CN108314195A - Brevibacillus panacihumi菌在污水净化中的应用 - Google Patents

Abstract

本发明公开了Brevibacillus panacihumi菌在污水净化中的应用。本发明通过实验证实，Brevibacillus panacihumi菌具有易培养、生长速度快、环境适应能力强、污水处理效果好的优点，对人工模拟污水、富营养化水体和养猪污水厌氧出水等均具有较好的净化效果，为污水治理提供了新的菌种源。

Description

Brevibacillus panacihumi菌在污水净化中的应用

技术领域

本发明属于污水净化技术领域，更具体地说，本发明涉及将Brevibacilluspanacihumi菌用于净化污水。

背景技术

随着人类工业化的发展以及农田排水的面源污染不断加剧，水体富营养化问题日趋严重。水体发生富营养化后，水中藻类以及浮游生物的大量繁殖会造成水中溶解氧的消耗，进而使水中鱼类等其他生物缺氧死亡，水质恶化，破坏水生生态系统。富营养化水体的治理成为急需解决的问题。

目前富营养化水体治理和修复有物理、化学和生物等手段。物理方法工程量大、耗能高且不彻底。投加化学药剂短期效果明显，但容易发生水质反弹并造成水体二次污染，会对水体的整体生态环境造成一定的不良影响。微生物富营养化水体修复技术通过微生物之间的食物链关系建立相应的微生态系统，加快水中的能量流动和物质循环，强化微生物对水体中过量氮、磷的吸附、转化和降解圈，以此修复水体自净功能，减轻水体富营养化程度。由于微生物修复技术的投入低于传统环境工程技术，且具有环境友好，无二次污染，处理效率高，处理时间短，操作简便等优势，因而成为关注的焦点。不同种类微生物对各类物质的代谢和利用能力相差较大，所以从环境中寻找环境友好且治污能力强的微生物资源具有重要的现实意义。

发明内容

本发明目的在于：提供了Brevibacillus panacihumi菌在人工模拟污水、富营养化水体、养猪污水和厌氧出水等的净化中的新应用。

本发明将Brevibacillus panacihumi菌用于去除污水中的NH₄ ⁺-N、总磷(TP)和/或化学需氧量(COD)。

相对于现有技术，本发明具有如下有益效果：

本发明通过实验证实，Brevibacillus panacihumi菌具有易培养、生长速度快、环境适应能力强、污水处理效果好的优点，对人工模拟污水、富营养化水体和养猪污水厌氧出水等均具有较好的净化效果，为污水治理提供了新的菌种源。

附图说明

图1为Brevibacillus panacihumi菌的营养琼脂平板菌落图。

图2为Brevibacillus panacihumi菌的光学显微镜观察结果(番红花“O”染色，油镜，×100)。

具体实施方式

为了使本发明的目的、技术方案和有益技术效果更加清晰，以下结合实施例，对本发明进行进一步详细说明。应当理解的是，本说明书中描述的实施例仅仅是为了解释本发明，并非为了限定本发明，实施例的参数、比例等可因地制宜做出选择而对结果并无实质性影响。

实施例1Brevibacillus panacihumi菌的分离、纯化和鉴定

1.样品采集：细菌样品采集自生活污水。将水样移至灭菌容器，快速置于4℃冰箱保存。

2.菌种分离：

2.1初筛：无菌条件下，用移液管吸取10mL水样，加入装有180mL反硝化富集培养基的250mL三角瓶中，于25～28℃、120r/min振荡培养5d，获得第一代富集培养物。将第一代富集培养物转代培养，方法同上，振荡培养，但细菌接种量要逐代减少。转代培养十次左右，获得最终的富集培养物，此时，镜检观察有大量细菌存在。吸取0.1mL富集培养物加入0.8％无菌生理盐水中，得到10^-1，10^-2，10^-3，10^-4，10^-5和10^-6梯度的稀释溶液，吸取不同浓度的稀释溶液各0.2mL涂布于溴百里酚蓝(BTB)选择性培养基，25～28℃培养2～3d。从这几个稀释梯度中挑选出1个最合适的梯度，要求平板上菌落分布清晰均匀(菌落数在20～200个)，从平板上挑取蓝色或周围有蓝色晕圈的单菌落。经重复3次涂布、挑种，至菌落特征一致，无异常菌落出现者，认为是完全纯化。单菌落接种到营养琼脂斜面培养基上培养。从斜面培养基上挑取少量菌体，接种至装有20mL无菌反硝化富集培养基的试管中，以胶塞密闭瓶口，置培养箱中25～28℃恒温培养。每隔一定时间取样1mL，分别加入2只干净试管中，分别滴加二苯胺和格林斯氏试剂0.2mL，根据溶液的颜色变化了解培养基中硝酸盐氮和亚硝酸盐氮的含量变化。依据硝酸盐氮和亚硝酸盐氮的含量变化定性判断反硝化速率，选取数株反硝化速率较高的菌株。将菌株点种于限磷和磷过量的葡萄糖-MOPS培养基，25～28℃培养2～3d。观测蓝白斑的生长情况。挑取在两种培养基上同时都产生蓝斑的菌株。

反硝化富集培养基：KNO₃ 2.0g，MgSO₄·7H₂0 0.2g，K₂HPO₄ 0.5g，酒石酸钾钠20g，Cacl₂0.02g，H₂0 1000mL，pH 7.2。

溴百里酚蓝(BTB)选择性培养基：琼脂20g，KNO₃ 1g，KH₂PO₄ 1g，FeCl₂·6H₂O 0.5g，CaCl₂·7H₂O 0.2g，MgSO₄·7H₂O 1g，琥珀酸钠8.5g，BTB(1％溶于酒精)1mL；蒸馏水1000mL，用1mol/LNaOH调节pH7.0-7.3。

营养琼脂培养基(NA)：蛋白胨10g，牛肉膏3g，氯化钠5g，琼脂15～20g，蒸馏水1000mL，121℃高压灭菌15min。

限磷和磷过量的葡萄糖-MOPS培养基：100ml的10×MOPS混合物(8.372g MOPS+0.717gtricine+30ml去离子水，10mol L^－1的KOH调节pH至7.4，总体积到44ml，0.01％1ml新制的FeSO₄溶液，按下列顺序加溶液：5ml 1.9mol L^－1NH₄Cl，1ml 0.276mol L^－1K₄SO₄，0.025ml 0.02molL^－1CaCl₂·2H₂O，0.21ml 2.5mol L^－1MgCl₂·6H₂O，10ml 5mol L^－1NaCl，0.02ml微量元素混合液，38.7ml去离子水，葡萄糖0.1g)，取50ml置于两个500ml的三角瓶中，向一个三角瓶中加入0.0087g K₂HPO₄，成为限磷培养基；向另一个瓶中加入0.1732gK₂HPO₄，成为磷过量的培养基。向两种培养基中均加入thiamine溶液和去离子水，分别用细菌滤器过滤后，分装于已灭菌的150ml的三角瓶中。

微量元素混合液：MnCl₂·4H₂O 12.98g，CuSO₄·5H₂O 1.83g，ZnSO₄·7H₂O 3.20g，FeSO₄ 0.05g，定容到1L。

2.2复筛：分别将初筛获得的脱氮除磷功能菌接入装有200mL合成污水的500mL三角瓶中，菌体接种量为0.1％(v/v)，以不添加菌剂为空白对照组，均设立三个平行组，室温下采用间歇曝气方式，即曝气2h，停曝5h。96h取样测定水体中NH₄ ⁺-N、TP和COD的含量。选取其中一株对污水处理效果最佳的菌株，将该菌株命名为NY002。NY002菌株处理污水96h，其NH₄ ⁺-N去除率为89％，TP去除率为82％，COD降解率为76％。

合成污水的配制，组成成份(mg/L)：葡萄糖360，酵母膏80.0，KH₂PO₄ 14.0，MgSO₄·7H₂O24.0，NH₄Cl 60.0，CaCl₂ 18.0，NaHCO₃ 24.0，MnSO₄·7H₂O 6.0，FeCl₃ 0.3，NaNO₂ 30.0，KNO₃30.0，溶于1L蒸馏水中，调节pH至7.0。分装于500mL三角瓶中。121℃高压灭菌15min。NH₄ ⁺-N采用纳氏试剂比色法测定；TP采用过硫酸钾氧化-钼酸铵分光光度法测定；COD采用重铬酸盐法测定。

3.菌种的鉴定：取培养至对数生长期的菌液5mL，8000r/min离心15min，倾去上清液，收集菌体。采用CTAB/NaCl法提取菌体基因组DNA。步骤如下：菌体中加入1.35mLTE溶液(pH 8.0)，悬浮，加入0.3mL 10％十二烷基硫酸钠(SDS)和150μL 100mg/ml溶菌酶和150μL100mg/mL蛋白酶K，混匀，60℃水浴1h，加0.25mL 5mol/L NaCl和0.2mLCTAB/NaCl溶液，65℃水浴10min，以等体积的苯酚/氯仿/异戊醇和氯仿/异戊醇各抽提3次，10000r/min离心10min，吸取上清液，加入0.6倍体积异丙醇，放置于-20℃沉淀DNA，DNA溶于50μL TE中，-20℃保存备用。利用1％琼脂糖凝胶电泳检测抽提的基因组DNA完整性。采用16S rRNA基因的通用引物27F(5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3')和1492R(5'-GGTTACCTTGTTACGACTT-3')对提取的DNA进行PCR扩增。将扩增后的DNA产物送至上海生物工程有限公司进行测序。用BLAST软件与NCBI的GenBank数据库收录的的16S rRNA序列进行比对分析，Blast搜索同源序列。NY002的16S rRNAx序列如SEQ ID NO:1所示，与Brevibacillus panacihumi strain C17和Brevibacillus panacihumi strain MK-8的16SrRNA基因序列的相似性均为99％，综合菌株的生理生化以及分子鉴定结果，确定菌株NY002为Brevibacillus panacihumi菌。

Brevibacillus panacihumi菌于2018年3月13日保藏于福建省微生物研究所，其保藏号为：FIM-20180313002。

实施例2Brevibacillus panacihumi菌的制备

(1)斜面培养：

将实施例1所得Brevibacillus panacihumi菌接种至营养琼脂培养基上，于28℃培养箱培养2～3d。营养琼脂培养基配方同实施例1。

(2)发酵培养：

用接种环挑起少量斜面培养基上的Brevibacillus panacihumi菌体接入发酵培养基中，于25～28℃、120r/min的摇床上振荡培养3～5d。

发酵培养基配方(g/L)：胰蛋白胨10.0，酵母粉5.0，氯化钠10.0，余量为水，pH自然，将上述成份混合均匀后，灭菌备用。

实施例3Brevibacillus panacihumi菌对富营养化水体的净化试验

富营养化水取自富营养化池塘水体。取实施例2制备的Brevibacilluspanacihumi菌菌液5～10mL，8000r/min离心5min，弃上清液得到菌体。用0.8％生理盐水洗去菌体上的培养基，用无菌水溶解，离心，重复3次得湿菌体。量取3L富营养化水加入到处理容器中，投加0.05％(v/v)的Brevibacillus panacihumi菌菌体，处理液中NH₄ ⁺-N、TP和COD的初始值分别为：18.3mg/L、1.5mg/L和87mg/L。以不添加菌剂为空白对照组，均设立三个平行组。在室温下采用间歇曝气方式，即曝气2h，停曝5h。96h后取样测定水体中NH₄ ⁺-N、TP和COD的含量。此时空白对照组处理液中的NH₄ ⁺-N、TP和COD的值分别为：15.6mg/L、1.1mg/L和57.7mg/L。而添加菌剂的处理液中的NH₄ ⁺-N、TP和COD的值分别为：1.6mg/L、0.3mg/L和12.2mg/L。

结果表明，与不添加Brevibacillus panacihumi菌相比，添加Brevibacilluspanacihumi菌的处理液中NH₄ ⁺-N去除率为91％，TP去除率为80％，COD降解率为86％。说明Brevibacilluspanacihumi菌对富营养化水的净化效果显著。

实施例4Brevibacillus panacihumi菌对猪场污水厌氧出水的净化试验

取实施例2制备的Brevibacillus panacihumi菌菌液5～10mL，8000r/min离心5min，弃上清液得到菌体。用0.8％生理盐水洗去菌体上的培养基，用无菌水溶解，离心，重复3次得湿菌体。量取3L猪场污水厌氧出水处理液(50mL厌氧出水+150mL自来水)加入到处理容器中，投加0.1％(v/v)的Brevibacillus panacihumi菌菌体，处理液中NH₄ ⁺-N、TP和COD的初始值分别为：339.7mg/L、5.6mg/L和513mg/L。以不添加菌剂为空白对照组，均设立三个平行组。在室温下采用间歇曝气方式，即曝气2h，停曝5h。96h后取样测定水体中NH₄ ⁺-N、TP和COD的含量。此时空白对照组处理液中的NH₄ ⁺-N、TP和COD的值分别为：288.7mg/L、4.4mg/L和395mg/L。而添加菌剂的处理液中的NH₄ ⁺-N、TP和COD的值分别为：74.7mg/L、1mg/L和164.2mg/L。

结果表明，与不添加Brevibacillus panacihumi菌相比，添加Brevibacilluspanacihumi菌的处理液中NH₄ ⁺-N去除率为78％，TP去除率为82％，COD降解率为68％。说明Brevibacilluspanacihumi菌对猪场污水厌氧出水的净化效果显著。

根据上述说明书的揭示和指导，本发明所属领域的技术人员还可以对上述实施方式进行适当的变更和修改。因此，本发明并不局限于上面揭示和描述的具体实施方式，对本发明的一些修改和变更也应当落入本发明的权利要求的保护范围内。此外，尽管本说明书中使用了一些特定的术语，但这些术语只是为了方便说明，并不对本发明构成任何限制。

序列表

<110> 福建省微生物研究所

<120> Brevibacillus panacihumi菌在污水净化中的应用

<160> 1

<170> SIPOSequenceListing 1.0

<210> 1

<211> 1410

<212> DNA/RNA

<213> Brevibacillus panacihumi菌 16S rRNA(Brevibacillus panacihumi)

<400> 1

cctttcgagc ggctggctcc ttgcggttac ctcaccgact tcgggtgttg caaactcccg 60

tggtgtgacg ggcggtgtgt acaaggcccg ggaacgtatt caccgcggca tgctgatccg 120

cgattactag cgattccgac ttcatgtagg cgagttgcag cctacaatcc gaactgagat 180

tggttttaag agattggcgt cctctcgcga ggtagcatcc cgttgtacca accattgtag 240

cacgtgtgta gcccaggtca taaggggcat gatgatttga cgtcatcccc gccttcctcc 300

gtcttgtcga cggcagtctc tctagagtgc ccaactgaat gctggcaact aaagataagg 360

gttgcgctcg ttgcgggact taacccaaca tctcacgaca cgagctgacg acaaccatgc 420

accacctgtc accgctgccc cgaagggaag ctctgtctcc agagcggtca gcgggatgtc 480

aagacctggt aaggttcttc gcgttgcttc gaattaaacc acatgctcca ccgcttgtgc 540

gggcccccgt caattccttt gagtttcagt cttgcgaccg tactccccag gcggagtgct 600

tattgcgtta gctgcggcac tgagggtatt gaaaccccca acacctagca ctcatcgttt 660

acggcgtgga ctaccagggt atctaatcct gtttgctccc cacgctttcg cgcctcagcg 720

tcagttacag accagaaagc cgccttcgcc actggtgttc ctccacatct ctacgcattt 780

caccgctaca cgtggaatac cgctttcctc ttctgcactc aagctacaca gtttccgatg 840

cgaaccgggg ttgagccccg ggctttaaca ccagacttac atagccgcct gcgcgcgctt 900

tacgcccaat aattccggac aacgcttgcc acctacgtat taccgcggct gctggcacgt 960

agttagccgt ggctttctcg tcaggtaccg tcaaggtacc gccctattcg aacggtactt 1020

gttcgtccct gacaacagaa ctttacaatc cgaagacctt catcgttcac gcggcgttgc 1080

tccatcagac tttcgtccat tgtggaaaat tccctactgc tgcctcccgt aggagtctgg 1140

gccgtgtctc agtcccagtg tggccggtca ccctctcagg tcggctacgc atcgtcgcct 1200

tggtgggccg ttaccccacc aactagctaa tgcgccgcag gcccatccat aagtggtagc 1260

ttgcgccacc tttccgtctc ctctcatgcg ggagaagact ctatccggta ttagcataag 1320

tttccctatg ttatcccagt cttatgggca ggttgcctac gtgttactca cccgtccgcc 1380

gtagggtccg aagaccctcg ctcgactgca 1410

Claims (3)

1.Brevibacillus panacihumi菌在去除污水中的NH₄ ⁺-N中的应用。

2.Brevibacillus panacihumi菌在去除污水中的总磷中的应用。

3.Brevibacillus panacihumi菌在降解污水中的化学需氧量中的应用。