CN111454869B - 一株海洋链霉菌及其应用 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及微生物领域,具体涉及一株海洋链霉菌及其应用。该海洋链霉菌于2020年5月7日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心。所述海洋链霉菌可作为抗菌剂;利用该菌株发酵还可进一步获得化学式为C19H16O6、结构式如式一的新化合物Kiamycin E,该方法具有高效环保的特点。
Figure 851295DEST_PATH_IMAGE001

Description

一株海洋链霉菌及其应用
技术领域
本发明涉及微生物技术领域,具体的说是一株海洋链霉菌及其作为抗菌剂的应用。
背景技术
霜霉病俗称白霉病、霜霉病等,是作物上的一种常见病害,可发生于黄瓜、玉米、白菜、葡萄等多种作物上。此病害在作物的生长过程中有很大的危害,会对农业生产造成不可挽回的巨大损失。在连阴雨天气,空气湿度大,或结露持续时间长时易流行。平均最低气温较高的年份发病重。早播、脱肥或病毒病重等条件下发病重。
霜霉病主要危害叶片,发病初期叶正面出现灰白色、淡黄色或黄绿色周缘不明显的病斑,后扩大为黄褐色病斑,病斑因受叶脉限制而呈多角形或不规则形,叶背密生白色霜状霉。病斑多时相互连接,使病叶局部或整叶枯死。病株往往由外向内层层干枯,严重时仅剩小小的心叶球。
发明内容
本发明目的在于提供一株海洋链霉菌及其作为抗菌剂的应用。
为实现上述目的,本发明采用技术方案为:
一株海洋链霉菌KCB-132,分类命名为Streptomyces pratensis ,保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏编号为:CGMCC No.19782,保藏时间为2020年5月7日,保藏单位地址:中国北京。
一种海洋链霉菌的应用,所述海洋链霉菌在作为抗菌剂中的应用。
所述海洋链霉菌在作为抗真菌菌剂中的应用。
所述抗菌剂为该菌株的发酵液、菌悬液、浓缩物、分离液中的一种或几种。
所述发酵物为将海洋链霉菌Streptomyces pratensis KCB-132划线接种于ISP2固体培养基上,28℃培养直至长出白色的孢子,取孢子体接种到液体培养基,28℃,150-220rpm/min,摇床培养8-12 d 收获发酵物;
所述浓缩物为将上述所得发酵液经大孔吸附树脂洗脱,而后减压浓缩得总浸膏;总浸膏经硅胶柱层析,以体积比为0:100-100:0的甲醇/二氯甲烷为洗脱液进行梯度洗脱,收集洗脱液体积比2:98的甲醇/二氯甲烷的洗脱组分,将收集的洗脱组分进行ODS反相柱层析,收集含50%有机醇的洗脱液的洗脱部分,浓缩。
一种海洋链霉菌的应用,所述菌株在制备Kiamycin E化合物中的应用。
一种Kiamycin E化合物,化合物的化学式为C19H16O6,其结构式为
Figure 932790DEST_PATH_IMAGE001
将活化后的海洋链霉菌Streptomyces pratensis KCB-132于ISP2培养基中发酵培养,纯化后即得Kiamycin E。
化合物得Kiamycin E的制备方法:
1)将海洋链霉菌Streptomyces pratensis KCB-132划线接种于ISP2固体培养基上,28℃培养直至长出白色的孢子,取孢子体接种到液体培养基,28℃,150-220 rpm/min,摇床培养8-12 d 收获发酵物。将发酵液经大孔吸附树脂洗脱,而后减压浓缩得总浸膏;
2)总浸膏经硅胶柱层析,以体积比为0:100-100:0的甲醇/二氯甲烷为洗脱液进行梯度洗脱,收集洗脱液体积比2:98的甲醇/二氯甲烷的洗脱组分,将收集的洗脱组分进行ODS反相柱层析,收集含50%有机醇的洗脱液的洗脱部分,浓缩,进行HPLC制备得到化合物Kiamycin E。
所述步骤1)中萃取是采用的有机溶剂为乙酸乙酯和/或正丁醇;
所述大孔吸附树脂洗脱采用的洗脱液为有机醇。
所述步骤1)中萃取是采用的有机溶剂为乙酸乙酯和/或正丁醇,优选为乙酸乙酯;
所述大孔吸附树脂洗脱采用的洗脱液为有机醇;其中,有机醇为甲醇、乙醇中的一种,优选为乙醇。
所述ODS反相柱层析的洗脱液为有机醇和水;其中,有机醇和水的体积比为0:100-100:0,所述有机剂为甲醇、乙醇或乙腈,优选为甲醇。
所述培养基为ISP2固体或液体培养基。
所述大孔吸附树脂柱,为弱极性或非极性的大孔吸附树脂,优选弱极性。
一种化合物的应用,所述化合物在作为抗菌剂中的应用。
所述化合物在作为抗植物或环境中的真菌剂的应用。
所述化合物在作为抗霜霉病菌的抗菌剂中的应用。
本发明所具有的优点:
1.本发明制备所得的Kiamycin E类化合物来源于海洋链霉菌Streptomyces pratensis KCB-132的发酵产物,采用微生物发酵的方法制备该化合物具有高效环保的特点;
2.本发明制备所得的Kiamycin E类化合物具有显著抗霜霉病菌活性,且该化合物为尚未被报道的新化合物,对霜霉病菌的MIC值为5.1 μg/mL,可进一步探索其作用机制,以期开发为新型抗植物病害真菌剂或其先导化合物。
附图说明
图1为本发明实施例提供的Kiamycin E 正离子质谱图(HR-ESI-MS)。
图2为本发明实施例提供的Kiamycin E 1H NMR谱(溶剂:DMSO-d 6 )。
图3为本发明实施例提供的Kiamycin E 13C NMR谱(溶剂:DMSO-d 6 )。
图4为本发明实施例提供的Kiamycin E DEPT-135谱(溶剂:DMSO-d 6 )。
图5为本发明实施例提供的Kiamycin E 1H-1H COSY谱(溶剂:DMSO-d 6 )。
图6为本发明实施例提供的Kiamycin E HMBC谱(溶剂:DMSO-d 6 )。
图7为本发明实施例提供的Kiamycin E NOESY谱(溶剂:DMSO-d 6 )。
图8为本发明实施例提供的Kiamycin E HSQC谱(溶剂:DMSO-d 6 )。
图9为本发明实施例提供的Kiamycin E X单晶衍射图。
具体实施方式
下面的实施例用以解释本发明,但是并非对本发明实质内容的限制。
实施例1. 海洋链霉菌Streptomyces pratensis KCB-132的获取。
分离培养基为高氏一号培养基,加入50mg/L放线菌酮、50mg/L制霉菌素和20 mg/L萘啶酮酸作为抑制剂,灭菌条件为121℃、20 min。采用稀释涂布法对海洋沉积物样品中的放线菌进行分离,分离平板于28℃培养21天,经纯化得到链霉菌Streptomyces pratensis KCB-132
形态生长特征:
将菌株Streptomyces pratensis KCB-132接种于固体ISP2培养基上,培养7天。菌体可产生丰富的白色气生菌丝,基内菌丝成淡黄色。菌落干燥,周别不规则。
将菌株接种在ISP2培养基上,分别在4℃、10℃、15℃、20℃、28℃、32℃、37℃、42℃、45℃培养,每周观察一次,四周结束,重复2 次;
再将菌株接种在含有不同浓度NaCl(不同浓度的NaCl依次为0%,3%,5%,8%,10%,15%)的ISP2培养基内,37℃培养,每周观察一次,四周结束,重复2 次;
另,再将菌株接种在含有不同缓冲液(不同缓冲液为:pH Buffer:pH 5.0-5.5:0.1M 柠檬酸-0.1M 柠檬酸钠;pH 6.0-8.0:10mM 4-羟乙基哌嗪乙磺酸-0.5 M NaOH;pH8.5-11.5:0.5M NaHCO3-0.5M Na2CO3)的ISP2培养基中,并以空白培养基作阴性对照,37℃培养,每周观察一次,四周结束,重复2次。
结果表明:菌株生长温度范围为10-37℃,最适生长温度为28℃,pH生长范围为6.0-11.0,最适pH为7.5,盐浓度(NaCl)生长范围为0-5%。
实施例2 Kiamycin E的制备
1)发酵培养
将上述获得海洋链霉菌Streptomyces pratensis KCB-132划线接种于ISP2固体培养基上,28℃培养3-4 d,直至长出白色的孢子,将孢子体10%的接种量接种到ISP2液体培养基中,28℃,150-220 rpm/min,摇床培养8-12 d 收获发酵物。过滤发酵物获得发酵液和菌丝体,发酵液经大孔吸附树脂柱(12nm,50μm),100%乙醇洗脱,用旋转蒸发仪减压浓缩(真空度100mbar,转速100rpm)得总浸膏。
所述ISP2液体培养基为葡萄糖0.4%,酵母粉0.4%,麦芽浸粉1%。固体培养基在此基础上添加2%的琼脂。
2)粗提物分离纯化
总浸膏经正相硅胶(200-300目,54-75μm)柱层析,以二氯甲烷:甲醇进行梯度洗脱,流速5ml/min,以体积比为100:0至0:100(二氯甲烷:甲醇(v/v))。收集洗脱液体积比98:2(二氯甲烷:甲醇)的洗脱组分,将收集的洗脱组分进行ODS(C-18,50μm)反相柱层析,以水:甲醇(v/v)体积比100:0至0:100进行梯度洗脱,流速2ml/min,收集50:50(水:甲醇)洗脱部分,浓缩,进行HPLC制备,以甲醇:水作为流动相,洗脱速率为1ml/min,收集保留时间tR为20.5-22.7min的组分,得到化合物Kiamycin E。
实施例3. Kiamycin E的结构确证
1. 仪器与材料
Jasco P-1020 数字式旋光仪,Agilent TOF/6500高分辨率质谱,岛津UV-2401型可见-紫外分光光度计,核磁为Bruke Avance III 500 NMR spectrometer,为按上述实施例1步骤制备。
2. 化合物结构鉴定
Kiamycin E:白色粉末,易溶于二甲亚砜、甲醇,丙酮、氯仿,微溶于水,[α]25D+38.7 (MeOH, c 0.2); UV (Acetonitrile) λmax (log ε) 203 (3.6), 262 (2.8), 336(2.5) nm; HRESIMS [M + H]+, m/z325.10740 (calcd for C19H17O5, 325.10760).
Kiamycin E的核磁数据见表一,图1是Kiamycin E正离子质谱图(HR-ESI-MS)。图2是Kiamycin E 1H NMR谱图(溶剂:DMSO-d 6 )。图3是Kiamycin E 13C NMR谱(溶剂:DMSO-d 6 )。图4是 Kiamycin E DEPT-135谱(溶剂:DMSO-d 6 )。图5是 Kiamycin E 1H-1H COSY谱(溶剂:DMSO-d 6 )。图6是Kiamycin E HMBC谱(溶剂:DMSO-d 6 )。图7是Kiamycin E NOESY谱(溶剂:DMSO-d 6 )。图8是Kiamycin E HSQC谱(溶剂:DMSO-d 6 )。图9是Kiamycin E X单晶衍射图。
表1:Kiamycin E的核磁数据(1H NMR 500 MHz,13C NMR 125 MHz)。
Figure 891781DEST_PATH_IMAGE002
据此确定该化合物结构。
实施例4. Streptomyces pratensis KCB-132发酵液抗菌活性初步测评
将上述生长良好的链霉菌Streptomyces pratensis KCB-132接种于含有100mLISP2培养基的500 mL三角瓶中,180 rpm旋转摇床,28℃培养7 d;将上述获得发酵液在4500rpm离心20min,将菌丝体与发酵液分开,以1:1体积比将发酵液经乙酸乙酯萃取,合并后蒸干;将蒸干后的粗提物用甲醇溶解在5mL的螺口瓶中,低温保存备用。
霜霉病菌在YPD斜面培养基(酵母膏1%,蛋白胨2%)上37℃生长3-5天,直到至菌丝覆盖整个斜面。从上述各真菌的斜面上刮取尽量多的菌体,使用磨菌器将菌丝分别磨碎,而后于5ml无菌水中得到不同待检定菌的菌悬液。将菌悬液分别以1%的量加入融化并冷却至40 ℃左右的BHI培养基中,摇匀后迅速倒入已经含有相应固体培养基作为底层的9cm培养皿中。
吸取甲醇溶解的粗提物60μL,分2次加到直径为5mm的圆形无菌滤纸片上,待甲醇挥干后,贴于含有指示菌的检定平板上,同时以甲醇为阴性对照,以双抗(1000 unit/mL青霉素和1000 mg/mL链霉素)作为阳性对照,细菌于37℃培养12h、真菌37℃培养48h,观察并记录抑菌圈的大小。
结果表明,链霉菌Streptomyces pratensis KCB-132对霜霉病菌有较好的抑菌活性,抑菌圈达到了21mm,表明该菌在生物农药、微生物制剂及其他抗菌相关领域具有较好的开发应用前景。
实施例5. Kiamycin E抗菌活性初步测评
1、将待测化合物(上述实施例制备获得化合物)和阳性对照分别用甲醇配制成浓为1.28 mg/mL的样品。
2、根据OD值测定数值,将霜霉病菌株用无菌水稀释成2×105
3、铺板(10×5):培养基为空白对照,甲醇为阴性对照,制霉菌素为阳性对照,第一行加入50 μL培养基,最后一行加入10 μL甲醇和90 μL培养基的混合液,弃去50 μL,左边第一列加入90 μL培养基,其它加50 μL培养基。
所述培养基为YPD培养基:酵母膏1%,蛋白胨2%。
4、加药:第一列加入10 μL药物(除该列的第一个孔和最后一个孔),用排枪混匀,从第一列中吸取50 μL加入到第二列,重复至到从第五列孔中吸取50 μL弃去。用排枪吸取50 μL稀释后的菌液加入到孔中,培养16-20 h,观察结果。
5、结论:
Kiamycin E对霜霉病菌有较好抑制活性,其MIC为5.1μg/mL。
以上所述,仅为本发明较佳的具体实施方式,但本发明的保护范围并不局限于此,任何熟悉本技术领域的技术人员在本发明披露的技术范围内,根据本发明的技术方案及其发明构思加以等同替换或改变,都应涵盖在本发明的保护范围之内。

Claims (6)

1.一株海洋链霉菌KCB-132,其分类命名为Streptomyces pratensis ,保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏编号为:CGMCC No.19782,保藏时间为2020年5月7日,保藏单位地址为中国北京。
2.一种权利要求1所述的海洋链霉菌KCB-132在作为抗菌剂中的应用。
3.按权利要求2所述的海洋链霉菌的应用,其特征在于:所述抗菌剂为该菌株的发酵液、菌悬液、浓缩物、分离液中的一种或几种。
4.按权利要求3所述的海洋链霉菌的应用,其特征在于:所述发酵液为将海洋链霉菌Streptomyces pratensis KCB-132划线接种于ISP2固体培养基上,28℃培养直至长出白色的孢子,取孢子体接种到液体培养基,28℃,150-220 rpm/min,摇床培养8-12 d 收获发酵液;
所述浓缩物为将上述所得发酵液经大孔吸附树脂洗脱,而后减压浓缩得总浸膏;总浸膏经硅胶柱层析,以体积比为0:100-100:0的甲醇/二氯甲烷为洗脱液进行梯度洗脱,收集洗脱液体积比2:98的甲醇/二氯甲烷的洗脱组分,将收集的洗脱组分进行ODS反相柱层析,收集含50%有机醇的洗脱液的洗脱部分,浓缩。
5.一种权利要求1所述的海洋链霉菌KCB-132在制备Kiamycin E化合物中的应用,该化合物具有抗菌剂的应用;
Kiamycin E化合物的化学式为C19H16O6,其结构式为
Figure 179466DEST_PATH_IMAGE001
6.权利要求5所述的应用,其特征在于:
1)将权利要求1所述的海洋链霉菌Streptomyces pratensis KCB-132划线接种于ISP2固体培养基上,28℃培养直至长出白色的孢子,取孢子体接种到液体培养基,28℃,150-220rpm/min,摇床培养8-12 d 收获发酵物,过滤发酵物获得发酵液和菌丝体,发酵液经大孔吸附树脂柱12nm,50μm,100%乙醇洗脱,用旋转蒸发仪减压浓缩,真空度100mbar,转速100rpm,得总浸膏;
2)总浸膏经正相硅胶 200-300目,54-75μm柱层析,以体积比为0:100-100:0的甲醇/二氯甲烷为洗脱液进行梯度洗脱,流速5ml/min,收集洗脱液体积比2:98的甲醇/二氯甲烷的洗脱组分,将收集的洗脱组分进行ODS C-18,50μm 反相柱层析,以体积比100:0至0:100的水/甲醇为洗脱液进行梯度洗脱,流速2ml/min,收集含50%有机醇的洗脱液,浓缩,进行HPLC制备,以甲醇/水作为流动相,洗脱速率为1ml/min,收集保留时间tR为20.5-22.7min的洗脱部分,得到化合物Kiamycin E。
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