CN108251503A - 一种快速构建链特异性rna高通量测序文库的方法 - Google Patents
一种快速构建链特异性rna高通量测序文库的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN108251503A CN108251503A CN201810045993.2A CN201810045993A CN108251503A CN 108251503 A CN108251503 A CN 108251503A CN 201810045993 A CN201810045993 A CN 201810045993A CN 108251503 A CN108251503 A CN 108251503A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- rna
- chain specific
- library
- throughput sequencing
- sequence
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6806—Preparing nucleic acids for analysis, e.g. for polymerase chain reaction [PCR] assay
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6869—Methods for sequencing
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C40—COMBINATORIAL TECHNOLOGY
- C40B—COMBINATORIAL CHEMISTRY; LIBRARIES, e.g. CHEMICAL LIBRARIES
- C40B50/00—Methods of creating libraries, e.g. combinatorial synthesis
- C40B50/06—Biochemical methods, e.g. using enzymes or whole viable microorganisms
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Immunology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明属于基因工程技术领域,尤其涉及一种快速构建链特异性RNA高通量测序文库的方法。本发明中RNA建库完成仅需四步,即片段化,RT、PCR富集和文库纯化。与传统RNA文库构建方法相比,简化了操作流程,时间短,效率高,并且只需2种酶即可产生高质量的链特异性RNA‑seq文库。
Description
技术领域
本发明属于基因工程技术领域,尤其涉及一种快速构建链特异性RNA高通量测序文库的方法。
技术背景
近年来,随着Illumina、Roche 454、SOLiD等二代高通量测序仪的相继推出,测序费用大幅度下降,越来越多的研究者借助二代测序平台得到的大数据,进行更全面、更深入地分析基因组、转录组及蛋白质组之间的交互作用。RNA测序(RNA-seq)已成为生物学和医学不可或缺的工具,RNA序列信息作为机体基因在转录水平的表征,为疾病诊断分析和基因治疗等方法应用提供了重要支持。
目前进行RNA测序需构建文库。以去完rRNA的RNA样品为例,传统的RNA文库构建流程如说明书附图图1所示,包括片段化、纯化、随机引物杂交,cDNA合成、第二条链合成、末端修复、纯化、磷酸化、加A、加接头、纯化、PCR富集和纯化,整个流程操作繁琐,所需试剂种类多,耗时长,致使物料和人力成本偏高,且需多次纯化,每步都有损耗,多步积累致使得率较低。且传统建库方法获得的测序文库无法区分正义链和反义链。
发明内容
针对现有技术存在的问题,本发明提供一种快速构建链特异性RNA高通量测序文库的方法,目的是解决RNA测序建库过程中操作繁琐、物料和人力成本偏高的问题,同时解决RNA方向性问题,具有成本低,时间短,效率高且具有链特异性的优势。
实现本发明目的快速构建链特异性RNA高通量测序文库的方法,按照以下步骤进行:
(1)采用片段化试剂对RNA样本片段化;
(2)在步骤(1)后直接加入逆转录引物、模板跳转引物以及逆转录试剂,实现由RNA逆转录成DNA并加上测序接头;
(3)在步骤(2)后直接加入扩增体系,进行文库的放大;
(4)在步骤(3)后直接加入磁珠对扩增后的文库进行纯化,纯化后的产物即为上机文库。
所述的片段化试剂是RT-Buffer,包括:5~500mM Tris-HCl pH7.0~9.0,5~500mM NaCl,1~100mM DTT,0.1~50mM MgCl2。
所述的RNA样本来源包括人类的全血、新鲜组织、石蜡包埋组织FFPE、口腔脱落细胞、细胞系、粪便、尿液、外泌体以及其它体液,其它动物物种、植物、细菌以及病毒。
所述的RNA包括Total RNA、lncRNA、mRNA、circRNA等。
所述的RNA片段化温度为80℃-95℃。
所述的RNA片段化时间为1分钟-60分钟。
所述的逆转录引物5’端为测序引物序列,3’端为序列特异性引物序列,所述的特异性引物序列包括基因特异性引物、随机引物和多聚物寡核酸,其中基因特异性引物长度为15-60bp,随机引物长度为3-20bp,如:NNNNNN,N=A或C或G或T,多聚物寡核酸长度为10-60bp,如:oligo dT。
所述的模板跳转引物5’端为测序引物序列,3’端为跳转序列,其中跳转序列为DNA或RNA或DNA/RNA混合链,长度为2-10bp,跳转序列的碱基需修饰,所述的修饰包括甲基化修饰、氨基化修饰、磷酸化修饰、硫代修饰、C3Spacer修饰。
所述的逆转录试剂包括:5~500mM Tris-HCl(pH7.0~9.0)、5~500mM NaCl、1~100mM DTT、0.1~50mM MgCl2、0.1~50mM dNTP。
所述的上机文库适用于Roche、Illumina、ThermoFisher、Pacific Biosciences、华大基因、Oxford Nanopore Technologies、华因康、瀚海基因多家高通量测序平台。
与现有技术相比,本发明的特点和有益效果是:
本发明是一种通过巧妙设计接头和试剂来产生链特异性RNA-seq文库的新方法,本发明中RNA建库完成仅需四步,即片段化,RT、PCR富集和文库纯化。与传统RNA文库构建方法相比,简化了操作流程,时间短,效率高,并且只需2种酶产生高质量的链特异性RNA-seq文库。
附图说明
图1是现有技术中RNA文库构建原理图;
图2是本发明RNA文库构建原理图;
图3是本发明RNA文库构建流程图;
图4是本发明实施例1中得到的RNA文库电泳图;
图5是本发明实施例2中得到的RNA文库与传统方法构建文库的对比图;
其中:1:链特异性RNA文库快速构建方法;2:传统RNA文库构建方法。
具体实施方式
下面以Illumina平台为例,结合实施例对本发明进一步说明。
实施例1:
参照图2-3,本实施例快速构建外泌体RNA文库的方法,按照以下步骤进行:
(1)采用片段化试剂对RNA样本片段化;
取4ml血浆按照exoRNeasy Serum/Plasma Maxi Kit(77064,QIAGEN)说明书进行外泌体的分离以及RNA的提取;
在PCR管中配制表1反应体系,热循环仪85℃处理6min,立即置冰上;
表1片段化反应体系
组分 | 体积(μL) |
RNA | 13 |
RT-Buffer | 4 |
1uM RT-HEX | 1 |
总体积 | 18 |
RT-HEX核酸序列为:GTGACTGGAGTTCAGACGTGTGCTCTTCCGATCTNNNNNN;
(2)在步骤(1)后直接加入逆转录引物、模板跳转引物以及逆转录试剂,实现由RNA逆转录成DNA并加上测序接头;
配制表2反应体系,混匀,室温放置10min,热循环仪中42℃反应90min;
表2逆转录反应体系
组分 | 体积(μL) |
步骤(1)产物 | 18 |
RT-Buffer | 1 |
20mM DTT | 2 |
TS-3G | 1 |
10mM dNTP | 3.5 |
RNase Inhibitor | 0.5 |
Reverse Transcriptase | 1 |
总体积 | 27 |
TS-3G核酸序列:ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCTGGG;
(3)在步骤(2)后直接加入扩增体系,进行文库的放大;
按表3配制反应体系,按下面程序进行文库扩增。扩增完成后,取5μL扩增产物进行2%琼脂糖凝胶电泳,140V,25min。
表3 PCR进行文库放大反应体系
组分 | 体积(μL) |
上一步产物 | 23 |
Mix | 25 |
TS-Index | 1 |
TS-Primer1 | 1 |
总体积 | 50 |
文库扩增程序:
98℃45S;
98℃15S,60℃30S,28个循环;
72℃30S;
72℃1min;
4℃forever;
TS-Index核酸序列:
CAAGCAGAAGACGGCATACGAGATAGGCCAGGTGACTGGAGTTC;
TS-Primer1核酸序列:AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACTCTTTCCCTACA;
(4)步骤(3)反应结束后,用无核酶水将RT产物补足至50μL,加入40μL AMPure XPbeads,混匀并室温静置5min,反应管置于磁力架上,静置3-5min,弃上清;加200μL80%乙醇进行洗脱,重复2~3次,用20μL 10mM Tris-HCl进行洗脱,得到纯化后的产物即为上机文库。
文库检测:
1.电泳分析
取2μL纯化后的产物按照Life说明书进行Qubit定量,取5μL进行2%琼脂糖凝胶,140V,25min;得到的电泳分析结果如图4所示,文库主带清楚且主要分布在400bp左右,条带亮度明亮,与预期结果一致。
2.qPCR定量检测
按照KAPA Library Quantifcation Kit(Kapabiosystems,Cat No.KK4854)说明书进行操作,使用Roche Light Cycler 480实时荧光定量PCR仪检测,参照试剂盒里的标准品进行文库浓度的绝对定量,结果如表4所示。
表4 qPCR检测结果
样品 | RNA文库 |
qPCR浓度(nM) | 75 |
从表4可以看出建库文库达到上机要求浓度,可用于上机测试。
3.上机质控数据
按照NextSeq测序仪操作流程进行文库变性、稀释以及测序,结果如表5所示。
表5测序数据质控
从表5可以看出文库比对到基因组序列比例为98%,符合上机文库质量要求。
实施例2
本实施例是对快速链特异性RNA文库构建方法与传统RNA文库构建方法进行对比,具体步骤是:
1.快速链特异性RNA文库构建方法
去除rRNA样本按照实施例1中方法进行链特异性RNA文库快速构建。
2.传统RNA文库构建方法
取相同去除rRNA样本按照VAHTS Total RNA-seq(H/M/R)Library Prep Kit forIllumina(NR603,南京诺唯赞)说明书进行文库构建,包括以下步骤:
2.1通过温控和金属离子对RNA进行片段化,纯化;
2.2第一链cDNA合成;
2.3第二链cDNA合成;
2.4采用VAHTS DNA Clean Beads对步骤2.2.3产物进行纯化;
2.5末端修复,纯化;
2.6加dA-Tailing;
2.7接头连接;
2.8磁珠分选纯化;
2.9 PCR富集,纯化。
3.qPCR质检及上机测序
按照实施例1中方法对流程2.1和2.2的文库进行qPCR质控和上机测序。
4.实验结果
4.1文库电泳检测分析结果
从琼脂糖凝胶分析结果(图5)可知,本发明的链特异性RNA文库快速构建方法与传统RNA建库方法所获得的文库主带分布差别不大,条带亮度无明显差别。
4.2 qPCR文库定量分析结果
表6 qPCR检测结果
样品 | 快速建库法 | 传统建库法 |
qPCR浓度(nM) | 83 | 81 |
由表6可知,链特异性RNA文库快速构建方法和传统RNA文库构建方法构建的文库均符合上机测序要求,链特异性快速建库法略好于传统方法。
4.3上机质控数据
表7测序数据质控
从表7对比结果看,在相当数据产出量情况下,快速建库法要略好于传统建库法。
4.4链特异性快速建库法与传统建库法对比
表8测序数据质控
建库方法 | 传统建库法 | 链特异性建库法 |
开盖次数 | 11 | 6 |
转管次数 | 7 | 4 |
实验步骤 | 14 | 5 |
实验用时(h) | 6.5 | 4 |
实验成本 | 高 | 低 |
从表8对比结果可知,链特异性RNA文库快速构建法既简化了实验操作流程和步骤,又缩短了时间,节省了人力成本,同时也可避免样本间污染和样本混样,降低因建库流程复杂引发错误操作风险,提高实验结果的可重复性和准确性。
Claims (10)
1.一种快速构建链特异性RNA高通量测序文库的方法,其特征在于按照以下步骤进行:
(1)采用片段化试剂对RNA样本片段化;
(2)在步骤(1)后直接加入逆转录引物、模板跳转引物以及逆转录试剂,实现由RNA逆转录成DNA并加上测序接头;
(3)在步骤(2)后直接加入扩增体系,进行文库的放大;
(4)在步骤(3)后直接加入磁珠对扩增后的文库进行纯化,纯化后的产物即为上机文库。
2.根据权利要求1所述的一种快速构建链特异性RNA高通量测序文库的方法,其特征在于所述的片段化试剂是RT-Buffer,包括:5~500mM Tris-HCl pH7.0~9.0,5~500mMNaCl,1~100mM DTT,0.1~50mM MgCl2。
3.根据权利要求1所述的一种快速构建链特异性RNA高通量测序文库的方法,其特征在于所述的RNA样本来源包括人类的全血、新鲜组织、石蜡包埋组织FFPE、口腔脱落细胞、细胞系、粪便、尿液、外泌体以及其它体液,其它动物物种、植物、细菌以及病毒。
4.根据权利要求1所述的一种快速构建链特异性RNA高通量测序文库的方法,其特征在于所述的RNA包括Total RNA、lncRNA、mRNA、circRNA等。
5.根据权利要求1所述的一种快速构建链特异性RNA高通量测序文库的方法,其特征在于所述的RNA片段化温度为80℃-95℃。
6.根据权利要求1所述的一种快速构建链特异性RNA高通量测序文库的方法,其特征在于所述的RNA片段化时间为1分钟-60分钟。
7.根据权利要求1所述的一种快速构建链特异性RNA高通量测序文库的方法,其特征在于所述的逆转录引物5’端为测序引物序列,3’端为序列特异性引物序列,所述的特异性引物序列包括基因特异性引物、随机引物和多聚物寡核酸,其中基因特异性引物长度为15-60bp,随机引物长度为3-20bp,如:NNNNNN,N=A或C或G或T,多聚物寡核酸长度为10-60bp,如:oligo dT。
8.根据权利要求1所述的一种快速构建链特异性RNA高通量测序文库的方法,其特征在于所述的模板跳转引物5’端为测序引物序列,3’端为跳转序列,其中跳转序列为DNA或RNA或DNA/RNA混合链,长度为2-10bp,跳转序列的碱基需修饰,所述的修饰包括甲基化修饰、氨基化修饰、磷酸化修饰、硫代修饰、C3Spacer修饰。
9.根据权利要求1所述的一种快速构建链特异性RNA高通量测序文库的方法,其特征在于所述的逆转录试剂包括:5~500mM Tris-HCl(pH7.0~9.0)、5~500mM NaCl、1~100mMDTT、0.1~50mM MgCl2、0.1~50mM dNTP。
10.根据权利要求1所述的一种快速构建链特异性RNA高通量测序文库的方法,其特征在于所述的上机文库适用于Roche、Illumina、ThermoFisher、Pacific Biosciences、华大基因、Oxford Nanopore Technologies、华因康、瀚海基因多家高通量测序平台。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201810045993.2A CN108251503A (zh) | 2018-01-17 | 2018-01-17 | 一种快速构建链特异性rna高通量测序文库的方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201810045993.2A CN108251503A (zh) | 2018-01-17 | 2018-01-17 | 一种快速构建链特异性rna高通量测序文库的方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN108251503A true CN108251503A (zh) | 2018-07-06 |
Family
ID=62740726
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201810045993.2A Pending CN108251503A (zh) | 2018-01-17 | 2018-01-17 | 一种快速构建链特异性rna高通量测序文库的方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN108251503A (zh) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN110511978A (zh) * | 2019-09-09 | 2019-11-29 | 北京优迅医学检验实验室有限公司 | Ffpe样本dna文库及其构建方法 |
CN110656156A (zh) * | 2019-10-14 | 2020-01-07 | 湖南大地同年生物科技有限公司 | 一种超低频突变核酸片段检测方法、文库构建方法、引物设计方法和试剂 |
CN112176031A (zh) * | 2020-09-18 | 2021-01-05 | 上海英基生物科技有限公司 | 一种去核糖体rna测序文库的构建方法及试剂盒 |
CN113355391A (zh) * | 2021-06-04 | 2021-09-07 | 翌圣生物科技(上海)股份有限公司 | 一种用于靶向ffpe rna建库的方法 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105658815A (zh) * | 2013-10-17 | 2016-06-08 | 克隆技术实验室有限公司 | 用于添加适配体至核酸的方法及用于实施所述方法的组合物 |
-
2018
- 2018-01-17 CN CN201810045993.2A patent/CN108251503A/zh active Pending
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105658815A (zh) * | 2013-10-17 | 2016-06-08 | 克隆技术实验室有限公司 | 用于添加适配体至核酸的方法及用于实施所述方法的组合物 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
薛建平等: "《植物基因工程》", 30 June 2008, 中国科学技术大学出版社 * |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN110511978A (zh) * | 2019-09-09 | 2019-11-29 | 北京优迅医学检验实验室有限公司 | Ffpe样本dna文库及其构建方法 |
CN110656156A (zh) * | 2019-10-14 | 2020-01-07 | 湖南大地同年生物科技有限公司 | 一种超低频突变核酸片段检测方法、文库构建方法、引物设计方法和试剂 |
CN112176031A (zh) * | 2020-09-18 | 2021-01-05 | 上海英基生物科技有限公司 | 一种去核糖体rna测序文库的构建方法及试剂盒 |
CN113355391A (zh) * | 2021-06-04 | 2021-09-07 | 翌圣生物科技(上海)股份有限公司 | 一种用于靶向ffpe rna建库的方法 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Van Dijk et al. | Ten years of next-generation sequencing technology | |
Takahashi et al. | 5′ end–centered expression profiling using cap-analysis gene expression and next-generation sequencing | |
Lipson et al. | Quantification of the yeast transcriptome by single-molecule sequencing | |
US8999677B1 (en) | Method for differentiation of polynucleotide strands | |
Fox et al. | Applications of ultra-high-throughput sequencing | |
CA3065172A1 (en) | A method of amplifying single cell transcriptome | |
US20160177359A1 (en) | Method for controlled dna fragmentation | |
US20100035249A1 (en) | Rna sequencing and analysis using solid support | |
US11198865B2 (en) | Splinted ligation adapter tagging | |
US10738352B2 (en) | Method for analyzing nucleic acid derived from single cell | |
CN108251503A (zh) | 一种快速构建链特异性rna高通量测序文库的方法 | |
CN109593757B (zh) | 一种探针及其适用于高通量测序的对目标区域进行富集的方法 | |
JP2009072062A (ja) | 核酸の5’末端を単離するための方法およびその適用 | |
CN105200041B (zh) | 用于构建单细胞转录组测序文库的试剂盒及文库构建方法 | |
EP3607065A1 (en) | Method and kit for constructing nucleic acid library | |
CN108588176A (zh) | 一种基于单链DNA构建R-loop高通量测序文库的方法 | |
CN115997032A (zh) | 用于检测单细胞中全转录组的方法 | |
CN113463202B (zh) | 一种新的rna高通量测序的方法、引物组和试剂盒及其应用 | |
US11555185B2 (en) | Target enrichment | |
CN108588200A (zh) | 一种R-Loop高通量测序文库构建方法 | |
CN108130366B (zh) | 一种构建人miRNA测序文库进行高通量测序的方法 | |
US11136576B2 (en) | Method for controlled DNA fragmentation | |
CN108611346A (zh) | 一种单细胞基因表达量检测文库的构建方法 | |
Matteau et al. | Precise identification of genome-wide transcription start sites in bacteria by 5′-rapid amplification of cDNA ends (5′-RACE) | |
Shell et al. | RNA sequencing for transcript 5′-end mapping in mycobacteria |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20180706 |