CN111286496B

CN111286496B - 异柠檬酸脱氢酶激酶突变体及其在制备芳香族氨基酸中的应用

Info

Publication number: CN111286496B
Application number: CN202010068018.0A
Authority: CN
Inventors: 张大伟; 刘永飞
Original assignee: Tianjin Institute of Industrial Biotechnology of CAS
Current assignee: Tianjin Institute of Industrial Biotechnology of CAS
Priority date: 2020-01-19
Filing date: 2020-01-19
Publication date: 2022-04-22
Anticipated expiration: 2040-01-19
Also published as: CN111286496A

Abstract

本发明公开了异柠檬酸脱氢酶激酶突变体及其在制备芳香族氨基酸中的应用，异柠檬酸脱氢酶激酶突变基因aceK序列用SEQ ID No.1所示。本发明构建的包含有大肠杆菌编码异柠檬酸脱氢酶激酶突变基因aceK的工程菌生物安全，遗传背景清晰，可以有效的提高大肠杆菌生产芳香族氨基酸的能力，苯丙氨酸和色氨酸的产量分别提高了12.1％和11.1％。

Description

异柠檬酸脱氢酶激酶突变体及其在制备芳香族氨基酸中的应用

技术领域：

本发明属于生物技术与分子生物学领域，具体地涉及一种大肠杆菌编码的异柠檬酸脱氢酶激酶突变基因aceK及该基因编码的氨基酸序列及其应用。

背景技术

L-苯丙氨酸(L-Phenylalanine)又名L-苯基-α-氨基丙酸，为白色结晶粉末，有苦味，熔点为283℃，在自然界中广泛存在于卵、乳和动物蛋白中，其含量5为％～6％，在植物性蛋白质中约含1％。苯丙氨酸可溶于水，在水中的溶解度为3％，难溶于乙醇、乙醚等有机溶剂，在100耐水中的溶解度为51℃：4.4g，等电点为5.48。苯丙氨酸有外消旋DL-型，L-型和D-型，其中最重要的是L-苯丙氨酸。

苯丙氨酸是8种必须氨基酸之一，其作为营养物质的同时也是体内的生糖兼生酮氨基酸，在代谢中有着不可代替的作用。在工业上，L-苯丙氨酸主要用于与天冬氨酸反应形成人工甜味剂阿斯巴甜。这种甜味剂在功能食品添加剂中有着广泛的需求。在医药领域上，L-苯丙氨酸是静脉输液的必需物质，同时可以用作许多抗肿瘤药物靶向供给的载体。目前全球市场L-苯丙氨酸年需求量超过50000吨，并且逐年以15％的速率稳定增长，其中阿斯巴甜的年需求量约为20000吨；另一方面，医药行业每年L-苯丙氨酸需求量约为8000吨。因此，L-苯丙氨酸具有巨大的市场开发空间(Liu X,Niu H,Li Q,et al.Metabolic engineeringfor the production of l-phenylalanine in Escherichia coli[J].3Biotech,2019,9(3).)。

苯丙氨酸的制备方法有发酵法、酶法与化学合成法。用化学合成法经拆分可制得苯丙氨酸。化学合成法用苯甲醛和N-乙酞甘氨酸为原料，合成N-乙酞苯丙氨酸，再经氨基酞化酶拆分得L-苯丙氨酸。用氯节和丙二酸二乙醋或乙酞氨基丙二酸二乙醋或乙酞氨基氮基乙酸乙醋为原料，经氨基酞化酶水解制成L-苯丙氨酸和D-苯丙氨酸。国内生产厂家主要采用发酵法。苯丙氨酸的合成途径目前比较清晰，大肠杆菌利用自身的PTS系统将外源的葡萄糖转运至细胞内，同时将其磷酸化为六磷酸葡萄糖。磷酸化后的葡萄糖一部分通过糖酵解途径(EMP)进入三羧酸循环产生ATP为机体的生命活动提供能量和一些中间物质(作为前体物为参与机体其他物质的合成)，其中就包括磷酸烯醇式丙酮酸(PEP)，另一部分则进入磷酸戊糖非氧化还原途径(PP)产生赤藓糖4-磷酸(E4P)，PEP和E4P经过莽草酸途径生成分支酸并最终生成苯丙氨酸。苯丙氨酸的生物合成受其自身的反馈抑制和反馈阻遏。苯丙氨酸的生产菌株的代谢工程改造策略主要包括以下几部分内容：1.增加前体PEP和E4P的供给；2.增强莽草酸途径；3.降低其他芳香族氨基酸竞争途径通量；4.解除反馈阻遏和反馈抑制；5.增强苯丙氨酸外排；6.敲除苯丙氨酸去路途径。(Rodriguez A,Martínez,Juan A,Flores,Noemí,et al.EngineeringEscherichia colito overproduce aromatic aminoacids and derived compounds[J].Microbial Cell Factories,2014,13(1):126.)

目前很少有通过改造中央碳代谢TCA循环相关酶的活性进而有效提高苯丙氨酸产量的报道。异柠檬酸脱氢酶激酶/磷酸酶AceK(由aceK编码)处在两个中央代谢途径：TCA循环和乙醛酸循环之间的分支点的位置，它通过控制TCA循环中异柠檬酸脱氢酶(IDH)的活性来控制微生物体内代谢流在这两个代谢途径中的分布，具体表现为AceK通过磷酸化IDH并使其失活使其底物异柠檬酸转移到乙醛酸循环中。当生物需要TCA提供ATP时AceK通过使IDH去磷酸化重新激活该酶，回复其对异柠檬酸的强亲和力并重新提高TCA循环的通量。上述调控是由胞内的AMP诱导Acek的构象转换并决定AceK是激酶还是磷酸化酶。AceK作用于IDH活性位点的丝氨酸残基。目前尚未有大肠杆菌编码异柠檬酸脱氢酶激酶突变基因aceK用于选育芳香族氨基酸高产菌株的报道。

发明内容

本发明人在前期的工作中构建了一种大肠杆菌高产苯丙氨酸的高通量筛选方法，通过对一株苯丙氨酸菌株进行诱变后筛选获得一株苯丙氨酸产量提升的突变菌，再挖掘分析其中对苯丙氨酸高产相关的突变基因，并做了进一步研究，最终完成本发明。

本发明提供一种异柠檬酸脱氢酶激酶的突变体，其氨基酸序列在如SEQ ID NO：1所示氨基酸序列存在下述突变：第26位氨基酸突变为K。

本发明进一步提供编码如上述异柠檬酸脱氢酶激酶的突变体的编码基因。更具体地，其核苷酸序列如SEQ ID NO：3所示。

本发明尤其提供异柠檬酸脱氢酶激酶编码基因在制备芳香族氨基酸中的应用。

在一个具体实施方式中，其是通过含有所述异柠檬酸脱氢酶激酶导入大肠杆菌生产芳香族氨基酸的工程菌的基因组中。

其中，所述异柠檬酸脱氢酶激酶编码基因优选编码具有SEQ ID NO：1或SEQ IDNO：2所示氨基酸序列的多肽。更优选地，所述异柠檬酸脱氢酶激酶编码基因具有SEQ IDNO：3所示核苷酸序列。

本发明构建的包含有大肠杆菌编码异柠檬酸脱氢酶激酶突变基因aceK的工程菌生物安全，遗传背景清晰，可以有效的提高大肠杆菌生产苯丙氨酸等芳香族氨基酸的能力，在摇瓶水平可提高苯丙氨酸积累水平达12.1％以上，可提高色氨酸积累水平11.1％以上。

附图说明

图1为用于基因组编辑的质粒pCas-aceK的图谱。

图2为大肠杆菌苯丙氨酸工程菌株HDH5和HDH5-k和为色氨酸工程菌株Kw002和Kw002-k摇瓶水平发酵验证结果。

具体实施方式

本发明人在前期的工作中发明了一种基于苯丙氨酸的高通量的筛选方法，并利用该方法筛选出多株比出发菌的苯丙氨酸产量不同程度上提高的突变株(Liu,Y.,Zhuang,Y.,Ding,D.,Xu,Y.,Sun,J.,and Zhang,D.(2017)Biosensor-Based Evolution andElucidation of a Biosynthetic Pathway in Escherichia coli,ACS syntheticbiology，2017May19；6(5):837-848.doi:10.1021/acssynbio.6b00328.)，该苯丙氨酸高产菌株的基因组测序结果已经公开发表。测序后发现aceK基因的突变型E26K对苯丙氨酸产量提高具有重要作用。将该突变引入本实验保存的一株大肠杆菌高产色氨酸工程菌株中发现在摇瓶水平也可显著提升色氨酸发酵产量。本专利中提及的苯丙氨酸菌株HDH5菌株和Kw002菌株的背景及相关操作已在发表的论文中详细说明(Liu,Y.,Zhuang,Y.,Ding,D.,Xu,Y.,Sun,J.,and Zhang,D.Biosensor-Based Evolution and Elucidation of aBiosynthetic Pathway in Escherichia coli,ACS synthetic biology，2017May 19；6(5):837-848.doi:10.1021/acssynbio.6b00328；Chen,Y.,Liu,Y.,Ding,D.,Cong,L.,andZhang,D.(2018)Rational design and analysis of an Escherichia coli strain forhigh-efficiency tryptophan production,J Ind Microbiol Biotechnol,2018May；45(5):357-367.doi:10.1007/s10295-018-2020-x.)。

本发明中的“芳香族氨基酸工程菌株”是指以大肠杆菌或者谷氨酸棒状杆菌等工业菌株，经过适当的培养条件，在适当的培养基中发酵后可以生产苯丙氨酸或者色氨酸的菌株，优先特指大肠杆菌。目前通过本领域的科研人员掌握的各种常规的改造手段获取的大肠杆菌或者谷氨酸棒状杆菌菌株均为芳香族氨基酸工程菌株。

下面结合实例对本发明做进一步说明，下述实施例是为了使本领域的技术人员能够更好的理解本发明，单对本发明不作任何限制。

实施例1.构建pCas-aceK

本实施例中构建的pCas-acek质粒用于将大肠杆菌色氨酸和苯丙氨酸工程菌株基因组上aceK野生型基因替换为aceK突变型(E26K)，该质粒的具体工作原理已公开发表(Zhao D,Yuan S,Xiong B,Sun H,Ye L,Li J,Zhang X,Bi C.Development of a fast andeasy method for Escherichia coli genome editing with CRISPR/Cas9..2016Dec 1；15(1):205.)’。pCas-red的具体构建过程描述如下：将Cas9蛋白(以含有Cas9蛋白的质粒(Addgene编号为：42876))，合成不含有N20序列的gRNA蛋白(序列为：5’-GT T TTAGAGCTAGA A ATAGCAAGTTA AAATAAGGCTAGTCCGTTATCAACTTGAAAAAGTGGCACCGAGTCGGTGCTT-3’)以及它的启动子序列(5’-CTAGGTTTATACATAGGCGAGTACTCTGTTATGGAGTCAGATCT-3’)和来自pKD46质粒(Kirill A.Datsenko and Barry L.Wanner,One-step inactivation ofchromosomal genes in Escherichia coli K-12using PCR products,PNAS June 6,200097(12)6640-6645；https://doi.org/10.1073/pnas.120163297)的大肠杆菌同源重组系统这三部分利用吉布森组装整合为一个质粒，并命名为pCas-red。

pCas-acek的质粒是由pCas-red衍生而来，在同源臂及N20序列等进行针对aceK基因进行特异性改造，构建过程如下：以pCas-red质粒为模板，以pCas-aceK-cas-LF、pCas-aceK-cas-LR为引物，PCR扩增出质粒片段pCas1，PCR体系见表1。以pCas-red质粒为模板，以pCas-aceK-n20-LF、pCas-aceK-n20-LR为引物，PCR扩增出质粒片段pCas2。以大肠杆菌w3110基因组为模板，以pCas-aceK-LF为上游引物，以pCas-aceK-mut-LR为下游引物，PCR扩增片段分别为aceK-U；以大肠杆菌w3110基因组为模板，以pCas-aceK-mut-LF和pCas-aceK-LR为引物，PCR扩增片段分别为aceK-D。按照表2的体系进行吉布森组装，反应条件为50℃，1h。将10μL连接体系转入DH5α感受态细胞中于30℃利用LB培养基过夜培养，挑选阳性克隆后送金唯智公司测序进行验证，构建成功的质粒命名为pCas-aceK。本实例中所用引物见表3.

表1.PCR反应体系

表2.吉布森连接反应体系

表3.构建pCas-aceK质粒所需引物

实施例2.构建HDH5-k

将大肠杆菌苯丙氨酸工程菌HDH5制备成感受态，将pCas-aceK质粒转入感受态细胞后涂布于含有氨苄抗性的平板上30°过夜培养。挑取阳性单菌落接种到含有氨苄LB液体培养基(胰蛋白胨10g/L，酵母提取物5g/L，氯化钠10g/L)试管中，在30℃摇床下培养6h后加入2g/L的阿拉伯糖(诱导Cas9蛋白和pKD46上的重组蛋白的表达)，促进Cas9蛋白的筛选。然后继续在30℃摇床下培养6h，将菌液在含有氨苄和2g/L阿拉伯糖的LB平板上进行三区划线，30℃下恒温过夜培养。利用菌落PCR进行验证并进行测序，测序正确的菌株分别命名HDH5-k。

实施例3.构建Kw002-k

将大肠杆菌苯丙氨酸工程菌Kw002制备成感受态，将pCas-aceK质粒转入感受态细胞后涂布于含有氨苄抗性的平板上30°过夜培养。挑取阳性单菌落接种到含有氨苄LB试管中，在30℃摇床下培养6h后加入2g/L的阿拉伯糖(诱导Cas9蛋白和PKD46重组蛋白的表达)，促进Cas9蛋白的筛选。然后继续在30℃摇床下培养6h，将菌液在含有氨苄和2g/L阿拉伯糖的LB平板上进行三区划线，30℃下恒温过夜培养。利用菌落PCR进行验证并进行测序，测序正确的菌株分别命名Kw002-k。

实施例4.苯丙氨酸菌株HDH5和HDH5-k摇瓶发酵

大肠杆菌高产苯丙氨酸菌株HDH5和HDH5-k的摇瓶发酵工艺如下：

(1)斜面活化培养：从-80℃冰箱取出保藏菌种划线于含有卡纳抗性的LB固体培养基(胰蛋白胨10g/L，酵母提取物5g/L，氯化钠10g/L，琼脂15g/L)，37℃培养12-18h。

(2)种子培养：用接种环从新鲜活化斜面上挑取2环大肠杆菌于LB培养基中(500mL三角瓶中装50mL LB培养基，封口膜封口)，37℃ 220r/min振荡培养6-8h至OD₆₀₀约为2-3。

(3)摇瓶分批发酵培养：将种子培养液按10％的接种量接入含有卡纳抗性发酵基本培养基中(500mL三角瓶，装液量为50mL，封口膜封口)，37℃ 220r/min振荡培养进行苯丙氨酸分批发酵。发酵培养基如下：

表4.苯丙氨酸发酵培养基配方

发酵结束后，10000rpm离心10min取出上清，利用液相进行检测，检测方法如下：

HPLC水相：去离子水，0.22μm孔径的水系微孔过滤膜过滤，超声30min。

HPLC盐相：色谱级NaH₂PO₃ 6.218g溶解于1L去离子水中，用0.22μm孔径的水系微孔过滤膜过滤，超声30min。

HPLC有机相：色谱级甲醇、色谱级乙腈、去离子水体积比为4.5:4.5:1，用0.22μm有机系溶剂微孔过滤膜过滤，超声30min。

HPLC程序采用梯度洗脱，洗脱程序为：

表5.HPLC梯度洗脱程序

发酵结束后对所有的工程菌株进行苯丙氨酸产量的检测。发酵结果见图2。从结果可以看出，与出发菌株比较，含有大肠杆菌编码异柠檬酸脱氢酶激酶突变基因aceK突变基因的大肠杆菌工程菌株后，苯丙氨酸的产量提高了12.1％，说明该修饰对于大肠杆菌生产苯丙氨酸具有明显的提升作用。

实施例5.色氨酸菌株Kw002和Kw002-k摇瓶发酵

大肠杆菌高产色氨酸菌株Kw002和Kw002-k的摇瓶发酵工艺如下：

(1)斜面活化培养：从-80℃冰箱取出保藏菌种划线于含有四环素抗性的固体LB培养基，37℃培养12-18h。

(2)种子培养：用接种环从新鲜活化斜面上挑取2环大肠杆菌于LB培养基中(500mL三角瓶中装50mL LB培养基，封口膜封口)，37℃ 220r/min振荡培养6-8h，OD₆₀₀约为2-3。

(3)摇瓶分批发酵培养：将种子培养液按10％的接种量接入含有四环素抗性发酵培养基中(500mL三角瓶，装液量为50mL，封口膜封口)，37℃ 220r/min振荡培养进行色氨酸分批发酵。发酵培养基如下。

表6色氨酸发酵培养基配方

HPLC程序采用梯度洗脱，洗脱程序为如表5所示。

发酵结束后对所有的工程菌株进行色氨酸产量的检测。发酵结果见图2。从结果可以看出，与出发菌株比较，含有大肠杆菌编码异柠檬酸脱氢酶激酶突变基因aceK突变基因的大肠杆菌工程菌株后，色氨酸的产量提高了11.1％，说明该修饰对于大肠杆菌生产色氨酸具有明显的提升作用。

本发明的菌株的构建，其步骤的前后顺序不限定，本领域的技术人员按本发明公开的内容达到本发明的目的均属于本发明的保护范围。

本发明中的菌株代号如HDH5，HDH5-k，Kw002和Kw002-k等是为了方便描述，但不应理解为对本发明的限定。

上述方法构建的包含有大肠杆菌编码异柠檬酸脱氢酶激酶突变基因aceK突变基因的工程菌的用途，包含但不局限于苯丙氨酸和色氨酸。

序列表

<110> 中国科学院天津工业生物技术研究所

<120> 异柠檬酸脱氢酶激酶突变体及其在制备芳香族氨基酸中的应用

<130> 2019.11.5

<160> 11

<170> SIPOSequenceListing 1.0

<210> 1

<211> 578

<212> PRT

<213> Escherichia coli

<400> 1

Met Pro Arg Gly Leu Glu Leu Leu Ile Ala Gln Thr Ile Leu Gln Gly

1 5 10 15

Phe Asp Ala Gln Tyr Gly Arg Phe Leu Glu Val Thr Ser Gly Ala Gln

20 25 30

Gln Arg Phe Glu Gln Ala Asp Trp His Ala Val Gln Gln Ala Met Lys

35 40 45

Asn Arg Ile His Leu Tyr Asp His His Val Gly Leu Val Val Glu Gln

50 55 60

Leu Arg Cys Ile Thr Asn Gly Gln Ser Thr Asp Ala Ala Phe Leu Leu

65 70 75 80

Arg Val Lys Glu His Tyr Thr Arg Leu Leu Pro Asp Tyr Pro Arg Phe

85 90 95

Glu Ile Ala Glu Ser Phe Phe Asn Ser Val Tyr Cys Arg Leu Phe Asp

100 105 110

His Arg Ser Leu Thr Pro Glu Arg Leu Phe Ile Phe Ser Ser Gln Pro

115 120 125

Glu Arg Arg Phe Arg Thr Ile Pro Arg Pro Leu Ala Lys Asp Phe His

130 135 140

Pro Asp His Gly Trp Glu Ser Leu Leu Met Arg Val Ile Ser Asp Leu

145 150 155 160

Pro Leu Arg Leu Arg Trp Gln Asn Lys Ser Arg Asp Ile His Tyr Ile

165 170 175

Ile Arg His Leu Thr Glu Thr Leu Gly Thr Asp Asn Leu Ala Glu Ser

180 185 190

His Leu Gln Val Ala Asn Glu Leu Phe Tyr Arg Asn Lys Ala Ala Trp

195 200 205

Leu Val Gly Lys Leu Ile Thr Pro Ser Gly Thr Leu Pro Phe Leu Leu

210 215 220

Pro Ile His Gln Thr Asp Asp Gly Glu Leu Phe Ile Asp Thr Cys Leu

225 230 235 240

Thr Thr Thr Ala Glu Ala Ser Ile Val Phe Gly Phe Ala Arg Ser Tyr

245 250 255

Phe Met Val Tyr Ala Pro Leu Pro Ala Ala Leu Val Glu Trp Leu Arg

260 265 270

Glu Ile Leu Pro Gly Lys Thr Thr Ala Glu Leu Tyr Met Ala Ile Gly

275 280 285

Cys Gln Lys His Ala Lys Thr Glu Ser Tyr Arg Glu Tyr Leu Val Tyr

290 295 300

Leu Gln Gly Cys Asn Glu Gln Phe Ile Glu Ala Pro Gly Ile Arg Gly

305 310 315 320

Met Val Met Leu Val Phe Thr Leu Pro Gly Phe Asp Arg Val Phe Lys

325 330 335

Val Ile Lys Asp Arg Phe Ala Pro Gln Lys Glu Met Ser Ala Ala His

340 345 350

Val Arg Ala Cys Tyr Gln Leu Val Lys Glu His Asp Arg Val Gly Arg

355 360 365

Met Ala Asp Thr Gln Glu Phe Glu Asn Phe Val Leu Glu Lys Arg His

370 375 380

Ile Ser Pro Ala Leu Met Glu Leu Leu Leu Gln Glu Ala Ala Glu Lys

385 390 395 400

Ile Thr Asp Leu Gly Glu Gln Ile Val Ile Arg His Leu Tyr Ile Glu

405 410 415

Arg Arg Met Val Pro Leu Asn Ile Trp Leu Glu Gln Val Glu Gly Gln

420 425 430

Gln Leu Arg Asp Ala Ile Glu Glu Tyr Gly Asn Ala Ile Arg Gln Leu

435 440 445

Ala Ala Ala Asn Ile Phe Pro Gly Asp Met Leu Phe Lys Asn Phe Gly

450 455 460

Val Thr Arg His Gly Arg Val Val Phe Tyr Asp Tyr Asp Glu Ile Cys

465 470 475 480

Tyr Met Thr Glu Val Asn Phe Arg Asp Ile Pro Pro Pro Arg Tyr Pro

485 490 495

Glu Asp Glu Leu Ala Ser Glu Pro Trp Tyr Ser Val Ser Pro Gly Asp

500 505 510

Val Phe Pro Glu Glu Phe Arg His Trp Leu Cys Ala Asp Pro Arg Ile

515 520 525

Gly Pro Leu Phe Glu Glu Met His Ala Asp Leu Phe Arg Ala Asp Tyr

530 535 540

Trp Arg Ala Leu Gln Asn Arg Ile Arg Glu Gly His Val Glu Asp Val

545 550 555 560

Tyr Ala Tyr Arg Arg Arg Gln Arg Phe Ser Val Arg Tyr Gly Glu Met

565 570 575

Leu Phe

<210> 2

<211> 578

<212> PRT

<213> Escherichia coli

<400> 2

Met Pro Arg Gly Leu Glu Leu Leu Ile Ala Gln Thr Ile Leu Gln Gly

1 5 10 15

Phe Asp Ala Gln Tyr Gly Arg Phe Leu Lys Val Thr Ser Gly Ala Gln

20 25 30

Gln Arg Phe Glu Gln Ala Asp Trp His Ala Val Gln Gln Ala Met Lys

35 40 45

Asn Arg Ile His Leu Tyr Asp His His Val Gly Leu Val Val Glu Gln

50 55 60

Leu Arg Cys Ile Thr Asn Gly Gln Ser Thr Asp Ala Ala Phe Leu Leu

65 70 75 80

Arg Val Lys Glu His Tyr Thr Arg Leu Leu Pro Asp Tyr Pro Arg Phe

85 90 95

Glu Ile Ala Glu Ser Phe Phe Asn Ser Val Tyr Cys Arg Leu Phe Asp

100 105 110

His Arg Ser Leu Thr Pro Glu Arg Leu Phe Ile Phe Ser Ser Gln Pro

115 120 125

Glu Arg Arg Phe Arg Thr Ile Pro Arg Pro Leu Ala Lys Asp Phe His

130 135 140

Pro Asp His Gly Trp Glu Ser Leu Leu Met Arg Val Ile Ser Asp Leu

145 150 155 160

Pro Leu Arg Leu Arg Trp Gln Asn Lys Ser Arg Asp Ile His Tyr Ile

165 170 175

Ile Arg His Leu Thr Glu Thr Leu Gly Thr Asp Asn Leu Ala Glu Ser

180 185 190

His Leu Gln Val Ala Asn Glu Leu Phe Tyr Arg Asn Lys Ala Ala Trp

195 200 205

Leu Val Gly Lys Leu Ile Thr Pro Ser Gly Thr Leu Pro Phe Leu Leu

210 215 220

Pro Ile His Gln Thr Asp Asp Gly Glu Leu Phe Ile Asp Thr Cys Leu

225 230 235 240

Thr Thr Thr Ala Glu Ala Ser Ile Val Phe Gly Phe Ala Arg Ser Tyr

245 250 255

Phe Met Val Tyr Ala Pro Leu Pro Ala Ala Leu Val Glu Trp Leu Arg

260 265 270

Glu Ile Leu Pro Gly Lys Thr Thr Ala Glu Leu Tyr Met Ala Ile Gly

275 280 285

Cys Gln Lys His Ala Lys Thr Glu Ser Tyr Arg Glu Tyr Leu Val Tyr

290 295 300

Leu Gln Gly Cys Asn Glu Gln Phe Ile Glu Ala Pro Gly Ile Arg Gly

305 310 315 320

Met Val Met Leu Val Phe Thr Leu Pro Gly Phe Asp Arg Val Phe Lys

325 330 335

Val Ile Lys Asp Arg Phe Ala Pro Gln Lys Glu Met Ser Ala Ala His

340 345 350

Val Arg Ala Cys Tyr Gln Leu Val Lys Glu His Asp Arg Val Gly Arg

355 360 365

Met Ala Asp Thr Gln Glu Phe Glu Asn Phe Val Leu Glu Lys Arg His

370 375 380

Ile Ser Pro Ala Leu Met Glu Leu Leu Leu Gln Glu Ala Ala Glu Lys

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Ile Thr Asp Leu Gly Glu Gln Ile Val Ile Arg His Leu Tyr Ile Glu

405 410 415

Arg Arg Met Val Pro Leu Asn Ile Trp Leu Glu Gln Val Glu Gly Gln

420 425 430

Gln Leu Arg Asp Ala Ile Glu Glu Tyr Gly Asn Ala Ile Arg Gln Leu

435 440 445

Ala Ala Ala Asn Ile Phe Pro Gly Asp Met Leu Phe Lys Asn Phe Gly

450 455 460

Val Thr Arg His Gly Arg Val Val Phe Tyr Asp Tyr Asp Glu Ile Cys

465 470 475 480

Tyr Met Thr Glu Val Asn Phe Arg Asp Ile Pro Pro Pro Arg Tyr Pro

485 490 495

Glu Asp Glu Leu Ala Ser Glu Pro Trp Tyr Ser Val Ser Pro Gly Asp

500 505 510

Val Phe Pro Glu Glu Phe Arg His Trp Leu Cys Ala Asp Pro Arg Ile

515 520 525

Gly Pro Leu Phe Glu Glu Met His Ala Asp Leu Phe Arg Ala Asp Tyr

530 535 540

Trp Arg Ala Leu Gln Asn Arg Ile Arg Glu Gly His Val Glu Asp Val

545 550 555 560

Tyr Ala Tyr Arg Arg Arg Gln Arg Phe Ser Val Arg Tyr Gly Glu Met

565 570 575

Leu Phe

<210> 3

<211> 1737

<212> DNA

<213> Escherichia coli

<400> 3

atgccgcgtg gcctggaatt attgattgct caaaccattt tgcaaggctt cgatgctcag 60

tatggtcgat tcctcaaagt gacctccggt gcgcagcagc gtttcgaaca ggccgactgg 120

catgctgtcc agcaggcgat gaaaaaccgt atccatcttt acgatcatca cgttggtctg 180

gtcgtggagc aactgcgctg cattactaac ggccaaagta cggacgcggc atttttacta 240

cgtgttaaag agcattacac ccggctgttg ccggattacc cgcgcttcga gattgcggag 300

agctttttta actccgtgta ctgtcggtta tttgaccacc gctcgcttac tcccgagcgg 360

ctttttatct ttagctctca gccagagcgc cgctttcgta ccattccccg cccgctggcg 420

aaagactttc accccgatca cggctgggaa tctctactga tgcgcgttat cagcgaccta 480

ccgctgcgcc tgcgctggca gaataaaagc cgtgacatcc attacattat tcgccatctg 540

acggaaacgc tggggacaga caacctcgcg gaaagtcatt tacaggtggc gaacgaactg 600

ttttaccgca ataaagccgc ctggctggta ggcaaactga tcacaccttc cggcacattg 660

ccatttttgc tgccgatcca ccagacggac gacggcgagt tatttattga tacctgcctg 720

acgacgaccg ccgaagcgag cattgttttt ggctttgcgc gttcttattt tatggtttat 780

gcgccgctgc ccgcagcgct ggtcgagtgg ctacgggaaa ttctgccagg taaaaccacc 840

gctgaattgt atatggctat cggctgccag aagcacgcca aaaccgaaag ctaccgcgaa 900

tatctcgttt atctacaggg ctgtaatgag cagttcattg aagcgccggg tattcgtgga 960

atggtgatgt tggtgtttac gctgccgggc tttgatcggg tattcaaagt catcaaagac 1020

aggttcgcgc cgcagaaaga gatgtctgcc gctcacgttc gtgcctgcta tcaactggtg 1080

aaagagcacg atcgcgtggg ccgaatggcg gacacccagg agtttgaaaa ctttgtgctg 1140

gagaagcggc atatttcccc ggcattaatg gaattactgc ttcaggaagc agcggaaaaa 1200

atcaccgatc tcggcgaaca aattgtgatt cgccatcttt atattgagcg gcggatggtg 1260

ccgctcaata tctggctgga acaagtggaa ggtcagcagt tgcgcgacgc cattgaagaa 1320

tacggtaacg ctattcgcca gcttgccgct gctaacattt tccctggcga catgctgttt 1380

aaaaacttcg gtgtcacccg tcacgggcgt gtggtttttt atgattacga tgaaatttgc 1440

tacatgacgg aagtgaattt ccgcgacatc ccgccgccgc gctatccgga agacgaactt 1500

gccagcgaac cgtggtacag cgtctcgccg ggcgatgttt tcccggaaga gtttcgccac 1560

tggctatgcg ccgacccgcg tattggtccg ctgtttgaag agatgcacgc cgacctgttc 1620

cgcgctgatt actggcgcgc actacaaaac cgcatacgtg aagggcatgt ggaagatgtt 1680

tatgcgtatc ggcgcaggca aagatttagc gtacggtatg gggagatgct tttttga 1737

<210> 4

<211> 36

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<400> 4

aatccatggg cctgtactgg cgcgtcgctt tgcaca 36

<210> 5

<211> 29

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<400> 5

ccggaggtca ctttgaggaa tcgaccata 29

<210> 6

<211> 28

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<400> 6

tatggtcgat tcctcaaagt gacctccg 28

<210> 7

<211> 29

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<400> 7

ccattcacag gcaggtatca ataaataac 29

<210> 8

<211> 32

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<400> 8

gatacctgcc tgtgaatgga agcttggatt ct 32

<210> 9

<211> 39

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<400> 9

tactgagcat cgaagccttg gctaagatct gactccata 39

<210> 10

<211> 46

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<400> 10

caaggcttcg atgctcagta gttttagagc tagaaatagc aagtta 46

<210> 11

<211> 35

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<400> 11

cgccagtaca ggcccatgga ttcttcgtct gtttc 35

Claims

1.一种异柠檬酸脱氢酶激酶的突变体，其特征在于，其氨基酸序列在如SEQ ID NO：1所示氨基酸序列的第26位氨基酸突变为K。

2.如权利要求1所述的异柠檬酸脱氢酶激酶的突变体，其特征在于，其氨基酸序列如SEQ ID NO：2所示。

3.编码如权利要求1或2所述异柠檬酸脱氢酶激酶的突变体的编码基因。

4.如权利要求3所述的编码基因，其特征在于，其核苷酸序列如SEQ ID NO：3所示。

5.核苷酸序列如SEQ ID NO：3所示的异柠檬酸脱氢酶激酶的突变体的编码基因在制备苯丙氨酸或色氨酸中的应用。

6.含权利要求4所述的编码基因的大肠杆菌。

7.如权利要求6所述的大肠杆菌，其特征在于，所述的编码基因位于质粒或染色体中。