CN109988786A - 一种增加酶催化制备α-酮戊二酸转化率的方法 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一种增加酶催化制备α‑酮戊二酸转化率的方法,包括以下步骤:在酶催化L‑谷氨酸或L‑谷氨酸盐制备α‑酮戊二酸的过程中,监测丁二酸的含量,通过流加过氧化氢酶,控制丁二酸的含量不超过0.1‑1.0g/L。采用本发明的方法可以提高L‑谷氨酸(钠)的转化率至99‑100%,减少副产物的生成,有利于α‑酮戊二酸的分离纯化。通过分批添加底物,产物浓度最高达130g/L以上。

Description

一种增加酶催化制备α-酮戊二酸转化率的方法
技术领域
本发明涉及生物技术领域,具体涉及一种增加酶催化制备α-酮戊二酸转化率的方法。
背景技术
α-酮戊二酸是一种重要的有机酸,广泛应用于食品、医药、化工和化妆品领域。市场上应用作为广泛的是作为功能性运动型饮料或食品的原料,如精酮、鸟酮(1:1或2:1)等。
α-酮戊二酸的主要生产方法包括:化学合成法、微生物发酵法和生物酶催化法。其中,化学合成法涉及到有害试剂,对生态环境有较为负面的影响,目前α-酮戊二酸的合成已经很少使用化学合成法。微生物发酵法生产α-酮戊二酸,具有制备条件温和、环境友好等优势,但缺点是生产周期较长、产物浓度较低、副产物多、分离纯化困难、生产成本高等。如CN101717735中改造了丙酮酸工业生产菌株,将代谢流导向TCA循环,过量积累α-酮戊二酸,最终产物浓度为31.7g/L,仍处于较低水平,没有工业化生产价值。CN102676438A中构建了一株大肠杆菌基因工程菌,48h发酵α-酮戊二酸含量达90g/L,但其纯度仅为95%,杂酸较多,不利于分离纯化。
酶催化制备α-酮戊二酸,具有反应条件温和,控制简单,周期短,产率高,环保压力小等优势。而在酶催化法中,一般使用L-谷氨酸氧化酶,有是否串联表达过氧化氢酶的基因工程菌之分;近年也有L-谷氨酸脱氢酶的报道,如CN106834366A中使用L-谷氨酸脱氢酶制备α-酮戊二酸,但该酶需要额外添加辅因子(NAD或NADP)导致成本较高,不利于工业化生产。串联表达L-谷氨酸氧化酶和过氧化氢酶的优势是减少了外源添加的原料成本,简化了转化工艺,缺点是由于过氧化氢酶的稳定性本身也受到过氧化氢的负面影响,不利于α-酮戊二酸的大量积累。如CN106047913A中串联表达双酶,最大产物浓度127.1g/L,但转化率仅为96.9%,其平均转化率仅在95%左右,转化率较低意味这副产物多,不利于分离纯化。
发明内容
针对上述现有技术,本发明的目的是提供一种增加酶催化制备α-酮戊二酸转化率的方法。采用本发明的方法,α-酮戊二酸的转化率可达99-100%,同时可以达到较高的产物积累,最高可达130g/L以上。
为实现上述目的,本发明采用如下技术方案:
一种增加酶催化制备α-酮戊二酸转化率的方法,包括以下步骤:
在酶催化L-谷氨酸或L-谷氨酸盐制备α-酮戊二酸的过程中,监测丁二酸的含量,通过流加过氧化氢酶,控制丁二酸的含量为0.1-1.0g/L。
由于反应过程中生成的α-酮戊二酸在过氧化氢存在下易发生脱羧反应生成丁二酸,因此,需要对反应体系中的丁二酸的含量进行控制,以保证α-酮戊二酸的转化率。经试验发现,将体系中的丁二酸含量控制在0.1-1.0g/L,α-酮戊二酸的转化率较高。若丁二酸的含量高于1.0g/L,说明过氧化氢的残留较高,不仅对酶活产生不利影响,而且也不利于α-酮戊二酸的稳定性;若过量添加过氧化氢酶将丁二酸的含量控制在更低水平(如0.1g/L以下),则过量的过氧化氢酶会抑制L-谷氨酸氧化酶的活性,导致α-酮戊二酸的转化率降低。
优选的,所述酶催化L-谷氨酸或L-谷氨酸盐制备α-酮戊二酸具体为:
以L-谷氨酸或L-谷氨酸盐为底物,加入一水合硫酸锰和过氧化氢酶,调节pH至6.5,再加入L-谷氨酸氧化酶,转化反应14-20h。
本发明在酶催化L-谷氨酸或L-谷氨酸盐制备α-酮戊二酸的过程中,加入一水合硫酸锰可以作为酶的激活剂,有效提高了过氧化氢酶和L-谷氨酸氧化酶的酶活力。
更优选的,所述底物采用分批加入的形式。
进一步的,所述底物的初始浓度为120-130g/L,待反应至底物含量低于50g/L后,再补加底物至底物浓度为80-100g/L,继续反应。
由于存在底物抑制现象,底物浓度过高会抑制酶活,因此,为提高产物α-酮戊二酸的积累,本发明采用分批加入的形式,经试验发现,将底物的初始浓度设置为120-130g/L,待反应至底物含量低于50g/L后,再补加底物,继续反应,可以达到较高的产物积累,最高可达130g/L以上。
更优选的,每1L的反应体系中,过氧化氢酶的酶活力为30-60W单位;L-谷氨酸氧化酶生物酶活力为4000-8000U。
更优选的,所述转化反应的条件为:控制搅拌转速400rpm,通气量≥0.4vvm,罐压保持0.05MPa。
经试验发现,采用上述的转化反应条件可以提高α-酮戊二酸的转化率。
优选的,采用HPLC法监测丁二酸的含量。
进一步的,HPLC法监测丁二酸的含量所采用的色谱条件为:色谱柱为月旭XtimateSugar-H,5μm,7.8*300mm。流动相为5mM硫酸,紫外检测器,波长为210nm,流速为0.2-1.0ml/min,柱温25-40℃。
优选的,流加的过氧化氢酶的酶活力为5-40W单位/ml。
由于L-谷氨酸氧化酶加入反应体系后就会立即产生过氧化氢,本发明将过氧化氢酶分成两部分加入,其中一部分先加入是保证反应刚开始时丁二酸积累不会过高,从而影响酶活及转化率;另一部分的过氧化氢酶采用流加的方式加入,一方面避免初始过氧化氢酶的浓度过高,影响L-谷氨酸氧化酶的活性,另一方面可以控制反应过程中丁二酸的含量,提高α-酮戊二酸的转化率。
本发明的有益效果:
(1)与现有的外源添加过氧化氢酶制备α-酮戊二酸相比,采用本发明的方法能够最大化的利用过氧化氢酶,节省了成本,提高了转化率,减少了副产物的发生,有利于α-酮戊二酸的分离纯化。
(2)与现有的串联表达双酶体系制备α-酮戊二酸相比,采用本发明的方法制备α-酮戊二酸的转化率更高,可达99-100%,同时可以达到较高的产物积累,最高可达130g/L以上。
具体实施方式
应该指出,以下详细说明都是例示性的,旨在对本申请提供进一步的说明。除非另有指明,本文使用的所有技术和科学术语具有与本申请所属技术领域的普通技术人员通常理解的相同含义。
正如背景技术部分所介绍的,现有的酶催化制备α-酮戊二酸一般是以L-谷氨酸或谷氨酸钠为底物,采用L-谷氨酸氧化酶将底物转化生成过氧化氢、氨和α-酮戊二酸。由于反应过程中生成的α-酮戊二酸在过氧化氢存在下易发生脱羧反应生成丁二酸,因此,反应体系中需要加入过氧化氢酶,以便将反应生成的过氧化氢水解成水和氧气,避免α-酮戊二酸被氧化。
但是,由于过氧化氢酶的稳定性和酶活性受过氧化氢的负面影响,使得外源加入的过氧化氢酶对产物α-酮戊二酸的保护效果欠佳,α-酮戊二酸的转化率仍有待进一步提高。
基于此,本发明创新了外源过氧化氢酶的加入方式,将过氧化氢酶分成两部分加入,其中一部分与L-谷氨酸氧化酶共同加入形成转化体系;另一部分的过氧化氢酶采用流加的方式加入,通过监测转化体系中丁二酸的含量,流加过氧化氢酶,将丁二酸的含量控制在0.1-1.0g/L以内。结果发现,采用本发明的方法极大的提高了α-酮戊二酸的转化率,可达99-100%,减少了副产物的生成,有利于α-酮戊二酸的分离纯化。
为进一步的提高产物浓度,本发明创新性的采用底物分批加入的形式,控制底物的初始浓度为120-130g/L,待反应至底物含量低于50g/L后,再加入底物至底物浓度为80-100g/L,继续反应。采用上述方法可以达到较高的产物积累,最高可达130g/L以上。
为了使得本领域技术人员能够更加清楚地了解本申请的技术方案,以下将结合具体的实施例详细说明本申请的技术方案。
本发明实施例和对比例中所用的试验材料均为本领域常规的试验材料,均可通过商业渠道购买得到。
实施例1:
126g L-谷氨酸钠,加入800mL水中,加入一水合硫酸锰0.507g,保温30℃搅拌使其完全溶解,加入1mL 40W单位/mL的过氧化氢酶,调节pH至6.5,最后加入用PBS混悬的L-谷氨酸氧化酶酶液,定容至1L,L-谷氨酸氧化酶的总酶活为6000U。控制搅拌转速400rpm,通气量≥0.4vvm,罐压保持0.05MPa,开始反应,HPLC监测丁二酸的含量,流加5W单位/mL过氧化氢酶溶液控制丁二酸含量在0.1-0.5g/L。14h后,反应液体积为1050ml,测定α-酮戊二酸含量为102.9g/L。按下式测定摩尔转化率:
摩尔转化率
C1—α-酮戊二酸的浓度(g/L);
V—反应结束后反应体系的体积(L);
Mr2—L-谷氨酸钠的分子的量(169g/mol);
Mr1—α-酮戊二酸的分子的量(146g/mol);
m—L-谷氨酸钠的质量(g)
转化率为99.25%。
实施例2:
126gL-谷氨酸钠,加入800mL水中,加入一水合硫酸锰0.507g,保温30℃搅拌使其完全溶解,加入1mL 40W单位/mL的过氧化氢酶,调节pH至6.5,最后加入用PBS混悬的L-谷氨酸氧化酶酶液,定容至1L,L-谷氨酸氧化酶的总酶活为6000U。控制搅拌转速400rpm,通气量≥0.4vvm,罐压保持0.05MPa,开始反应,HPLC监测丁二酸的含量,流加5W单位/mL过氧化氢酶溶液控制丁二酸含量不超过0.1-0.2g/L。反应至L-谷氨酸钠含量低于50g/L后,再加入30g L-谷氨酸钠继续反应,20h后,反应液体积为1082ml,测定α-酮戊二酸含量为124.1g/L。转化率为99.63%。
实施例3:
126gL-谷氨酸钠,加入800mL水中,加入一水合硫酸锰0.507g,保温30℃搅拌使其完全溶解,加入1mL 40W单位/mL的过氧化氢酶,调节pH至6.5,最后加入用PBS混悬的L-谷氨酸氧化酶酶液,定容至1L,L-谷氨酸氧化酶的总酶活为8000U。控制搅拌转速400rpm,通气量≥0.4vvm,罐压保持0.05MPa,开始反应,HPLC监测丁二酸的含量,流加10W单位/mL过氧化氢酶溶液控制丁二酸含量不超过0.1-0.2g/L。反应至L-谷氨酸钠含量低于50g/L后,再加入50g L-谷氨酸钠继续反应,20h后,反应液体积为1121ml,测定α-酮戊二酸含量为135.5g/L。转化率为99.90%。
对比例1:
126gL-谷氨酸钠,加入800mL水中,加入一水合硫酸锰0.507g,保温30℃搅拌使其完全溶解,加入10mL 40W单位/mL的过氧化氢酶,调节pH至6.5,最后加入用PBS混悬的L-谷氨酸氧化酶酶液,定容至1L。控制搅拌转速400rpm,通气量≥0.4vvm,罐压保持0.05MPa,反应14h后,测定α-酮戊二酸含量为103.8g/L,转化率为95.35%。
对比例2:
126gL-谷氨酸钠,加入800mL水中,保温30℃搅拌使其完全溶解,加入10mL 40W单位/mL的过氧化氢酶,调节pH至6.5,最后加入用PBS混悬的L-谷氨酸氧化酶酶液,定容至1L。控制搅拌转速400rpm,通气量≥0.4vvm,罐压保持0.05MPa,反应20h后,测定α-酮戊二酸含量为97.8g/L,转化率为92.20%。
以上所述仅为本申请的优选实施例而已,并不用于限制本申请,对于本领域的技术人员来说,本申请可以有各种更改和变化。凡在本申请的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本申请的保护范围之内。

Claims (10)

1.一种增加酶催化制备α-酮戊二酸转化率的方法,其特征在于,包括以下步骤:
在酶催化L-谷氨酸或L-谷氨酸盐制备α-酮戊二酸的过程中,监测丁二酸的含量,通过流加过氧化氢酶,控制丁二酸的含量为0.1-1.0g/L。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述酶催化L-谷氨酸或L-谷氨酸盐制备α-酮戊二酸具体为:
以L-谷氨酸或L-谷氨酸盐为底物,加入一水合硫酸锰和过氧化氢酶,调节pH至6.5,再加入L-谷氨酸氧化酶,转化反应14-20h。
3.根据权利要求2所述的方法,其特征在于,所述底物采用分批加入的形式。
4.根据权利要求3所述的方法,其特征在于,所述底物的初始浓度为120-130g/L,待反应至底物含量低于50g/L后,再加入底物至底物浓度为80-100g/L,继续反应。
5.根据权利要求2所述的方法,其特征在于,每1L的反应体系中,一水合硫酸锰的加入量为0.507g。
6.根据权利要求2所述的方法,其特征在于,每1L的反应体系中,过氧化氢酶的酶活力为30-60W单位;L-谷氨酸氧化酶生物酶活力为4000-8000U。
7.根据权利要求2所述的方法,其特征在于,所述转化反应的条件为:控制搅拌转速400rpm,通气量≥0.4vvm,罐压保持0.05MPa。
8.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,采用HPLC法监测丁二酸的含量。
9.根据权利要求8所述的方法,其特征在于,HPLC法监测丁二酸的含量所采用的色谱条件为:色谱柱为月旭Xtimate Sugar-H,5μm,7.8*300mm;流动相为5mM硫酸,紫外检测器,波长为210nm,流速为0.2-1.0ml/min,柱温25-40℃。
10.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,流加的过氧化氢酶的酶活力为5-40W单位/ml。
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