CN109554298A - 一种微生物菌群的富集方法及其在处理Cr重金属污染上的应用 - Google Patents

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Abstract

本发明提供一种微生物菌群的富集方法,以池塘底泥微生物为环境菌源,通过高浓度Cr(VI)的持续定向驯化和继代筛选,最终获得一组能够有效还原Cr(VI)的微生物菌群。该菌群能有效还原Cr(VI),49.5h内可将91μg/mL的Cr(VI)全部还原。可耐受435μg/mL的环境Cr(VI)浓度,并保持还原能力。在15℃‑45℃条件下具有还原Cr(VI)的能力,并在30℃和35℃条件下还原Cr(VI)的效率最好。

Description

一种微生物菌群的富集方法及其在处理Cr重金属污染上的 应用
技术领域
本发明涉及一种微生物菌群的富集培养方法,并将该微生物菌群应用于含Cr重金属污染的环境中,其中包括水环境、土壤环境、有机污染环境,属于生物技术领域。
背景技术
我国重金属污染较为严重,据统计,我国土壤重金属污染面积约为2×107hm2,每年受污染的粮食多大1.2×107t,经济损失达2×1010元(赵其国,等,土壤学报,2007,44(6):1127-1134)。
铬是主要的重金属污染物之一。由于其是部分行业如电镀、木材防腐、染料、皮革制作、合金制造的重要原料,广泛应用于工业生产,并随着工业废水的排放,大量进入环境(董广霞, 等. 中国环境监测, 2015, 31⑶: 92-95)。统计表明,我国是铬生产大国,每年铬盐生产量超过16万吨,而我国每年排放的铬渣量约为35万-42万吨(江澜,重庆工商大学学报(自然科学版), 2006 , 23(2):132-135)。大量铬污染物被投放入环境,造成了我国Cr重金属污染现状较为严峻。我国土壤Cr的分布情况为,中国南部较高,由云南向东北方向直到江苏地区出现连续高值,各农田土壤铬含量最高的省份是上海市,已达79.78mg/kg,福建省土壤Cr平均值超出背景值2.80倍(张小敏,等. 环境科学,2014,35(02):692-703)。
通常Cr的毒性与其在环境中的形态有关。化合价为三价的Cr由于不易进入细胞,毒性较小,而化合价为六价的Cr容易进入细胞,并且在细胞内在谷肤甘肤等作用下还原为化合价为三价的Cr。在这个还原过程中会产生化合价为五价的Cr中间体及活性氧自由基或经基自由基,因而有很强的毒性。六价Cr比三价Cr毒性高出约100倍。
发明内容
基于上述问题,开发能够有效还原环境中Cr的方法,对我国改良我国农田土壤环境,保障人类健康具有重要意义。利用微生物来修复Cr污染,是生物修复里的一个重要分支。目前,已报道多种微生物,如芽孢杆菌(Bacillus sp. )、脱硫弧菌( Desulfovibriovulgaris )、希瓦氏菌(Shewanella sp.)和假单胞菌(Pseudomonas sp. )等具有还原Cr(VI)的能力。但不同菌株还原Cr(VI)的能力不同,且单一菌株在环境中的定殖能力较弱,影响生物修复的效果。
本发明以Cr(VI)还原能力作为筛选指标,注重微生物群体功能和菌间的协同关系。利用限制性培养和连续继代培养的方法,从环境中富集到一组微生物菌群,该菌群能有效还原Cr(VI)。
所述的微生物菌群的富集方法,
包括如下步骤:
(1)采集池塘底泥作为环境菌源,将池塘底泥装入培养瓶内,加入重铬酸钾,定容,封装后,静止培养25-32天,获得第一代富集菌群;
(2)将所获的第一代富集菌群,转接到新鲜的含Cr(VI)的PCS培养液,培养5-7天获得第二代富集菌群,如此方法转接n次获得第n代富集菌群。
所述的步骤(1)中池塘底泥的理化性质为,有机质25-35g/kg,总氮1-1.8g/kg,有效磷30-40mg/kg,含水量65-75%。
所述的步骤(1)中加入的重铬酸钾调整培养瓶中的Cr(VI)浓度为50μg/mL-200μg/mL,即获得第一代富集菌群。
进一步优选方案中所述加入的重铬酸钾调整培养瓶中的Cr(VI)浓度为100μg/mL。
所述的步骤(2)中所述的具体转接方法为:从第一代菌群的培养瓶中,取上清液震荡混匀后接种入装有PCS培养液的瓶中,于25-28℃的恒温静止培养5-7天,即获得第二代富集菌群;如此方法转接n代即可获得还原Cr(VI)的微生物菌群。
所述的PCS培养液中每1L培养液含:蛋白胨4-5g,酵母浸粉0.8-1g,氯化钠4-5g,调整Cr(VI)浓度为50-200mg/L。
转接代数为4-6次,优选转接代数为5代。
采用上述方法获得的微生物菌群,该菌群包括细菌和古菌。
所述的细菌包括OTUs丰度的百分数为40-60% 的Burkholderiales,30-45%Clostridiales。
所述的古菌包括OTUs丰度的百分数为40-55% Methanobacteriales,15-30%Methanomicrobiales,10-15% Methanosarcinales。
进一步优选方案中所述的细菌包括OTUs丰度的百分数为59% 的Burkholderiales,40% Clostridiales。
进一步优选方案中所述的古菌包括OTUs丰度的百分数为54%Methanobacteriales,26% Methanomicrobiales,13% Methanosarcinales。
利用本发明的方法所获得的微生物菌群能有效还原Cr(VI),49.5h 内可将91μg/mL的Cr(VI)溶液全部还原。可耐受435μg/mL的环境Cr(VI)浓度,并保持还原能力。在15℃-45℃条件下具有还原Cr(VI)的能力,并在30℃和35℃条件下还原Cr(VI)的效率最好,在自然环境温度下,随着温度的升高,还原Cr(VI)的能力上升。
该微生物菌群在Cr重金属污染土壤的生物修复的应用。
该微生物菌群在Cr重金属污染水体的生物修复的应用。
该微生物菌群在Cr重金属污染的有机废弃物处理的应用。
附图说明
图1 菌群培养5天含Cr(VI)培养基颜色变化。
图2 菌群在pH=7和8的条件下还原Cr(VI)的能力。
图3 菌群在含Cr(VI)培养液中生物量的变化。
图4不同Cr(VI)浓度对菌群还原Cr(VI)能力的影响。
图5不同培养温度对菌群还原Cr(VI)能力的影响。
具体实施方式
实施例1
一种微生物菌群的富集方法,其特征在于,包括如下步骤:
(1)采集池塘泥底作为环境菌源,将池塘底泥装入培养瓶内,利用重铬酸钾调整培养瓶内Cr(VI)浓度,并定容至600mL,封装后,放置于28℃温度下静止培养30天,获得第一代富集菌群。
池塘底泥的理化性质为,有机质30.15g/kg,总氮1.33g/kg,有效磷35.4mg/kg,含水量71%。
(2)将所获的第一代富集菌群,转接到新鲜的含Cr(VI)的PCS培养液,28℃培养7天获得第二代富集菌群。如此方法转接5次获得第5代富集菌群。Cr(VI)转化能力稳定,一组转化Cr(VI)的菌群被成功获得。
所述的步骤(1)中所述的环境菌源获取方法为,采用三峡大学求索溪的池塘底泥,该池塘中含有污水,生长有包括水葫芦、荷叶、芦苇的水生植物。在池塘不同位置选取3-4个点,获取每个点0-15cm的底泥。所有底泥充分混合,作为环境菌源。
步骤(1)中所述的第一代菌群具体封装入培养瓶方法为:取2个1000ml培养瓶,分别称取作为环境菌源的池塘污泥400g,放入1000ml培养瓶中,自来水定容至600mL。调整培养瓶中的Cr(VI)浓度为100μg/mL,将2个封装好的培养瓶充分混合均匀后,放置于28℃的恒温培养箱,静止培养30天。即获得第一代富集菌群。
步骤(2)中所述的具体转接方法为:从第一代菌群的2个培养瓶中,选取上清液黄色褪色(初始培养液因含(Crab(VI)而呈现黄色)较快的培养瓶处理。将该处理培养液充分震荡混匀,吸取1ml的富集物,接种入装有100ml PCS培养液(1L培养液含:蛋白胨5g,酵母浸粉1g,氯化钠5g,调整Cr(VI)浓度为100mg/L)的100ml三角瓶中。接种5瓶即5个重复。将5个筛选单元放置于28℃的恒温培养箱,静止培养7天。即获得第二代富集菌群。从第二代富集菌群中,根据培养液黄色和菌液浑浊程度等,判断菌群还原Cr(VI)的能力。选取黄色褪色快,菌液浑浊明显的处理作为种子液进行第三代富集菌群的转接。每一个被选取的第二代富集菌群菌转接入2瓶新鲜含Cr(VI)PCS培养液,即做2个重复。28℃静止培养7天。如此方法转接5代获得有效还原Cr(VI)的微生物菌群。
采用上述方法获得的微生物菌群,该菌群包括细菌和古菌。所述的细菌包括OTUs丰度的百分数为59% 的Burkholderiales,40% Clostridiales。
所述的古菌包括OTUs丰度的百分数为54% Methanobacteriales,26%Methanomicrobiales,13% Methanosarcinales。
本发明菌群接种于100ml的PCS培养液(含有100μg/mL的Crab(VI)),30℃静止培养。图1显示,菌群在培养5天后,培养液明显由黄色(Cr(VI)颜色)转为灰色或浅色,表明Cr(VI)被还原。
实施例2
将菌群培养于含Cr(VI)的PCS培养液中,调整培养液的初始pH,考查不同pH条件下菌群还原Cr(VI)的能力。结果如图2所示,当pH=7和pH=8时,菌群能够有效的还原培养液中的Cr(VI)。当pH=7时,培养73小时,培养液中的Cr(VI)浓度从初始培养的92.15μg/mL下降到2.19μg/mL, 97.6%的Cr(VI)被还原转化。而当pH=8时,经过73小时培养,培养液中的Cr(VI)浓度为0μg/mL,还原率达到100%。
实施例3
将菌群培养于约100μg/mL的Cr(VI)的PCS培养液中,调整pH=8,检测培养过程中菌群OD600的变化,结果如图3。OD600可以反应微生物生长过程的生物量变化。由图3可以发现。菌群在含Cr(VI)溶液中能够启动生长,培养24h,OD达到0.41,且随着培养时间的增加菌群生物量也随之增长,并在92.5h达到0.83OD。
实施例4
Cr(VI)对生物体具有毒害作用,为了探索高浓度Cr(VI)对发明菌群的抑制作用,将菌群分别培养于初始Cr(VI)浓度为91μg/mL,181μg/mL,269μg/mL,355μg/mL,435μg/mL的培养液中,检测菌群还原Cr(VI)的能力,结果如图4。在91μg/mL的培养液中,25.5h,Cr(VI)被还原97.2%,49.5h,全部被还原。当Cr(VI)浓度提高至181μg/mL,Cr(VI)在49.5h内全部被还原。随着Cr(VI)浓度的提高,逐渐显示Cr(VI)对菌群还原Cr(VI)能力的抑制作用。当Cr(VI)为435 μg/mL时,49.5h 后Cr(VI)的还原率为27.7%。可见,该菌群能够在含Cr(VI)浓度400μg/mL以上是仍具有还原Cr(VI)的能力。表现较好的对高浓度Cr(VI)的耐受性。
实施例5
微生物的活性受温度影响较为显著。为探索本发明菌群在不同温度下还原Cr(VI)的能力。将菌群培养于含约100μg/mL Cr(VI)浓度的PCS培养液中,并分别放置于15℃、20℃、25℃、30℃、35℃、40℃和45℃下培养。菌群还原Crab(VI)的能力见图5。结果表明,菌群在15℃-45℃条件下均能还原Cr(VI),并在30℃和35℃条件下转化Cr(VI)的能力最强,36h可将Cr(VI)全部还原。菌群在15℃至25℃的低温环境相对与40℃以上的高温环境表现出相对较好的还原能力。标明,菌群能够适应环境温度,在自然环境中还原Cr(VI),修复污染。并随自然环境中温度的升高,还原Cr(VI)。

Claims (10)

1.一种微生物菌群的富集方法,其特征在于,包括如下步骤:
(1)采集池塘底泥作为环境菌源,将池塘底泥装入培养瓶内,加入重铬酸钾,定容,封装后,静止培养25-32天,获得第一代富集菌群;
(2)将所获的第一代富集菌群,转接到新鲜的含Cr(VI)的PCS培养液,培养5-7天获得第二代富集菌群,如此方法转接n次获得第n代富集菌群。
2.根据权利要求1所述的微生物菌群的富集方法,其特征在于,池塘底泥的理化性质为,有机质25-35g/kg,总氮1-1.8g/kg,有效磷30-40mg/kg,含水量65-75%。
3.根据权利要求1所述的微生物菌群的富集方法,其特征在于,
步骤(1)中加入的重铬酸钾调整培养瓶中的Cr(VI)浓度为50μg/mL-200μg/mL,即获得第一代富集菌群。
4.根据权利要求1所述的微生物菌群的富集方法,其特征在于,
步骤(1)中加入的重铬酸钾调整培养瓶中的Cr(VI)浓度为100μg/mL。
5.根据权利要求1所述的微生物菌群的富集方法,其特征在于,步骤(2)中所述的具体转接方法为:第一代菌群的培养瓶中的培养液震荡混匀,取上清液接种入装有PCS培养液的瓶中,于25-28℃的恒温静止培养5-7天,即获得第二代富集菌群;如此方法转接n代即可获得还原Cr(VI)的微生物菌群。
6.根据权利要求5所述的微生物菌群的富集方法,其特征在于,所述的PCS培养液中每1L培养液含:蛋白胨4-5g,酵母浸粉0.8-1g,氯化钠4-5g,调整Cr(VI)浓度为50-200mg/L。
7.根据权利要求1或5所述的微生物菌群的富集方法,其特征在于,转接代数为4-6次。
8.根据权利要求1所富集的微生物菌群在Cr重金属污染土壤的生物修复的应用。
9.根据权利要求1所富集的微生物菌群在Cr重金属污染水体的生物修复的应用。
10.根据权利要求1所富集的微生物菌群在Cr重金属污染的有机废弃物处理的应用。
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