CN107630292A - 一种负载亚精胺的生物活性膜及其静电纺丝制备方法 - Google Patents

一种负载亚精胺的生物活性膜及其静电纺丝制备方法 Download PDF

Info

Publication number
CN107630292A
CN107630292A CN201710838259.7A CN201710838259A CN107630292A CN 107630292 A CN107630292 A CN 107630292A CN 201710838259 A CN201710838259 A CN 201710838259A CN 107630292 A CN107630292 A CN 107630292A
Authority
CN
China
Prior art keywords
spinning
spermidine
film
solution
electrostatic spinning
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CN201710838259.7A
Other languages
English (en)
Other versions
CN107630292B (zh
Inventor
刘镇宁
鲁博
梁嵩
秦政
冯帆
吕燕婷
孙航
李家亿
卢国龙
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Jilin University
Original Assignee
Jilin University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Jilin University filed Critical Jilin University
Priority to CN201710838259.7A priority Critical patent/CN107630292B/zh
Publication of CN107630292A publication Critical patent/CN107630292A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN107630292B publication Critical patent/CN107630292B/zh
Expired - Fee Related legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Abstract

一种负载亚精胺的生物活性膜及其静电纺丝制备方法,属于生物活性膜领域。哺乳动物受精过程中,雄性精子必须克服雌性的排异反应,方能与卵子结合。亚精胺最初是从精液中分离得到的一种多胺化合物,具有抗排异、抗氧化、抑制炎症、抑制细胞坏死、延长个体寿命等作用,因此,本发明利用仿生思想,将亚精胺用于人工皮肤及其它人工组织和器官可能为生物制造领域排异炎症反应的解决提供一个新思路,基于静电纺丝技术,引入具有良好生物活性的亚精胺,可获得生物学性能良好的薄膜。亚精胺的负载方式可以为物理混合或化学反应方法。

Description

一种负载亚精胺的生物活性膜及其静电纺丝制备方法
技术领域
本发明属于生物活性膜领域,具体涉及一种负载亚精胺的生物活性膜及其静电纺丝制备方法。
背景技术
仿生化设计是生物制造领域近年来的一种发展趋势,原理在于借助天然生物活性分子实现更好的生物相容性和生理功能。哺乳动物受精过程中,雄性精子必须克服雌性的排异反应,方能与卵子结合。亚精胺最初是从精液中分离得到的一种多胺化合物,具有抗排异、抗氧化、抑制炎症、抑制细胞坏死、延长个体寿命等作用,因此,利用仿生思想,将亚精胺用于人工皮肤及其它人工组织和器官可能为生物制造领域排异炎症反应的解决提供一个新思路。
静电纺丝是指在高压静电场下,使带电荷的高分子溶液或熔体流动和变形,后经溶剂挥发或熔体冷却,得到连续纤维的加工技术,是目前得到纳米纤维的基本方法。静电纺丝纤维具有纤维直径小,比表面积大,具有多孔结构等显著特点。由于静电纺丝纤维薄膜具有高的表面积和孔隙率,可作为种子细胞支架材料,模仿细胞外基质的结构和功能,为细胞提供结构支撑,引导组织再生。人体细胞能够在纳米纤维周围有机结合,起到模板作用,有利于细胞粘附。一些新型聚合物和生物来源的聚合物制得的静电纺丝纳米纤维薄膜,可应用于创伤修复、药物传递、组织工程、人造器官等方面。有研究发现细胞在纳米纤维薄膜上的生长,可直接用于治疗创伤和皮肤的烧伤问题。
基于静电纺丝技术,获得纺丝薄膜,引入具有良好生物活性的亚精胺,便可获得生物学性能良好的薄膜。
发明内容
本发明的目的是提供一种负载亚精胺的生物活性膜及其静电纺丝制备方法,其是基于静电纺丝技术,引入具有良好生物活性的亚精胺分子,获得生物学性能良好的一种新型薄膜。
本发明所述的一种负载亚精胺的生物活性膜的静电纺丝制备方法(方法一,亚精胺的负载方式为物理混合),其步骤如下:
1)纺丝液的配制:取助纺剂聚乙烯醇、多糖及其衍生物(如壳聚糖、甲壳素、纤维素、糖胺聚糖或硫酸软骨素等)、胶原蛋白、亚精胺于稀乙酸水溶液中,然后在50~80℃水浴、转速500~1000r/min的条件下加热搅拌0.5~1h,直至全部溶解,再超声除去气泡,室温下静置1~3h,得到纺丝液;得到的纺丝液中,助纺剂的质量分数为6%~10%,多糖及其衍生物的质量分数为1%~3%,胶原蛋白的质量分数为6%~10%,亚精胺的质量分数0.1%~5%;
2)用注射器吸取适量纺丝液,调节注射器金属针头和接收滚轴间的距离为10~20cm,纺丝温度为20~30℃,纺丝湿度为25~40%,注射泵流速为0.1~1.5mm/min;将盖玻片粘在接收滚轴上,接收滚轴接负电压,调节负电压至-3kV,注射器金属针头接正电压,缓慢提高正电压为20~28kV至静电纺丝稳定,纺丝2~5h,在盖玻片上获得静电纺丝薄膜,薄膜厚度为0.5~1.0mm;
3)将静电纺丝薄膜置于20~30mL的PBS溶液(10g氯化钠、0.25g氯化钾、1.44g磷酸氢二钠、0.25g磷酸二氢钾,于去离子水中溶解,用去离子水定容至1000mL)中静置浸泡1~3h,获得在水溶液中可稳定存在的负载亚精胺的生物活性膜。
本发明所述的一种负载亚精胺的生物活性膜的静电纺丝制备方法(方法二,亚精胺负载方式为化学反应),其步骤如下:
1)纺丝液的配制:取助纺剂聚乙烯醇、多糖及其衍生物(如壳聚糖、甲壳素、纤维素、糖胺聚糖或硫酸软骨素等)、胶原蛋白于稀乙酸水溶液(乙酸体积分数为1%~3%)中,然后在50~80℃水浴、转速500~1000r/min的条件下加热搅拌0.5~1h,直至全部溶解,再超声除去气泡,室温下静置1~3h,得到纺丝液;在得到的纺丝液中,助纺剂的质量分数为6%~10%,多糖及其衍生物的质量分数为1%~3%,胶原蛋白的质量分数为6%~10%;
2)用注射器吸取适量纺丝液,调节注射器金属针头和接收滚轴间的距离为10~20cm,纺丝温度为20~30℃,纺丝湿度为25~40%,注射泵流速为0.1~1.5mm/min;将盖玻片粘在接收滚轴上,接收滚轴接负电压,调节负电压至-3kV,注射器接正电压,缓慢提高正电压为20~28kV至静电纺丝稳定,纺丝2~5h,在盖玻片上获得静电纺丝薄膜,薄膜厚度为0.5~1.0mm;
3)取适量小分子二醛(如对苯二甲醛、戊二醛、己二醛、丁二醛、丙二醛或乙二醛等)溶于无水乙醇中,加入亚精胺,亚精胺的质量分数范围为0.1%~5%,二醛与亚精胺的用量摩尔比例范围为1.05~1.5:1;震荡摇匀,得到淡黄色的交联剂溶液;将带有静电纺丝薄膜的盖玻片放在该交联剂溶液中,静置浸泡1~3h;将交联后的纺丝薄膜置于20~30mL的PBS溶液(10g氯化钠、0.25g氯化钾、1.44g磷酸氢二钠、0.25g磷酸二氢钾,于去离子水中溶解,用去离子水定容至1000mL)中静置浸泡1~3h,除去盖玻片上未被交联的聚乙烯醇等,获得在水溶液中可稳定存在的负载亚精胺的生物活性膜。
一种负载亚精胺的生物活性膜,由上述方法一或方法二制备得到。
附图说明
图1:实施例1制备得到的负载亚精胺的生物活性膜扫描电子显微镜图片(聚乙烯醇质量分数为10%,壳聚糖质量分数为2%,胶原蛋白质量分数为8%,简称为10%PVA+2%CTS+8%CLG,亚精胺质量分数为4.625%)。图a为放大500倍,图b为放大3000倍。
由图可见,10%PVA+2%CTS+8%CLG稀乙酸溶液在正高压25.12kV的条件下,以1.0mm/min的流速进行静电纺丝操作,纤维粗细均匀,其纤维直径在734.0nm左右。
图2:实施例1制备得到的负载亚精胺的生物活性膜倒置荧光显微镜图片。
图A为交联前,图B为交联后,图C为PBS浸泡后。A1、B1、C1放大倍数为100,A2、B2、C2放大倍数为400。交联前,纤维直径统一,且均匀分布,光滑不缠绕,层层堆积。交联后,纤维不再是简单的平面堆积,出现了很多“Y”型、“X”型的交叉点,单根纤维不再处于同一平面,形成了更为稳固的三维网络立体结构。经过交联的薄膜遇水(经过PBS浸泡)后,有较为明显的纤维溶胀现象,但仍具有较好的纤维形貌和网状结构。
图3:实施例1制备得到的负载亚精胺的生物活性膜上细胞生长情况扫描电子显微镜图片。
图3a为在盖玻片上静电纺丝薄膜的细胞生长情况,图3b为在光滑培养皿上的细胞生长情况。细胞更易于吸附在静电纺丝薄膜上生长,交联后的静电纺丝薄膜具有良好的生物相容性和优异的细胞粘附性能。
图4:实施例2制备得到的负载亚精胺的生物活性膜扫描电子显微镜图片(聚乙烯醇质量分数为8%,壳聚糖质量分数为2%,胶原蛋白质量分数为8%,简称为8%PVA+2%CTS+8%CLG,亚精胺质量分数为4.98%)。图a为放大500倍,图b为放大3000倍。
由图可见,8%PVA+2%CTS+8%CLG稀乙酸溶液在正高压24.98kV的条件下,以0.7mm/min的流速进行静电纺丝操作,纺丝过程稳定,出现丝和纺锤形共存的形貌,纺锤形最宽部位直径在588.4nm左右。
图5:实施例4制备得到的负载亚精胺的生物活性膜上细胞生长情况扫描电子显微镜图片。(聚乙烯醇质量分数为10%,壳聚糖质量分数为2%,胶原蛋白质量分数为8%,亚精胺的质量分数为0.19%,简称为物理负载亚精胺的10%PVA+2%CTS+8%CLG)。图a为放大500倍,图b为放大3000倍。
由图可见,物理负载亚精胺的10%PVA+2%CTS+8%CLG稀乙酸溶液在正高压25.12kV的条件下,以1.0mm/min的流速进行静电纺丝操作,纤维粗细均匀,其纤维直径在719.0nm左右。
具体实施方式
下面以具体实施例对本发明的技术方案做更详细的说明,但所述实例不构成对本发明的限制。
实施例1
1)取1g聚乙烯醇、0.2g壳聚糖、0.8g胶原蛋白,至10mL体积分数为2%的稀乙酸水溶液中,在60℃水浴,转速600r/min的条件下,加热搅拌1h,直至全部溶解,超声除去气泡,室温下静置1h,获得10%PVA+2%CTS+8%CLG的纺丝液。超声除去气泡,室温下静置1h。
2)用注射器吸取2mL纺丝液,调节金属针头和接收滚轴间的距离为15cm,开启电源,设置温度为25℃,湿度为30%。注射泵控制流速为1.0mm/min。接收滚轴接负电压,将盖玻片粘在接收滚轴上,调节负电压至-3kV,注射器接正电压,缓慢提高正电压的参数至25.12kV,纺丝3h,在盖玻片上获得静电纺丝薄膜,获得的薄膜厚度为0.6mm。
3)取0.103g对苯二甲醛溶于20mL无水乙醇中,加入100μL亚精胺,震荡摇匀,得到淡黄色的交联剂溶液。将静电纺丝薄膜放在交联剂溶液中静置浸泡2h。将交联后的纺丝薄膜置于25mL的PBS溶液中静置浸泡1h,除去盖玻片上未被交联的聚乙烯醇等。从而得到本发明所述的负载亚精胺的生物活性膜。
4)将PBS缓冲溶液中浸泡得到的纺丝薄膜取出后立即置于培养皿中,在培养皿中晾干,盖玻片即固定在培养皿中,在带有纺丝薄膜的培养皿中培养小鼠胚胎成纤维细胞(可以购买得到)18h,观察细胞生长情况。
实施例2
1)取0.8g聚乙烯醇、0.2g壳聚糖、0.8g胶原蛋白,至10mL体积分数为2%的稀乙酸水溶液中,在60℃水浴,转速600r/min的条件下,加热搅拌1h,直至全部溶解,超声除去气泡,室温下静置1h,获得8%PVA+2%CTS+8%CLG的纺丝液。超声除去气泡,室温下静置1h。
2)用注射器吸取2mL纺丝液,调节金属针头和接收滚轴间的距离为15cm,开启电源,设置温度为25℃,湿度为30%。注射泵控制流速为0.7mm/min。接收滚轴接负电压,将盖玻片粘在接收滚轴上,调节负电压至-3kV,注射器接正电压,缓慢提高正电压的参数至24.98kV,纺丝3h,在盖玻片上获得静电纺丝薄膜,获得的薄膜厚度为0.6mm。
3)取0.103g对苯二甲醛溶于20mL无水乙醇中,加入100μL亚精胺,震荡摇匀,得到淡黄色的交联剂溶液。将静电纺丝薄膜放在交联剂溶液中静置浸泡2h。将交联后的纺丝薄膜置于25mL的PBS溶液中静置浸泡1h,除去盖玻片上未被交联的聚乙烯醇等。从而得到本发明所述的负载亚精胺的生物活性膜。
4)将PBS缓冲溶液中浸泡得到的纺丝薄膜取出后立即置于培养皿中,在培养皿中晾干,盖玻片即固定在培养皿中,在带有纺丝薄膜的培养皿中培养小鼠胚胎成纤维细胞(可以购买得到)18h,观察细胞生长情况。
实施例3
1)取1g聚乙烯醇、0.2g壳聚糖、0.8g胶原蛋白,20μL亚精胺至10mL体积分数为2%的稀乙酸水溶液中,在60℃水浴,转速600r/min的条件下,加热搅拌1h,直至全部溶解,超声除去气泡,室温下静置1h,获得物理负载亚精胺的10%PVA+2%CTS+8%CLG的纺丝液。超声除去气泡,室温下静置1h。
2)用注射器吸取2mL纺丝液,调节金属针头和接收滚轴间的距离为15cm,开启电源,设置温度为25℃,湿度为30%。注射泵控制流速为1.0mm/min。接收滚轴接负电压,将盖玻片粘在接收滚轴上,调节负电压至-3kV,注射器接正电压,缓慢提高正电压的参数至25.12kV,纺丝3h,在盖玻片上获得静电纺丝薄膜,获得的薄膜厚度为0.6mm。将纺丝薄膜置于25mL的PBS溶液中静置浸泡1h,从而得到本发明所述的负载亚精胺的生物活性膜。
3)将纺丝薄膜取出后立即置于培养皿中,在培养皿中晾干,盖玻片即固定在培养皿中,在带有纺丝薄膜的培养皿中培养小鼠胚胎成纤维细胞(可以购买得到)18h,观察细胞生长情况。

Claims (5)

1.一种负载亚精胺的生物活性膜的静电纺丝制备方法,其步骤如下:
1)纺丝液的配制:取助纺剂聚乙烯醇、多糖及其衍生物、胶原蛋白、亚精胺溶于稀乙酸水溶液中,然后在50~80℃水浴、转速500~1000r/min的条件下加热搅拌0.5~1h,直至全部溶解,再超声除去气泡,室温下静置1~3h,得到纺丝液;得到的纺丝液中,乙酸的体积分数为1%~3%,助纺剂的质量分数为6%~10%,多糖及其衍生物的质量分数为1%~3%,胶原蛋白的质量分数为6%~10%,亚精胺的质量分数为0.1%~5%;
2)用注射器吸取适量纺丝液,调节注射器金属针头和接收滚轴间的距离为10~20cm,纺丝温度为20~30℃,纺丝湿度为25~40%,注射泵流速为0.1~1.5mm/min;将盖玻片粘在接收滚轴上,接收滚轴接负电压,调节负电压至-3kV,注射器金属针头接正电压,缓慢提高正电压为20~28kV至静电纺丝稳定,纺丝2~5h,在盖玻片上获得静电纺丝薄膜,薄膜厚度为0.5~1.0mm;
3)将静电纺丝薄膜置于20~30mL的PBS溶液中静置浸泡1~3h,获得在水溶液中可稳定存在的负载亚精胺的生物活性膜。
2.一种负载亚精胺的生物活性膜的静电纺丝制备方法,其步骤如下:
1)纺丝液的配制:取助纺剂聚乙烯醇、多糖及其衍生物、胶原蛋白溶于稀乙酸水溶液中,然后在50~80℃水浴、转速500~1000r/min的条件下加热搅拌0.5~1h,直至全部溶解,再超声除去气泡,室温下静置1~3h,得到纺丝液;得到的纺丝液中,乙酸的体积分数为1%~3%,助纺剂的质量分数为6%~10%,多糖及其衍生物的质量分数为1%~3%,胶原蛋白的质量分数为6%~10%;
2)用注射器吸取适量纺丝液,调节注射器金属针头和接收滚轴间的距离为10~20cm,纺丝温度为20~30℃,纺丝湿度为25~40%,注射泵流速为0.1~1.5mm/min;将盖玻片粘在接收滚轴上,接收滚轴接负电压,调节负电压至-3kV,注射器金属针头接正电压,缓慢提高正电压为20~28kV至静电纺丝稳定,纺丝2~5h,在盖玻片上获得静电纺丝薄膜,薄膜厚度为0.5~1.0mm;
3)取适量小分子二醛溶于无水乙醇中,加入亚精胺,亚精胺的质量分数为0.1%~5%,小分子二醛与亚精胺的用量摩尔比例范围为1:1~2:1;震荡摇匀,得到淡黄色的交联剂溶液;将带有静电纺丝薄膜的盖玻片放在该交联剂溶液中,静置浸泡1~3h;将交联后的纺丝薄膜置于20~30mL的PBS溶液中静置浸泡1~3h,获得在水溶液中可稳定存在的负载亚精胺的生物活性膜。
3.如权利要求1或2所述的一种负载亚精胺的生物活性膜的静电纺丝制备方法,其特征在于:步骤1)中多糖及其衍生物为壳聚糖、甲壳素、纤维素、糖胺聚糖或硫酸软骨素。
4.如权利要求2所述的一种负载亚精胺的生物活性膜的静电纺丝制备方法,其特征在于:步骤3)中小分子二醛为对苯二甲醛、戊二醛、己二醛、丁二醛、丙二醛或乙二醛。
5.一种负载亚精胺的生物活性膜,其特征在于:是由权利要求1~4任一项所述的方法制备得到。
CN201710838259.7A 2017-09-18 2017-09-18 一种负载亚精胺的生物活性膜及其静电纺丝制备方法 Expired - Fee Related CN107630292B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201710838259.7A CN107630292B (zh) 2017-09-18 2017-09-18 一种负载亚精胺的生物活性膜及其静电纺丝制备方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201710838259.7A CN107630292B (zh) 2017-09-18 2017-09-18 一种负载亚精胺的生物活性膜及其静电纺丝制备方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN107630292A true CN107630292A (zh) 2018-01-26
CN107630292B CN107630292B (zh) 2019-04-30

Family

ID=61101661

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201710838259.7A Expired - Fee Related CN107630292B (zh) 2017-09-18 2017-09-18 一种负载亚精胺的生物活性膜及其静电纺丝制备方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN107630292B (zh)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN114522274A (zh) * 2022-02-22 2022-05-24 广西医科大学 聚丙烯腈-亚精胺纳米纤维抗氧化生物支架的制备及应用

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101156962A (zh) * 2007-10-19 2008-04-09 东华大学 含胶原蛋白的复合纳米纤维组织修复支架的制备方法
CN101663001A (zh) * 2007-01-30 2010-03-03 匹兹堡大学 生物可消化性覆盖物及其应用
US20100234863A1 (en) * 2009-03-16 2010-09-16 Washington, University Of Nanofibrous conduits for nerve regeneration
CN103211663A (zh) * 2012-08-13 2013-07-24 王深明 具微纳仿生内膜结构的静电纺丝人工血管的制备方法
CN106334210A (zh) * 2016-09-26 2017-01-18 沈阳尚贤微创医疗器械股份有限公司 一种多功能胶原蛋白纳米纤维修复膜及其制备方法
CN106757790A (zh) * 2017-01-17 2017-05-31 国家纳米科学中心 一种抗氧化静电纺丝膜及其制备方法和应用

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101663001A (zh) * 2007-01-30 2010-03-03 匹兹堡大学 生物可消化性覆盖物及其应用
CN101156962A (zh) * 2007-10-19 2008-04-09 东华大学 含胶原蛋白的复合纳米纤维组织修复支架的制备方法
US20100234863A1 (en) * 2009-03-16 2010-09-16 Washington, University Of Nanofibrous conduits for nerve regeneration
CN103211663A (zh) * 2012-08-13 2013-07-24 王深明 具微纳仿生内膜结构的静电纺丝人工血管的制备方法
CN106334210A (zh) * 2016-09-26 2017-01-18 沈阳尚贤微创医疗器械股份有限公司 一种多功能胶原蛋白纳米纤维修复膜及其制备方法
CN106757790A (zh) * 2017-01-17 2017-05-31 国家纳米科学中心 一种抗氧化静电纺丝膜及其制备方法和应用

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN114522274A (zh) * 2022-02-22 2022-05-24 广西医科大学 聚丙烯腈-亚精胺纳米纤维抗氧化生物支架的制备及应用

Also Published As

Publication number Publication date
CN107630292B (zh) 2019-04-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN106310349B (zh) 一种再生丝素蛋白凝胶膜
CN103536958B (zh) 一种基于溶菌酶和丝蛋白的层层自组装改性纤维素纳米纤维膜及其制备与应用
CN106729959A (zh) 一种丝素蛋白纤维抗菌敷料及其制备方法
CN103083720B (zh) 一种丝素蛋白管及其制备方法
Li et al. Engineering BSA-dextran particles encapsulated bead-on-string nanofiber scaffold for tissue engineering applications
US20130295637A1 (en) Fibrous substrates for cell propagation and differentiation
CN110772379B (zh) 一种负载纳米酶的复合纳米纤维膜的制备方法及其创面敷贴
CN103751848B (zh) 一种抗菌修复型静电纺丝胶原蛋白-细菌纤维素复合纳米纤维支架的制备方法及其应用
CN102357264B (zh) 一种丝素蛋白多孔材料的制备方法
CN102813562A (zh) 三维大孔径纳米级纤维支架与制备方法
CN109876186A (zh) 一种用于神经修复的生物医用可降解双层支架及其制备方法
CN103981561A (zh) 一种电聚丝素水凝胶膜的制备方法、装置及其应用
WO2011051983A1 (en) In vitro bioengineered animal tissue fiber and its use in the textile industry
KR20130024727A (ko) 생체 적합성을 가진 나노 섬유, 그 제조 방법 및 창상 피복재
CN111671973A (zh) 一种聚吡咯/丝素蛋白复合导电组织工程支架的制备方法
CN110935065A (zh) 一种大孔蓬松纤维基组织工程支架及其制备方法
KR20160142613A (ko) 탄성 및 신축성이 강화된 관형 지지체
CN106938057B (zh) 一种丝素蛋白纤维支架及其制备方法
CN107630292B (zh) 一种负载亚精胺的生物活性膜及其静电纺丝制备方法
CN107349473B (zh) 一种可降解聚乳酸/丝素/壳聚糖复合神经导管及其制备方法
CN108676769B (zh) 一种促进肝细胞生长的无纺布支架材料及其制备方法
Kennell et al. Fish skin gelatin nanofibrous scaffolds spun using alternating field electrospinning and in-vitro tested with tdTomato mice fibroblasts
CN109943974B (zh) 基于聚羟基脂肪酸酯/明胶电纺纳米纤维的神经导管材料的制备方法
CN109999222B (zh) 基于聚羟基脂肪酸酯/海藻酸钠电纺纳米纤维的神经导管材料的制备方法
KR101723193B1 (ko) 전기방사를 이용한 수화젤 스캐폴드의 제조방법 및 이에 의해 제조된 수화젤 스캐폴드

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant
CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee
CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee

Granted publication date: 20190430

Termination date: 20190918