CN111172055B - 副干酪乳杆菌lhz-1及其在去除脱氧雪腐镰刀菌烯醇中的应用 - Google Patents

副干酪乳杆菌lhz-1及其在去除脱氧雪腐镰刀菌烯醇中的应用 Download PDF

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Abstract

本发明公开了副干酪乳杆菌LHZ‑1及其在去除脱氧雪腐镰刀菌烯醇中的应用，通过筛选得出一种去除脱氧雪腐镰刀菌烯醇（DON）的副干酪乳杆菌LHZ‑1，其在固体发酵培养过程中能够有效地去除DON，特别是应用于麦麸发酵过程中，不仅可以去除麦麸中的DON，还可以提高麦麸中粗蛋白以及膳食纤维的含量，改善麦麸适口性。

Description

副干酪乳杆菌LHZ-1及其在去除脱氧雪腐镰刀菌烯醇中的 应用
技术领域
本发明涉及一株副干酪乳杆菌LHZ-1及其在去除脱氧雪腐镰刀菌烯醇中的应用，属于食品安全中真菌毒素脱毒领域。
背景技术
脱氧雪腐镰刀菌烯醇（DON）主要是由镰刀菌属产生的一种真菌毒素，在小麦、玉米、大麦、燕麦等谷物中广泛存在。DON污染不仅会降低粮食的品质，造成了巨大的经济损失，而且人和动物长期摄入DON污染的谷物会对健康造成极大的危害。目前，去除DON的方法主要有物理、化学和生物方法三大类。与传统的物理、化学方法相比，生物脱毒有着作用条件温和、效率高、特异性强、对饲料和环境无污染等优势，已成为食品安全研究的热点。关于DON的生物脱毒目前主要分为两类。一是利用微生物生长过程中产生的代谢产物将DON转化为无毒的或者毒性较低的物质；二是利用微生物细胞壁或菌丝体的吸附作用去除DON。但是由于降解菌的筛选较为困难，不能直接应用于食品中，且降解酶的分离纯化较为复杂。
发明内容
本发明的目的在于克服以上现有技术的不足而提供一种副干酪乳杆菌LHZ-1及其在去除脱氧雪腐镰刀菌烯醇中的应用，在固体发酵培养中能够有效去除DON，而应用于麦麸固态发酵中不仅可以去除麦麸中的DON，还可以提高麦麸中粗蛋白以及膳食纤维的含量，改善麦麸适口性，为饲料以及谷物原料中霉菌毒素的脱毒提供了材料。
技术方案
本发明提供了一种副干酪乳杆菌（Lactobacillus paracasei）LHZ-1，保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，保藏号为CGMCC NO.17309，保藏日期为2019年3月7日，保藏地址为北京市朝阳区北辰西路1号院3号，中国科学院微生物研究所。
以上所述的副干酪乳杆菌LHZ-1，其16S rDNA序列如SEQ ID NO.1所示。
本发明又提供了以上任一项所述的副干酪乳杆菌LHZ-1在去除DON中的应用。
以上所述的应用，通过将副干酪乳杆菌LHZ-1进行发酵培养，通过发酵培养去除DON。
进一步地，所述的应用，发酵培养过程中培养温度为25-37℃。
更进一步的，最佳培养温度为37℃。
以上所述的应用，发酵培养过程中的培养pH值为4-7。
更进一步的，最佳培养pH为7。
进一步地，以上所述的应用，发酵培养前对副干酪乳杆菌LHZ-1进行高温处理，处理温度为100℃-121℃，处理时间20-30分钟。
更进一步的，较佳的高温处理过程为（1）121℃，处理20 min；（2）100℃，处理30min。
进一步地，以上所述的应用，发酵培养前还可以对副干酪乳杆菌LHZ-1进行HCl处理。
更进一步的，较佳的HCl处理过程为在菌体中加入4 mol/L的HCl，于37℃摇床中震荡处理1 h，完毕后，8000 r/min，4℃，离心10 min，弃上清，加入生理盐水洗涤。
进一步地，以上所述的应用，发酵培养前还可以对副干酪乳杆菌LHZ-1进行尿素处理。
更进一步的，较佳的尿素处理过程为在菌体中加入8 mol/L的尿素，于37℃处理6h。
进一步地，以上所述的应用，发酵培养前还可以对副干酪乳杆菌LHZ-1进行TCA处理。
更进一步的，较佳的TCA处理过程为将副干酪乳杆菌活化后，离心收集菌体，生理盐水洗涤后，调整菌体浓度为1010 CFU/mL。收集的菌株中加入10%TCA，于沸水中煮沸15min。
进一步地，以上提供的副干酪乳杆菌LHZ-1在去除麦麸中的DON具有更优的应用。
本发明筛选出了一株能够高效去除DON的乳酸菌，并对其进行种属鉴定，将其命名为副干酪乳杆菌LHZ-1。
将本发明提供的副干酪乳杆菌LHZ-1应用于固态发酵中去除DON，并进一步应用于麦麸中进行固态发酵，经副干酪乳杆菌LHZ-1发酵后的麦麸，有效降低了麦麸中的DON，对DON去除率能够达到51.04%，且麦麸中粗蛋白含量由9.26%提高至12.06%，可溶性膳食纤维由原来的28.10 mg/g增加至34.45 mg/g，发酵后的麸皮质地松软，有怡人的气味的产生，能够改善麦麸的香味以及适口性。
附图说明
图1为副干酪乳杆菌（Lactobacillus paracasei）LHZ-1去除DON的高效液相图谱；
A：空白对照,未接种副干酪乳杆菌；B：副干酪乳杆菌LHZ-1共培养后培养基中DON含量变化的液相检测图谱；
图2为副干酪乳杆菌LHZ-1吸附DON的激光共聚焦显微镜扫描图；
A ：空白对照，未与荧光标记的DON作用，B：副干酪乳杆菌LHZ-1与荧光标记的DON共培养后的扫描图。
具体实施方式：
实施例1：副干酪乳杆菌（Lactobacillus paracasei）LHZ-1的筛选与鉴定
副干酪乳杆菌（Lactobacillus paracasei）LHZ-1的筛选与鉴定：从150株乳酸菌中筛选到一株具有去除DON的乳酸菌，采用OMEGA细菌基因组试剂盒提取该乳酸菌的全基因组，并采用通用引物27F和1492R对该乳酸菌的16S rDNA片断进行PCR扩增，扩增产物送往生工生物测序，其序列如SEQ ID NO.1所示。
实施例2：副干酪乳杆菌（Lactobacillus paracasei）LHZ-1对DON的耐受力
DON对细胞有一定的毒害作用，因此乳酸菌对DON的高耐受能力是应用于实践的前提条件。副干酪乳杆菌（Lactobacillus paracasei）LHZ-1活化2次后，以2%的接种量分别接种于含DON浓度为0、20、50、100、200 μg/mL的MRS液体培养基中，37℃培养箱中培养24 h，每隔2 h测量OD600。结果表明DON浓度为20时，菌的生长情况与不加DON的对照组基本吻合，说明浓度为20 μg/mL的DON对LHZ-1的生长没有抑制作用。DON浓度分别为50 μg/mL、100 μg/mL、200 μg/mL时，LHZ-1的生长受到轻微的抑制，但在12 h以前，影响作用不大，12 h后，抑制作用较为明显。由此可见LHZ-1对中低浓度的DON有一定的耐受能力。当DON浓度为500 μg/mL时，菌体生长缓慢，抑制作用十分明显。图1为在培养基中接种副干酪乳杆菌（Lactobacillus paracasei）LHZ-1与不接种的培养基中DON含量的高效液相图谱，可以看出，不接种副干酪乳杆菌（Lactobacillus paracasei）LHZ-1（图1中A）与接种副干酪乳杆菌（Lactobacillus paracasei）LHZ-1（图1中B）的出峰有明显的差异，在图1B中显示出现了较多的其他峰以及杂峰，而DON的峰面积相较于对照组明显变小。
实施例3：副干酪乳杆菌（Lactobacillus paracasei）LHZ-1去除DON的作用条件的研究
（1）副干酪乳杆菌（Lactobacillus paracasei）LHZ-1的菌体浓度对去除DON的影响：
副干酪乳杆菌活化后，离心收集菌体，生理盐水洗涤2次后，分别调整菌体浓度为5.0×108、1.0×109、5.0×109、1.0×1010 CFU/mL以上，加入DON，使其终浓度为50 μg/mL，分别放置于37℃培养24 h，离心取样，过滤膜，HPLC检测DON的去除率。
结果表明随着菌体浓度的升高，副干酪乳杆菌（Lactobacillus paracasei）LHZ-1对DON的去除率逐渐增加，当菌体浓度达到1.0×1010 CFU/mL时，去除率高达40%左右。由此可见，菌体浓度对DON去除率的影响很大。
（2）温度对副干酪乳杆菌（Lactobacillus paracasei）LHZ-1去除DON的影响：
副干酪乳杆菌活化后，离心收集菌体，生理盐水洗涤2次后，调整菌体浓度为1.0×1010 CFU/mL以上，重悬于生理盐水中，加入终浓度为50 μg/mL的DON，分别放置于25、30、33、37、40℃培养24 h，离心取样，过滤膜，HPLC检测DON的去除率。
结果表明温度为25℃、30℃时，DON去除率在15%左右，随着温度的升高，去除率增加，在37℃时，去除率达到最大值35.39%。因此，37℃为副干酪乳杆菌去除DON的最适温度。
（3）pH对副干酪乳杆菌（Lactobacillus paracasei）LHZ-1去除DON的影响：
副干酪乳杆菌活化后，离心收集菌体，生理盐水洗涤2次后，调整菌体浓度为1010CFU/mL以上，分别重悬于pH为4、5、6、7、8的生理盐水中，加入DON，使其终浓度为50 μg/mL，37℃培养24 h，离心取样，过滤膜，HPLC检测DON的去除率。
结果表明在pH值为4、5时，去除率较低，在20%左右，随着pH的升高，去除率增加，在pH为7时，去除率达到最大值40.4%。
实施例3：副干酪乳杆菌（Lactobacillus paracasei）LHZ-1去除DON的机理的研究
（1）发酵上清液、细胞破碎液、细胞碎片对DON的去除作用
副干酪乳杆菌活化2次后，以2%的接种量转接于100 mL MRS培养基中，经48 h静置培养后，8000 r/min，4 ℃，离心15 min，取上清，过0.45 μm滤膜，与DON共培养，HPLC检测。沉淀用pH 7.2的磷酸盐缓冲盐洗涤，并重悬于缓冲液中，超声波破碎（400 w，工作5 S，间歇5 S）30 min，12000 r/min，4℃，离心20 min，取上清即胞内物与DON作用，沉淀即为细胞壁，重悬于PBS中，与DON作用，HPLC检测DON的残留量。
结果表明副干酪乳杆菌（Lactobacillus paracasei）LHZ-1的细胞壁对DON去除率为40.7%，而发酵上清液、细胞破碎液对DON的去除率均低于10%，远低于细胞壁对DON的去除。初步判断LHZ-1对DON的去除主要与细胞壁的吸附有关。
（2）不同处理方式对副干酪乳杆菌去除DON的影响
a.高温处理
副干酪乳杆菌活化后，离心收集菌体，生理盐水洗涤2次，调整菌体浓度为1010CFU/mL。将菌体进行如下处理：（1）121℃，处理20 min；（2）100℃，处理30 min。处理完后，等待菌体冷却，8000 r/min，4℃，离心10 min，获得菌体，并重悬于生理盐水中，与DON共培养，DON的终浓度为50 μg/mL，于37℃恒温培养箱培养24 h，以不添加菌体的体系为空白对照。HPLC检测检测DON的残留量。
结果表明与未经处理的菌体相比，121℃加热20min以及100℃加热30min处理的菌体对DON去除效果更好。
b. HCl处理
副干酪乳杆菌活化后，离心收集菌体，生理盐水洗涤2次，调整菌体浓度为1010CFU/mL。向收集的菌体中加入5 mL 4 mol/L的HCl，于37℃摇床中震荡处理1 h。处理完毕后，8000 r/min，4℃，离心10 min，弃上清，加入5 mL生理盐水洗涤3次，并重悬于生理盐水中，与DON共培养， DON的终浓度为50 μg/mL，于37℃恒温培养箱培养24 h，以不添加菌体的体系为空白对照。HPLC检测DON的残留量。
结果表明经过HCl处理后的菌体对DON的去除率比对照组要高。
c.尿素处理
副干酪乳杆菌活化后，离心收集菌体，生理盐水洗涤2次，调整菌体浓度为1010CFU/mL。收集的菌体中加入5 mL 8 mol/L的尿素，于37℃处理6 h。处理完毕后，8000 r/min，4℃，离心10 min，弃上清，加入5 mL生理盐水洗涤3次，并重悬于生理盐水中，与DON共培养， DON的终浓度为50 μg/mL，于37℃恒温培养箱培养24 h，以不添加菌体的体系为空白对照。HPLC检测DON的残留量。
结果表明经过尿素处理后的菌体对DON的去除率明显下降。
d.TCA处理
副干酪乳杆菌活化后，离心收集菌体，生理盐水洗涤2次，调整菌体浓度为1010CFU/mL。收集的菌株中加入5 mL 10%TCA，于沸水中煮沸15 min。处理完毕后，8000 r/min，4℃，离心10 min，弃上清，加入5 mL生理盐水洗涤3次，并重悬于生理盐水中，与DON共培养，DON的终浓度为50 μg/mL，于37℃恒温培养箱培养24 h，以不添加菌体的体系为空白对照。HPLC检测DON的残留量。
结果表明经过HCl处理后的菌体对DON的去除率比对照组要高。
e.溶菌酶处理
副干酪乳杆菌活化后，离心收集菌体，生理盐水洗涤2次，调整菌体浓度为1010CFU/mL。收集的菌体中加入5 mL溶菌酶，溶菌酶的终浓度为20 mg/mL。于37℃震荡处理18h。处理完毕后，8000 r/min，4℃，离心10 min，弃上清，加入5 mL生理盐水洗涤3次，并重悬于生理盐水中，与DON共培养，DON的终浓度为50 μg/mL，于37℃恒温培养箱培养24 h，以不添加菌体的体系为空白对照。HPLC检测DON的残留量。
结果表明经过溶菌酶处理后的菌体对DON的去除率明显下降。
(3) 激光共聚焦扫描显微镜观察副干酪乳杆菌LHZ-1的细胞壁对DON的吸附作用
乳酸菌活化至对数期，离心收集菌体。菌体于121℃下灭活20 min。称取经AMCA（蓝色荧光）标记的DON，少量DMSO溶解，加入无菌水配制成1 mg/mL溶液。收集的菌体重悬于pH7.2的PBS中，加入DON-AMCA溶液，放置于37℃培养箱中，避光反应18 h。培养完成后，5000r/min，离心5 min，并用PBS洗涤2次，以除去染料的背景干扰。取出5 μL溶液均匀涂抹于载玻片上，盖上盖玻片，于激光共聚焦显微镜下观察。以不加DON-AMCA的菌体为空白对照。结果表明副干酪乳杆菌LHZ-1细胞壁周围有明显的蓝色荧光（图2B原图中菌体颜色带有蓝绿色荧光），而细胞内部的荧光亮度远小于细胞壁，表明DON主要吸附在菌体的细胞壁上，更加直观地表明副干酪乳杆菌去除DON主要是细胞壁的吸附作用（见图2）。
（4）菌体细胞壁磷壁酸、肽聚糖分别对DON的作用
按照方法（1）得到副干酪乳杆菌细胞壁，悬浮于10% TCA 中，4℃下搅拌16 h，10000 r/min 4℃离心 20 min ，分别收集上清与沉淀。其中，上清液加入2倍体积的预冷乙醇，4℃醇析24h，离心收集沉淀并用无菌水洗涤2次，提取得到磷壁酸。另外，将TCA处理后得到的沉淀重悬于10% TCA，沸水浴搅拌处理10min，处理完毕后迅速冷却至室温，10000 r/min 4℃离心 20 min，反复洗涤数次直至无TCA存在，提取得到肽聚糖。将磷壁酸、肽聚糖分别重悬于无菌水中，添加终浓度为50 μg/mL DON，HPLC检测。
结果表明副干酪乳杆菌细胞壁磷壁酸对DON的去除能力较差，去除率为11.2%，而肽聚糖对DON的去除率为43.5%，表明细胞壁对DON的吸附位点为肽聚糖。
（5）吸附动力学研究
乳酸菌活化后，于4 ℃，5000 r/min条件下，离心10 min，收集菌体并调整菌体含量至1010 CFU/mL以上，用生理盐水洗涤2次，与DON作用（终浓度为50 μg/mL），于0、0.5、1、2、4、6、8、10、12、14、16、18、20、22、24 h取样，HPLC检测DON的残留量。以反应时间为横坐标，DON去除率为纵坐标，绘制吸附平衡曲线，以确定吸附解吸附达到平衡所需要的时间。结果表明吸附过程分为3个阶段，第一阶段：快速吸附期，在2 h以前，吸附率随着时间的延长显著增加；第二阶段：缓慢吸附期，在2 h-20 h内，去除率缓慢增加；第三阶段：稳定吸附期，在20 -24 h时，去除率不再增加，表明此时副干酪乳杆菌对DON的吸附趋于饱和。
（6）吸附热力学研究
乳酸菌活化后，于4℃，5000 r/min条件下，离心10 min，收集菌体并调整菌体含量至1010 CFU/mL以上，用生理盐水洗涤2次，重悬于生理盐水中。分别与终浓度为6.25、12.5、25、50、100、200 μg/mL的DON作用18 h。HPLC检测DON的残留量。以DON的平衡浓度为横坐标，DON的吸附量为纵坐标，使用Origin 8.5软件进行拟合，得到吸附等温线。结果表明由吸附等温线可知，副干酪乳杆菌吸附对DON的吸附等温线是非线性的，吸附方程符合Langmuir方程，Y=（50.5×0.0067X1.428）/(1+0.0067X1.428)。其中R2=0.9929，表明拟合效果较好，根据该方程可以得出副干酪乳杆菌对DON的最大吸附量为50.5 μg/mL。
（7）吸附稳定性试验
乳酸菌活化后，4℃，5000 r/min，离心10 min收集菌体，生理盐水洗涤2次以除去培养基的干扰。其中，将另一组菌体于121℃下灭活20 min。加入终浓度为50 μg/mL的DON，放置于37℃培养箱中，反应18 h，10000 r/min，离心10 min，弃上清。沉淀分别用1mL的无菌水和甲醇重悬，37℃下孵育10 min，10000 r/min，离心10 min，收集上清，过0.22 μm滤膜，HPLC检测。该操作重复3次。结果表明活菌经第一次水洗后，解吸附率为27.79%，灭活菌株为44.2%，经过甲醇三次洗涤后，有46.3%的DON从活菌被洗脱下来，而有98.6%DON从热灭活的菌体上洗脱下来，表明活菌的吸附稳定性高于灭活菌株。DON可以被有机溶剂和水洗涤下来，且有机溶剂的洗脱能力要强于水，说明副干酪乳杆菌与DON是通过物理方式结合，而不是生物降解。
实施例4：副干酪乳杆菌（Lactobacillus paracasei）LHZ-1在去除麦麸中DON的固态发酵过程如下：
（1）初始水分对麸皮发酵的影响
分别采用料液比为1:0.4、1:0.6、1:0.8、1:1、1:1.2、1:1.4的麸皮发酵培养基，以9%的接种量，在37℃下培养48 h。发酵过程中每隔12 h，搅拌翻动一次，防止结块。发酵完成后，测量活菌数、DON的去除率、粗蛋白含量。结果表明随着初始水分含量的增加，活菌数、DON去除率、粗蛋白含量均呈现先增加后下降的趋势。在料水比为1:0.8时，活菌数和DON的去除率均达到最大值。
（2）装样量对麸皮发酵的影响
向三角瓶中分别加入10、20、40、60、80、100 g的麸皮，以1:0.8的含水量，9%的接种量，在37℃下培养48 h(麦麸发酵培养基中不添加任何其他成分)。发酵过程中每隔12 h，搅拌翻动一次，防止结块。发酵完成后，测量活菌数、DON的去除率、粗蛋白含量。结果表明随着装样量的增加，活菌数、DON去除率均呈现先增加后下降的趋势。在装样量为40 g/250 mL，活菌数、DON去除率和粗蛋白含量均达到最大值。
（3）发酵温度对发酵麸皮的影响
将料液比为1:0.8的麸皮发酵培养基，以9%的接种量，分别置于28、30、33、37、40℃条件下，培养48 h。发酵过程中每隔12 h，搅拌翻动一次，防止结块。发酵完成后，测量DON的去除率、活菌数、粗蛋白的含量。结果表明粗蛋白含量、DON去除率和活菌数三个指标均随温度的增加而呈现先增加后下降的趋势。在37℃时，粗蛋白含量、DON去除率和活菌数都达到最大值。
（4）接种量对发酵麸皮的影响
将料液比为1:0.8的麸皮发酵培养基该发酵培养基只含有麦麸与水，不添加任何其他化学物质，分别接以3%、5%、7%、9%、11%的乳酸菌，在37℃下培养48 h。发酵过程中每隔12 h，搅拌翻动一次，防止结块。发酵完成后，测量DON的去除率、活菌数、粗蛋白的含量。结果表明活菌数随着接种量的增加而增加，在接种量9%时达到最大值，随后下降。DON去除率、粗蛋白含量随着接种量的增加变化差异不明显。
（5）初始pH对发酵麸皮的影响
调节培养基初始pH分别为4.0、5.0、6.0、7.0、8.0，以1:0.8的含水量，9%的接种量，在37℃下培养48 h。发酵过程中每隔12 h，搅拌翻动一次，防止结块。发酵完成后，测量DON的去除率、活菌数、粗蛋白的含量。结果表明在pH为7时，DON去除率、粗蛋白含量达到最大值。而在pH为6时，活菌数达到最大值，但与pH为7时的活菌数差异不大。
（6）发酵时间对发酵麸皮的影响
将料液比为1:0.8的麸皮发酵培养基，以9%的接种量，在37℃下分别培养12、24、36、48、60 h。发酵过程中每隔12 h，搅拌翻动一次，防止结块。定点取样测量DON的去除率、活菌数、粗蛋白的含量。结果表明随着发酵时间的延长，DON去除率和活菌数三个指标均随温度的增加而呈现先增加后下降的趋势，其中48 h时达到最大值。
本发明提供的副干酪乳杆菌LHZ-1经固态发酵后，结果表明麦麸中DON去除率能够达到51.04%，粗蛋白含量由9.26%提高至12.06%，可溶性膳食纤维由发酵前的28.10 mg/g增加至34.45 mg/g，pH由发酵前的6.23降至4.36，可以抑制其它病原微生物的生长，发酵后的活菌含量为2.92×108 CFU/mL。固态发酵后，麦麸的营养价值有所提高，麦麸质地变得松软，且伴随着香味物质的产生，改善了麸皮的气味和适口性。
序列表
<110> 南京农业大学
<120> 副干酪乳杆菌LHZ-1及其在去除脱氧雪腐镰刀菌烯醇中的应用
<150> 2019101944200
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<210> 1
<211> 1473
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<213> 副干酪乳杆菌(Lactobacillus paracasei)
<400> 1
cgcactgcgg cgtgcctata catgcaagtc gaacgagttc tcgttgatga tcggtgcttg 60
caccgagatt caacatggaa cgagtggcgg acgggtgagt aacacgtggg taacctgccc 120
ttaagtgggg gataacattt ggaaacagat gctaataccg catagatcca agaaccgcat 180
ggttcttggc tgaaagatgg cgtaagctat cgcttttgga tggacccgcg gcgtattagc 240
tagttggtga ggtaatggct caccaaggcg atgatacgta gccgaactga gaggttgatc 300
ggccacattg ggactgagac acggcccaaa ctcctacggg aggcagcagt agggaatctt 360
ccacaatgga cgcaagtctg atggagcaac gccgcgtgag tgaagaaggc tttcgggtcg 420
taaaactctg ttgttggaga agaatggtcg gcagagtaac tgttgtcggc gtgacggtat 480
ccaaccagaa agccacggct aactacgtgc cagcagccgc ggtaatacgt aggtggcaag 540
cgttatccgg atttattggg cgtaaagcga gcgcaggcgg ttttttaagt ctgatgtgaa 600
agccctcggc ttaaccgagg aagcgcatcg gaaactggga aacttgagtg cagaagagga 660
cagtggaact ccatgtgtag cggtgaaatg cgtagatata tggaagaaca ccagtggcga 720
aggcggctgt ctggtctgta actgacgctg aggctcgaaa gcatgggtag cgaacaggat 780
tagataccct ggtagtccat gccgtaaacg atgaatgcta ggtgttggag ggtttccgcc 840
cttcagtgcc gcagctaacg cattaagcat tccgcctggg gagtacgcgc aaggttgaaa 900
ctcaaaggaa ttgacggggg cccgcacaag cggtggagca tgtggtttaa ttcgaagcaa 960
cgcgaagaac cttaccaggt cttgacatct tttgatcacc tgagagatca ggtttcccct 1020
tcgggggcaa aatgacaggt ggtgcatggt tgtcgtcagc tcgtgtcgtg agatgttggg 1080
ttaagtcccg caacgagcgc aacccttatg actagttgcc agcatttagt tgggcactct 1140
agtaagactg ccggtgacaa accggaggaa ggtggggatg acgtcaaatc atcatgcccc 1200
ttatgacctg ggctacacac gtgctacaat ggatggtaca acgagttgcg agaccgcgag 1260
gtcaagctaa tctcttaaag ccattctcag ttcggactgt aggctgcaac tcgcctacac 1320
gaagtcggaa tcgctagtaa tcgcggatca gcacgccgcg gtgaatacgt tcccgggcct 1380
tgtacacacc gcccgtcaca ccatgagagt ttgtaacacc cgaagccggt ggcgtaaccc 1440
ttttagggag cgagccgtct aagtgacaag tgg 1473

Claims (5)

1.一种副干酪乳杆菌（Lactobacillus paracasei）LHZ-1，保藏号为CGMCC NO.17309。
2.权利要求1所述的副干酪乳杆菌LHZ-1在去除脱氧雪腐镰刀菌烯醇中的应用。
3.根据权利要求2所述的应用，其特征在于，将副干酪乳杆菌LHZ-1进行发酵培养，通过发酵培养去除脱氧雪腐镰刀菌烯醇 。
4.根据权利要求3所述的应用，其特征在于，发酵培养过程中培养温度为25-37℃。
5.根据权利要求3所述的应用，其特征在于，发酵培养过程中的培养pH值为4-7。
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