CN108738499A - 花生成熟种子的灭菌方法 - Google Patents

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王晓军
王幸
徐泽俊
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邢兴华
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    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01CPLANTING; SOWING; FERTILISING
    • A01C1/00Apparatus, or methods of use thereof, for testing or treating seed, roots, or the like, prior to sowing or planting
    • A01C1/08Immunising seed

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Abstract

本发明公开了一种花生成熟种子的灭菌方法。所述方法挑选籽粒饱满均匀,种皮无破损、未霉变、未发芽的成熟花生种子,将花生成熟种子在常温下用浓度为0.0037~0.0111mol/L的氯气灭菌0.5~1h。相比于常规药剂浸泡灭菌方法,本发明不破坏花生种子及种皮,能有效杀灭花生种传病害中的大部分病菌,而且不影响花生种子的发芽率。

Description

花生成熟种子的灭菌方法
技术领域
本发明属于植物种子灭菌技术领域,涉及一种花生成熟种子的灭菌方法。
背景技术
花生种子在生长期间和收获后会感染、携带各种病原菌,如茎腐病、根腐病、冠腐病、立枯病等真菌类和细菌类的病害。种子带菌是许多花生病害发生的初期感染源,由实验室及田间数据调查显示花生成熟种子表面带有多种病原菌。带病原菌的花生种子如果不经过消毒直接播种会增加致病的概率,从而导致试验结果错误及田间病害发生。
常规的花生成熟种子灭菌方式主要有:(1)用0.1%氯化汞水溶液消毒3min,然后用无菌水冲洗2次;(2)用5%的次氯酸钠水溶液浸泡消毒15min,用无菌水汰洗2次;(3)用75%酒精浸泡1min,在1%次氯酸钠中浸泡15min,用无菌水冲洗3-4次。
但是上述常规消毒灭菌方式存在以下缺陷:①花生成熟种子种皮脆薄,在消毒溶液浸泡及冲洗中易破损,在种子量要求严苛的试验中就会有很大的局限性;②消毒药剂以及无菌水浸泡过的花生成熟种子,其生理生化指标已发生不同程度变化,对花生生理生化及非生物胁迫试验结果产生影响;③升汞溶液毒性较强,能通过呼吸,皮肤接触等方式被人体吸收,危害健康,其次汞为重金属,会造成重金属污染。
发明内容
本发明的目的是提供一种消毒灭菌好,不会损害种皮的花生成熟种子的灭菌方法。
实现本发明目的的技术方案如下:
花生成熟种子的灭菌方法,采用氯气对花生成熟种子进行表面灭菌。
在具体实施例中,本发明利用NaClO溶液和浓盐酸反应所得Cl2对花生成熟种子进行表面灭菌。
为提高灭菌效率,采用浓度为0.0037~0.0111mol/L的Cl2对花生成熟种子表面进行灭菌,优选的Cl2浓度为0.0037~0.0074mol/L。
为获得较好的处理效果,采用Cl2灭菌花生成熟种子的时间为0.5~1.0h。
具体地,上述花生成熟种子的灭菌方法为:将健康饱满的花生成熟种子置于灭菌装置中,密封后,通入NaOCl溶液与浓HCl反应产生的、浓度为0.0037~0.0111mol/L的氯气,对花生成熟种子进行氯气灭菌0.5~1.0h。
优选地,所述的NaOCl溶液中,每100mL含有5~7g活性氯,即活性氯含量为5%~7%。
与现有技术相比,本发明具有以下优点:
(1)采用氯气灭菌法,将花生种皮上的真菌及细菌杀灭,保持种皮完整,花生种子生理生化指标也不发生变化,在不损伤花生成熟种子种皮的前提下进行消毒灭菌,尤其适用于种皮有裂纹的品种;
(2)氯气灭菌效果好,常规液体溶液灭菌处理后,在25℃实验条件下培养5天的污染率为20%,氯气灭菌后,同样条件下培养5天的污染率为5%,大大提高了灭菌成功率;
(3)氯气灭菌法可以促进花生成熟种子提前萌发,在实验室同等条件下,氯气灭菌种子平均露白率为1天,高于液体溶液灭菌的花生种子平均露白率1.25天,也高于未灭菌处理的花生种子平均露白率1.30天。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明作进一步详述。
实施例中采用的灭菌装置参考中国专利【201020587475.2】。灭菌装置为圆柱体,直径为30cm,高为23cm,体积为16.25L。
实施例中,NaClO溶液中,每100ml含有5~7g活性氯,即活性氯含量为5%~7%,换算NaClO摩尔浓度为1.4~2mol/L。浓盐酸中的盐酸含量为35%,即HCl浓度为12mol/L。
表1获得不同浓度Cl2所需浓盐酸体积
实施例1
挑选健康饱满的花生成熟种子,去掉霉变、发芽、畸形及干瘪的花生种子,将徐花13号(大果形)、徐花15号(小果形)、徐花20号(中果形)及小香果(裂纹性)成熟种子放入灭菌装置中。锥形瓶中倒入120ml NaClO溶液中,分液漏斗中加入10ml浓HCl。分液漏斗阀门打开后,浓HCl滴入NaClO溶液中,Cl2浓度为0.0074mol/L,关闭分液漏斗阀门,灭菌0.5h。在无菌培养5天后,调查种子的污染情况及种子生活力。结果为徐花13号种子的污染率为0.83%,发芽率为94%;徐花15号种子的污染率为2.50%,发芽率为93%;徐花20号种子的污染率为1.67%,发芽率为95%;小香果种子的污染率为4.17%,发芽率为91%。氯气灭菌种子平均露白率为1天,高于液体溶液灭菌的花生种子平均露白率1.25天,也高于未灭菌处理的花生种子平均露白率1.30天。
实施例2
花生成熟种子的灭菌预处理及灭菌过程均按实施例1进行,不同之处在于灭菌时间为1h。调查结果为徐花13号种子的污染率为0.83%,发芽率为92%;徐花15号种子的污染率为2.50%,发芽率为90%;徐花20号种子的污染率为1.67%,发芽率为89%;小香果种子的污染率为3.33%,发芽率为90%。氯气灭菌种子平均露白率为1天,高于液体溶液灭菌的花生种子平均露白率1.25天,也高于未灭菌处理的花生种子平均露白率1.30天。
实施例3
花生成熟种子的灭菌预处理及灭菌过程均按实施例1进行,不同之处为滴入的浓HCl溶液的体积为5mL,即Cl2浓度为0.0037mol/L。调查结果为徐花13号种子的污染率为2.85%,发芽率为90%;徐花15号种子的污染率为3.40%,发芽率为91%;徐花20号种子的污染率为3.8%,发芽率为88%;小香果种子的污染率为2.5%,发芽率为90%。
实施例4
花生成熟种子的灭菌预处理及灭菌过程均按实施例1进行,不同之处为滴入的浓HCl溶液的体积为15mL,即Cl2浓度为0.0111mol/L。调查结果为徐花13号种子的污染率为0.85%,发芽率为90%;徐花15号种子的污染率为2.40%,发芽率为91%;徐花20号种子的污染率为1.8%,发芽率为89%;小香果种子的污染率为3.5%,发芽率为90%。
对比例1
花生成熟种子的灭菌预处理及灭菌过程均按实施例1进行,不同之处在于灭菌时间为2h,调查结果为徐花13号种子的污染率为1.67%,发芽率为75%;徐花15号种子的污染率为1.67%,发芽率为77%;徐花20号种子的污染率为2.50%,发芽率为79%;小香果种子的污染率为3.33%,发芽率为78%。氯气灭菌种子平均露白率为1.5天,低于液体溶液灭菌的花生种子平均露白率1.25天,也高于未灭菌处理的花生种子平均露白率1.30天。
对比例2
花生成熟种子的灭菌预处理及灭菌过程均按实施例1进行,不同之处在于灭菌时间为5h,调查结果为徐花13号种子的污染率为0.83%,发芽率为25%;徐花15号种子的污染率为1.67%,发芽率为23%;徐花20号种子的污染率为1.67%,发芽率为27%;小香果种子的污染率为2.50%,发芽率为18%。氯气灭菌种子平均露白率为2天,低于液体溶液灭菌的花生种子平均露白率1.25天,未灭菌处理的花生种子平均露白率1.30天。
对比例3
花生成熟种子的灭菌预处理及灭菌过程均按实施例1进行,不同之处为滴入的浓HCl溶液的体积为20mL,即Cl2浓度为0.0148mol/L。调查结果为徐花13号种子的污染率为0.83%,发芽率为20%;徐花15号种子的污染率为1.8%,发芽率为21%;徐花20号种子的污染率为1.8%,发芽率为27%;小香果种子的污染率为2.50%,发芽率为19%。氯气灭菌种子平均露白率为2.5天,低于液体溶液灭菌的花生种子平均露白率1.25天,未灭菌处理的花生种子平均露白率1.30天。

Claims (7)

1.花生成熟种子的灭菌方法,其特征在于,采用氯气对花生成熟种子进行表面灭菌。
2.根据权利要求1所述的灭菌方法,其特征在于,利用NaClO溶液和浓盐酸反应所得Cl2对花生成熟种子进行表面灭菌。
3.根据权利要求1所述的灭菌方法,其特征在于,采用浓度为0.0037~0.0111mol/L的Cl2对花生成熟种子表面进行灭菌。
4.根据权利要求1所述的灭菌方法,其特征在于,采用浓度为0.0037~0.0074mol/L的Cl2对花生成熟种子表面进行灭菌。
5.根据权利要求1所述的灭菌方法,其特征在于,灭菌时间为0.5~1.0h。
6.根据权利要求1所述的灭菌方法,其特征在于,具体步骤为:将健康饱满的花生成熟种子置于灭菌装置中,密封后,通入NaOCl溶液与浓HCl反应产生的、浓度为0.0037~0.0111mol/L的氯气,对花生成熟种子进行氯气灭菌0.5~1.0h。
7.根据权利要求2或6所述的灭菌方法,其特征在于,所述的NaOCl溶液中,每100mL含有5~7g活性氯。
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CN201905020U (zh) * 2010-11-02 2011-07-27 江苏省农业科学院 一种基于氯气消毒的种子灭菌器
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