CN111296337A - 一种快速无伤鉴别三角帆蚌卵子成熟度的方法 - Google Patents
一种快速无伤鉴别三角帆蚌卵子成熟度的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN111296337A CN111296337A CN202010212461.0A CN202010212461A CN111296337A CN 111296337 A CN111296337 A CN 111296337A CN 202010212461 A CN202010212461 A CN 202010212461A CN 111296337 A CN111296337 A CN 111296337A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- ovum
- hyriopsis cumingii
- eggs
- egg
- identifying
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
- 241000382840 Hyriopsis cumingii Species 0.000 title claims abstract description 71
- 102000002322 Egg Proteins Human genes 0.000 title claims abstract description 51
- 108010000912 Egg Proteins Proteins 0.000 title claims abstract description 51
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 20
- 230000006378 damage Effects 0.000 title claims abstract description 10
- 210000004681 ovum Anatomy 0.000 title claims description 45
- 235000013601 eggs Nutrition 0.000 claims abstract description 72
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims abstract description 20
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims abstract description 17
- 210000002149 gonad Anatomy 0.000 claims abstract description 14
- 210000002816 gill Anatomy 0.000 claims abstract description 12
- 210000002969 egg yolk Anatomy 0.000 claims abstract description 11
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 claims abstract description 11
- 239000003085 diluting agent Substances 0.000 claims abstract description 10
- 238000007865 diluting Methods 0.000 claims abstract description 8
- 238000012216 screening Methods 0.000 claims abstract description 7
- 239000002245 particle Substances 0.000 claims abstract description 4
- 210000004943 gill filament Anatomy 0.000 claims description 9
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 claims description 9
- 230000035800 maturation Effects 0.000 claims description 8
- 239000000084 colloidal system Substances 0.000 claims description 4
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 2
- 210000003934 vacuole Anatomy 0.000 claims description 2
- 208000027418 Wounds and injury Diseases 0.000 claims 1
- 239000008187 granular material Substances 0.000 claims 1
- 208000014674 injury Diseases 0.000 claims 1
- 235000013345 egg yolk Nutrition 0.000 abstract description 7
- 238000009395 breeding Methods 0.000 description 14
- 230000001488 breeding effect Effects 0.000 description 14
- 241000237536 Mytilus edulis Species 0.000 description 10
- 235000020638 mussel Nutrition 0.000 description 10
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 5
- 230000009027 insemination Effects 0.000 description 4
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 241001664469 Tibicina haematodes Species 0.000 description 3
- 244000144987 brood Species 0.000 description 3
- 230000000249 desinfective effect Effects 0.000 description 3
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 3
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 3
- 230000004720 fertilization Effects 0.000 description 3
- 238000012214 genetic breeding Methods 0.000 description 3
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 3
- 230000002710 gonadal effect Effects 0.000 description 3
- 210000003734 kidney Anatomy 0.000 description 3
- 210000000056 organ Anatomy 0.000 description 3
- 239000002504 physiological saline solution Substances 0.000 description 3
- 235000015170 shellfish Nutrition 0.000 description 3
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 description 3
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 2
- 239000013505 freshwater Substances 0.000 description 2
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 2
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 2
- 238000011160 research Methods 0.000 description 2
- 241000237852 Mollusca Species 0.000 description 1
- 244000089486 Phragmites australis subsp australis Species 0.000 description 1
- 208000020584 Polyploidy Diseases 0.000 description 1
- 241000217379 Unionidae Species 0.000 description 1
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 description 1
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 1
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 1
- 230000026109 gonad development Effects 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 230000003204 osmotic effect Effects 0.000 description 1
- 210000001672 ovary Anatomy 0.000 description 1
- 238000012827 research and development Methods 0.000 description 1
- 230000004083 survival effect Effects 0.000 description 1
- 230000008961 swelling Effects 0.000 description 1
- 238000009827 uniform distribution Methods 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K61/00—Culture of aquatic animals
- A01K61/50—Culture of aquatic animals of shellfish
- A01K61/54—Culture of aquatic animals of shellfish of bivalves, e.g. oysters or mussels
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A40/00—Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production
- Y02A40/80—Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production in fisheries management
- Y02A40/81—Aquaculture, e.g. of fish
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Marine Sciences & Fisheries (AREA)
- Zoology (AREA)
- Animal Husbandry (AREA)
- Biodiversity & Conservation Biology (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
本发明公开了一种快速无伤鉴别三角帆蚌卵子成熟度的方法,包括:通过年轮挑选三龄及以上的三角帆蚌,将其双壳撑开0.7~0.8cm的间隙,检查内外鳃的鳃丝间距和数量,筛选并挑选出性腺饱满的雌性三角帆蚌进行标记,用注射器从其性腺表层组织中吸取卵液并稀释至1mL,所得卵子稀释液置于光学显微镜下观察情况,其中成熟卵子同时满足:①卵子为近圆形;②卵径大;③卵膜外有厚度均匀的胶质膜;④卵膜内卵黄颗粒均匀分布,且在光学显微镜下整体呈深褐色;未满足上述①~④任一条件的为未成熟卵子。本发明能够快速无伤地鉴别三角帆蚌亲蚌的卵子成熟度,可以提高雌雄三角帆蚌受精的同步性和人工繁育的工作效率。
Description
技术领域
本发明属于贝类遗传育种和人工繁殖技术领域,具体涉及一种快速无伤鉴别三角帆蚌卵子成熟度的方法。
背景技术
三角帆蚌属于软体动物门,双壳纲,真瓣鳃目,蚌科,是我国特有的淡水育种品种之一,主要分布在河北、山东、安徽、江苏、浙江、江西、湖北和湖南等地的湖泊及河流内。早在上世纪70年代末,我国就已经初步掌握了三角帆蚌人工繁育技术。目前在生产上,通常采用大型池塘对三角帆蚌雌雄亲本按一定比例进行吊养,让其自然受精,然后从中挑选外鳃丝怀有成熟钩介幼虫的雌蚌进行人工采苗获得稚蚌。但是由于雌雄亲蚌的性腺发育存在不同步性,在实际操作过程中需要从大量亲本中多次挑选才能获得成熟雌蚌,工作量较大且效率较低。
在贝类的人工繁育中,配子的质量直接关系到子代的存活率。在繁殖期内,自然排放的精子只要处于运动状态一般都是处于成熟状态,具有授精能力。因此,卵子的成熟度就成为了决定合子质量的关键因素。但是,三角帆蚌的卵子是分批成熟和分批排放,在雌性三角帆蚌的卵巢内存在不同成熟度的卵子,且卵子成熟与否在三角帆蚌的外观上几乎无显著的表型差异,所以很难直接判断一只三角帆蚌亲蚌性腺内卵子是否成熟。由于目前缺乏三角帆蚌卵子成熟度的鉴定方法,导致三角帆蚌人工繁育的效率较低,而且多倍体育种、雌核发育等现代生物育种技术的研发和应用需要更加精准,掌握配子成熟度和控制受精时间。因此,开发一种几乎无损伤快速鉴别三角帆蚌亲蚌卵子成熟度的方法对提升三角帆蚌人工繁育的效率和进一步进行三角帆蚌生物学研究的操作具有重要实践意义,对三角帆蚌的种质资源保护和遗传育种的研究具有重要意义。
发明内容
为了解决当前三角帆蚌卵子成熟度的鉴别问题,本发明的目的在于提供一种快速无伤鉴别三角帆蚌卵子成熟度的方法,为三角帆蚌卵子成熟度提供鉴别标准,可提高雌雄三角帆蚌受精的同步性和人工繁育的工作效率。
本发明的快速无伤鉴别三角帆蚌卵子成熟度的方法,包括以下步骤:
(1)初步筛选性腺成熟的雌性三角帆蚌:通过年轮挑选出三龄及以上的三角帆蚌,用开壳器将双壳撑开0.7~0.8cm的间隙,检查内外鳃的鳃丝间距和数量筛选得到雌性三角帆蚌,并挑选出性腺饱满的雌性三角帆蚌进行标记;
(2)卵液采集和稀释:通过注射器从上述标记的雌性三角帆蚌性腺表层组织中吸取卵液,用稀释液稀释至1mL,得到卵子稀释液;
(3)鉴别卵子成熟度:将上述卵子稀释液置于光学显微镜下观察其包含形态、大小和圆度的情况,其中成熟卵子同时满足以下条件:①卵子为近圆形;②卵径大;③卵膜外有厚度均匀的胶质膜;④卵膜内卵黄颗粒均匀分布,且在光学显微镜下整体呈深褐色;
未满足上述①~④任一条件的为未成熟卵子。
根据本发明的一些实施方式,步骤(1)中,所述雌性三角帆蚌的外鳃鳃丝间距密,且鳃丝数量为90~110根,优选接近100根。
根据本发明的一些实施方式,步骤(2)中,所述注射器选用国家标准规定的6号针头,针头内径为0.34mm,可保证对三角帆蚌造成较小损伤的情况下吸取完整卵细胞。
根据本发明的一些实施方式,步骤(2)中,所述稀释液为质量浓度0.4%~0.5%的生理盐水,该稀释液浓度与淡水贝类渗透压一致,避免卵子被稀释时产生吸水膨胀造成卵细胞破裂。
根据本发明的一些实施方式,步骤(3)中,所述成熟卵子为近圆形,且其圆度的直径差百分比X≤20%;其中,X=[(dmax-dmin)/d]×100,dmax为最大直径,dmin为最小直径,d=(dmax+dmin)/2。
根据本发明的一些实施方式,所述成熟卵子的卵径≥150μm。
根据本发明的一些实施方式,所述胶质膜为50~100μm,且可将卵子包裹。
根据本发明的一些实施方式,所述成熟卵子的卵膜内卵黄颗粒分布均匀,且在光学显微镜下整体呈深褐色,参照劳尔比色卡标准颜色接近RAL8022(Black Brown)。
根据本发明的一些实施方式,所述未成熟卵子的卵膜内卵黄颗粒分布不均匀,且在光学显微镜下整体呈浅黄色,参照劳尔比色卡标准颜色接近RAL1001(Beige),同时存在若干白色空泡。
与现有技术相比,本发明的有益效果在于:本发明的方法能够快速无伤地鉴别三角帆蚌亲蚌的卵子成熟度,为三角帆蚌全人工繁育提供优质的配子来源,提高雌雄三角帆蚌受精的同步性和人工繁育的工作效率,同时也为三角帆蚌的种质资源保护和遗传育种提供可靠的技术支持。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明作进一步说明,以使本领域的技术人员可以更好理解发明并用以实施,但所述实施例不作为对本发明的限定。
实施例1
2019年4月,从浙江武义养殖基地选取通过年轮挑选出的三龄及以上的三角帆蚌若干,打开蚌壳通过检查内外鳃的鳃丝间距和数量筛选出雌性三角帆蚌,然后观察挑选出性腺饱满的3只雌蚌并进行标记。
用开壳器微微打开蚌壳,用带0.34mm内径针头注射器通过酒精灯消毒灭菌后进入表层性腺组织吸取卵液100μL,在进入性腺组织时需要注意不能进入过深导致穿刺肾脏或其它重要器官,吸取的卵液保存在1mL离心管中并用质量浓度为0.4%~0.5%的生理盐水稀释至1mL。
将得到的卵子稀释液滴注在载玻片上,置于光学显微镜下观察其形态、大小和圆度。观察得出约有90%以上卵子的卵径≥150μm,卵子外围有一层厚度约为50μm胶质膜,卵子直径差百分比≤20%,卵黄物质在光镜下整体呈现深褐色(参照劳尔比色卡标准颜色接近RAL8022(Black Brown)),说明达到成熟卵子的标准。
鉴别后,将亲蚌放置在有雄蚌的池塘中使其自然授精,在外鳃育儿囊中得到受精卵,表明该三角帆蚌卵子的成熟度较高,可用于人工繁育,进一步证实本发明的鉴别标准有效。
实施例2
2019年5月,从上海海洋大学滨海养殖基地选取通过年轮挑选出的三龄及以上的三角帆蚌若干,打开蚌壳通过检查内外鳃的鳃丝间距和数量筛选出雌性三角帆蚌,然后观察挑选出性腺饱满的3只雌蚌并进行标记。
用开壳器微微打开蚌壳,用带0.34mm内径针头注射器通过酒精灯消毒灭菌后进入表层性腺组织吸取卵液150μL,在进入性腺组织时需要注意不能进入过深导致穿刺肾脏或其它重要器官,吸取的卵液保存在1mL离心管中并用质量浓度为0.4%~0.5%的生理盐水稀释至1mL。
将得到的卵子稀释液滴注在载玻片上,置于光学显微镜下观察其形态、大小和圆度。观察得出约有95%以上卵子的卵径≥150μm,卵子外围有一层厚度约为60μm胶质膜,卵子直径差百分比≤20%,卵黄物质在光镜下整体呈现深褐色(参照劳尔比色卡标准颜色接近RAL8022(Black Brown)),说明达到成熟卵子的标准。
鉴别后,将亲蚌放置在有雄蚌的池塘中使其自然授精,在外鳃育儿囊中得到了受精卵,表明该三角帆蚌卵子的成熟度较高,可用于人工繁育。
实施例3
2019年6月,从上海海洋大学崇明基地选取通过年轮挑选出的三龄及以上的三角帆蚌若干,打开蚌壳通过检查内外鳃的鳃丝间距和数量筛选出雌性三角帆蚌,然后观察挑选出性腺饱满的3只雌蚌并进行标记。
用开壳器微微打开蚌壳,用带0.34mm内径针头注射器通过酒精灯消毒灭菌后进入表层性腺组织吸取卵液100~200μL,在进入性腺组织时需要注意不能进入过深导致穿刺肾脏或其它重要器官,吸取的卵液保存在1mL离心管中并用质量浓度为0.4%~0.5%的生理盐水稀释至1mL。
将得到的卵子稀释液滴注在载玻片上,置于光学显微镜下观察其形态、大小和圆度。观察得出约有80%以上的卵子的卵径≥150μm,卵子外围有一层厚度约为60μm胶质膜,卵子直径差百分比≤20%,卵黄物质在光镜下整体呈现深褐色(参照劳尔比色卡标准颜色接近RAL8022(Black Brown)),说明达到成熟卵子的标准。
鉴别后,将亲蚌放置在有雄蚌的池塘中使其自然授精,在外鳃育儿囊中得到了受精卵,表明该三角帆蚌卵子的成熟度较高,可用于人工繁育。
上述对实施例的描述是为了便于该技术领域的普通技术人员能理解和使用本发明。熟悉本领域技术人员显然可以容易的对这些实施例做出各种修改,并把在此说明的一般原理应用到其他实施例中,而不必经过创造性的劳动。因此,本发明不限于上述实施例。本领域技术人员根据本发明的原理,不脱离本发明的范畴所做出的改进和修改都应该在本发明的保护范围之内。
Claims (10)
1.一种快速无伤鉴别三角帆蚌卵子成熟度的方法,其特征在于,该方法包括以下步骤:
(1)初步筛选性腺成熟的雌性三角帆蚌:通过年轮挑选出三龄及以上的三角帆蚌,用开壳器将双壳撑开0.7~0.8cm的间隙,检查内外鳃的鳃丝间距和数量筛选得到雌性三角帆蚌,并挑选出性腺饱满的雌性三角帆蚌进行标记;
(2)卵液采集和稀释:通过注射器从上述标记的雌性三角帆蚌性腺表层组织中吸取卵液,用稀释液稀释至1mL,得到卵子稀释液;
(3)鉴别卵子成熟度:将上述卵子稀释液置于光学显微镜下观察其包含形态、大小和圆度的情况,其中:
成熟卵子同时满足以下条件:①卵子为近圆形;②卵径大;③卵膜外有厚度均匀的胶质膜;④卵膜内卵黄颗粒均匀分布,且在光学显微镜下整体呈深褐色;
未满足上述①~④任一条件的为未成熟卵子。
2.根据权利要求1所述鉴别三角帆蚌卵子成熟度的方法,其特征在于,步骤(1)中,所述雌性三角帆蚌的外鳃鳃丝间距密,且鳃丝数量为90~110根。
3.根据权利要求2所述鉴别三角帆蚌卵子成熟度的方法,其特征在于,步骤(1)中,所述雌性三角帆蚌的外鳃鳃丝间距密,且鳃丝数量为100根。
4.根据权利要求1所述鉴别三角帆蚌卵子成熟度的方法,其特征在于,步骤(2)中,所述注射器选用国家标准规定的6号针头,针头内径为0.34mm。
5.根据权利要求1所述鉴别三角帆蚌卵子成熟度的方法,其特征在于,步骤(2)中,所述稀释液为质量浓度0.4%~0.5%的生理盐水。
6.根据权利要求1所述鉴别三角帆蚌卵子成熟度的方法,其特征在于,步骤(3)中,所述成熟卵子为近圆形,且其圆度的直径差百分比X≤20%;其中,X=[(dmax-dmin)/d]×100,dmax为最大直径,dmin为最小直径,d=(dmax+dmin)/2。
7.根据权利要求1或6所述鉴别三角帆蚌卵子成熟度的方法,其特征在于,步骤(3)中,所述成熟卵子的卵径≥150μm。
8.根据权利要求1所述鉴别三角帆蚌卵子成熟度的方法,其特征在于,步骤(3)中,所述胶质膜厚度为50~100μm,且可将卵子包裹。
9.根据权利要求1所述鉴别三角帆蚌卵子成熟度的方法,其特征在于,步骤(3)中,所述成熟卵子的卵膜内卵黄颗粒分布均厚匀,且在光镜下整体呈深褐色,参照劳尔比色卡标准颜色接近RAL8022(Black Brown)。
10.根据权利要求1所述鉴别三角帆蚌卵子成熟度的方法,其特征在于,步骤(3)中,所述未成熟卵子的卵膜内卵黄颗粒分布不均匀,在光镜下整体呈浅黄色,参照劳尔比色卡标准颜色接近RAL1001(Beige),同时存在若干白色空泡。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202010212461.0A CN111296337A (zh) | 2020-03-24 | 2020-03-24 | 一种快速无伤鉴别三角帆蚌卵子成熟度的方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN202010212461.0A CN111296337A (zh) | 2020-03-24 | 2020-03-24 | 一种快速无伤鉴别三角帆蚌卵子成熟度的方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN111296337A true CN111296337A (zh) | 2020-06-19 |
Family
ID=71145888
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN202010212461.0A Pending CN111296337A (zh) | 2020-03-24 | 2020-03-24 | 一种快速无伤鉴别三角帆蚌卵子成熟度的方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN111296337A (zh) |
Citations (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1696691A (zh) * | 2005-05-26 | 2005-11-16 | 上海交通大学 | 附红细胞体病快速鉴别诊断方法 |
CN101142903A (zh) * | 2007-09-18 | 2008-03-19 | 方德军 | 一种三角帆幼蚌的繁育方法 |
CN101940183A (zh) * | 2010-09-26 | 2011-01-12 | 浙江山下湖珍珠集团股份有限公司 | 一种诱导三倍体三角帆蚌培育珍珠的方法 |
CN102440202A (zh) * | 2011-09-29 | 2012-05-09 | 中国水产科学研究院黑龙江水产研究所 | 一种鲟科鱼类卵子的筛选方法 |
CN103583440A (zh) * | 2013-11-21 | 2014-02-19 | 中国水产科学研究院黑龙江水产研究所 | 一种快速物理辨别太门哲罗鲑成熟卵子优劣的方法 |
CN104381158A (zh) * | 2014-09-28 | 2015-03-04 | 中国科学院南海海洋研究所 | 一种采用卵生型手段繁育幼生型牡蛎的方法 |
CN104798708A (zh) * | 2015-04-16 | 2015-07-29 | 浙江省海洋水产研究所 | 一种海星优质卵子的促熟和人工受精方法 |
CN108513934A (zh) * | 2018-02-27 | 2018-09-11 | 中国科学院南海海洋研究所 | 一种鉴别砗磲卵子成熟度的方法 |
KR102050950B1 (ko) * | 2018-01-30 | 2019-12-03 | 대한민국 | 명태 수정란 대량생산 및 부화방법을 포함하는 명태 양식 방법 |
-
2020
- 2020-03-24 CN CN202010212461.0A patent/CN111296337A/zh active Pending
Patent Citations (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1696691A (zh) * | 2005-05-26 | 2005-11-16 | 上海交通大学 | 附红细胞体病快速鉴别诊断方法 |
CN101142903A (zh) * | 2007-09-18 | 2008-03-19 | 方德军 | 一种三角帆幼蚌的繁育方法 |
CN101940183A (zh) * | 2010-09-26 | 2011-01-12 | 浙江山下湖珍珠集团股份有限公司 | 一种诱导三倍体三角帆蚌培育珍珠的方法 |
CN102440202A (zh) * | 2011-09-29 | 2012-05-09 | 中国水产科学研究院黑龙江水产研究所 | 一种鲟科鱼类卵子的筛选方法 |
CN103583440A (zh) * | 2013-11-21 | 2014-02-19 | 中国水产科学研究院黑龙江水产研究所 | 一种快速物理辨别太门哲罗鲑成熟卵子优劣的方法 |
CN104381158A (zh) * | 2014-09-28 | 2015-03-04 | 中国科学院南海海洋研究所 | 一种采用卵生型手段繁育幼生型牡蛎的方法 |
CN104798708A (zh) * | 2015-04-16 | 2015-07-29 | 浙江省海洋水产研究所 | 一种海星优质卵子的促熟和人工受精方法 |
KR102050950B1 (ko) * | 2018-01-30 | 2019-12-03 | 대한민국 | 명태 수정란 대량생산 및 부화방법을 포함하는 명태 양식 방법 |
CN108513934A (zh) * | 2018-02-27 | 2018-09-11 | 中国科学院南海海洋研究所 | 一种鉴别砗磲卵子成熟度的方法 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN101940169B (zh) | 一种虹鳟四倍体育种方法 | |
CN102106292B (zh) | 鲆鲽鱼类三倍体批量化生产方法 | |
CN110100776A (zh) | 一种耐低温耐低盐对虾品种的选育方法 | |
KR100868894B1 (ko) | 자웅동체의 패류로부터 자식 계통을 구축하기 위한 방법 | |
CN101120665A (zh) | 一种淡水育珠蚌的育苗方法 | |
Tan et al. | Effect of salinity on hatching, larval growth, survival and settling in the tropical oyster Crassostrea belcheri (Sowerby) | |
CN111296337A (zh) | 一种快速无伤鉴别三角帆蚌卵子成熟度的方法 | |
CN103828746A (zh) | 一种菲律宾蛤仔的繁育方法 | |
CN110178799B (zh) | 一种皱纹盘鲍三倍体的诱导方法 | |
NL2034188B1 (en) | Method for large-scale production of all-female triploid rainbow trout (oncorhynchus mykiss) | |
Widmer | Life cycle of Chrysaora fuscescens (Cnidaria: Scyphozoa) and a Key to sympatric ephyrae1 | |
CN112167118A (zh) | 一种齐尔白鲑的人工繁殖方法 | |
CN110278921B (zh) | 一种化学诱导鲍异源三倍体的方法 | |
CN104304098B (zh) | 紫海杂交扇贝恢复系的构建方法与应用 | |
CN104160999B (zh) | 紫墨杂交扇贝恢复系的构建方法与应用 | |
da Silva et al. | Vertical transmission of infectious myonecrosis virus in Litopenaeus vannamei | |
CN109496922A (zh) | 一种静水压诱导虹鳟四倍体的制种方法 | |
CN106386605B (zh) | 一种脊尾白虾正反回交家系的构建方法 | |
CN114946773A (zh) | 一种制备异源三倍体扇贝的方法 | |
CN111972332A (zh) | 一种合浦珠母贝小片贝新品种培育方法 | |
AU2021103410A4 (en) | Method for chemically inducing allotriploid abalone | |
CN106577413A (zh) | 一种砗磲的人工诱导产卵方法 | |
JP3013247B2 (ja) | アコヤガイの養殖方法 | |
CN110637763B (zh) | 一种砗磲贝壳形态与外套膜颜色性状互换品系的制备方法 | |
Bhatkar et al. | Effect of salinity and temperature on broodstock conditioning of mangrove clam Polymesoda erosa (Solander, 1786) |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20200619 |
|
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |