CN108148870B - 一种提高壳聚糖体外转运siRNA效率的方法 - Google Patents

一种提高壳聚糖体外转运siRNA效率的方法 Download PDF

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    • C12N15/87Introduction of foreign genetic material using processes not otherwise provided for, e.g. co-transformation

Abstract

本发明公开了一种提高壳聚糖体外转运siRNA效率的方法,属于体外siRNA转运的技术领域。包括以下步骤:1)采用直接混合的方法制备壳聚糖/siRNA复合物;2)将步骤1)中形成的壳聚糖/siRNA复合物在含钙镁的汉克缓冲盐溶液(HBSS)中转染细胞。同时,本发明方法还提出“一步法”转染,即不采用预混合的方式,直接将壳聚糖溶液和siRNA同样按比例用量加入到含钙镁HBSS中转染细胞。该方法操作简单,实用性强,通过该方法能实现壳聚糖在多种细胞系中对siRNA的高效转运,大大降低了体外siRNA转运载体的成本。

Description

一种提高壳聚糖体外转运siRNA效率的方法
技术领域
本发明属于体外siRNA转运技术领域,涉及优化壳聚糖体外转运方法,具体涉及一种提高壳聚糖体外转运siRNA效率的方法。
背景技术
RNA干扰技术是目前最为广泛应用的基因负向干预方法,不仅可以用于实验室基因沉默工具,同时也广泛的应用于siRNA相关治疗药物的研发。在RNA干扰技术的研究中,开发高效、安全、经济的siRNA转运载体是研究的主要方向。目前体外商品化的siRNA转运载体较多,包括lipofectamine 2000、RNAiMAX、N-TER Nanoparticle siRNA TransfectionSystem、MagicTMsiRNA Transfection Reagent、jetPEI等,但具有价格昂贵、操作繁琐等缺点。因此,大量的研究集中于研发更为廉价的载体,其中壳聚糖具有潜在的应用价值。
然而虽然壳聚糖/siRNA被证实具有一定的基因沉默效果,但总体而言效率不佳。大部分学者因此抛弃了壳聚糖,也有学者尝试对壳聚糖进行化学修饰以提高其转染效率,但这些修饰无形中增加了经济成本。因此有必要转换思路,从其他方面进行思考尝试。
发明内容
本发明的目的在于提供一种提高壳聚糖体外转运siRNA效率的方法,该方法操作简便、提升效率显著、经济成本极低,具有很强的实用性,通过该方法进行细胞转染,可以实现高效、简便、廉价地转染细胞的目的。
本发明是通过以下技术方案来实现:
本发明公开了一种提高壳聚糖体外转运siRNA效率的方法,包括以下步骤:
1)分别配制壳聚糖溶液和siRNA溶液,将壳聚糖溶液和siRNA溶液按10:1的体积比混合均匀,形成壳聚糖/siRNA复合物;
2)将步骤1)形成的壳聚糖/siRNA复合物在含钙镁的汉克缓冲盐溶液中转染细胞。
优选地,壳聚糖溶液的浓度为0.8~1mg/ml,siRNA溶液的浓度为20μM。
优选地,所用壳聚糖的分子量为30~150kDa,脱乙酰度在85%~95%之间。
更进一步优选地,选用的壳聚糖的分子量(kDa)/脱乙酰度(%)分别为30/85、30/95、150/85、150/95;
优选地,溶解壳聚糖采用pH为5.5且浓度为0.2M的醋酸钠缓冲液;溶解siRNA采用RNase-free水。
优选地,步骤1)中,利用带正电的壳聚糖分子和带负电的siRNA分子静电作用力,采用直接混合形成转染复合物,具体是将壳聚糖溶液和siRNA溶液采用直接混合静电相互作用的方法,震荡30s,形成壳聚糖/siRNA复合物。
优选地,步骤2)中,在含钙镁的汉克缓冲盐溶液中转染细胞,具体操作为:
将细胞提前一天接种于24孔板内,在转染当天将培养液换成含钙镁的HBSS,随后加入壳聚糖/siRNA复合物,具体的用量以转染使用的培养液体积计算,使得siRNA的终浓度为40nM,转染4小时后换成普通培养液。
更进一步优选地,本发明将稳定表达绿色荧光蛋白GFP的Hela细胞、H1299细胞以及人间充质干细胞hMSC提前一天接种到24孔板内。
本发明还公开了一种提高壳聚糖体外转运siRNA效率的方法,即一步法,包括以下步骤:
1)分别配制壳聚糖溶液和siRNA溶液;
2)将壳聚糖溶液和siRNA溶液按10:1的体积比加入含钙镁的汉克缓冲盐溶液中转染细胞。
优选地,所述壳聚糖溶液的浓度为0.8~1mg/ml,溶解壳聚糖采用pH为5.5且浓度为0.2M的醋酸钠缓冲液;所述siRNA溶液的浓度为20μM,溶解siRNA采用RNase-free水。
优选地,所用壳聚糖的分子量为30~150kDa,脱乙酰度在85%~95%之间。
优选地,步骤2)中,在含钙镁的汉克缓冲盐溶液中转染细胞,具体操作为:
将细胞提前一天接种于24孔板内,在转染当天将培养液换成含钙镁的HBSS,将壳聚糖溶液与siRNA溶液分别加入HBSS中,使得siRNA终浓度为40nM,转染4小时后换成普通培养液。
与现有技术相比,本发明具有以下有益的技术效果:
本发明公开的提高壳聚糖体外转运siRNA效率的方法,首先配制壳聚糖溶液和siRNA溶液;然后直接在含钙镁的HBSS中进行细胞转染,可以显著提升靶基因沉默效率。本发明公开的方法不依赖与壳聚糖与siRNA预混合形成复合物,直接按比例加入HBSS中进行转染,同样可以获得高效的转染效率。本发明显著改善并简化了壳聚糖转运siRNA的方法,操作简单,实用性强,通过该方法能实现壳聚糖在多种细胞系中对siRNA的高效转运,大大降低了体外siRNA转运载体的成本,为开发廉价的siRNA转运体系提供了新思路。
附图说明
图1为不同参数壳聚糖/siRNA在不同转染条件下对Hela细胞靶基因的沉默效率;
图2为不同参数壳聚糖/siRNA在不同转染条件下对H1299细胞靶基因的沉默效率;
图3为不同参数壳聚糖/siRNA在不同转染条件下对hMSC细胞靶基因的沉默效率;
图4为在倒置荧光显微镜下观察细胞采用“一步法”对hMSC转染效率结果图。
具体实施方式
下面结合具体的实施例对本发明做进一步的详细说明,所述是对本发明的解释而不是限定。
本发明公开的提高壳聚糖体外转运siRNA效率的方法,包括以下步骤:
(1)配制壳聚糖和siRNA溶液
①、分别配制0.2M醋酸和0.2M醋酸钠,将二者按照1:10比例混合,形成pH 5.5的缓冲液;称取适量的壳聚糖用缓冲液溶解,使得浓度为1mg/ml,壳聚糖的分子量(kDa)/脱乙酰度(%)分别为30/85、30/95、150/85、150/95;采用孔径0.22μm的一次性针状滤器过滤除菌;
②、实验采用的靶向绿色荧光蛋白GFP的siRNA(siGFP)序列
正义序列:
5’-GACGUAAACGGCCACAAGUUC-3’;
反义序列:
5’-ACUUGUGGCCGUUUACGUCGC-3’;
阴性对照(siNC)序列
正义序列:
5’-UCUCCGAACGUGUCACGUTT-3’;
反义序列:
5’-ACGUGACACGUUCGGAGAATT-3’。
溶解siRNA采用RNase-free的水,浓度为20μM。
(2)制备壳聚糖/siRNA复合物
取1000μl壳聚糖溶液与100μl siRNA溶液混合,震荡30s,形成壳聚糖/siRNA复合物备用。
(3)细胞转染与基因沉默效率检测
具体方法:
①、在提前1天接种稳定表达GFP的细胞于24孔板内,包括Hela,H299和hMSC,密度为2×104每孔;
②、将步骤(2)制备的壳聚糖/siRNA复合物加入转染培养液中,使得siRNA终浓度为40nM,并使用脂质体2000作为阳性对照;转染培养基分别采用含钙镁的HBSS;
③、转染4小时后换成正常培养液,48小时后流式细胞仪检测GFP沉默效率。
本发明还公开了采用“一步法”转染,具体包括以下步骤:
①、在提前1天接种稳定表达GFP的hMSC细胞于24孔板内,密度为2×104每孔;
②、将培养液换成HBSS,壳聚糖与siRNA分别按照步骤(2)的比例加入HBSS中,使得siRNA终浓度为40nM;
③、转染4小时后换成正常培养液,48小时后流式细胞仪检测GFP沉默效率。
实验方法:
1、细胞培养与接种
具体步骤如下:
(1)稳定表达GFP的Hela细胞和H1299细胞培养在RPMI 1640+10%胎牛血清+1%双抗中;稳定表达GFP的hMSC细胞培养在MEM+10%胎牛血清+1%双抗中;培养液每周换2次。
(2)待细胞密度长至80%左右时用0.25%胰蛋白酶+EDTA在37℃消化后离心,制备成20000/ml细胞悬液;在24孔板内每孔加入800μl细胞悬液进行细胞接种。
2、壳聚糖/siRNA复合物制备
具体操作为:按照24孔板每孔计算,取12μl壳聚糖溶液与1.2μl siRNA溶液混合,震荡30s,形成壳聚糖/siRNA复合物。
3、细胞转染实验
具体步骤如下:
(1)细胞接种培养24小时。
(2)吸弃培养液后用PBS漂洗细胞,加入600μl含钙镁的HBSS。
(3)在HBSS中加入壳聚糖/siRNA复合物或者直接将同样比例的壳聚糖与siRNA分别加入,转染4小时后分别换成各自的完整培养液。
4、流式细胞仪
具体步骤如下:
(1)将细胞用0.25%胰蛋白酶+EDTA消化后离心,小心吸弃上清,每孔用300μl的PBS重悬后转移至流式细胞仪分析管内。
(2)上机检测,依据SS与FS进行圈选细胞,分析GFP荧光强度和分布,计算GFP沉默效率。参见图1、2和3,分别是GFP沉默效率分别在Hela、H1299和hMSC中的结果,可以看出,具有不同参数的壳聚糖/siRNA复合物均在HBSS中的沉默效率最强,与脂质体2000具有同等效率,这提示可以用廉价的壳聚糖代替脂质体2000进行体外细胞转染。
5、荧光显微镜
具体步骤如下:
(1)在转染结束48小时后,吸弃培养液加入PBS。
(2)直接在倒置荧光显微镜下观察细胞,固定曝光时间拍摄GFP绿色荧光通道的细胞荧光强度。参见图4,为采用“一步法”转染观察,可见将壳聚糖与siRNA分别按比例加入培养液中进行细胞转染,同样可以实现高效的GFP基因沉默效率,这提示采用廉价的壳聚糖代替脂质体2000进行体外细胞转染还具有极为便捷的优势,无需先制备转染复合物。
综上所述,本发明提出了一种能够大幅度提升壳聚糖/siRNA转染细胞效率的方法,先采用常规方法制备壳聚糖/siRNA复合物;然后在含钙镁的HBSS溶液中进行细胞转染可以显著提升转染效率。同时,本发明尝试不采用预混合的方法,直接将壳聚糖与siRNA按照比例加入HBSS中进行细胞转染,获得了相似的转染效率。本发明显著改善并简化了壳聚糖转运siRNA的方法,为开发廉价的siRNA转运体系提供了新思路。

Claims (4)

1.一种提高壳聚糖体外转运siRNA效率的方法,其特征在于,包括以下步骤:
1)分别配制壳聚糖溶液和siRNA溶液,将壳聚糖溶液和siRNA溶液按10:1的体积比混合均匀,形成壳聚糖/siRNA复合物;
其中,所用壳聚糖的分子量为30kDa,脱乙酰度在85%~95%之间;壳聚糖溶液的浓度为0.8~1mg/ml,siRNA溶液的浓度为20μM;将壳聚糖溶液和siRNA溶液采用直接混合静电相互作用的方法,震荡30s,形成壳聚糖/siRNA复合物;
2)将步骤1)形成的壳聚糖/siRNA复合物在含钙镁的汉克缓冲盐溶液中转染细胞,具体操作为:
将细胞提前一天接种于24孔板内,在转染当天将培养液换成含钙镁的HBSS,随后加入壳聚糖/siRNA复合物,使得siRNA的终浓度为40nM,转染4小时后换成普通培养液。
2.根据权利要求1所述的提高壳聚糖体外转运siRNA效率的方法,其特征在于,溶解壳聚糖采用pH为5.5且浓度为0.2M的醋酸钠缓冲液;溶解siRNA采用RNase-free水。
3.一种提高壳聚糖体外转运siRNA效率的方法,其特征在于,包括以下步骤:
1)分别配制壳聚糖溶液和siRNA溶液;
其中,所用壳聚糖的分子量为30kDa,脱乙酰度在85%~95%之间;所述壳聚糖溶液的浓度为0.8~1mg/ml,所述siRNA溶液的浓度为20μM;
2)将壳聚糖溶液和siRNA溶液按10:1的体积比加入含钙镁的汉克缓冲盐溶液中转染细胞,具体操作为:
将细胞提前一天接种于24孔板内,在转染当天将培养液换成含钙镁的HBSS,将壳聚糖溶液与siRNA溶液分别加入HBSS中,使得siRNA终浓度为40nM,转染4小时后换成普通培养液。
4.根据权利要求3所述的提高壳聚糖体外转运siRNA效率的方法,其特征在于,溶解壳聚糖采用pH为5.5且浓度为0.2M的醋酸钠缓冲液;溶解siRNA采用RNase-free水。
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Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1884551A (zh) * 2006-07-11 2006-12-27 湖北大学 一种靶向壳聚糖基因载体及其制备和应用
CN101417134A (zh) * 2008-05-13 2009-04-29 中国药科大学 一种透明质酸修饰的新型三元结构非病毒基因传输系统及其应用
CN104018199A (zh) * 2014-06-11 2014-09-03 中国人民解放军第四军医大学 一种在种植体表面植入功能性生物涂层的方法
CN104258416A (zh) * 2014-09-25 2015-01-07 山东大学 基于寡聚核苷酸共递送药物和基因的纳米载体及制备方法

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6886568B2 (en) * 1998-04-08 2005-05-03 The Johns Hopkins University Method for fabricating cell-containing implants
CN101940551B (zh) * 2009-07-08 2011-12-21 复旦大学 一种巯基化壳聚糖季胺盐自组装纳米粒、其制备方法及应用
WO2011069529A1 (en) * 2009-12-09 2011-06-16 Curevac Gmbh Mannose-containing solution for lyophilization, transfection and/or injection of nucleic acids
EP2600900A4 (en) * 2010-08-06 2014-11-19 Univ Illinois SUPRAMOLECULAR MULTIPLEX AGGREGATES FOR THE NONVIRAL OUTPUT OF GENETIC MATERIALS
AU2013270685B2 (en) * 2012-06-08 2017-11-30 Nitto Denko Corporation Lipids for therapeutic agent delivery formulations
CN111467570A (zh) * 2020-04-27 2020-07-31 华南理工大学 一种负载microRNA组织工程支架及其制备方法

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1884551A (zh) * 2006-07-11 2006-12-27 湖北大学 一种靶向壳聚糖基因载体及其制备和应用
CN101417134A (zh) * 2008-05-13 2009-04-29 中国药科大学 一种透明质酸修饰的新型三元结构非病毒基因传输系统及其应用
CN104018199A (zh) * 2014-06-11 2014-09-03 中国人民解放军第四军医大学 一种在种植体表面植入功能性生物涂层的方法
CN104258416A (zh) * 2014-09-25 2015-01-07 山东大学 基于寡聚核苷酸共递送药物和基因的纳米载体及制备方法

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Autophagy plays a dual role during intracellular siRNA delivery by lipoplex and polyplex nanoparticles;Wen Song等;《Acta Biomaterialia》;20170517;第58卷;第197页第2.2-2.3节 *
The influence of polymeric properties on chitosan/siRNA nanoparticle formulation and gene silencing;Xiudong Liu等;《Biomaterials》;20070228;第28卷(第6期);第1281页第2.2节 *
Wen Song等.Autophagy plays a dual role during intracellular siRNA delivery by lipoplex and polyplex nanoparticles.《Acta Biomaterialia》.2017,第58卷 *
壳聚糖包裹siRNA 在小鼠牙胚发育研究中的应用;倪锦雯等;《临床口腔医学杂志》;20140331;第30卷(第3期);第146-148页 *

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