CN110476811B - 一种提高双线竹芋组培苗质量的方法 - Google Patents

一种提高双线竹芋组培苗质量的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN110476811B
CN110476811B CN201910770745.9A CN201910770745A CN110476811B CN 110476811 B CN110476811 B CN 110476811B CN 201910770745 A CN201910770745 A CN 201910770745A CN 110476811 B CN110476811 B CN 110476811B
Authority
CN
China
Prior art keywords
buds
culture
bud
adventitious
arrowroot
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN201910770745.9A
Other languages
English (en)
Other versions
CN110476811A (zh
Inventor
马文卿
黄国涛
曾日卿
江碧玉
阮燕珠
卢钦旺
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Guangzhou Minghui Landscape Technology Development Co ltd
Original Assignee
Guangzhou Minghui Landscape Technology Development Co ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Guangzhou Minghui Landscape Technology Development Co ltd filed Critical Guangzhou Minghui Landscape Technology Development Co ltd
Priority to CN201910770745.9A priority Critical patent/CN110476811B/zh
Publication of CN110476811A publication Critical patent/CN110476811A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN110476811B publication Critical patent/CN110476811B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01H—NEW PLANTS OR NON-TRANSGENIC PROCESSES FOR OBTAINING THEM; PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES
    • A01H4/00—Plant reproduction by tissue culture techniques ; Tissue culture techniques therefor
    • A01H4/001—Culture apparatus for tissue culture
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01H—NEW PLANTS OR NON-TRANSGENIC PROCESSES FOR OBTAINING THEM; PLANT REPRODUCTION BY TISSUE CULTURE TECHNIQUES
    • A01H4/00—Plant reproduction by tissue culture techniques ; Tissue culture techniques therefor
    • A01H4/008—Methods for regeneration to complete plants

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)

Abstract

本发明涉及双线竹芋种植领域，提供一种提高双线竹芋组培苗质量的方法，用于解决双线竹芋组培苗的易黄叶的问题。本发明提供的一种提高双线竹芋组培苗质量的方法，包括：S11.取双线竹芋母株在地下生长的侧芽，清洗去除基质，除根；S12.将侧芽清洗干净，晾干至表面干燥，消毒灭菌后清洗干净，得到外植体；S13.对外植体进行不定芽诱导培养，至获取不定芽；S14.将诱导出的不定芽进行增殖培养，扩繁到一定数量；S15.将健壮的不定芽分割为单芽，对单芽进行生根培养一定时间后，既得可以移栽的组培苗。培养过程中幼苗成活率高，繁殖效率得到了极大的提高，并可以减少植株黄叶率发生，缩短组培苗移栽后的生长周期。

Description

一种提高双线竹芋组培苗质量的方法
技术领域
本发明涉及双线竹芋种植领域，具体涉及一种提高双线竹芋组培苗质量的方法。
背景技术
双线竹芋（Calathea sanderiana），竹芋科，肖竹芋属多年生常绿草本观叶植物，产地巴西等南美及中美地方。喜温暖、湿润和半荫蔽的环境。叶基生或茎生，叶片呈长椭圆形，主脉两侧有白色带与暗绿色带交互成羽状排列，叶面色彩对比鲜明，由于株型美观、观赏价值高，又具有较强的耐阴性，应用广泛，是著名的观叶植物，市场需求一直保持良好的势头。双线竹芋传统的繁殖方式一般有分株繁殖和扦插繁殖两种方式，但这两种繁殖方式的繁殖系数低，生产速度慢，植株生长不整齐，难以批量生产。
目前的双线竹芋组培技术易产生黄叶现象, 不但影响瓶苗的增殖分化和生根，也造成炼苗移栽后叶片焦枯、小苗成活率低、恢复时间长等问题。
组织培养技术是在人为创造的无菌条件下将生活的离体器官（如根、茎、叶、茎段、原生质体）、组织或细胞置于培养基内，并放在适宜的环境中，进行连续培养以获得细胞、组织或个体的技术。
如何利用组织培养技术快速大量地繁殖出高质量的双线竹芋种苗来解决市场的需求是亟待解决的技术问题。
发明内容
本发明解决的技术问题为解决双线竹芋的易黄叶率发生的问题，提供一种提高双线竹芋组培苗质量的方法。
为了解决上述技术问题，本发明提供的技术方案为：
一种提高双线竹芋组培苗质量的方法，包括：S11.取双线竹芋母株在地下生长的侧芽，清洗去除基质，除根；S12.将侧芽清洗干净，晾干至表面干燥，用酒精擦拭后加入到酒精中灭菌0.1~2min后，再将侧芽加入到次氯酸钠溶液继续灭菌20~60min，清洗干净，得到外植体； S13.对外植体进行不定芽诱导培养，至获取不定芽；S14.去除不定芽的顶部和基部，并将不定芽上长出的新芽分离，得到新芽和原芽，对新芽和原芽进行继代增殖，至获取多个健壮的不定芽，对诱导出的不定芽进行扩繁；S15.将健壮的不定芽分割为单芽，对单芽进行生根培养一定时间后，既得可以移栽的组培苗。
将双线竹芋的母本，多次消毒后依次进行诱导、增殖和生根培养，可以获取大量的双线竹芋的植株，满足市场需求。
培养过程中幼苗成活率高，同样的培养时间内可以获取更多的双线竹芋植株，繁殖效率得到了极大的提高，并可以减少植株黄叶率发生。
优选地，所述S11步骤中，控制双线竹芋母株的基质至干燥需补水的程度时获取双线竹芋母株在地下生长的侧芽，所述侧芽为未完全展叶的侧芽，所述侧芽的长度为5cm。优选截取的部位，可以显著的提高外植体的灭菌效果。
优选地，所述S12步骤中，将侧芽清洗干净，晾干至表面干燥，用75%酒精擦拭，擦拭后侧芽的长度不小于3cm；将侧芽加入到75%的酒精中灭菌0.1~2min后，再将侧芽加入到0.6~0.8%次氯酸钠溶液继续灭菌20~60min，清洗干净，得到外植体。
优选地，所述S13步骤中，剥去1~2层外植体的苞片使得外植体的长度不少于2cm，控制培养温度25~26℃，湿度45~60%，培养光照强度1000~3000Lux，培养时间10h/d，培养40~50d后获得不定芽。其中d为天。
优选地，所述S14步骤中，所述继代增殖为：将不定芽切割，去除不定芽的基部和顶部，将不定芽上长出的新芽分离，得到新芽和原芽；控制培养温度25~26℃，湿度45~60%，培养光照强度1000~3000Lux，光照时间10h/d，培养40~50d；得到多个不定芽，将不定芽切割成2~3个一团，继续进行继代增殖，重复继代增殖15~20次。
优选地，所述S15步骤中，将健壮的不定芽分割为单芽，对单芽进行生根培养；控制培养温度27℃，湿度45~60%，培养光照强度5000Lux，光照时间8h/d，培养20~30d；所述不定芽的高度不小于5cm且为刚展开叶片的正常植株。
优选地，所述S13步骤中进行不定芽诱导培养、S14步骤中进行不定芽增殖培养、S15步骤中进行生根培养过程选用的培养基中包括：NH4NO3 825~1650mg/L、KNO3950~1900mg/L、MgSO4·7H2O 185~740mg/L、KH2PO4 120~170mg/L、CaCl2·2H2O 220~880mg/L、KI0.42~0.83mg/L、H3BO3 3.1~6.2mg/L、MnSO4·4H2O 16.9~33.8mg/L、ZnSO4·7H2O 4.3~8.6mg/L、Na2MoO4·2H2O 0.13~0.25mg/L、CuSO4·5H2O 0.013~0.025mg/L、CoCl2·6H2O0.013~0.025mg/L、FeSO4·7H2O 13.9~55.6mg/L、Na2·EDTA 18.7~74.6mg/L、盐酸硫胺素0.05~0 .1mg/L、烟酸0.2~0.5mg/L、盐酸吡哆醇0.3~0 .5mg/L、甘氨酸1~2mg/L、肌醇50~100mg/L。
优选地，所述S13步骤中，对外植体进行不定芽诱导培养时选用诱导培养基，所述诱导培养基还包括6-苄氨基嘌呤1.0-3.0mg/L、萘乙酸0.1～0.2mg/L、白糖30g/L、卡拉胶5.5g/L。
优选地，所述S14步骤中，进行不定芽增殖培养时选用增殖培养基，所述增殖培养基还包括白糖30g/L、卡拉胶6.2g/L、6-苄氨基嘌呤0.5~1.0mg/L、萘乙酸0.05~0.1mg/L。
优选地，所述S15步骤中，所述生根诱导培养过程中选用生根培养基，所述生根培养基还包括白糖20g/L、卡拉胶7.0g/L、萘乙酸0 .4～0 .5mg/L、活性炭3g/L。
与现有技术相比，本发明具有的有益效果为：培养过程中幼苗成活率高，同样的培养时间内可以获取更多的双线竹芋植株，繁殖效率得到了极大的提高，并可以减少植株黄叶率发生。
本发明将双线竹芋的组培诱导率提高20%，增殖系数达到2-3倍，黄叶率降低至1.5%-3.5%，变异率降低至5.5%，成苗率提高20%-30%，所以本发明的优势在于优化了双线竹芋的组培技术体系，提高双线竹芋组培苗的繁殖系数，降低其黄叶率与变异率，保持双线竹芋组培苗的品质稳定，从而解决优质种苗供不应求的现状
具体实施方式
以下实施列是对本发明的进一步说明，不是对本发明的限制。
实施例1
一种提高双线竹芋组培苗质量的方法，包括：S11.取双线竹芋母株在地下生长的侧芽，清洗去除基质，除根；S12.将侧芽清洗干净，晾干至表面干燥，用酒精擦拭后加入到酒精中灭菌0.5~1min后，再将侧芽中的大芽加入到次氯酸钠溶液继续灭菌40~50min，清洗干净，得到外植体；S13.对外植体进行不定芽诱导培养，至获取不定芽；S14.去除不定芽的顶部和基部，并将不定芽上长出的新芽分离，得到新芽和原芽，对新芽和原芽进行继代增殖，至获取多个健壮的不定芽，对不定芽进行扩繁；S15.将健壮的不定芽分割为单芽，对单芽进行生根培养一定时间后，既得可以移栽的组培苗。所述S11步骤中，控制双线竹芋母株的基质至干燥需补水的程度时获取双线竹芋母株在地下生长的侧芽，所述侧芽为未完全展叶的侧芽，所述侧芽的长度为5cm。所述S12步骤中，将侧芽清洗干净，晾干至表面干燥，用75%酒精擦拭，擦拭后侧芽的长度不小于3cm；将侧芽加入到75%的酒精中灭菌0.5~1min后，再将侧芽加入到0.75%次氯酸钠溶液继续灭菌40~50min，清洗干净，得到外植体。所述S13步骤中，剥去1~2层外植体的苞片使得外植体的长度不少于2cm，控制培养温度25~26℃，湿度50%，培养光照强度2000Lux，培养时间10h/d，培养40~50d后获得不定芽。所述S14步骤中，所述继代增殖为：将不定芽切割，去除不定芽的基部和顶部，将不定芽上长出的新芽分离，得到新芽和原芽；控制培养温度25~26℃，湿度50%，培养光照强度2000Lux，光照时间10h/d，培养40~50d；得到多个不定芽，将不定芽切割成2~3个一团，继续进行继代增殖，重复继代增殖15~20次。所述S15步骤中，将健壮的不定芽分割为单芽，对单芽进行生根培养；控制培养温度27℃，湿度50%，培养光照强度5000Lux，光照时间8h/d，培养20~30d；所述不定芽的高度不小于5cm且为刚展开叶片的正常植株。所述S13步骤中，对外植体进行不定芽诱导培养时选用诱导培养基，所述诱导培养基包括：NH4NO3 1650mg/L、KNO31900mg/L、MgSO4·7H2O 185~740mg/L、KH2PO4 170mg/L、CaCl2·2H2O 220~880mg/L、KI 0.42~0.83mg/L、H3BO3 3.1~6.2mg/L、MnSO4·4H2O 16.9~33.8mg/L、ZnSO4·7H2O 4.3~8.6mg/L、Na2MoO4·2H2O 0.13~0.25mg/L、CuSO4·5H2O 0.013~0.025mg/L、CoCl2·6H2O 0.013~0.025mg/L、FeSO4·7H2O 13.9~55.6mg/L、Na2·EDTA 18.7~74.6mg/L、盐酸硫胺素0 .1mg/L、烟酸0.5mg/L、盐酸吡哆醇0.5mg/L、甘氨酸2mg/L、肌醇100mg/L、6-苄氨基嘌呤1.0-3.0mg/L、萘乙酸0.1～0.2mg/L、白糖30g/L、卡拉胶5.5g/L。所述S14步骤中，进行不定芽增殖培养时选用增殖培养基，所述增殖培养基还包括：NH4NO3 1650mg/L、KNO31900mg/L、MgSO4·7H2O 185~740mg/L、KH2PO4170mg/L、CaCl2·2H2O 220~880mg/L、KI 0.42~0.83mg/L、H3BO3 3.1~6.2mg/L、MnSO4·4H2O16.9~33.8mg/L、ZnSO4·7H2O 4.3~8.6mg/L、Na2MoO4·2H2O 0.13~0.25mg/L、CuSO4·5H2O0.013~0.025mg/L、CoCl2·6H2O 0.013~0.025mg/L、FeSO4·7H2O 13.9~55.6mg/L、Na2·EDTA18.7~74.6mg/L、盐酸硫胺素0 .1mg/L、烟酸0.5mg/L、盐酸吡哆醇0.5mg/L、甘氨酸2mg/L、肌醇100mg/L、白糖30g/L、卡拉胶6.2g/L、6-苄氨基嘌呤0.5~1.0mg/L、萘乙酸0.05~0.1mg/L。所述S15步骤中，所述生根诱导培养过程中选用生根培养基，所述生根培养基还包括：NH4NO31650mg/L、KNO31900mg/L、MgSO4·7H2O 185~740mg/L、KH2PO4 170mg/L、CaCl2·2H2O 220~880mg/L、KI 0.42~0.83mg/L、H3BO3 3.1~6.2mg/L、MnSO4·4H2O 16.9~33.8mg/L、ZnSO4·7H2O 4.3~8.6mg/L、Na2MoO4·2H2O 0.13~0.25mg/L、CuSO4·5H2O 0.013~0.025mg/L、CoCl2·6H2O 0.013~0.025mg/L、FeSO4·7H2O 13.9~55.6mg/L、Na2·EDTA 18.7~74.6mg/L、盐酸硫胺素0 .1mg/L、烟酸0.5mg/L、盐酸吡哆醇0.5mg/L、甘氨酸2mg/L、肌醇100mg/L白糖20g/L、卡拉胶7.0g/L、萘乙酸0 .4～0 .5mg/L、活性炭3g/L。
将双线竹芋的母本，多次消毒后依次进行诱导、增殖和生根培养，可以获取大量的双线竹芋的植株，满足市场需求。培养过程中幼苗成活率高，同样的培养时间内可以获取更多的双线竹芋植株，繁殖效率得到了极大的提高，并可以减少植株黄叶率发生，缩短组培苗移栽后的生长周期。
实施例2
实施例2同实施例1不同之处在于，所述S14步骤中，进行不定芽增殖培养时选用增殖培养基，所述增殖培养基还包括：NH4NO3 825~1650mg/L、KNO31900mg/L、MgSO4·7H2O 740~925mg/L、KH2PO4 170~340mg/L、CaCl2·2H2O 110~220mg/L、KI 0.42~0.83mg/L、H3BO3 3.1~6.2mg/L、MnSO4·4H2O 16.9~33.8mg/L、ZnSO4·7H2O 4.3~8.6mg/L、Na2MoO4·2H2O 0.13~0.25mg/L、CuSO4·5H2O 0.013~0.025mg/L、CoCl2·6H2O 0.013~0.025mg/L、FeSO4·7H2O13.9~55.6mg/L、Na2·EDTA 18.7~74.6mg/L、盐酸硫胺素0 .1mg/L、烟酸0.5mg/L、盐酸吡哆醇0.5mg/L、甘氨酸2mg/L、肌醇100mg/L、白糖30g/L、卡拉胶6.2g/L、6-苄氨基嘌呤0.5~1.0mg/L、萘乙酸0.05~0.1mg/L。
实施例3
实施例3同实施例1不同之处在于，所述S14步骤中，进行不定芽增殖培养时选用增殖培养基，所述增殖培养基还包括：NH4NO3 1650mg/L、KNO31900mg/L、MgSO4·7H2O 185~740mg/L、KH2PO4 170mg/L、CaCl2·2H2O 220~880mg/L、KI 0.42~0.83mg/L、H3BO3 3.1~6.2mg/L、MnSO4·4H2O 8.5~15mg/L、ZnSO4·7H2O 4.3~8.6mg/L、Na2MoO4·2H2O 0.13~0.25mg/L、CuSO4·5H2O 0.013~0.025mg/L、CoCl2·6H2O 0.013~0.025mg/L、FeSO4·7H2O13.9~55.6mg/L、Na2·EDTA 18.7~74.6mg/L、盐酸硫胺素0 .1mg/L、烟酸0.5mg/L、盐酸吡哆醇0.5mg/L、甘氨酸2mg/L、肌醇100mg/L、白糖30g/L、卡拉胶6.2g/L、6-苄氨基嘌呤1.5~2.0mg/L、萘乙酸0.15~0.3mg/L。
实施例4
实施例4同实施例1不同之处在于，所述S14步骤中，进行不定芽增殖培养时选用增殖培养基，所述增殖培养基还包括：NH4NO3 1650mg/L、KNO3950~1800mg/L、MgSO4·7H2O 185~740mg/L、KH2PO4 170mg/L、CaCl2·2H2O 100~210mg/L、KI 0.42~0.83mg/L、H3BO3 3.1~6.2mg/L、MnSO4·4H2O 8.5~15mg/L、ZnSO4·7H2O 4.3~8.6mg/L、Na2MoO4·2H2O 0.13~0.25mg/L、CuSO4·5H2O 0.013~0.025mg/L、CoCl2·6H2O 0.013~0.025mg/L、FeSO4·7H2O13.9~55.6mg/L、Na2·EDTA 18.7~74.6mg/L、盐酸硫胺素0 .1mg/L、烟酸0.5mg/L、盐酸吡哆醇0.5mg/L、甘氨酸2mg/L、肌醇100mg/L、白糖30g/L、卡拉胶6.2g/L、6-苄氨基嘌呤1.5~2.0mg/L、萘乙酸0.15~0.3mg/L。
实施例5
实施例5同实施例1不同之处在于，所述S14步骤中，所述继代增殖为：将不定芽切割，去除不定芽的基部和顶部，将不定芽上长出的新芽分离，得到新芽和原芽；控制培养温度27℃，湿度50%，培养光照强度2000Lux，光照时间10h/d，培养40~50d；得到多个不定芽，将不定芽切割成4~5个一团，继续进行继代增殖，重复继代增殖15~20次。
实施例6
实施例6同实施例1不同之处在于，所述S14步骤中，所述继代增殖为：将不定芽切割，去除不定芽的基部和顶部，将不定芽上长出的新芽分离，得到新芽和原芽；控制培养温度28~29℃，湿度50%，培养光照强度2000Lux，光照时间10h/d，培养40~50d；得到多个不定芽，将不定芽切割成2~3个一团，继续进行继代增殖，重复继代增殖15~20次。
实施例7
实施例7同实施例1不同之处在于，所述S15步骤中，将健壮的不定芽分割为单芽，对单芽进行生根培养；控制培养温度28~29℃，湿度45~60%，培养光照强度5000Lux，光照时间8h/d，培养20~30d；所述不定芽的高度不小于5cm且为刚展开叶片的正常植株。
实施例8
实施例8同实施例1不同之处在于，所述S12步骤中进行不定芽诱导培养、S13步骤中进行不定芽增殖培养、S15步骤中进行生根培养过程选用的培养基中包括：NH4NO3 825mg/L、KNO3950~1900mg/L、MgSO4·7H2O 185~370mg/L、KH2PO4 120~170mg/L、CaCl2·2H2O 220~440mg/L、KI 0.21mg/L、H3BO3 3.1~6.2mg/L、MnSO4·4H2O 5.5mg/L、ZnSO4·7H2O 4.3~8.6mg/L、Na2MoO4·2H2O 0.1~0.25mg/L、CuSO4·5H2O 0.01~0.025mg/L、CoCl2·6H2O 0.026~0.05mg/L、FeSO4·7H2O 13.5~27.8mg/L、Na2·EDTA 16.3~37.3mg/L、盐酸硫胺素0.05~0.1mg/L、烟酸0.2~0.5mg/L、盐酸吡哆醇0.3~0 .5mg/L、甘氨酸1~2mg/L、肌醇50~100mg/L。
实验例
统计实施例1~8及双线竹芋最终的黄叶率、变异率和成苗率的提高率。
Figure 823600DEST_PATH_IMAGE001
从实施例1可以看出，采用本申请的培养基、培养温度、切芽方式等可以显著的抑制双线竹芋的黄叶率、变异率并提高成苗率。
实施例2、实施例3、实施例4中不定芽增殖培养基配方中的多种元素含量同实施例1不同，实施例5中增殖芽的切割方式同实施例1不同，实施例6中不定芽增殖的温度同实施例1不同，实施例7中生根诱导的温度同实施例1不同，实施例8中培养基同实施例1不同，其效果均低于实施例1，表明本申请中的多种参数对提高双线竹芋的质量均有重要的作用。
上列详细说明是针对本发明可行实施例的具体说明，以上实施例并非用以限制本发明的专利范围，凡未脱离本发明所为的等效实施或变更，均应包含于本案的专利范围中。

Claims (7)

1.一种提高双线竹芋组培苗质量的方法，其特征在于，包括：
S11.取双线竹芋母株在地下生长的侧芽，清洗去除基质，除根；
S12.将侧芽清洗干净，晾干至表面干燥，用酒精擦拭后加入到酒精中灭菌0.1~2min后，再将侧芽加入到次氯酸钠溶液继续灭菌20~60min，清洗干净，得到外植体；
S13.对外植体进行不定芽诱导培养，至获取不定芽；
S14.去除不定芽的顶部和基部，并将不定芽上长出的新芽分离，得到新芽和原芽，对新芽和原芽进行继代增殖，至获取多个健壮的不定芽，对诱导出的不定芽进行扩繁；
S15.将健壮的不定芽分割为单芽，对单芽进行生根培养一定时间后，既得可以移栽的组培苗；
所述S13步骤中，对外植体进行不定芽诱导培养时选用诱导培养基，所述诱导培养基还包括6-苄氨基嘌呤1.0-3.0mg/L、萘乙酸0.1～0.2mg/L、白糖30g/L、卡拉胶5.5g/L；
所述S14步骤中，进行不定芽增殖培养时选用增殖培养基，所述增殖培养基还包括白糖30g/L、卡拉胶6.2g/L、6-苄氨基嘌呤0.5~1.0mg/L、萘乙酸0.05~0.1mg/L；
所述S15步骤中，所述生根诱导培养过程中选用生根培养基，所述生根培养基还包括白糖20g/L、卡拉胶7.0g/L、萘乙酸0.4～0.5mg/L、活性炭3g/L。
2.根据权利要求1所述的一种提高双线竹芋组培苗质量的方法，其特征在于，所述S11步骤中，控制双线竹芋母株的基质至干燥需补水的程度时获取双线竹芋母株在地下生长的侧芽，所述侧芽为未完全展叶的侧芽，所述侧芽的长度为5cm。
3.根据权利要求2所述的一种提高双线竹芋组培苗质量的方法，其特征在于，所述S12步骤中，将侧芽清洗干净，晾干至表面干燥，用75%酒精擦拭，擦拭后侧芽的长度不小于3cm；将侧芽加入到75%的酒精中灭菌0.1~2min后，再将侧芽加入到0.6~0.8%次氯酸钠溶液继续灭菌20~60min，清洗干净，得到外植体。
4.根据权利要求1所述的一种提高双线竹芋组培苗质量的方法，其特征在于，所述S13步骤中，剥去1~2层外植体的苞片使得外植体的长度不少于2cm，控制培养温度25~26℃，湿度45~60%，培养光照强度1000~3000Lux，培养时间10h/d，培养40~50d后获得不定芽。
5.根据权利要求1所述的一种提高双线竹芋组培苗质量的方法，其特征在于，所述S14步骤中，所述继代增殖为：将不定芽切割，去除不定芽的基部和顶部，将不定芽上长出的新芽分离，得到新芽和原芽；控制培养温度25~26℃，湿度45~60%，培养光照强度1000~3000Lux，光照时间10h/d，培养40~50d；得到多个不定芽，将不定芽切割成2~3个一团，继续进行继代增殖，重复继代增殖15~20次。
6.根据权利要求1所述的一种提高双线竹芋组培苗质量的方法，其特征在于，所述S15步骤中，将健壮的不定芽分割为单芽，对单芽进行生根培养；控制培养温度27℃，湿度45~60%，培养光照强度4000~6000Lux，光照时间8h/d，培养20~30d；所述不定芽的高度不小于5cm且为刚展开叶片的正常植株。
7.根据权利要求1所述的一种提高双线竹芋组培苗质量的方法，其特征在于，所述S13步骤中进行不定芽诱导培养、S14步骤中进行不定芽增殖培养、S15步骤中进行生根培养过程选用的培养基中包括：NH4NO3 825~1650mg/L、KNO3 950~1900mg/L、MgSO4·7H2O 185~740mg/L、KH2PO4 120~170mg/L、CaCl2·2H2O 220~880mg/L、KI 0.42~0.83mg/L、H3BO3 3.1~6.2mg/L、MnSO4·4H2O 16.9~33.8mg/L、ZnSO4·7H2O 4.3~8.6mg/L、Na2MoO4·2H2O 0.13~0.25mg/L、CuSO4·5H2O 0.013~0.025mg/L、CoCl2·6H2O 0.013~0.025mg/L、FeSO4·7H2O13.9~55.6mg/L、Na2·EDTA 18.7~74.6mg/L、盐酸硫胺素0.05~0 .1mg/L、烟酸0.2~0.5mg/L、盐酸吡哆醇0.3~0 .5mg/L、甘氨酸1~2mg/L、肌醇50~100mg/L。
CN201910770745.9A 2019-08-20 2019-08-20 一种提高双线竹芋组培苗质量的方法 Active CN110476811B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201910770745.9A CN110476811B (zh) 2019-08-20 2019-08-20 一种提高双线竹芋组培苗质量的方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201910770745.9A CN110476811B (zh) 2019-08-20 2019-08-20 一种提高双线竹芋组培苗质量的方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN110476811A CN110476811A (zh) 2019-11-22
CN110476811B true CN110476811B (zh) 2022-06-07

Family

ID=68551680

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201910770745.9A Active CN110476811B (zh) 2019-08-20 2019-08-20 一种提高双线竹芋组培苗质量的方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN110476811B (zh)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN112352679A (zh) * 2020-11-19 2021-02-12 广州市卉通农业科技有限公司 一种用于双线竹芋组培苗高效生产的培养基及其制备方法
CN114946656B (zh) * 2022-05-17 2023-11-24 高兰芹 一种培育高品质竹芋的方法

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101692786A (zh) * 2009-10-28 2010-04-14 天津滨海国际花卉科技园区股份有限公司 西尔维亚栽培基质及其制备方法
CN108812322A (zh) * 2018-07-09 2018-11-16 苏州枫彩生态科技集团有限公司 一种翠叶竹芋外植体的处理方法
CN109156363A (zh) * 2018-11-15 2019-01-08 广州市名卉景观科技发展有限公司 一种箭羽竹芋的快速繁殖方法
CN112352679A (zh) * 2020-11-19 2021-02-12 广州市卉通农业科技有限公司 一种用于双线竹芋组培苗高效生产的培养基及其制备方法

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4274860A (en) * 1978-07-13 1981-06-23 Union Camp Corporation Method for stimulating growth in foliage plants
USPP20060P3 (en) * 2007-08-21 2009-06-09 Kerry's Bromeliad Nursery, Inc. Calathea plant named ‘TWYCA0019 2’

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101692786A (zh) * 2009-10-28 2010-04-14 天津滨海国际花卉科技园区股份有限公司 西尔维亚栽培基质及其制备方法
CN108812322A (zh) * 2018-07-09 2018-11-16 苏州枫彩生态科技集团有限公司 一种翠叶竹芋外植体的处理方法
CN109156363A (zh) * 2018-11-15 2019-01-08 广州市名卉景观科技发展有限公司 一种箭羽竹芋的快速繁殖方法
CN112352679A (zh) * 2020-11-19 2021-02-12 广州市卉通农业科技有限公司 一种用于双线竹芋组培苗高效生产的培养基及其制备方法

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Micropropagation of Calathea ornata Koern;M. Podwyszyńska;《Biologia Plantarum》;19970315;第39卷(第2期);第179-186页 *
双线竹芋和猫眼竹芋组培快繁技术研究;梁凤龙;《北京农业》;20140625(第18期);第7-8页 *
双线竹芋组培苗黄叶问题的控制方法初探;马文卿等;《农业工程技术》;20190610;第39卷(第16期);第67-70页 *

Also Published As

Publication number Publication date
CN110476811A (zh) 2019-11-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN101695283B (zh) 文心兰花梗芽组培用的培养基和组培苗繁殖方法
CN104285813A (zh) 一种金花茶组培繁殖方法
CN110476811B (zh) 一种提高双线竹芋组培苗质量的方法
Thokchom et al. Micropropagation of Anthurium andreanum cv. Jewel from leaf explants
CN113142059A (zh) 一种花叶良姜组培芽增殖生根同步培养的方法
CN114557281B (zh) 一种利用大叶种茶树幼胚组织培养茶苗的茶树繁育方法
CN110583488A (zh) 石蒜属新品种‘桃红’组培快繁技术体系的建立方法
CN104737912A (zh) 一种非洲菊组培快繁培养基及其培育方法
CN101112178B (zh) 杂交鹅掌楸无性系营养体悬浮细胞系诱导体细胞胚胎发生与植株再生方法
CN112931197A (zh) 一种菠萝组织培养苗的制备方法
CN110833028B (zh) 浙江樟体细胞胚胎发生与植株再生方法
CN112616669B (zh) 一种高羊茅组织培养和分化再生的方法
CN112913694B (zh) 一种用于蓝莓茎段组织快繁的培养基及组织快繁方法
CN112931226B (zh) 一种东方桤木组培快繁方法
CN112616659B (zh) 一种大别山冬青体细胞胚胎发生与植株再生的方法
CN115136893A (zh) 一种大籽猕猴挑的愈伤组织再生体系建立方法
CN110810251B (zh) 一种薄壳山核桃的微体嫁接方法
CN106613973A (zh) 利用组培苗叶片再生不定芽快速繁育羊踯躅的方法
CN109937875B (zh) 一种通过叶丛芽进行兜兰优质种苗组织培养快速繁殖方法
CN113575422A (zh) 菠萝叶片高效离体再生方法
CN113197099A (zh) 一种柠条锦鸡儿离体再生方法
CN111149703A (zh) 一种简便高效高质量的番木瓜组培苗生根方法
CN118077582B (zh) 一种龙牙蕉植株再生的培养基组合及其植株再生方法
CN116548313B (zh) 一种欧美山杨杂种组培苗离体根诱导再生植株的方法
CN110089433B (zh) 一种露薇花快速组培繁殖的方法

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant