘间充质干细胞无血清培养基包括DMEM低糖培养基和补充剂,补充剂包括以下浓度的组分:人血清白蛋白3mg/mL、转铁蛋白6μg/mL、表皮细胞生长因子7ng/mL、转化生长因子-β20ng/mL、血小板生长因子15ng/mL、还原型谷胱甘肽2μg/mL、普鲁兰尼克F6815μg/mL和木脂素6μg/mL。
本发明胎盘间充质干细胞无血清培养基的制备方法,包括以下步骤:在DMEM低糖培养基中添加人血清白蛋白、转铁蛋白、表皮细胞生长因子、转化生长因子-β、血小板生长因子、还原型谷胱甘肽、普鲁兰尼克F68和木脂素,搅拌均匀,搅拌速度为900rpm/min,搅拌时间为25min,经滤径为0.15μm滤膜过滤除菌,得到胎盘间充质干细胞无血清培养基。
在本实施例中,DMEM低糖培养基和补充剂的质量比为6:1。
实施例4、本发明的胎盘间充质干细胞无血清培养基
本发明胎盘间充质干细胞无血清培养基包括DMEM低糖培养基和补充剂,补充剂包括以下浓度的组分:人血清白蛋白4mg/mL、转铁蛋白8μg/mL、表皮细胞生长因子9ng/mL、转化生长因子-β25ng/mL、血小板生长因子20ng/mL、还原型谷胱甘肽4μg/mL、普鲁兰尼克F6815μg/mL和木脂素8μg/mL。
本发明胎盘间充质干细胞无血清培养基的制备方法,包括以下步骤:在DMEM低糖培养基中添加人血清白蛋白、转铁蛋白、表皮细胞生长因子、转化生长因子-β、血小板生长因子、还原型谷胱甘肽、普鲁兰尼克F68和木脂素,搅拌均匀,搅拌速度为900rpm/min,搅拌时间为30min,经滤径为0.15μm滤膜过滤除菌,得到胎盘间充质干细胞无血清培养基。
在本实施例中,DMEM低糖培养基和补充剂的质量比为7:1。
实施例5、本发明的胎盘间充质干细胞无血清培养基
本发明胎盘间充质干细胞无血清培养基包括DMEM低糖培养基和补充剂,补充剂包括以下浓度的组分:人血清白蛋白5mg/mL、转铁蛋白10μg/mL、表皮细胞生长因子10ng/mL、转化生长因子-β30ng/mL、血小板生长因子25ng/mL、还原型谷胱甘肽5μg/mL、普鲁兰尼克F68 20μg/mL和木脂素10μg/mL。
本发明胎盘间充质干细胞无血清培养基的制备方法,包括以下步骤:在DMEM低糖培养基中添加人血清白蛋白、转铁蛋白、表皮细胞生长因子、转化生长因子-β、血小板生长因子、还原型谷胱甘肽、普鲁兰尼克F68和木脂素,搅拌均匀,搅拌速度为1000rpm/min,搅拌时间为40min,经滤径为0.2μm滤膜过滤除菌,得到胎盘间充质干细胞无血清培养基。
在本实施例中,DMEM低糖培养基和补充剂的质量比为8:1。
实施例6、本发明的胎盘间充质干细胞无血清培养基
本发明胎盘间充质干细胞无血清培养基包括DMEM低糖培养基和补充剂,补充剂包括以下浓度的组分:人血清白蛋白3.5mg/mL、转铁蛋白6μg/mL、表皮细胞生长因子8ng/mL、转化生长因子-β14ng/mL、血小板生长因子10ng/mL、还原型谷胱甘肽2μg/mL、普鲁兰尼克F68 18μg/mL和木脂素6μg/mL。
本发明胎盘间充质干细胞无血清培养基的制备方法,包括以下步骤:在DMEM低糖培养基中添加人血清白蛋白、转铁蛋白、表皮细胞生长因子、转化生长因子-β、血小板生长因子、还原型谷胱甘肽、普鲁兰尼克F68和木脂素,搅拌均匀,搅拌速度为900rpm/min,搅拌时间为35min,经滤径为0.1μm滤膜过滤除菌,得到胎盘间充质干细胞无血清培养基。
在本实施例中,DMEM低糖培养基和补充剂的质量比为6.5:1。
对比例1、本发明的胎盘间充质干细胞无血清培养基
与实施例6相似,区别仅在于,培养基不含有普鲁兰尼克F68和木脂素,其余步骤和参数与实施例6相同。
对比例2、本发明的胎盘间充质干细胞无血清培养基
与实施例6相似,区别仅在于,培养基不含有普鲁兰尼克F68,其余步骤和参数与实施例6相同。
对比例3、本发明的胎盘间充质干细胞无血清培养基
与实施例6相似,区别仅在于,培养基不含有木脂素,其余步骤和参数与实施例6相同。
对比例4、本发明的胎盘间充质干细胞无血清培养基
采用中国专利申请CN201911219419.5制备的无血清培养基。
试验例一、胎盘间充质干细胞增殖情况
将P1代胎盘间充质干细胞分别用实施例2~6及对比例1~4制备的培养基进行培养,将细胞制成浓度为2×108/L的细胞悬液,以100μL/孔接种于无菌的96培养板中,使用BrdU掺入到DNA合成期,在A450nm条件下,检测P5代细胞的增殖能力。
表3
组别 吸光度
实施例2 0.26
实施例3 0.25
实施例4 0.27
实施例5 0.26
实施例6 0.28
对比例1 0.09
对比例2 0.12
对比例3 0.14
对比例4 0.16
根据表3的数据可知,本发明实施例2~6制备的胎盘间充质干细胞无血清培养基可以显著提高P5代胎盘间充质干细胞的增殖能力,对比例1(未添加普鲁兰尼克F68和木脂素)制备的胎盘间充质干细胞无血清培养基提高P5代胎盘间充质干细胞的增殖能力较差,对比例2或对比例3制备的胎盘间充质干细胞无血清培养基只添加普鲁兰尼克F68和木脂素其中的一种,其提高胎盘间充质干细胞的增殖能力效果也不佳,说明普鲁兰尼克F68和木脂素复配时,可以促进胎盘间充质干细胞的快速增殖。
试验例二、胎盘间充质干细胞的细胞表面标志物的表达情况
将P1代胎盘间充质干细胞分别用实施例2~6制备的培养基和市场上现有的血清培养基进行培养,其中用血清培养基培养细胞作为对照组,取第5代的胎盘间充质干细胞,加入胰酶消化后制成单细胞悬液,在4℃孵育30min,用PBS洗2次后用流式细胞仪检测。
表4
组别 CD90<sup>+</sup> CD73<sup>+</sup> CD105<sup>+</sup>
实施例2 99.85%±0.16 99.94%±0.02 99.10%±0.01
实施例3 99.78%±0.12 99.94%±0.01 99.13%±0.01
实施例4 99.84%±0.15 99.95%±0.02 99.89%±0.02
实施例5 99.85%±0.14 99.92%±0.03 99.15%±0.02
实施例6 99.88%±0.16 99.99%±0.01 99.20%±0.03
对照组 50.51%±6.12 87.63%±0.02 74.22%±2.05
结果表4所示,采用本发明实施例2~6制备的胎盘间充质干细胞培养基经过5代培养得到的胎盘间充质干细胞,其CD90+、CD73+、CD105+细胞较多,仍然以较高的比例存在,细胞的生物学特性不变,具有间充质干细胞表面抗原特征。
上述实施例仅例示性说明本发明的原理及功效,而非用于限制本发明。任何熟悉此技术的人士皆可在不违背本发明的精神及范畴下,对上述实施例进行修饰或改变。因此,举凡所属技术领域中具有通常知识者在未脱离本发明所揭示的精神与技术思想下所完成的一切等效修饰或改变,仍应由本发明的权利要求所涵盖。

Claims (10)

1.胎盘间充质干细胞无血清培养基,其特征在于,包括DMEM低糖培养基和补充剂,所述补充剂包括以下浓度的组分:人血清白蛋白1~5mg/mL、转铁蛋白5~10μg/mL、表皮细胞生长因子5~10ng/mL、转化生长因子10~30ng/mL、血小板衍生生长因子10~25ng/mL、谷胱甘肽1~5μg/mL、普鲁兰尼克F68 10~20μg/mL和木脂素5~10μg/mL。
2.根据权利要求1所述的胎盘间充质干细胞无血清培养基,其特征在于,所述DMEM低糖培养基和补充剂的质量比为5~8:1。
3.根据权利要求1所述的胎盘间充质干细胞无血清培养基,其特征在于,所述补充剂包括以下浓度的组分:人血清白蛋白1~4mg/mL、转铁蛋白5~8μg/mL、表皮细胞生长因子5~9ng/mL、转化生长因子10~25ng/mL、血小板衍生生长因子10~20ng/mL、谷胱甘肽1~4μg/mL、普鲁兰尼克F68 15~20μg/mL和木脂素5~8μg/mL。
4.根据权利要求1所述的胎盘间充质干细胞无血清培养基,其特征在于,所述补充剂包括以下浓度的组分:人血清白蛋白3.5mg/mL、转铁蛋白6μg/mL、表皮细胞生长因子8ng/mL、转化生长因子14ng/mL、血小板衍生生长因子10ng/mL、谷胱甘肽2μg/mL、普鲁兰尼克F68 18μg/mL和木脂素6μg/mL。
5.根据权利要求1所述的胎盘间充质干细胞无血清培养基,其特征在于,所述谷胱甘肽为还原型谷胱甘肽。
6.根据权利要求1所述的胎盘间充质干细胞无血清培养基,其特征在于,所述血小板衍生生长因子为血小板生长因子。
7.根据权利要求1所述的胎盘间充质干细胞无血清培养基,其特征在于,所述转化生长因子为转化生长因子-β。
8.根据权利要求1~7任一所述的胎盘间充质干细胞无血清培养基的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:在DMEM低糖培养基中添加人血清白蛋白、转铁蛋白、表皮细胞生长因子、转化生长因子、血小板衍生生长因子、谷胱甘肽、普鲁兰尼克F68和木脂素,混匀,经滤膜过滤除菌,得到胎盘间充质干细胞无血清培养基。
9.根据权利要求8所述的胎盘间充质干细胞无血清培养基的制备方法,其特征在于,所述滤膜滤径为0.1~0.2μm。
10.根据权利要求1~7任一所述的胎盘间充质干细胞无血清培养基在胎盘间充质干细胞培养中的用途。
CN202010490802.0A 2020-06-02 2020-06-02 胎盘间充质干细胞无血清培养基 Active CN111593019B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202010490802.0A CN111593019B (zh) 2020-06-02 2020-06-02 胎盘间充质干细胞无血清培养基

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202010490802.0A CN111593019B (zh) 2020-06-02 2020-06-02 胎盘间充质干细胞无血清培养基

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN111593019A true CN111593019A (zh) 2020-08-28
CN111593019B CN111593019B (zh) 2021-06-25

Family

ID=72188291

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202010490802.0A Active CN111593019B (zh) 2020-06-02 2020-06-02 胎盘间充质干细胞无血清培养基

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN111593019B (zh)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN112625114A (zh) * 2020-12-31 2021-04-09 瑞诺威德(杭州)医学科技有限公司 一种含有蛋白的保护剂及间充质干细胞因子的保存方法
CN116585301A (zh) * 2023-07-18 2023-08-15 青岛瑞源细胞生物科技开发有限公司 一种提高干细胞治疗能力的制剂

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6210922B1 (en) * 1998-11-30 2001-04-03 National Research Council Of Canada Serum free production of recombinant proteins and adenoviral vectors
CN102827807A (zh) * 2012-09-19 2012-12-19 北京京蒙高科干细胞技术有限公司 一种间充质干细胞无血清培养基
CN103805562A (zh) * 2014-01-13 2014-05-21 章毅 培养胎盘间充质干细胞的无血清培养基
CN105112366A (zh) * 2015-08-18 2015-12-02 广州暨南生物医药研究开发基地有限公司 一种含小檗碱的间充质干细胞无血清培养基
CN105112362A (zh) * 2015-08-18 2015-12-02 广州暨南生物医药研究开发基地有限公司 一种胎盘间充质干细胞的无血清培养基及其制备方法
CN110923196A (zh) * 2019-12-03 2020-03-27 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 无血清培养基及其制备方法和间充质干细胞的培养方法

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6210922B1 (en) * 1998-11-30 2001-04-03 National Research Council Of Canada Serum free production of recombinant proteins and adenoviral vectors
CN102827807A (zh) * 2012-09-19 2012-12-19 北京京蒙高科干细胞技术有限公司 一种间充质干细胞无血清培养基
CN103805562A (zh) * 2014-01-13 2014-05-21 章毅 培养胎盘间充质干细胞的无血清培养基
CN105112366A (zh) * 2015-08-18 2015-12-02 广州暨南生物医药研究开发基地有限公司 一种含小檗碱的间充质干细胞无血清培养基
CN105112362A (zh) * 2015-08-18 2015-12-02 广州暨南生物医药研究开发基地有限公司 一种胎盘间充质干细胞的无血清培养基及其制备方法
CN110923196A (zh) * 2019-12-03 2020-03-27 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 无血清培养基及其制备方法和间充质干细胞的培养方法

Non-Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
TACKLA S WINSTON: "Serum-Free Manufacturing of Mesenchymal Stem Cell Tissue Rings Using Human-Induced Pluripotent Stem Cells", 《STEM CELLS INTERNATIONAL》 *
唐莉丽: "试论五味子木脂素对发生氧化损伤心肌细胞的保护作用", 《当代医药论丛》 *
张文成: "间充质干细胞无异源/无血清培养基研发的现状和前景", 《中国医药生物技术》 *
杨吉成: "《医用细胞工程》", 30 June 2001, 上海交通大学出版社 *
王冬生: "植物雌激素防治骨质疏松作用的机制进展", 《中国骨质疏松杂志》 *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN112625114A (zh) * 2020-12-31 2021-04-09 瑞诺威德(杭州)医学科技有限公司 一种含有蛋白的保护剂及间充质干细胞因子的保存方法
CN116585301A (zh) * 2023-07-18 2023-08-15 青岛瑞源细胞生物科技开发有限公司 一种提高干细胞治疗能力的制剂
CN116585301B (zh) * 2023-07-18 2023-09-22 青岛瑞源细胞生物科技开发有限公司 一种提高干细胞治疗能力的制剂

Also Published As

Publication number Publication date
CN111593019B (zh) 2021-06-25

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN110923196B (zh) 无血清培养基及其制备方法和间充质干细胞的培养方法
CN111593019B (zh) 胎盘间充质干细胞无血清培养基
CN107267462B (zh) 一种诱导多能干细胞快速产生的无血清培养基
CN111518761B (zh) 一种间充质干细胞体外筛选、激活、扩增、冻存及其细胞库建立的方法
CN112662624A (zh) 一种用于骨髓间充质干细胞体外培养和扩增的无血清培养基
EP3252151B1 (en) Method for cultivating vascular smooth muscle cells
CN114317428B (zh) 一种含中药小分子的干细胞无血清培养基及其制备方法
CN113736729B (zh) 组合物及含有其的干细胞无血清培养基及干细胞培养方法
CN109430252A (zh) 一种干细胞冻存液及其制作方法
CN113692282A (zh) 一种生物活性物质组合物、包含所述组合物的无血清培养基及其用途
CN110699317A (zh) 一种人脐带间充质干细胞无血清培养基及其制备方法与应用
CN107674858B (zh) 骨髓内皮祖细胞的分离培养基和分离方法
CN111518762B (zh) 脐带间充质干细胞无血清培养基及其制备方法
KR20220036838A (ko) 엑소좀 및/또는 세포외 소포체의 생성 촉진 내지는 생산성 향상 방법
CN117916360A (zh) 用于角膜细胞培养和皮肤细胞培养的细胞培养基和补充剂
CN113005079A (zh) 一种人骨髓间充质干细胞体外扩增用添加剂及扩增方法
CN111944752B (zh) 骨骼肌干细胞无血清培养基及其制备方法
CN110923205A (zh) 一种淋巴管内皮细胞培养基及其制备方法和用途
Bandarra-Tavares et al. Dual production of human mesenchymal stromal cells and derived extracellular vesicles in a dissolvable microcarrier-based stirred culture system
CN105695407B (zh) 一种对干细胞具有活化作用的微量元素组合物及其应用
CN114645013B (zh) 一种通过物理途径促进干细胞分化的材料及方法
CN112779218B (zh) 用于原代培养肿瘤浸润性肥大细胞的培养基及培养方法
CN114621920B (zh) 一种由造血干祖细胞向nk细胞分化的方法及培养基
CN116200336A (zh) 一种用于人脐带间充质干细胞的无血清培养基及其应用
CN117106697A (zh) Palbociclib在制备CHO细胞无血清培养基中的应用

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant