CN111436372A - 用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液、方法和应用 - Google Patents

用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液、方法和应用 Download PDF

Info

Publication number
CN111436372A
CN111436372A CN201911339972.2A CN201911339972A CN111436372A CN 111436372 A CN111436372 A CN 111436372A CN 201911339972 A CN201911339972 A CN 201911339972A CN 111436372 A CN111436372 A CN 111436372A
Authority
CN
China
Prior art keywords
aerial
garlic
bulbs
nutrient solution
inducing
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN201911339972.2A
Other languages
English (en)
Inventor
孙秀东
顾启玉
刘世琦
董玉惠
谢亚楠
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Shandong Agricultural University
Original Assignee
Shandong Agricultural University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Shandong Agricultural University filed Critical Shandong Agricultural University
Priority to CN201911339972.2A priority Critical patent/CN111436372A/zh
Publication of CN111436372A publication Critical patent/CN111436372A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01HNEW PLANTS OR NON-TRANSGENIC PROCESSES FOR OBTAINING THEM; PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES
    • A01H4/00Plant reproduction by tissue culture techniques ; Tissue culture techniques therefor
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01HNEW PLANTS OR NON-TRANSGENIC PROCESSES FOR OBTAINING THEM; PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES
    • A01H4/00Plant reproduction by tissue culture techniques ; Tissue culture techniques therefor
    • A01H4/001Culture apparatus for tissue culture

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)

Abstract

一种用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液、方法和应用,包含有用于蒜薹花苞段培养需要的基础液、用于促使气生鳞茎形成的NAA或ABA,由于设计了基础液、NAA或ABA,通过基础液,实现了蒜薹花苞段培养需要,通过NAA或ABA,实现了促使气生鳞茎形成,因此实现气生鳞茎诱导形成,满足大蒜的脱毒快繁需要。

Description

用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液、方法和应用
技术领域
本发明涉及一种营养液、方法和应用,尤其是一种用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液、方法和应用。
背景技术
大蒜(Allium sativum L.)为无性繁殖作物,主要利用鳞茎进行繁殖,繁殖系数低、生产成本高,而且病毒很容易通过种蒜传播积累并逐步加重由,再加上不良环境条件、不良栽培措施的影响,导致大蒜“退化”现象严重,给生产造成极大损失,气生鳞茎是由蒜薹顶端的花原体及花芽或花蕾的子房形成的部分,又称蒜珠、天蒜,其在孢子体和配子体的世代交替过程中,均有自然脱毒的过程,可以显著提高大蒜的产量和品质,
在生产上常使用气生鳞茎提纯复壮多年退化的蒜种,先采用气生鳞茎繁殖技术进行有性繁殖一年,使其自然脱毒,然后再进行无性繁殖产生原原种,以此提高大蒜的种性和蒜种的活力,每隔五至七年进行一次气生鳞茎留种繁殖,可使大蒜脱毒复壮,保证以后年年丰产,
本发明利用新鲜的蒜薹作为外植体诱导气生鳞茎,在不影响地蒜的正常生长,以期为大蒜的脱毒快繁打下基础,实现气生鳞茎诱导率为100%。
基于申请人的技术交底书和背景技术中现有的技术问题、技术特征和技术效果,做出本发明的申请技术方案。
发明内容
本发明的客体是一种用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液,
本发明的客体是一种用于诱导大蒜气生鳞茎的方法,
本发明的客体是一种用于诱导大蒜气生鳞茎的应用。
为了克服上述技术缺点,本发明的目的是提供一种用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液、方法和应用,因此实现气生鳞茎诱导形成,满足大蒜的脱毒快繁需要。
为达到上述目的,本发明采取的技术方案是:一种用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液,包含有用于蒜薹花苞段培养需要的基础液、用于促使气生鳞茎形成的NAA 或ABA。
由于设计了基础液、NAA 或ABA,通过基础液,实现了蒜薹花苞段培养需要,通过NAA 或ABA,实现了促使气生鳞茎形成,因此实现气生鳞茎诱导形成,满足大蒜的脱毒快繁需要。
本发明设计了,基础液设置为包含有Ca(NO3)2·4H2O 、KNO3、NH4H2PO4、MgSO4·7H2O、Na2Fe-EDTA 、MnSO4·4H2O 、H3BO3、ZnSO4·7H2O 、gCuSO4·5H2O 和MuSO4·5H2O。
本发明设计了,每1L营养液中设置为包含有944-964mgCa(NO3)2·4H2O 、597-617mgKNO3、110-120mgNH4H2PO4、483-503mgMgSO4·7H2O 、18-22mgNa2Fe-EDTA 、1.9-2.3mgMnSO4·4H2O 、2.7-3.0mgH3BO3、0.18-0.24mgZnSO4·7H2O 、0.07-0.09mgCuSO4·5H2O、0.018-0.022mgMuSO4·5H2O 、0.8-1.2mgNAA 和0.8-1.2mg ABA。
本发明设计了,每1L营养液中设置为包含有954mgCa(NO3)2·4H2O 、607mgKNO3、115mgNH4H2PO4、493mgMgSO4·7H2O 、20mgNa2Fe-EDTA 、2.13mgMnSO4·4H2O 、2.86mgH3BO3、0.22mgZnSO4·7H2O 、0.08mgCuSO4·5H2O 、0.02mgMuSO4·5H2O 、1mgNAA 、1mg ABA。
本发明设计了,Ca(NO3)2·4H2O 、KNO3、NH4H2PO4、MgSO4·7H2O 、Na2Fe-EDTA 、MnSO4·4H2O 、H3BO3、ZnSO4·7H2O 、gCuSO4·5H2O 、MuSO4·5H2O 、NAA 和ABA设置为试剂级化合物。
本发明设计了,一种用于诱导大蒜气生鳞茎的方法,其步骤是:在以Ca(NO3)2·4H2O 、KNO3、NH4H2PO4、MgSO4·7H2O 、Na2Fe-EDTA 、MnSO4·4H2O 、H3BO3、ZnSO4·7H2O 、gCuSO4·5H2O 和MuSO4·5H2O制成的基础液中加入NAA 或ABA作为蒜薹花苞段诱导气生鳞茎的营养液,在大蒜需要生长环境下,蒜薹花苞段浸泡在营养液中,在花苞中诱导形成气生鳞茎。
本发明设计了,其步骤是:选取苍山蒜作为诱导气生鳞茎的样本,
一、营养液的制备
把944-964mgCa(NO3)2·4H2O 、597-617mgKNO3、110-120mgNH4H2PO4、483-503mgMgSO4·7H2O 、18-22mgNa2Fe-EDTA 、1.9-2.3mgMnSO4·4H2O 、2.7-3.0mgH3BO3、0.18-0.24mgZnSO4·7H2O 、0.07-0.09mgCuSO4·5H2O 、0.018-0.022mgMuSO4·5H2O 、0.8-1.2mgNAA 和0.8-1.2mg ABA放到容器瓶中,加入蒸馏水定容至1L,摇动容器瓶使其内试剂进行溶解,控制PH值为6.0,制得营养液,
二、初级诱导气生鳞茎的样本的制取
在田间蒜抽薹后,在气生鳞茎形成初期时,使用消毒后的剪刀剪取具有20-25cm的假茎的蒜薹花苞段,用酒精消毒处理后得到初级诱导气生鳞茎的样本,
三、终级诱导气生鳞茎的样本的制取
把初级诱导气生鳞茎的样本在流水下冲洗1- 2 小时后,在酒精浸泡中28-32秒,再用无菌水冲洗2-3次,把初级诱导气生鳞茎的样本上的水分处理,得到终级诱导气生鳞茎的样本,
四、鳞茎的诱导
把终级诱导气生鳞茎的样本的下端头切除后插入到含有营养液的容器中,使终级诱导气生鳞茎的样本底端放在营养液中,在光照为2 600 lx,16 h · d-1、室温为(24 ± 2)℃的环境中进行培养,每94-98小时对营养液进行更换,培养三周后得到成熟的气生鳞茎。
本发明设计了,其步骤是:
一、大蒜蒜薹采摘及处理
田间种植的苍山蒜抽薹后,当蒜薹尚嫩,气生鳞茎初步形成但没有成熟时采摘蒜薹,既不影响气生鳞茎的形成率,也不会争夺地蒜的营养而影响地蒜的收益,采摘前一天用水冲洗花苞以去除灰尘和病虫等,上午晴好天气,用消毒后的工具采摘蒜薹花苞段,每个花苞带20-25cm的假茎,用酒精消毒后带回实验室备用,
二、营养液的配制
本发明以Hoagland &Arnon营养液为基础, 1L营养液中加入1mgNAA和1mgABA,将溶液的pH调为6.0,备用,
三、蒜薹消毒
将采摘后带回实验室的蒜薹于流水下冲洗1 - 2 h,用酒精浸泡30s,再用无菌水冲洗2-3次,最后用吸水纸将蒜苔表面的水分吸干即可,
四、试管鳞茎的诱导
将已消毒的蒜薹切去最下端,放入装有营养液的容器中,使蒜薹的底端接触到营养液,即可,四天换一次营养液。将蒜薹放在光照为2 600 lx,16 h · d-1,室温为(24 ± 2)℃的条件下,培养三周后,花苞会生长、膨化,气生鳞茎成熟,幼嫩的花苞里面挤满了饱满的气生鳞茎。
本发明设计了,一种用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液和方法在品种为苍山蒜的应用。
本发明的技术效果在于:主要用营养液加激素的方法来培养大蒜幼嫩花苞诱导气生鳞茎,利用该方法气生鳞茎诱导率可达到100%,本技术方案利用大蒜气生鳞茎来防止品种退化和进行快速繁殖工厂化育苗提供重要的可能性。
在本技术方案中,NAA 或ABA作为诱导形成气生鳞茎的成份为重要技术特征,在用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液、方法和应用的技术领域中,具有新颖性、创造性和实用性,在本技术方案中的术语都是可以用本技术领域中的专利文献进行解释和理解。
附图说明
为了更清楚地说明本发明实施例或现有技术中的技术方案,下面将对实施例或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍,显而易见地,下面描述中的附图仅仅是本发明的一些实施例,对于本领域普通技术人员来讲,在不付出创造性劳动的前提下,还可以根据这些附图获得其他的附图。
图1为为诱导前的气生鳞茎,
图2诱导后膨大的气生鳞茎图,。
具体实施方式
根据审查指南,对本发明所使用的诸如“具有”、“包含”以及“包括”术语应当理解为不配出一个或多个其它元件或其组合的存在或添加。
在本发明的描述中,需要说明的是,术语“中心”、“上”、“下”、“左”、“右”、“竖直”、“水平”、“内”、“外”等指示的方位或位置关系为基于附图所示的方位或位置关系,仅是为了便于描述本发明和简化描述,而不是指示或暗示所指的装置或元件必须具有特定的方位、以特定的方位构造和操作,因此不能理解为对本发明的限制。此外,术语“第一”、“第二”、“第三”仅用于描述目的,而不能理解为指示或暗示相对重要性。
在本发明的描述中,需要说明的是,除非另有明确的规定和限定,术语“安装”、“相连”、“连接”应做广义理解,例如,可以是固定连接,也可以是可拆卸连接,或一体地连接;可以是机械连接,也可以是电连接;可以是直接相连,也可以通过中间媒介间接相连,可以是两个元件内部的连通。对于本领域的普通技术人员而言,可以具体情况理解上述术语在本发明中的具体含义。
此外,下面所描述的本发明不同实施方式中所涉及的技术特征只要彼此之间未构成冲突就可以相互结合,另外,除非特别说明,在下面的实施例中所采用的设备和材料均是市售可得的,如没有明确说明处理条件,请参考购买的产品说明书或者按照本领域常规方法进。
下面将结合本发明实施例中的附图,对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述,显然,所描述的实施例仅仅是本发明一部分实施例,而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例,本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例,都属于本发明保护的范围。
一种用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液,本发明的第一个实施例之一,每1L营养液中设置为包含有944-964mgCa(NO3)2·4H2O 、597-617mgKNO3、110-120mgNH4H2PO4、483-503mgMgSO4·7H2O 、18-22mgNa2Fe-EDTA 、1.9-2.3mgMnSO4·4H2O 、2.7-3.0mgH3BO3、0.18-0.24mgZnSO4·7H2O 、0.07-0.09mgCuSO4·5H2O 、0.018-0.022mgMuSO4·5H2O 、0.8-1.2mgNAA 和0.8-1.2mg ABA。
本发明的第一个实施例之二,每1L营养液中设置为包含有954mgCa(NO3)2·4H2O 、607mgKNO3、115mgNH4H2PO4、493mgMgSO4·7H2O 、20mgNa2Fe-EDTA 、2.13mgMnSO4·4H2O 、2.86mgH3BO3、0.22mgZnSO4·7H2O 、0.08mgCuSO4·5H2O 、0.02mgMuSO4·5H2O 、1mgNAA 、1mgABA。
本发明的第一个实施例之三,每1L营养液中设置为包含有944mgCa(NO3)2·4H2O 、597mgKNO3、110mgNH4H2PO4、483mgMgSO4·7H2O 、18mgNa2Fe-EDTA 、1.9mgMnSO4·4H2O 、2.7mgH3BO3、0.18mgZnSO4·7H2O 、0.07mgCuSO4·5H2O 、0.018mgMuSO4·5H2O 、0.8mgNAA 和0.8mg ABA。
本发明的第一个实施例之四,每1L营养液中设置为包含有964mgCa(NO3)2·4H2O 、617mgKNO3、120mgNH4H2PO4、503mgMgSO4·7H2O 、22mgNa2Fe-EDTA 、2.3mgMnSO4·4H2O 、3.0mgH3BO3、0.24mgZnSO4·7H2O 、0.09mgCuSO4·5H2O 、0.022mgMuSO4·5H2O 、1.2mgNAA 和1.2mg ABA。
在本实施例中,Ca(NO3)2·4H2O 、KNO3、NH4H2PO4、MgSO4·7H2O 、Na2Fe-EDTA 、MnSO4·4H2O 、H3BO3、ZnSO4·7H2O 、gCuSO4·5H2O 、MuSO4·5H2O 、NAA 和ABA设置为试剂级化合物。
本发明的第二个实施例,基础液设置为包含有Ca(NO3)2·4H2O 、KNO3、NH4H2PO4、MgSO4·7H2O 、Na2Fe-EDTA 、MnSO4·4H2O 、H3BO3、ZnSO4·7H2O 、gCuSO4·5H2O 和MuSO4·5H2O。
本发明的第二个实施例是以第一个实施例为基础。
下面结合实施例,对本发明进一步描述,以下实施例旨在说明本发明而不是对本发明的进一步限定。Ca(NO3)2·4H2O 、KNO3、NH4H2PO4、MgSO4·7H2O 、Na2Fe-EDTA 、MnSO4·4H2O 、H3BO3、ZnSO4·7H2O 、gCuSO4·5H2O 、MuSO4·5H2O 、NAA 和ABA均有市售。
一种用于诱导大蒜气生鳞茎的方法,本发明的第一个实施例之一,其步骤是:
选取苍山蒜作为诱导气生鳞茎的样本,
一、营养液的制备
把944-964mgCa(NO3)2·4H2O 、597-617mgKNO3、110-120mgNH4H2PO4、483-503mgMgSO4·7H2O 、18-22mgNa2Fe-EDTA 、1.9-2.3mgMnSO4·4H2O 、2.7-3.0mgH3BO3、0.18-0.24mgZnSO4·7H2O 、0.07-0.09mgCuSO4·5H2O 、0.018-0.022mgMuSO4·5H2O 、0.8-1.2mgNAA 和0.8-1.2mg ABA放到容器瓶中,加入蒸馏水定容至1L,摇动容器瓶使其内试剂进行溶解,控制PH值为6.0,制得营养液,
二、初级诱导气生鳞茎的样本的制取
在田间蒜抽薹后,在气生鳞茎形成初期时,使用消毒后的剪刀剪取具有20-25cm的假茎的蒜薹花苞段,用酒精消毒处理后得到初级诱导气生鳞茎的样本,
三、终级诱导气生鳞茎的样本的制取
把初级诱导气生鳞茎的样本在流水下冲洗1- 2 小时后,在酒精浸泡中28-32秒,再用无菌水冲洗2-3次,把初级诱导气生鳞茎的样本上的水分处理,得到终级诱导气生鳞茎的样本,
四、鳞茎的诱导
把终级诱导气生鳞茎的样本的下端头切除后插入到含有营养液的容器中,使终级诱导气生鳞茎的样本底端放在营养液中,在光照为2 600 lx,16 h · d-1、室温为(24 ± 2)℃的环境中进行培养,每94-98小时对营养液进行更换,培养三周后得到成熟的气生鳞茎。
本发明的第一个实施例之二,其步骤是:
选取苍山蒜作为诱导气生鳞茎的样本,
一、营养液的制备
把944mgCa(NO3)2·4H2O 、597mgKNO3、110mgNH4H2PO4、483mgMgSO4·7H2O 、18mgNa2Fe-EDTA 、1.9mgMnSO4·4H2O 、2.7mgH3BO3、0.18mgZnSO4·7H2O 、0.07mgCuSO4·5H2O 、0.018mgMuSO4·5H2O 、0.8mgNAA 和0.8mg ABA放到容器瓶中,加入蒸馏水定容至1L,摇动容器瓶使其内试剂进行溶解,控制PH值为6.0,制得营养液,
二、初级诱导气生鳞茎的样本的制取
在田间蒜抽薹后,在气生鳞茎形成初期时,使用消毒后的剪刀剪取具有20cm的假茎的蒜薹花苞段,用酒精消毒处理后得到初级诱导气生鳞茎的样本,
三、终级诱导气生鳞茎的样本的制取
把初级诱导气生鳞茎的样本在流水下冲洗1小时后,在酒精浸泡中28秒,再用无菌水冲洗2次,把初级诱导气生鳞茎的样本上的水分处理,得到终级诱导气生鳞茎的样本,
四、鳞茎的诱导
把终级诱导气生鳞茎的样本的下端头切除后插入到含有营养液的容器中,使终级诱导气生鳞茎的样本底端放在营养液中,在光照为2 600 lx,16 h · d-1、室温为24℃的环境中进行培养,每94小时对营养液进行更换,培养三周后得到成熟的气生鳞茎。
本发明的第一个实施例之三,其步骤是:
选取苍山蒜作为诱导气生鳞茎的样本,
一、营养液的制备
把964mgCa(NO3)2·4H2O 、617mgKNO3、120mgNH4H2PO4、503mgMgSO4·7H2O 、22mgNa2Fe-EDTA 、2.3mgMnSO4·4H2O 、3.0mgH3BO3、0.24mgZnSO4·7H2O 、0.09mgCuSO4·5H2O 、0.022mgMuSO4·5H2O 、1.2mgNAA 和1.2mg ABA放到容器瓶中,加入蒸馏水定容至1L,摇动容器瓶使其内试剂进行溶解,控制PH值为6.0,制得营养液,
二、初级诱导气生鳞茎的样本的制取
在田间蒜抽薹后,在气生鳞茎形成初期时,使用消毒后的剪刀剪取具有25cm的假茎的蒜薹花苞段,用酒精消毒处理后得到初级诱导气生鳞茎的样本,
三、终级诱导气生鳞茎的样本的制取
把初级诱导气生鳞茎的样本在流水下冲洗2 小时后,在酒精浸泡中32秒,再用无菌水冲洗3次,把初级诱导气生鳞茎的样本上的水分处理,得到终级诱导气生鳞茎的样本,
四、鳞茎的诱导
把终级诱导气生鳞茎的样本的下端头切除后插入到含有营养液的容器中,使终级诱导气生鳞茎的样本底端放在营养液中,在光照为2 600 lx,16 h · d-1、室温为26℃的环境中进行培养,每94-98小时对营养液进行更换,培养三周后得到成熟的气生鳞茎。
本发明的第一个实施例之四,其步骤是:
选取苍山蒜作为诱导气生鳞茎的样本,
一、营养液的制备
把954mgCa(NO3)2·4H2O 、607mgKNO3、115mgNH4H2PO4、493mgMgSO4·7H2O 、18-22mgNa2Fe-EDTA 、2.1mgMnSO4·4H2O 、2.8mgH3BO3、0.22mgZnSO4·7H2O 、0.08mgCuSO4·5H2O 、0.020mgMuSO4·5H2O 、1.0mgNAA 和1.0mg ABA放到容器瓶中,加入蒸馏水定容至1L,摇动容器瓶使其内试剂进行溶解,控制PH值为6.0,制得营养液,
二、初级诱导气生鳞茎的样本的制取
在田间蒜抽薹后,在气生鳞茎形成初期时,使用消毒后的剪刀剪取具有23cm的假茎的蒜薹花苞段,用酒精消毒处理后得到初级诱导气生鳞茎的样本,
三、终级诱导气生鳞茎的样本的制取
把初级诱导气生鳞茎的样本在流水下冲洗1.5 小时后,在酒精浸泡中30秒,再用无菌水冲洗3次,把初级诱导气生鳞茎的样本上的水分处理,得到终级诱导气生鳞茎的样本,
四、鳞茎的诱导
把终级诱导气生鳞茎的样本的下端头切除后插入到含有营养液的容器中,使终级诱导气生鳞茎的样本底端放在营养液中,在光照为2 600 lx,16 h · d-1、室温为25℃的环境中进行培养,每94-98小时对营养液进行更换,培养三周后得到成熟的气生鳞茎。
一种用于诱导大蒜气生鳞茎的方法,其它方式的实施例,其步骤是:
一、大蒜蒜薹采摘及处理
田间种植的苍山蒜抽薹后,当蒜薹尚嫩,气生鳞茎初步形成但没有成熟时采摘蒜薹,既不影响气生鳞茎的形成率,也不会争夺地蒜的营养而影响地蒜的收益,采摘前一天用水冲洗花苞以去除灰尘和病虫等,上午晴好天气,用消毒后的工具采摘蒜薹花苞段,每个花苞带20-25cm的假茎,用酒精消毒后带回实验室备用,
二、营养液的配制
本发明以Hoagland &Arnon营养液为基础, 1L营养液中加入1mgNAA和1mgABA,将溶液的pH调为6.0,备用,
三、蒜薹消毒
将采摘后带回实验室的蒜薹于流水下冲洗1 - 2 h,用酒精浸泡30s,再用无菌水冲洗2-3次,最后用吸水纸将蒜苔表面的水分吸干即可,
四、试管鳞茎的诱导
将已消毒的蒜薹切去最下端,放入装有营养液的容器中,使蒜薹的底端接触到营养液,即可,四天换一次营养液。将蒜薹放在光照为2 600 lx,16 h · d-1,室温为(24 ± 2)℃的条件下,培养三周后,花苞会生长、膨化,气生鳞茎成熟,幼嫩的花苞里面挤满了饱满的气生鳞茎。
一种用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液和方法在品种为苍山蒜的应用。
本发明的第二个实施例,其步骤是:在以Ca(NO3)2·4H2O 、KNO3、NH4H2PO4、MgSO4·7H2O 、Na2Fe-EDTA 、MnSO4·4H2O 、H3BO3、ZnSO4·7H2O 、gCuSO4·5H2O 和MuSO4·5H2O制成的基础液中加入NAA 或ABA作为蒜薹花苞段诱导气生鳞茎的营养液,在大蒜需要生长环境下,蒜薹花苞段浸泡在营养液中,在花苞中诱导形成气生鳞茎。
本发明的第二个实施例是以第一个实施例为基础,
采用本发明的技术方案与常规方法的对比试验结果如下:
选取品种为苍山蒜诱导大蒜花苞200个,通过本发明的技术方案,每一个花苞均有气生鳞茎诱导出来,诱导率为100%,
其中图1为为诱导前的气生鳞茎,图2诱导后膨大的气生鳞茎图,
图1中花苞尚未完全膨大,图2中花苞已胀大,挤满了饱满的气生鳞茎。
在对本发明进行验证时,针对苍山蒜的大蒜其气生鳞茎诱导在本技术领域中一直效果不好,当使用本技术方案中的基础液时,气生鳞茎效果不好,只有大约50%的气生鳞茎成熟,在本技术方案中的基础液中加入NAA,有大约67%的气生鳞茎成熟,在本技术方案中的基础液中加入ABA,有大约85%的气生鳞茎成熟,在本技术方案中的基础液中加入NAA和ABA,有大约95%的气生鳞茎成熟,当在本技术方案中的基础液中加入NAA和ABA,在光照为2 600lx,16 h · d-1的环境下,实现了100%的气生鳞茎成熟,其效果图就是图2。
本发明具有下特点:
1、由于设计了基础液、NAA 或ABA,通过基础液,实现了蒜薹花苞段培养需要,通过NAA或ABA,实现了促使气生鳞茎形成,因此实现气生鳞茎诱导形成,满足大蒜的脱毒快繁需要。
2、由于设计了外层2,对内层1实施了第二次包装,更延长了化学肥料的释放时间。
3、由于设计了植物秸秆或植物叶体,通过高压的方式,对化学肥料的包装体强度高,方便施肥和运输。
4、由于设计了对结构形状进行了数值范围的限定,使数值范围为本发明的技术方案中的技术特征,不是通过公式计算或通过有限次试验得出的技术特征,试验表明该数值范围的技术特征取得了很好的技术效果。
5、由于设计了本发明的技术特征,在技术特征的单独和相互之间的集合的作用,通过试验表明,本发明的各项性能指标为现有的各项性能指标的至少为1.7倍,通过评估具有很好的市场价值。
还有其它的与NAA 或ABA作为诱导形成气生鳞茎的成份相同或相近似的技术特征都是本发明的实施例之一,并且以上所述实施例的各技术特征可以进行任意的组合,为满足专利法、专利实施细则和审查指南的要求,不再对上述实施例中的各个技术特征所有可能的组合的实施例都进行描述。
上述实施例只是本发明所提供的用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液、方法和应用的一种实现形式,根据本发明所提供的方案的其他变形,增加或者减少其中的成份或步骤,或者将本发明用于其他的与本发明接近的技术领域,均属于本发明的保护范围。

Claims (9)

1.一种用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液,其特征是:包含有用于蒜薹花苞段培养需要的基础液、用于促使气生鳞茎形成的NAA 或ABA。
2.根据权利要求1所述的用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液,其特征是:基础液设置为包含有Ca(NO3)2·4H2O 、KNO3、NH4H2PO4 、MgSO4·7H2O 、Na2Fe-EDTA 、MnSO4·4H2O 、H3BO3、ZnSO4·7H2O 、gCuSO4·5H2O 和MuSO4·5H2O。
3.根据权利要求1所述的用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液,其特征是:每1L营养液中设置为包含有944-964mgCa(NO3)2·4H2O 、597-617mgKNO3、110-120mgNH4H2PO4 、483-503mgMgSO4·7H2O 、18-22mgNa2Fe-EDTA 、1.9-2.3mgMnSO4·4H2O 、2.7-3.0mgH3BO3、0.18-0.24mgZnSO4·7H2O 、0.07-0.09mgCuSO4·5H2O 、0.018-0.022mgMuSO4·5H2O 、0.8-1.2mgNAA 和0.8-1.2mg ABA。
4.根据权利要求1所述的用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液,其特征是:每1L营养液中设置为包含有954mgCa(NO3)2·4H2O 、607mgKNO3、115mgNH4H2PO4 、493mgMgSO4·7H2O 、20mgNa2Fe-EDTA 、2.13mgMnSO4·4H2O 、2.86mgH3BO3、0.22mgZnSO4·7H2O 、0.08mgCuSO4·5H2O 、0.02mgMuSO4·5H2O 、1mgNAA 、1mg ABA。
5.根据权利要求1所述的用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液,其特征是:Ca(NO3)2·4H2O、KNO3、NH4H2PO4 、MgSO4·7H2O 、Na2Fe-EDTA 、MnSO4·4H2O 、H3BO3、ZnSO4·7H2O 、gCuSO4·5H2O 、MuSO4·5H2O 、NAA 和ABA设置为试剂级化合物。
6.一种用于诱导大蒜气生鳞茎的方法,其特征是:其步骤是:在以Ca(NO3)2·4H2O 、KNO3、NH4H2PO4 、MgSO4·7H2O 、Na2Fe-EDTA 、MnSO4·4H2O 、H3BO3、ZnSO4·7H2O 、gCuSO4·5H2O 和MuSO4·5H2O制成的基础液中加入NAA 或ABA作为蒜薹花苞段诱导气生鳞茎的营养液,在大蒜需要生长环境下,蒜薹花苞段浸泡在营养液中,在花苞中诱导形成气生鳞茎。
7.根据权利要求6所述的用于诱导大蒜气生鳞茎的方法,其特征是:其步骤是:选取苍山蒜作为诱导气生鳞茎的样本,
一、营养液的制备
把944-964mgCa(NO3)2·4H2O 、597-617mgKNO3、110-120mgNH4H2PO4 、483-503mgMgSO4·7H2O 、18-22mgNa2Fe-EDTA 、1.9-2.3mgMnSO4·4H2O 、2.7-3.0mgH3BO3、0.18-0.24mgZnSO4·7H2O 、0.07-0.09mgCuSO4·5H2O 、0.018-0.022mgMuSO4·5H2O 、0.8-1.2mgNAA 和0.8-1.2mg ABA放到容器瓶中,加入蒸馏水定容至1L,摇动容器瓶使其内试剂进行溶解,控制PH值为6.0,制得营养液,
二、初级诱导气生鳞茎的样本的制取
在田间蒜抽薹后,在气生鳞茎形成初期时,使用消毒后的剪刀剪取具有20-25cm的假茎的蒜薹花苞段,用酒精消毒处理后得到初级诱导气生鳞茎的样本,
三、终级诱导气生鳞茎的样本的制取
把初级诱导气生鳞茎的样本在流水下冲洗1- 2 小时后,在酒精浸泡中28-32秒,再用无菌水冲洗2-3次,把初级诱导气生鳞茎的样本上的水分处理,得到终级诱导气生鳞茎的样本,
四、鳞茎的诱导
把终级诱导气生鳞茎的样本的下端头切除后插入到含有营养液的容器中,使终级诱导气生鳞茎的样本底端放在营养液中,在光照为2 600 lx,16 h · d-1、室温为(24 ± 2)℃的环境中进行培养,每94-98小时对营养液进行更换,培养三周后得到成熟的气生鳞茎。
8.根据权利要求6所述的用于诱导大蒜气生鳞茎的方法,其特征是:其步骤是:
一、大蒜蒜薹采摘及处理
田间种植的苍山蒜抽薹后,当蒜薹尚嫩,气生鳞茎初步形成但没有成熟时采摘蒜薹,既不影响气生鳞茎的形成率,也不会争夺地蒜的营养而影响地蒜的收益,采摘前一天用水冲洗花苞以去除灰尘和病虫等,上午晴好天气,用消毒后的工具采摘蒜薹花苞段,每个花苞带20-25cm的假茎,用酒精消毒后带回实验室备用,
二、营养液的配制
本发明以Hoagland &Arnon营养液为基础, 1L营养液中加入1mgNAA和1mgABA,将溶液的pH调为6.0,备用,
三、蒜薹消毒
将采摘后带回实验室的蒜薹于流水下冲洗1 - 2 h,用酒精浸泡30s,再用无菌水冲洗2-3次,最后用吸水纸将蒜苔表面的水分吸干即可,
四、试管鳞茎的诱导
将已消毒的蒜薹切去最下端,放入装有营养液的容器中,使蒜薹的底端接触到营养液,即可,四天换一次营养液,
将蒜薹放在光照为2 600 lx,16 h · d-1,室温为(24 ± 2)℃的条件下,培养三周后,花苞会生长、膨化,气生鳞茎成熟,幼嫩的花苞里面挤满了饱满的气生鳞茎。
9.一种用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液和方法在品种为苍山蒜的应用。
CN201911339972.2A 2019-12-23 2019-12-23 用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液、方法和应用 Pending CN111436372A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201911339972.2A CN111436372A (zh) 2019-12-23 2019-12-23 用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液、方法和应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201911339972.2A CN111436372A (zh) 2019-12-23 2019-12-23 用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液、方法和应用

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN111436372A true CN111436372A (zh) 2020-07-24

Family

ID=71648660

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201911339972.2A Pending CN111436372A (zh) 2019-12-23 2019-12-23 用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液、方法和应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN111436372A (zh)

Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1238122A (zh) * 1999-06-15 1999-12-15 南京农业大学 一种大蒜脱毒种苗快速繁殖的方法
CN1656883A (zh) * 2005-03-01 2005-08-24 山东省农业科学院蔬菜研究所 一种大蒜花总苞液培及体外受精方法
CN102499095A (zh) * 2012-01-05 2012-06-20 黑龙江省科学院大庆分院 一种大蒜花序轴离体培养直接诱导鳞茎培养基
CN102792887A (zh) * 2012-07-27 2012-11-28 天津师范大学 一种大蒜试管鳞茎的诱导方法
CN106035336A (zh) * 2016-07-05 2016-10-26 中国农业科学院油料作物研究所 一种复合激素及制备方法和应用
CN106613976A (zh) * 2016-12-16 2017-05-10 天津师范大学 一种用大蒜花序轴进行脱毒快繁的方法及应用
CN107432245A (zh) * 2017-07-25 2017-12-05 山东农业大学 一种大蒜气生鳞茎诱导方法
CN108040882A (zh) * 2018-01-09 2018-05-18 山东农业大学 一种大蒜试管苗的诱导方法

Patent Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1238122A (zh) * 1999-06-15 1999-12-15 南京农业大学 一种大蒜脱毒种苗快速繁殖的方法
CN1656883A (zh) * 2005-03-01 2005-08-24 山东省农业科学院蔬菜研究所 一种大蒜花总苞液培及体外受精方法
CN102499095A (zh) * 2012-01-05 2012-06-20 黑龙江省科学院大庆分院 一种大蒜花序轴离体培养直接诱导鳞茎培养基
CN102792887A (zh) * 2012-07-27 2012-11-28 天津师范大学 一种大蒜试管鳞茎的诱导方法
CN106035336A (zh) * 2016-07-05 2016-10-26 中国农业科学院油料作物研究所 一种复合激素及制备方法和应用
CN106613976A (zh) * 2016-12-16 2017-05-10 天津师范大学 一种用大蒜花序轴进行脱毒快繁的方法及应用
CN107432245A (zh) * 2017-07-25 2017-12-05 山东农业大学 一种大蒜气生鳞茎诱导方法
CN108040882A (zh) * 2018-01-09 2018-05-18 山东农业大学 一种大蒜试管苗的诱导方法

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
董玉惠等: "大蒜气生鳞茎脱毒快繁", 《植物生理学报》 *
顾启玉: "大蒜气生鳞茎水培诱导技术研究", 《中国优秀硕士学位论文全文数据库 农业科技辑》 *
马雯等: "贮藏时间和外源激素对大蒜气生鳞茎形成的影响", 《湖南农业科学》 *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Rihan et al. Artificial seeds (principle, aspects and applications)
KR20150103879A (ko) 난 유묘의 생산방법
KR101453903B1 (ko) 기내 식물체로부터 채취한 생장점 배양을 통한 바이러스 무병주 생산방법
CN108419679B (zh) 西红花的组织培养法
JPS60141211A (ja) ユリ属植物の生育方法
EP0525914B1 (en) Synthetic seed
CN100431407C (zh) 明日叶的组织培养和快速繁殖方法
CN106134995A (zh) 一种双层包埋的诸葛菜人工种子制作方法
JP2008178388A (ja) ニンニクの増殖方法
Kumar et al. Methods and factors influencing in vitro propagation efficiency of ornamental tuberose (Polianthes species): A systematic review of recent developments and future prospects
Micheli et al. Effects of double encapsulation and coating on synthetic seed conversion in M. 26 apple rootstock
CN103651140B (zh) 一种离体快繁短月藓配子体的方法及其培养基
CN103155869A (zh) 甜樱桃砧木Colt组织培养方法
Bekheet Encapsulation of date palm somatic embryos: synthetic seeds
CN111436372A (zh) 用于诱导大蒜气生鳞茎的营养液、方法和应用
CN106605596B (zh) 一种通过体胚发生大量繁殖忽地笑的方法
CN105379619A (zh) 一种半夏试管微球茎的制备方法
CN115843823A (zh) 植物免疫蛋白在促进花粉萌发和维持花粉活力中的应用
CN1493186A (zh) 魔芋试管芋的繁育技术
CN108633742A (zh) 一种杉木茎尖诱导培养基和诱导方法
CN107306791A (zh) 一种黄石斛种苗组织培养快速繁殖方法
CN103299902A (zh) 一种用于组织培养楝树幼苗的方法
Lal et al. Comparitive economics of in vitro grown plantlets of clonal apple MM 106 and MM 111 rootstocks
Hughes Factors conditioning development of sexual and apogamous races of Phascum cuspidatum Hedw.
Niranjan et al. In vitro response of encapsulated somatic embryos of Lagerstroemia indica L.

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
RJ01 Rejection of invention patent application after publication

Application publication date: 20200724

RJ01 Rejection of invention patent application after publication