CN111362790A - 一种分离epa和dha的色谱方法 - Google Patents
一种分离epa和dha的色谱方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN111362790A CN111362790A CN202010305759.6A CN202010305759A CN111362790A CN 111362790 A CN111362790 A CN 111362790A CN 202010305759 A CN202010305759 A CN 202010305759A CN 111362790 A CN111362790 A CN 111362790A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- chromatographic
- dha
- epa
- ethanol
- mobile phase
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07C—ACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
- C07C51/00—Preparation of carboxylic acids or their salts, halides or anhydrides
- C07C51/42—Separation; Purification; Stabilisation; Use of additives
- C07C51/47—Separation; Purification; Stabilisation; Use of additives by solid-liquid treatment; by chemisorption
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D15/00—Separating processes involving the treatment of liquids with solid sorbents; Apparatus therefor
- B01D15/08—Selective adsorption, e.g. chromatography
- B01D15/26—Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by the separation mechanism
- B01D15/265—Adsorption chromatography
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D15/00—Separating processes involving the treatment of liquids with solid sorbents; Apparatus therefor
- B01D15/08—Selective adsorption, e.g. chromatography
- B01D15/42—Selective adsorption, e.g. chromatography characterised by the development mode, e.g. by displacement or by elution
- B01D15/424—Elution mode
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Oil, Petroleum & Natural Gas (AREA)
- Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
Abstract
本发明的目的是针对市场对高纯度的EPA和DHA需求,提供了分离EPA和DHA的色谱方法,属于液相制备色谱分离技术领域。其色谱体系为:固定相为反相键合硅胶;流动相为碱性乙醇‑水;色谱柱再生液为流动相或者V乙醇/V水比例高于流动相的乙醇‑水溶液或者乙醇;色谱柱平衡液为流动相;用碱性乙醇‑水稀释原料,由此形成进样液,或用乙醇稀释原料形成进样液,所用原料含有EPA和DHA的混合物,EPA和DHA的质量百分数总和≥20%。用批色谱(色谱单柱)或梯度洗脱的批色谱或模拟移动床色谱设备实现EPA和DHA的分离。
Description
技术领域
本发明属于液相制备色谱分离技术领域,具体涉及一种液相色谱分离EPA和DHA及制备高纯EPA和DHA的工艺方法。
背景技术
二十碳五烯酸(EPA)和二十二碳六烯酸(DHA)是ω-3不饱和脂肪酸系列(PUFA)中最重要的两种特征脂肪酸,是一些鱼油膳食补充剂和处方药的重要成分,对人体具有重要的生物学意义。EPA能降血脂、防治动脉粥样硬化等心血管疾病;DHA能健脑、增强记忆力和提高视力,适于幼儿、青少年孕妇等群体。市场上的EPA和DHA制品大多数是EPA+DHA的混合物。为了适用不同的使用对象、达到不同的使用目的,充分发挥EPA、DHA制剂的功效,要求EPA、DHA产品纯度越高越好,这不仅可提高疗效,而且还可减少不必要的副作用。
由于EPA和DHA分子结构相似,很难从它们的混合物中得到纯组分。目前的尿素包合法、低温结晶、分子蒸馏、银离子络合、超临界流体萃取和脂肪酶等EPA和DHA分离方法很难获得高纯度的单一组分。液相色谱法是制备高纯度EPA和DHA的主要方法,如:C18为固定相,含四氢呋喃的三元体系为流动相的色谱法[Journal of ChromatographyA,459(1988)369-378];C18为固定相,含乙腈和水为流动相的色谱法[Journal of Chromatography A,1097(2005)54-58];C18为固定相,用4种溶剂洗脱的色谱法,第一、第二和第三溶剂均至少包括水、DMF、DMSO、甲醇、乙醇和乙腈中的一种[CN 105272844 B,2014];还有分别负载银离子的硅胶、离子交换树脂、分子筛的色谱法,该色谱法的弊端是非常明显的,银离子的失去,会造成重金属污染。
间歇色谱法存在收率低、溶剂消耗量大、成本高等缺点。模拟移动床(SMB)色谱法能够实现色谱过程的自动化和连续化,具有收率高、溶剂消耗量小、成本低等优势。巴斯夫公司以C18为固定相,以甲醇-水为流动相,采用SMB工艺对多不饱和脂肪酸进行分离纯化,EPA乙酯(EPA-EE)、DHA乙酯(DHA-EE)的纯度达到95%[US 9493392,2016]。李敏等用SMB分离EPA-EE和DHA-EE,其固定相是10μm C18,流动相是纯甲醇,获得的EPA-EE和DHA-EE纯度分别达到99%[Journal of Chromatography A,1425(2015)189-197]。
但是,现有分离技术大多数以EPA和DHA的乙酯形式为原料。实际处理鱼油过程中EPA和DHA比其乙酯形式更容易获得,重要的是,Omega-3脂肪酸的生物利用度比乙酯型大[Journal of Clinical Lipidology,6(2012)573-584]。
为此,本发明用碱性乙醇-水为流动相实现EPA和DHA的色谱分离。
发明内容
本发明的目的是针对市场对高纯度的EPA和DHA需求,提供了分离EPA和DHA的色谱方法。该法采用以C18为固定相,碱性乙醇-水为流动相的色谱体系。可以用批色谱(色谱单柱)或梯度洗脱的批色谱或模拟移动床色谱设备实现EPA和DHA的分离。
一种分离EPA和DHA的色谱方法,包括如下步骤:
色谱体系为:固定相为反相键合硅胶;流动相为碱性乙醇-水,7.5≤pH≤11;色谱柱再生液为流动相或者V乙醇/V水比例高于流动相的乙醇-水溶液或者乙醇;色谱柱平衡液为流动相;用碱性乙醇-水稀释原料,并控制7.5≤pH≤11,由此形成进样液,或用乙醇稀释原料形成进样液,所用原料含有EPA和DHA的混合物,EPA和DHA的质量百分数总和≥20%;色谱分离由色谱单柱完成或由SMB色谱设备完成;
或者,上述色谱体系中的乙醇由甲醇代替。
上述分离EPA和DHA的色谱方法,固定相为十八烷基硅烷键合硅胶,粒度为20-60μm,流动相中乙醇与水的体积比为4/6-7/3。
上述分离EPA和DHA的色谱方法,所述色谱分离由色谱单柱完成,在色谱单柱入口处依次注入进样液、流动相,在色谱单柱出口处先截取EPA馏分,后截取DHA馏分;当需要进行下一次色谱分离时,继续注入再生液、平衡液。
上述分离EPA和DHA的色谱方法,色谱分离采用流动相梯度洗脱。
上述分离EPA和DHA的色谱方法,所述的流动相梯度洗脱为:或者乙醇与水的体积比依次增大,或者pH依次减小,或者二者均变化。
上述分离EPA和DHA的色谱方法,所述色谱分离由SMB色谱设备完成,即:SMB设置三带运行模式,包括洗脱带I带、精制带II带和吸附带III带,a为洗脱带色谱柱数目,1≤a≤2,b为精制带色谱柱数目,1≤b≤3,c为吸附带色谱柱数目,1≤c≤3,运行模式用a-b-c表示;沿流动相方向设置洗脱液入口P、萃取液出口E、流动相入口D、原料液入口F和萃余液出口R的位置;在洗脱带由P泵泵入再生液,萃取液E流速QE=P泵的泵速QP,在精制带由D泵泵入流动相,在吸附带由F泵泵入进样液F,萃余液R流速QR=D泵的泵速QD+F泵的泵速QF;SMB自动控制系统按切换时间TS沿流动相方向将所有入口和出口的位置同时移动至下一根色谱柱;从萃余液出口R得到EPA,从萃取液出口E得到DHA。
上述分离EPA和DHA的色谱方法,按三角形理论针对色谱体系选择一定进样浓度下的QD、QF和切换时间TS,确定SMB色谱分离条件。
上述分离EPA和DHA的色谱方法,用NaOH、KOH、Na2CO3或氨水调整pH。
上述分离EPA和DHA的色谱方法,碱性乙醇-水含质量百分数为0.01-0.1%的NaOH。
上述分离EPA和DHA的色谱方法,色谱单柱分离得到的EPA馏分和DHA馏分,以及SMB分离得到的E口的萃取液、R口的萃余液经过蒸馏回收乙醇后,酸化为中性至弱酸性,分出上层得到EPA和DHA。
本发明与现有制备色谱分离技术相比,其显著的有益效果体现在:
1、针对市场对高纯度的EPA和DHA需求,提供了分离EPA和DHA的色谱体系。
2、用批色谱(色谱单柱)对EPA和DHA分离度≥1.5,设备简单。
3、梯度洗脱的批色谱增加过载时的进样量。
4、用SMB技术能够规模化、稳健、连续、自动、高效地分离EPA和DHA,产品回收率高于99%,HPLC纯度高于90%,固定相和流动相能反复利用,降低了提纯成本,属于绿色环保分离过程。
5、用该法检测EPA和DHA,不用将EPA和DHA酯化,直接测定,快速简单。
附图说明
图1、实施例1的EPA和DHA流出曲线。
图2、实施例2的EPA和DHA流出曲线。
图3、实施例3的EPA和DHA流出曲线。
图4、实施例4的EPA和DHA流出曲线。
图5、实施例5的EPA和DHA流出曲线。
图6、实施例6的EPA和DHA流出曲线。
图7、实施例7的EPA和DHA流出曲线。
图8、实施例8SMB分离EPA和DHA的区域。
图9、实施例8实验点⑧的萃余液EPA和萃取液DHA的HPLC谱图;
(a)萃余液EPA的HPLC谱图,(b)萃取液DHA的HPLC谱图。
具体实施方式
EPA和DHA的检测方法为:
高效液相色谱仪:Agilent 1200;分析色谱柱:Extend-C18,5μm,150mm×4.6mmI.D.;流动相:甲醇-水体积比为V甲醇/V水=68/32,pH=8;检测波长:210nm;流速:1.0mL/min;柱温:30℃。由EPA和DHA标准品来标定待测液EPA和DHA的含量。
实施例中纯度不特殊说明均为相对纯度,仅考虑EPA和DHA两组分,反映两者分离情况。
以下实施例1~8中,色谱单柱分离得到的EPA馏分和DHA馏分,以及SMB分离得到的出口E的萃取液、出口R的萃余液经过蒸馏回收乙醇后,酸化为中性至弱酸性,分出上层即得到EPA和DHA。
实施例1
一种分离EPA和DHA的色谱方法:
固定相:十八烷基硅烷键键合硅胶(C18)为固定相,粒度30-40μm;
色谱柱规格:长度10cm,直径1cm;
原料:EPA的质量百分数为52%,DHA的质量百分数为38%;
进样液:EPA浓度=2.6mg/mL,DHA浓度=1.9mg/mL,介质为流动相,pH=9;
流动相:乙醇-水体积比V乙醇/V水=57/43,pH=9;
流动相流速:1.5mL/min;
进样时间:0.5min;
工作温度:室温;
在上述条件下,得到的流出曲线见图1。
在t1=12min至t2=18min时间段,收集流出液,得到EPA馏分,纯度:95.6%,收率:100%;
在t1=19min至t2=37min时间段,收集流出液,得到DHA馏分,纯度:91.6%,收率:94.0%。
再生液:乙醇;
平衡液:同流动相。
实施例2
一种分离EPA和DHA的色谱方法:
除下述条件,其它均同实施例1:
进样液:EPA浓度=5.2mg/mL,DHA浓度=3.9mg/mL,介质为流动相,pH=9;
进样时间:1min。
在上述条件下,得到的流出曲线见图2。
在t1=5min至tn=19min时间段,收集流出液,得到EPA馏分,纯度:96.3%,收率:99.2%;
在t1=20min至t2=37min时间段,收集流出液,得到DHA馏分,纯度:95.8%,收率:85.1%。
实施例3
一种分离EPA和DHA的色谱方法:
除下述条件,其它均同实施例1:
进样液:EPA浓度=5.2mg/mL,DHA浓度=3.9mg/mL,介质为流动相,pH=9;
进样时间:1.5min;
在上述条件下,得到的流出曲线见图3。
在t1=8min至t2=17min时间段,收集流出液,得到EPA馏分,纯度:95.6%,收率:91.1%;
在t1=19min至t2=37min时间段,收集流出液,得到DHA馏分,纯度:95.2%,收率:87.1%。
实施例4
一种分离EPA和DHA的色谱方法:
除下述条件,其它均同实施例1:
原料:EPA的质量百分数为40.8%,DHA的质量百分数为29.2%;
进样液:EPA浓度=5.3mg/mL,DHA浓度=3.8mg/mL,介质为V乙醇/V水=5/5,pH为8;
进样量:2min;
流动相梯度洗脱:流动相的V乙醇/V水为55/45,pH分别10、9、8;依次洗脱10min、10min和8min;
在上述条件下,得到的流出曲线见图4。
在t1=11min至t2=17min时间段,收集流出液,得到EPA馏分,纯度:92.5%,收率:94.8%;
在t1=18min至t2=27min时间段,收集流出液,得到DHA馏分,纯度:91.8%,收率:88.2%。
再生液:乙醇;
平衡液:流动相的V乙醇/V水为55/45,pH=10。
实施例5
一种分离EPA和DHA的色谱方法:
除下述条件,其它均同实施例1:
原料:EPA的质量百分数为40.8%,DHA的质量百分数为29.2%;
进样液:EPA浓度=5.3mg/mL,DHA浓度=3.8mg/mL,介质为流动相V乙醇/V水=5/5,pH为8;
进样量:2.5min;
流动相梯度洗脱:流动相的V乙醇/V水分别为:5/5、6/4和7/3,pH=8;依次洗脱10min、10min和8min。
在上述条件下,得到的流出曲线见图5。
在t1=16min至t2=21min时间段,收集流出液,得到EPA馏分,纯度:91.6%,收率:98.0%;
在t1=22min至t2=27min时间段,收集流出液,得到DHA馏分,纯度:97.3%,收率:89.2%。
再生液:乙醇
平衡液:流动相的V乙醇/V水为5/5,pH=8。
实施例6
一种分离EPA和DHA的色谱方法:
固定相:十八烷基硅烷键硅胶(C18)为固定相,粒度20μm;
色谱柱规格:长度10cm,直径1cm;
流动相流速:1.5mL/min;
工作温度:室温;
原料:EPA的质量百分数为40.8%,DHA的质量百分数为29.2%;
进样液:EPA浓度=5.3mg/mL,DHA浓度=3.8mg/mL,介质为V乙醇/V水=5/5,pH为8;
进样时间:2min;
流动相梯度洗脱:流动相的V乙醇/V水为55/45,pH分别10、9、8;依次洗脱10min、10min和14min;
上述条件下,得到的流出曲线见图6。
在t1=16min至t2=26min时间段,收集流出液,得到EPA馏分,纯度:95.3%,收率:99.7%;
在t1=27min至t2=34min时间段,收集流出液,得到DHA馏分,纯度:99.4%,收率:90.2%。
再生液:乙醇;
平衡液:流动相的V乙醇/V水为55/45,pH=10。
实施例7
一种分离EPA和DHA的色谱方法:
除下述条件,其它均同实施例6;
进样量:2.5min;
流动相梯度洗脱:流动相的V乙醇/V水分别为:4/6、5/5和6/4,pH=8;依次洗脱15min、15min和11min;
在上述条件下,得到的流出曲线见图7。
在t1=29min至t2=35min时间段,收集流出液,得到EPA馏分,纯度:97.3%,收率:97.5%;
在t1=37min至t2=41min时间段,收集流出液,得到DHA馏分,纯度:99.6%,收率:93.9%。
再生液:乙醇;
平衡液:流动相的V乙醇/V水为4/6,pH=8。
实施例8
一种分离EPA和DHA的色谱方法:
1)SMB分离条件如下:
色谱柱:4-6根,直径1cm,长10cm;
固定相:十八烷基硅烷键合硅胶C18,20μm或30-40μm或40-60μm;
运行模式:a-b-c,即洗脱带:a根色谱柱;精制带:b根色谱柱;吸附带:c根色谱柱;
流动相:精制带和吸附带的流动相D为乙醇与水的混合溶液,体积比为5/5—7/3,pH=8-10;
再生液:P泵95%乙醇或乙醇;
平衡液:在III带中最后一根色谱柱的平衡液为其前一根色谱柱流出液。
模拟移动床操作温度:室温;
SMB色谱分离条件的选择:按三角形理论针对色谱体系选择一定进样浓度下的QD、QF和切换时间TS。具体为:针对色谱体系,根据EPA和DHA的色谱单柱的流出曲线,确定EPA和DHA吸附等温线;根据EPA和DHA的浓度和吸附参数(吸附等温线),按三角形理论,得到在mII-mIII平面坐标中可以分离的区域WRAB。其中mα叫做区带α.的流率比,α.为II带或III带。Qα SMB(mL/min)为SMB的α带流动相的体积流量,QII SMB=QD,QIII SMB=QD+QF,V为色谱单柱的柱体积,TS为切换时间,ε为孔隙率。
具体的,针对20μm的C18,乙醇与水的混合溶液V乙醇/V水=6/4,pH=8的色谱体系,得到EPA吸附等温线为DHA吸附等温线为qEPA和CEPA分别为EPA在固定相和流动相的浓度,qDHA和CDHA分别为DHA在固定相和流动相的浓度。EPA的质量百分数为40.9%,DHA的质量百分数为32.5%;当进样液中CEPA=3.3g/L,CDHA=2.6g/L,得到可以分离的区域WRAB如图8,在该区域选点,实验条件见表1。
表1、SMB实验条件及分离结果
2)SMB分离过程如下:
分别在表1①-⑥的SMB工作条件下分别进行SMB分离,连续由原料液入口泵入进样液,SMB自动控制系统按切换时间TS沿流动相方向将洗脱液入口、萃取液出口、原料液入口和萃余液出口的位置同时依次移动至下一根色谱柱,从萃余液R出口得到EPA萃余液,从萃取液E出口得到DHA萃取液,分离结果见表1①-⑥。
在实验点⑥条件下,改变SMB工作模式为1-2-2和2-2-2,记为实验点⑦和⑧,得到产品纯度进一步提高。实验点⑧的萃余液EPA和萃取液DHA的HPLC谱图分别见图9(a)(b),EPA和DHA的全组分的色谱纯度分别为97.6%和94.5%。
实施例9
一种分离EPA和DHA的色谱方法:
固定相:十八烷基硅烷键键合硅胶(C18)为固定相,粒度20μm;
色谱柱规格:长度10cm,直径1cm;
原料:EPA的质量百分数为40.9%,DHA的质量百分数为32.5%;
进样液:EPA浓度=3.3mg/mL,DHA浓度=2.6mg/mL,介质为流动相,pH=8;
流动相:乙醇-水体积比V乙醇/V水=5/5,pH=8;
流动相流速:1mL/min;
进样量:20μL;
工作温度:室温;
根据在上述条件下的流出曲线得到EPA和DHA的分离度为3.7。
Claims (10)
1.一种分离EPA和DHA的色谱方法,其特征在于,色谱体系为:固定相为反相键合硅胶;流动相为碱性乙醇-水,7.5≤pH≤11;色谱柱再生液为流动相或者V乙醇/V水比例高于流动相的乙醇-水溶液或者乙醇;色谱柱平衡液为流动相;用碱性乙醇-水稀释原料,并控制7.5≤pH≤11,由此形成进样液,或用乙醇稀释原料形成进样液,所用原料含有EPA和DHA的混合物,EPA和DHA的质量百分数总和≥20%;色谱分离由色谱单柱完成或由SMB色谱设备完成;
或者,上述色谱体系中的乙醇由甲醇代替。
2.根据权利要求1所述的一种分离EPA和DHA的色谱方法,其特征在于,固定相为十八烷基硅烷键合硅胶,粒度为20-60μm,流动相中乙醇与水的体积比为4/6-7/3。
3.根据权利要求1所述的一种分离EPA和DHA的色谱方法,其特征在于,所述色谱分离由色谱单柱完成,即:在色谱单柱入口处依次注入进样液、流动相,在色谱单柱出口处先截取EPA馏分,后截取DHA馏分;当需要进行下一次色谱分离时,继续注入再生液、平衡液。
4.根据权利要求1所述的一种分离EPA和DHA的色谱方法,其特征在于,色谱分离采用流动相梯度洗脱。
5.根据权利要求4所述的一种分离EPA和DHA的色谱方法,其特征在于,所述的流动相梯度洗脱为:或者乙醇与水的体积比依次增大,或者pH依次减小,或者二者均变化。
6.根据权利要求1所述的一种分离EPA和DHA的色谱方法,其特征在于,所述色谱分离由SMB色谱设备完成,即:SMB设置三带运行模式,包括洗脱带I带、精制带II带和吸附带III带,a为洗脱带色谱柱数目,1≤a≤2,b为精制带色谱柱数目,1≤b≤3,c为吸附带色谱柱数目,1≤c≤3,运行模式用a-b-c表示;沿流动相方向设置洗脱液入口P、萃取液出口E、流动相入口D、原料液入口F和萃余液出口R的位置;在洗脱带由P泵泵入再生液,萃取液E流速QE=P泵的泵速QP,在精制带由D泵泵入流动相,在吸附带由F泵泵入进样液F,萃余液R流速QR=D泵的泵速QD+F泵的泵速QF;SMB自动控制系统按切换时间TS沿流动相方向将所有入口和出口的位置同时移动至下一根色谱柱;从萃余液出口R得到EPA,从萃取液出口E得到DHA。
7.根据权利要求6所述的一种分离EPA和DHA的色谱方法,其特征在于,按三角形理论针对色谱体系选择一定进样浓度下的QD、QF和切换时间TS,确定SMB色谱分离条件。
8.根据权利要求1所述的一种分离EPA和DHA的色谱方法,其特征在于,用NaOH、KOH、Na2CO3或氨水调整pH。
9.根据权利要求1所述的一种分离EPA和DHA的色谱方法,其特征在于,碱性乙醇-水含质量百分数为0.01-0.1%的NaOH。
10.根据权利要求1~9任意一项所述的一种分离EPA和DHA的色谱方法,其特征在于,色谱单柱分离得到的EPA馏分和DHA馏分,以及SMB分离得到的出口E的萃取液、出口R的萃余液经过蒸馏回收乙醇后,酸化为中性至弱酸性,分出上层得到EPA和DHA。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202010305759.6A CN111362790B (zh) | 2020-04-17 | 2020-04-17 | 一种分离epa和dha的色谱方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202010305759.6A CN111362790B (zh) | 2020-04-17 | 2020-04-17 | 一种分离epa和dha的色谱方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN111362790A true CN111362790A (zh) | 2020-07-03 |
CN111362790B CN111362790B (zh) | 2022-12-13 |
Family
ID=71203601
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN202010305759.6A Active CN111362790B (zh) | 2020-04-17 | 2020-04-17 | 一种分离epa和dha的色谱方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN111362790B (zh) |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN112592268A (zh) * | 2020-12-18 | 2021-04-02 | 江苏汉邦科技有限公司 | 一种利用连续色谱系统分离鱼油中epa的方法 |
CN113563178A (zh) * | 2021-08-27 | 2021-10-29 | 常熟纳微生物科技有限公司 | 一种鱼油中二十二碳六烯酸的分离纯化方法 |
CN114057574A (zh) * | 2021-12-03 | 2022-02-18 | 浙江工商大学 | 一种制备高纯度epa乙酯的方法 |
CN115010596A (zh) * | 2022-07-01 | 2022-09-06 | 江苏汉邦科技股份有限公司 | 一种鱼油原料中二十碳五烯酸的富集方法 |
CN113563178B (zh) * | 2021-08-27 | 2024-06-04 | 常熟纳微生物科技有限公司 | 一种鱼油中二十二碳六烯酸的分离纯化方法 |
Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101348807A (zh) * | 2008-08-26 | 2009-01-21 | 江南大学 | 一种从鱼油中富集n-3多不饱和脂肪酸甘油酯的方法 |
CN106117044A (zh) * | 2016-06-15 | 2016-11-16 | 大连理工大学 | 从南极磷虾油中分离具有抗肿瘤活性的全反式脂肪酸的方法 |
CN106596761A (zh) * | 2016-12-07 | 2017-04-26 | 辽宁科技大学 | 用模拟移动床色谱分离复杂物中目标物的三角形优化方法 |
CN106749448A (zh) * | 2016-12-07 | 2017-05-31 | 辽宁科技大学 | 一种模拟移动床色谱法提取甜叶菊中甜菊糖苷的方法 |
CN107311866A (zh) * | 2017-06-15 | 2017-11-03 | 浙江大学宁波理工学院 | 用模拟移动床色谱分离纯化二十碳五烯酸酯和二十二碳六烯酸酯的方法 |
CN108164415A (zh) * | 2017-12-28 | 2018-06-15 | 上海同田生物技术股份有限公司 | 一种从鱼油中完全分离epa和dha的方法 |
-
2020
- 2020-04-17 CN CN202010305759.6A patent/CN111362790B/zh active Active
Patent Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101348807A (zh) * | 2008-08-26 | 2009-01-21 | 江南大学 | 一种从鱼油中富集n-3多不饱和脂肪酸甘油酯的方法 |
CN106117044A (zh) * | 2016-06-15 | 2016-11-16 | 大连理工大学 | 从南极磷虾油中分离具有抗肿瘤活性的全反式脂肪酸的方法 |
CN106596761A (zh) * | 2016-12-07 | 2017-04-26 | 辽宁科技大学 | 用模拟移动床色谱分离复杂物中目标物的三角形优化方法 |
CN106749448A (zh) * | 2016-12-07 | 2017-05-31 | 辽宁科技大学 | 一种模拟移动床色谱法提取甜叶菊中甜菊糖苷的方法 |
CN107311866A (zh) * | 2017-06-15 | 2017-11-03 | 浙江大学宁波理工学院 | 用模拟移动床色谱分离纯化二十碳五烯酸酯和二十二碳六烯酸酯的方法 |
CN108164415A (zh) * | 2017-12-28 | 2018-06-15 | 上海同田生物技术股份有限公司 | 一种从鱼油中完全分离epa和dha的方法 |
Cited By (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN112592268A (zh) * | 2020-12-18 | 2021-04-02 | 江苏汉邦科技有限公司 | 一种利用连续色谱系统分离鱼油中epa的方法 |
CN112592268B (zh) * | 2020-12-18 | 2022-12-09 | 江苏汉邦科技股份有限公司 | 一种利用连续色谱系统分离鱼油中epa的方法 |
CN113563178A (zh) * | 2021-08-27 | 2021-10-29 | 常熟纳微生物科技有限公司 | 一种鱼油中二十二碳六烯酸的分离纯化方法 |
CN113563178B (zh) * | 2021-08-27 | 2024-06-04 | 常熟纳微生物科技有限公司 | 一种鱼油中二十二碳六烯酸的分离纯化方法 |
CN114057574A (zh) * | 2021-12-03 | 2022-02-18 | 浙江工商大学 | 一种制备高纯度epa乙酯的方法 |
CN115010596A (zh) * | 2022-07-01 | 2022-09-06 | 江苏汉邦科技股份有限公司 | 一种鱼油原料中二十碳五烯酸的富集方法 |
CN115010596B (zh) * | 2022-07-01 | 2024-01-30 | 江苏汉邦科技股份有限公司 | 一种鱼油原料中二十碳五烯酸的富集方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN111362790B (zh) | 2022-12-13 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN111362790B (zh) | 一种分离epa和dha的色谱方法 | |
US4210594A (en) | Process for separating esters of fatty acids | |
CA2633509C (en) | Method of preparing a composition using argentation chromatography | |
Medina et al. | Concentration and purification of stearidonic, eicosapentaenoic, and docosahexaenoic acids from cod liver oil and the marine microalgaIsochrysis galbana | |
CN107311866B (zh) | 用模拟移动床色谱分离纯化二十碳五烯酸酯和二十二碳六烯酸酯的方法 | |
CN104529772B (zh) | 一种模拟移动床色谱制备高纯度epa酯和dha酯单体的方法 | |
CN105272844B (zh) | 一种提纯高纯鱼油epa乙酯和dha乙酯的方法 | |
Kang et al. | An approach based upon the consecutive separation and the economical two-phase solvent system preparation using UNIFAC mathematical model for increasing the yield of high-speed counter-current chromatography | |
JPH09104894A (ja) | クロマトグラフィーによる方法 | |
Cristancho et al. | Supercritical fluid simulated moving bed chromatography for the separation of ethyl linoleate and ethyl oleate | |
Wei et al. | Separation of eicosapentaenoic acid and docosahexaenoic acid by three-zone simulated moving bed chromatography | |
CN108181395B (zh) | 一种采用高效液相色谱在线检测鱼油中甘油三酯成分的方法 | |
CN115010596A (zh) | 一种鱼油原料中二十碳五烯酸的富集方法 | |
CN103203122A (zh) | 用液相色谱柱从动植物中分离提纯高纯天然生物的方法 | |
CN109401850B (zh) | 纯化不饱和脂肪酸以及纯化亚麻酸的方法 | |
TWI648253B (zh) | 純化奇壬醇的方法 | |
TWI648258B (zh) | 純化不飽和脂肪酸以及二十碳五烯酸的方法 | |
CN108164415B (zh) | 一种从鱼油中完全分离epa和dha的方法 | |
CN106483202B (zh) | 一种分离和测定阿利维a酸与异构体的方法 | |
CN107778337B (zh) | 超临界二氧化碳萃取螺旋藻中糖脂的方法 | |
CN108250066A (zh) | 一种高纯度不饱和脂肪酸的分离纯化方法 | |
Bao et al. | Preparative separation of structural isomeric pentacyclic triterpenes from Eriobotrya japonica (Thunb.) leaves by high speed countercurrent chromatography with hydroxypropyl-β-cyclodextrin as additive | |
CN112679343A (zh) | 一种利用香榧籽油制备高纯度金松酸乙酯的方法 | |
Huang et al. | Separation and Purification of β‐Carotene from Chlorophyll Factory Residues | |
CN109369382A (zh) | 一种银杏酸类成分的制备方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant |