CN107164475A - 志贺氏菌的ic‑lamp检测引物组及其应用 - Google Patents

志贺氏菌的ic‑lamp检测引物组及其应用 Download PDF

Info

Publication number
CN107164475A
CN107164475A CN201710371292.3A CN201710371292A CN107164475A CN 107164475 A CN107164475 A CN 107164475A CN 201710371292 A CN201710371292 A CN 201710371292A CN 107164475 A CN107164475 A CN 107164475A
Authority
CN
China
Prior art keywords
shigella
primer
detection
lamp
lamp detection
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN201710371292.3A
Other languages
English (en)
Inventor
张金阳
张立定
韦秋奖
宋玉竹
夏雪山
韩芹芹
陈强
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Kunming University of Science and Technology
Original Assignee
Kunming University of Science and Technology
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Kunming University of Science and Technology filed Critical Kunming University of Science and Technology
Priority to CN201710371292.3A priority Critical patent/CN107164475A/zh
Publication of CN107164475A publication Critical patent/CN107164475A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6888Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms
    • C12Q1/689Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms for bacteria
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6804Nucleic acid analysis using immunogens
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6844Nucleic acid amplification reactions
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/54313Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals the carrier being characterised by its particulate form
    • G01N33/54326Magnetic particles

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明公开了一种志贺氏菌的IC‑LAMP检测引物组及其应用,其中检测引物包括正向内引物FIP、反向内引物BIP、正向外引物F3、反向外引物B3;本发明将志贺氏菌的IC‑LAMP检测引物组和结合有志贺氏菌特异抗体的Protein A/G偶联磁珠用于志贺氏菌的IC‑LAMP检测试剂盒中,并建立了志贺氏菌环介导等温扩增快速检测方法;该技术整合了抗体和环介导等温扩增技术的双重特异性,具有准确、快速、方便、高效、特异、灵敏且无需进行菌体的长时扩增培养、提取基因及质粒的特点,适用于进出口检疫、食品卫生检验等的现场快速检测,对于保障食品安全具有重要意义。

Description

志贺氏菌的IC-LAMP检测引物组及其应用
技术领域
本发明属于生物技术领域,具体涉及一种用于志贺氏菌检测的引物组、试剂盒和志贺氏菌的IC-LAMP检测方法。
背景技术
志贺氏菌为革兰阴性杆菌,是人类细菌性痢疾最为常见的病原菌。志贺菌可穿入低位肠段的粘膜,引起粘液分泌、充血、白细胞浸润、水肿,并常有表浅粘膜溃疡。急性典型菌痢症状,有腹痛腹泻、脓血粘便、里急后重、发热等呈现严重的全身中毒症状。
志贺菌属是主要的肠道病原菌之一,也是引起人类细菌性痢疾的病原体。本属细菌分布于全世界,是炎症性痢疾的典型病原菌,很多地区5%~10%的腹泻性疾病是由该菌属所致。弗氏志贺菌和宋内志贺菌比鲍氏志贺菌和毒力特别强的痢疾志贺菌分布更广。志贺菌广泛存在于食品中,大量食入,会引起严重后果。因此,快速准确地检测出志贺氏菌就显得尤为重要。
目前临床应用的志贺氏菌的检测方法包括细菌分离鉴定、免疫学方法、分子生物学检测方法等,但这些方法都存在一些缺陷。传统的检测方法主要采用细菌前增菌培养、分离培养、菌落形态观察和一系列的生化鉴定以及血清型鉴定等步骤,一般需4至7天,此方法培养时间长、工作量大、实验步骤繁琐,在很多突发事件中不能及时反映准确的数据。免疫学方法易污染,且交叉反应比较严重、假阳性多、灵敏度偏低。常规 PCR 方法检测其灵敏度低,检测时间长,需要昂贵的PCR仪器以及电泳仪、凝胶成像仪等配套仪器并且在检测前还需要进行菌体的富集,DNA的提取。免疫磁分离技术是将特异性抗体与一定大小的磁珠偶联,利用特异性抗体能与细胞表面抗原相结合的原理,将磁球与细胞结合,在外磁场的作用下,将磁球-细胞复合物从环境中分离出来,达到获取目标细胞的一项技术,但是单独使用该技术时只能实现分离,还需结合其他手段进行检测,而目前使用免疫磁分离技术进行分离的检测方法的灵敏度仍有待提高。
发明内容
本发明目的在于提供了一种用于检测志贺氏菌的IC-LAMP特异性引物组,它包括正向内引物FIP、反向内引物BIP、正向外引物F3、反向外引物B3,各引物序列如下:
FIP:5'-CTGTCGAAGCTCCGCAGAGGTTTTGGATTCCGTGAACAGGTCG-3';(如SEO ID NO:1所示)
BIP:5'-CTTTCGCTGTTGCTGCTGATGCTTTTCCGGAGATTGTTCCATGTGA-3';(如SEO ID NO:2所示)
F3: 5' -ATACCGTCTCTGCACGCA-3';(如SEO ID NO:3所示)
B3: 5' -GCCTTCTGATGCCTGATGG-3';(如SEO ID NO:4所示)。
本发明另一目的是提供一种志贺氏菌的IC-LAMP检测试剂盒,其包括权利要求1所述的志贺氏菌的IC-LAMP检测引物组和结合有志贺氏菌特异抗体的Protein A/G偶联磁珠。
其中结合有志贺氏菌特异抗体的Protein A/G亲和磁珠是采用Protein A/G可以特异性的与抗体Fc段结合的原理制备的,具体参考Protein A/G免疫沉淀磁珠(美国Biotool,货号:B23202)产品说明书所述方法制得。
本发明试剂盒还包括常规LAMP检测中所需的常规试剂,例如2×isothermalmastermix、无核酸酶水。
本发明将环介导等温扩增技术(LAMP )与免疫磁珠相结合,针对志贺氏菌重要的毒性基因ipaH基因设计一套引物,优化反应条件,建立志贺氏菌IC-LAMP检测技术。
本发明另一目的是提供了一种志贺氏菌检测的新方法,利用Protein A/G免疫沉淀磁珠与志贺氏菌的多克隆抗体偶联形成免疫磁珠去捕捉样品中的志贺氏菌,然后通过直接裂解法获得基因组,通过环介导等温扩增,确认是否存在有志贺氏菌扩增产物。
所述的待测样品可以是被志贺氏菌污染的水、食品及人和动物的粪便及咽拭子/肛拭子等。
检测方法具体步骤如下:
(1)待测样品的制备,将待测样品用已经灭菌的LB液体培养基进行稀释;
(2)在待测样品中添加结合有志贺氏菌特异抗体的Protein A/G偶联磁珠,混匀后进行磁性分离,弃上清液,然后加入PBS-T溶液重悬后再进行磁性分离,重复2-3次;
(3)采用直接裂解法裂解步骤(2)中捕获菌体的基因组DNA,即在步骤(2)获得的磁珠-抗体-抗原的复合物中加入裂解液进行裂解,然后加入终止液终止反应;
(4)采用针对志贺氏菌的IC-LAMP检测引物组对获得基因组DNA进行环介导等温扩增,反应体系:15μL 2×isothermal mastermix、2μL 的10mM正向内引物FIP、2μL的10mM反向内引物BIP、0.25μL的10mM反向外引物B3、0.25μL的10mM正向外引物F3、步骤(3)裂解液模板1-6μL,加无核酸酶水补至终体积25μL;反应条件:65℃扩增30min,80℃-98℃变性10min,终止反应;
(5)扩增产物利用紫外检测系统、色素法或荧光法检测(根据不同的显色法加入不同的显色剂),判断是否存在志贺氏菌;检测方法均为常规检测法。
例如扩增反应结束后,直接在紫外灯下观察结果(扩增前显色剂即加入扩增的PCR管中);结果判定:PCR管中样品在紫外照射下出现绿色荧光,检测结果为阳性,则说明样品中含有志贺氏菌;PCR管中样品在紫外照射下不出现绿色荧光,检测结果为阴性,则说明样品中不含有志贺氏菌。
实验结果表明:采用本发明所公开的志贺氏菌的IC-LAMP特异性引物组制备的试剂盒在检测志贺氏菌方面IC-LAMP具有良好的积极效果。
本发明公开的用于检测志贺氏菌的试剂盒与现有技术相比所具有的积极效果在于:
(1)本发明采用的LAMP技术具有操作简便、快速、敏感等特点,其敏感性比常规PCR高数倍以上;而且检测过程只需恒温水浴锅和便携式磁力架即可完成,不需要PCR仪等昂贵的设备(恒温水浴锅即可),更适合于基层推广应用。此外,本发明将LAMP技术与免疫磁珠技术相结合,可以通过肉眼直接观察和判定结果,仅需30min,比传统的生化培养法节省3天,比提取基因组进行PCR方法(琼脂糖凝胶电泳)缩短3h,且不需要对菌体进行富集,提取其基因组等,使检测更为便捷、高效;
(2)基于IC-LAMP方法的敏感、特异,成本低廉,便于操作等诸多优势,本发明在一定程度上提高了我国志贺氏菌菌株的检测能力,为志贺氏菌疾病的临床实时快速诊断、动物和食品的出入境检验检疫中该菌的快速准确检测提供了新技术来源,对提高我国检验检疫机构志贺氏菌的疫情监控和快速检测水平,以及普及先进技术在基层检验检疫机构的推广应用均具有重要意义。特别对于粪便等特殊样品的检测,此方法解决了从粪便等特殊样品中菌体的获取、富集的难题,其灵敏度比利用普通检测方法如PCR、多重荧光定量PCR等方法高。
附图说明
图1(a)为利用正向外引物F3、反向外引物B3 进行PCR鉴定体系的特异性检测结果,泳道2的反应模板为志贺氏菌的基因组;泳道3至泳道7依次为大肠杆菌、金黄色葡萄菌、沙门氏菌、李斯特杆菌、铜绿假单胞杆菌基因组;泳道8为去核酸酶水作为模板的阴性对照;(b)利用正向外引物F3、反向外引物B3 进行 PCR鉴定体系的灵敏度检测结果,其反应模板为质粒,泳道2-10其质粒浓度依次为109、108、107、106、105、104、103、102、101、100 copies/mL,泳道11为去核酸酶水作为模板的阴性对照;
图2(a)为利用正向外引物F3、反向外引物B3、正向内引物FIP、正向反向内引物BIP进行LAMP鉴定体系的特异性检测结果,泳道2的反应模板为志贺氏菌的基因组,泳道3至泳道7依次为大肠杆菌、金黄色葡萄菌、沙门氏菌、李斯特杆菌、铜绿假单胞杆菌基因组,泳道8为去核酸酶水作为模板的阴性对照;(b)为本发明LAMP鉴定体系的灵敏度检测结果,其反应模板为质粒,泳道2-11其浓度依次为100、101、102、103、104、105、106、107、108、109 copies/mL,泳道12为去核酸酶水作为模板的阴性对照;
图3为本发明IC-LAMP鉴定体系的特异性检测结果,曲线1-4的反应模板为利用免疫磁珠捕获含有志贺氏菌的混合菌(分别混合大肠杆菌、金黄色葡萄菌、沙门氏菌、铜绿假单胞杆菌)的裂解液,曲线5-8为利用免疫磁珠捕获混合菌种大肠杆菌、金黄色葡萄菌、沙门氏菌、铜绿假单胞杆菌的裂解液;
图4为本发明IC-LAMP鉴定体系的灵敏度检测结果,其反应模板为污染样品的裂解液,曲线1是未用免疫磁珠捕获污染样品的裂解液,菌浓度为8.7 × 100 CFU/ml,曲线2-7是用免疫磁珠捕获污染样品的裂解液,菌浓度分是 8.7×105, 8.7 × 104, 8.7 × 103,8.7× 102, 8.7×101, 8.7 × 100 CFU/mL,曲线8为去核酸酶水作为模板的阴性对照。
具体实施方式
下面结合附图和实施例对本发明作进一步详细说明,但本发明保护范围不局限于所述内容,实施例中使用的试剂和方法,如无特殊说明,均采用常规试剂和使用常规方法。
实施例1:特异性靶基因的引物设计
1、本地BLAST分析
从NCBI(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/genome/)中下载的志贺氏菌ipaH基因,对本地的核酸数据库进行本地BLAST检索,获取得到菌种各序列片段与数据库比对结果。
2、引物设计
本试验以基因名ipaH,Genbank登陆号为M32063.1(251..1849)的序列设计特异引物。针对ipaH基因的3' 端的F3c、F2c和Flc区以及5' 端的Bl、B2和B3区6个不同的位点设计4种引物,包括一对内引物(FIP、BIP)和一对外引物(F3、B3),该引物用于LAMP技术检测,其中外引物还用作PCR反应的上、下游引物,用于志贺氏菌的鉴定。
实施例2:LAMP检测方法的建立
1、DNA的提取
(1)用北京庄盟国际生物基因科技有限公司的细菌基因组DNA小量提取试剂盒进行抽提回收,步骤如下:
1)取志贺氏菌培养液5mL,12000rpm离心1分钟,尽量吸净上清;
2)向留有菌体沉淀的离心管中加入500μL细胞悬浮液,使用移液器或涡旋振荡器彻底悬浮细菌细胞沉淀,37℃温浴30分钟;每隔10分钟颠倒混匀数次;12000rpm离心2分钟,尽量吸净上清;
3)向菌体沉淀中加入225μL缓冲液A,振荡至菌体彻底悬浮;
4)向管中加入6μLRNaseA溶液,振荡15秒,室温放置5分钟;
5)向管中加入10μL蛋白酶K溶液,颠倒混匀;
6)加入25μL裂解缓冲液S,颠倒混匀;
7)加入250μL缓冲液B,振荡10秒,70℃放置10分钟。12,000rpm离心1分钟,取上清放入一新管中,弃去沉淀;
8)加入250μL无水乙醇,充分振荡混匀15秒,此时可能会出现絮状沉淀,瞬时离心以去除管盖内壁的水珠;
9)将上一步所得溶液和絮状沉淀都加入一个吸附柱中(吸附柱放入收集管中),12000rpm离心30秒,倒掉废液,将吸附柱放入收集管中;
10)向吸附柱中加入500μL缓冲液C,12000rpm离心30秒,倒掉废液,将吸附柱放入收集管中;
11)向吸附柱中加入700μL漂洗液W2,12000rpm离心30秒,倒掉废液,将吸附柱放入收集管中;
12)向吸附柱中加入500μL漂洗液W2,12000rpm离30秒,倒掉废液,将吸附柱放回收集管中;然后12000rpm离心2分钟,将吸附柱置于一个新的1.5mL离心管中,室温放置数分钟,以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液;
13)将吸附柱转入一个干净的离心管中,向吸附膜的中间部位悬空滴加100μL洗脱缓冲液TE,室温放置2分钟,12000rpm离心2分钟,将溶液收集到离心管中。
(2)使用直接裂解液,其配方为:
溶液A:125mM NaOH、1mM EDTA、0.1% Tween 20;
溶液B:125mM HCl、10mM TrisHCl;
取志贺菌样加入10μL 溶液A 65℃孵育10min,加入10μL 溶液B,混匀即可。
2、阳性质粒载体构建及获得
(1)靶序列PCR扩增
以志贺氏菌的基因组DNA为模板,对特异基因进行PCR扩增,将其扩增产物进行琼脂糖凝胶电泳验证。
(2)目的产物的回收
从脂糖凝胶中切下目的片段,用北京庄盟国际生物基因科技有限公司的小量琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒进行抽提回收,步骤如下:
1)将单一的目的DNA条带从琼脂糖凝胶中切下(尽量切除多余部分)放入干净的离心管中,称取重量;
2)向胶块中加入2倍体积溶胶液,55℃水浴10分钟,其间不断温和地上下翻转离心管,以确保胶块充分溶解;
3)将上一步所得溶液加入一个吸附柱中,12,000rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放入收集管中;
4)向吸附柱中加入700µL漂洗液W2,12,000rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放入收集管中;
5)向吸附柱中加入50µL漂洗液W2,12,000rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放入收集管中;
6)将吸附柱放入收集管中,12,000rpm离心2分钟,尽量除去漂洗液;
7)将室温吸附柱置于室温放置数分钟,彻底晾干。将吸附柱放入到一个干净离心管,向吸附柱中间悬空滴加30µL的洗脱缓冲液TE,室温放置2分钟。12,000rpm离心2分钟,收集DNA溶液。
(3)连接、转化及筛选
1)大肠杆菌DH5α感受态细胞的制备
①挑取单个DH5α菌落,接种于3mL不含氨苄青霉素的LB培养基中,37 ℃培养过夜,次日取上述菌液按比例1:100再接种于50mL LB培养基中,37℃振荡2小时。当OD600值达到0.35时,收获细菌培养物;
②将细菌转移到一个50mL预冷的无菌聚丙烯管中,冰上放置10分钟,使培养物冷却;
③于4℃下4100rpm离心10分钟,吸出培养液,并将管倒置l分钟以使残留的培养基流尽;
④每50mL初始培养液用30mL预冷的0.1mol/L CaCl2-MgCl2溶(80mmol/L MgCl2,20mmol/L CaCl2)重悬细胞沉淀;
⑤于4℃下4100rpm离心10分钟,吸出上清液,并将管倒置l 分钟以使残留的液体流尽;
⑥每50mL初始培养物用2mL预冷的0.1mol/L CaCl2溶液重悬细胞沉淀,分装后备用。
2)连接到PMD19-T Simple
①在微量离心管中加入1µL Takara pMD19-T simple载体、4μL目的基因基因PCR产物及5µL的连接酶缓冲混合物;
②16℃反应过夜。
3)转化DH5α
①全量(10µL)加入至100μL DH5α感受态细胞中,冰中放置30分钟;
②42℃加热90秒后,再在冰中放置1分钟;
③加入37℃温浴过的LB培养基890µL,37℃缓慢振荡培养60分钟;
④取200μL涂布于含有氨苄青霉素的LB培养基上,37℃培养16h以形成单菌落;
(4)阳性克隆的筛选
挑取上述单菌落于含氨苄青霉素的LB培养基中,37℃缓慢振荡培养4h,以M13F(tgtaaaacgacggccagt)和M13R (caggaaacagctatgacc)为引物进行菌落PCR扩增。对扩增产物用1.5%琼脂糖凝胶电泳后紫外观察,将经PCR验证正确的阳性克隆送昆明硕擎生物科技有限公司进行测序。
(5)阳性质粒提取
挑取上述单菌落于LB培养基中,37℃缓慢振荡培养4h,进行PCR扩增;扩增引物F3(ATACCGTCTCTGCACGCA)、B3(GCCTTCTGATGCCTGATGG),扩增条件:95℃,5min;95℃,30s;46℃,30s;72℃,30s;72℃,7min;16℃,∞;将经PCR确证的阳性克隆,接种于LB液体培养基,37℃,160 rpm培养过夜。取每个菌株过夜培养液5mL,用北京庄盟国际生物基因科技有限公司小量质粒提取试剂盒进行质粒抽提,具体操作步骤如下:
1)取5mL过夜培养的菌液,加入离心管中,12,000rpm离心1分钟,尽量吸除上清;
2)向留有菌体沉淀的离心管中加入250µL溶液1,使用移液器或涡旋振荡器彻底悬浮细菌沉淀;
3)向离心管中加入250µL溶液2,温和地上下翻转6-8次使菌体充分裂解;
4)向离心管中加入350µL溶液3,立即温和地上下翻转6-8次,充分混匀,即出现白色絮状沉淀。12,000rpm离心10分钟,此时在离心管底部形成沉淀。将上一步收集的上清液用移液器转移到吸附柱中,12,000rpm离心60秒,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放入收集管中;
5)向吸附柱中加入700µL漂洗液W2,12,000rpm离心30-60秒,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放入收集管中;
6)向吸附柱中加入500µL漂洗液W2,12,000rpm离心60秒,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放入收集管中;
7)将吸附柱放入收集管中,12,000rpm离心2分钟,置于室温放置数分钟,以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液;
8)将吸附柱置于一个干净的离心管中,向吸附膜的中间部位滴加60µL洗脱缓冲液TE,室温放置2分钟,12,000rpm离心1分钟将质粒溶液收集到离心管中。
(6)阳性质粒浓度测定
打开Thermo Scientific BioMate 3S紫外分光光度计,预热15分钟;选定Mode方式为dsDNA,将比色杯用超纯水反复洗几次后加入100µL TE缓冲液调零;将TE缓冲液完全吸出,然后加入待测样品(1μL样品加入99μL TE缓冲液),选定稀释倍数为100倍进行测定,读取质粒DNA浓度。
(7)质粒数目换算及梯度稀释
阳性质粒测完浓度后,分别根据其所测浓度换算成质粒数目。质粒数目换算公式为(注:X为质粒浓度ng/μL;Y为目的产物碱基对数;NA为阿伏伽德罗常数;2692为载体碱基对数;660为碱基平均分子量)。取已知浓度的质粒进行10倍梯度稀释到底。
3、菌落计数
(1)菌液的培养
配制LB固体培养基,用高压蒸汽灭菌锅灭菌121℃,20min。将在-80℃冰箱中保藏的志贺氏菌种接种于新鲜的LB液体培养基,37℃震荡培养12小时。
(2)稀释平板计数法计数及其步骤
1)熔化培养基;
2)倒平皿;
3)梯度稀释法稀释原菌样品;
4)涂平皿:
选取1/106,1/107,1/108三个稀释度计数,每皿取菌液0.1ml,用玻璃刮铲涂布均匀,每个稀释度做一个重复;
5)37℃倒置培养1天;
6)计数:
每1mL原菌样品中微生物的活细胞数(菌落形成数,CFU=(同一稀释度平板上菌落平均数×稀释倍数)/原菌样品体积(mL);
结果:图1(a)为利用正向外引物F3、反向外引物B3 进行PCR鉴定体系的特异性检测结果,泳道2的反应模板为志贺氏菌的基因组;泳道3至泳道7依次为大肠杆菌、金黄色葡萄菌、沙门氏菌、李斯特杆菌、铜绿假单胞杆菌基因组;泳道8为去核酸酶水作为模板的阴性对照;(b)利用正向外引物F3、反向外引物B3 进行 PCR鉴定体系的灵敏度检测结果,其反应模板为质粒,泳道2-10其质粒浓度依次为109、108、107、106、105、104、103、102、101、100 copies/mL,泳道11为去核酸酶水作为模板的阴性对照;
图2(a)为利用正向外引物F3、反向外引物B3、正向内引物FIP、正向反向内引物BIP进行LAMP鉴定体系的特异性检测结果,泳道2的反应模板为志贺氏菌的基因组,泳道3至泳道7依次为大肠杆菌、金黄色葡萄菌、沙门氏菌、李斯特杆菌、铜绿假单胞杆菌基因组,泳道8为去核酸酶水作为模板的阴性对照;(b)为本发明LAMP鉴定体系的灵敏度检测结果,其反应模板为质粒,泳道2-11其浓度依次为100、101、102、103、104、105、106、107、108、109 copies/mL,泳道12为去核酸酶水作为模板的阴性对照。
4、建立IC-LAMP鉴定体系
(1)志贺氏菌的培养
取出冻存的菌液进行LB平板划线,于37℃恒温培养箱培养过夜。第二天挑取单克隆于LB液体培养基中37℃,180转/小时培养4-5小时。
(2)志贺氏菌多克隆抗体的制备
将培养好的菌液稀释到108CFU/mL,并进行灭活,取100µL与等体积的弗氏完全佐剂混合均匀免疫BAB/c小鼠;第一次免疫后14天进行第二次免疫,取100µL与等体积的弗氏不完全佐剂混合均匀免疫BAB/c小鼠;第三,四次免疫与第二次免疫相同;第四次免疫4天后摘眼球取血分离多抗血清。
(3)利用免疫磁珠捕获抗原
(a)抗原的准备:分别用巴氏灭菌的脱脂奶粉稀释菌液至终浓度8.7 × 105、8.7 ×104、8.7 × 103、8.7 × 102、8.7×101和 8.7×100 CFU/mL。
(b)磁珠预处理:将免疫沉淀磁珠(Protein A/G偶联磁珠)漩涡振荡1min,使磁珠充分振荡重悬;取25~50μL(相当于25~50μg)磁珠悬液置于1.5mLEP管中;加入200μL磷酸盐缓冲液(PBS:NaCl 137mmol/L、KCl 2.7mmol/L、Na2HPO4 10mmol/L、KH2PO4 2mmol/L、pH7.4)洗涤,进行磁性分离(将EP管放置于磁力架上,使磁珠被吸附在管壁至溶液澄清;该操作描述以下省略),弃上清液,从磁性分离器上取下EP管,重复洗涤一次,最后加入200μL结合缓冲液重悬磁珠以备用。
(c)抗体结合反应:将步骤(b)预处理的磁珠悬液进行磁性分离加入300µL的志贺氏菌抗体(1:1000),于37℃ 100转/分钟反应2小时。然后进行磁性分离,加入1mL的PBS-T重悬后磁性分离(此步骤重复3次)。
(d)抗原沉淀反应:将步骤(a)抗原加入步骤(c)的结合有志贺氏菌特异抗体的Protein A/G偶联磁珠溶液中,于37℃ 100转/分钟反应0.5小时;然后进行磁性分离,加入1mL的PBS-T重悬后磁性分离(此步骤重复3次)。
(e)抗原的裂解:将步骤(d)中的磁珠-抗体-抗原的复合物中加入10μL的A液(125mM NaOH、1mM EDTA、0.1%Tween 20)于65℃反应10分钟,最后加入10μL溶液B终止反应。
(4)特异性检测
分别用免疫磁珠(结合有志贺氏菌特异抗体的Protein A/G偶联磁珠)捕获含有志贺氏菌、大肠杆菌、金黄色葡萄菌、沙门氏菌、铜绿假单胞杆菌混合菌液及不含有志贺氏菌的混合菌液,捕获完成后进行直接裂解;各取6μL作为模板进行IC-LAMP反应。在仪器Genie II中的反应体系为:15μL 2×isothermal mastermix、2μL 的10mM正向内引物FIP、2μL的10mM反向内引物BIP、0.25μL的10mM反向外引物B3、0.25μL的10mM 正向外引物F3,模板(裂解液)6μL,加去核酸酶水补足25μL。反应条件:65℃扩增30min,98℃-80℃变性10min;
结果:混合菌中(含有志贺氏菌)均能被IC-LAMP检测出来,PCR管在紫外照射下出现绿色荧光,检测结果为阳性,其扩增曲线如图3中曲线1、2、3、4所示;而混合菌中(不含有志贺氏菌)均不能被IC-LAMP检测出来,PCR管在紫外照射下不出现绿色荧光,检测结果为阴性,其扩增曲线如图3中的曲线5、6、7、8所示。
(5)灵敏度检测
取1-6μL步骤(3)中裂解液进行LAMP反应。在仪器Genie II中的反应体系为:15μL 2×isothermal mastermix,内游引物FIP 和 BIP各20μM,外游引物B3 和 F3各2.5μM,模板(裂解液)6μL,加去核酸酶水补足25μL。反应条件:65℃扩增30min,98℃-80℃变性10min;结果:利用IC-LAMP检测方法,可将污染样本中志贺氏菌快速准确的检测出来,且检测下限达到8.7 × 100 CFU/mL, PCR管在紫外照射下出现绿色荧光,检测结果为阳性,其扩增曲线如图4。其中曲线2、3、4、5、6、7分别表示利用IC-LAMP检测含有志贺氏菌的样本(样本菌浓度依次为8.7×105, 8.7 × 104, 8.7 × 103,8.7 × 102, 8.7×101, 8.7 × 100 CFU/mL),曲线1为普通LAMP检测污染志贺氏菌样本(样本菌浓度为8.7 × 100 CFU/mL)。从图4中扩增曲线出峰的时间可以看出同样检测同一污染样品,利用IC-LAMP检测方法其扩增曲线7比普通LAMP检测方法的扩增曲线1出峰时间早,说明利用免疫磁珠捕获抗原能更有效地富集抗原,在实际检测中更能准确、灵敏的检测出志贺氏菌。
实施例3:IC-LAMP临床样本的检测
(1)磁珠预处理
将免疫沉淀磁珠(Protein A/G偶联磁珠)漩涡振荡1min,使磁珠充分振荡重悬。取25~50μL(相当于25~50μg)磁珠悬液置于1.5mLEP管中。加入200μL结合缓冲液洗涤,进行磁性分离(将EP管放置于磁力架上,使磁珠被吸附在管壁至溶液澄清;该操作描述以下省略),弃上清液,从磁性分离器上取下EP管,重复洗涤一次,最后加入200μL结合缓冲液重悬磁珠以备用。
(2)抗体结合反应
将步骤(1)预处理的磁珠悬液进行磁性分离加入300μL的抗体(1:1000),于37℃100转/分钟反应2小时;然后进行磁性分离,加入1mL的PBS-T重悬后磁性分离(此步骤重复3次)。
(3)抗原捕获反应
在含有志贺氏菌的猴子粪便检测样品中,加入1mL的LB液体培养基漩涡振荡10s,加入步骤(2)中预处理好的磁珠抗体的混合物中,轻轻混匀后于37℃100转/分钟反应0.5小时。然后进行磁性分离,加入1mL的PBS-T重悬后磁性分离(此步骤重复3次)。
(4)抗原的裂解
将步骤(3)中的磁珠-抗体-抗原的复合物中加入10μL的A液(125mM NaOH、1mM EDTA、0.1%Tween 20)于65℃反应10分钟,最后加入10μL溶液B(125mM HCl、10mM Tris-HCl)终止反应。
(5)IC-LAMP反应
取1-6μL步骤(4)中的裂解液进行IC-LAMP反应。反应体系为:2μL 的10mM正向内引物FIP、2μL的10mM反向内引物BIP、0.25μL的10mM反向外引物B3、0.25μL的10mM 正向外引物F3,模板(裂解液)6μL,2.5μL 10× LAMP buffer,150mM Mg2+,40μM dNTPs mixtures,1μLBst DNA polymerase 加去核酸酶水补足25μL。反应条件:63.5℃扩增50min,80℃变性2min。
(6)IC-LAMP结果分析
46个猴子粪便样本经过传统的生化鉴定以及血清凝集法检测,共检测出12个阳性样本,34个阴性样本与IC-LAMP检测结果一致。利用两个不同的检测方法验证了IC-LAMP能快速准确的检测出志贺氏菌,并具有快速、灵敏、高特异性等特点,适合于临床样本的检测。
本发明和传统经典方法的在临床样本检测结果的符合情况
序列表
<110> 昆明理工大学
<120> 志贺氏菌的IC-LAMP检测引物组及其应用
<160> 6
<170> PatentIn version 3.3
<210> 1
<211> 43
<212> DNA
<213> 人工序列
<400> 1
ctgtcgaagc tccgcagagg ttttggattc cgtgaacagg tcg 43
<210> 2
<211> 46
<212> DNA
<213>人工序列
<400> 2
ctttcgctgt tgctgctgat gcttttccgg agattgttcc atgtga 46
<210> 3
<211> 18
<212> DNA
<213>人工序列
<400> 3
ataccgtctc tgcacgca 18
<210> 4
<211> 19
<212> DNA
<213>人工序列
<400> 4
gccttctgat gcctgatgg 19
<210> 5
<211> 18
<212> DNA
<213>人工序列
<400> 5
tgtaaaacga cggccagt 18
<210> 6
<211> 18
<212> DNA
<213>人工序列
<400> 6
caggaaacag ctatgacc 18

Claims (6)

1.一种志贺氏菌的IC-LAMP检测引物组,其特征在于:包括正向内引物FIP、反向内引物BIP、正向外引物F3、反向外引物B3,各引物序列如下:
正向内引物FIP:
FIP:5'-CTGTCGAAGCTCCGCAGAGGTTTTGGATTCCGTGAACAGGTCG-3';
反向内引物BIP:
BIP:5'-CTTTCGCTGTTGCTGCTGATGCTTTTCCGGAGATTGTTCCATGTGA-3';
正向外引物F3:
F3: 5' -ATACCGTCTCTGCACGCA-3';
反向外引物B3:
B3: 5' -GCCTTCTGATGCCTGATGG-3'。
2.一种志贺氏菌的IC-LAMP检测试剂盒,其特征在于:包括权利要求1所述的志贺氏菌的IC-LAMP检测引物组和结合有志贺氏菌特异抗体的Protein A/G偶联磁珠。
3.根据权利要求2所述的志贺氏菌的IC-LAMP检测试剂盒,其特征在于:IC-LAMP检测试剂盒还包括2×isothermal mastermix、无核酸酶水。
4.权利要求2所述志贺氏菌的IC-LAMP检测试剂盒的检测方法,其特征在于:包括以下步骤:
(1)待测样品的制备,将待测样品用灭菌的LB液体培养基进行稀释;
(2)在待测样品中添加结合有志贺氏菌特异抗体的Protein A/G偶联磁珠,混匀后进行磁性分离,弃上清液,然后加入PBS-T溶液重悬后再进行磁性分离,重复2-3次;
(3)采用直接裂解法裂解步骤(2)中捕获菌体的基因组DNA,即在步骤(2)获得的磁珠-抗体-抗原的复合物中加入裂解液进行裂解,然后加入终止液终止反应;
(4)采用针对志贺氏菌的IC-LAMP检测引物组对获得的基因组DNA进行环介导等温扩增,反应体系:15μL 2×isothermal mastermix、2μL 的10 mM正向内引物FIP、2μL的10 mM反向内引物BIP、0.25μL的10mM反向外引物B3、0.25μL的10mM正向外引物F3、步骤(3)裂解液模板1-6μL,加无核酸酶水补至终体积25μL;反应条件:65℃扩增30min,80℃-98℃变性10min;
(5)扩增产物利用紫外检测系统、色素法或荧光法检测,判断是否存在志贺氏菌。
5.根据权利要求4所述的检测方法,其特征在于:裂解液为含有125mmol/L NaOH、1mmol/L EDTA、0.1%Tween 20的溶液。
6.根据权利要求4所述的检测方法,其特征在于:终止液为含有125mmol/L HCl、10mmol/L Tris-HCl的溶液。
CN201710371292.3A 2017-05-24 2017-05-24 志贺氏菌的ic‑lamp检测引物组及其应用 Pending CN107164475A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201710371292.3A CN107164475A (zh) 2017-05-24 2017-05-24 志贺氏菌的ic‑lamp检测引物组及其应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201710371292.3A CN107164475A (zh) 2017-05-24 2017-05-24 志贺氏菌的ic‑lamp检测引物组及其应用

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN107164475A true CN107164475A (zh) 2017-09-15

Family

ID=59820736

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201710371292.3A Pending CN107164475A (zh) 2017-05-24 2017-05-24 志贺氏菌的ic‑lamp检测引物组及其应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN107164475A (zh)

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN108611402A (zh) * 2018-05-12 2018-10-02 浙江工商大学 基于适配体磁捕获和直接lamp的福氏志贺菌可视化检测方法
CN108715852A (zh) * 2018-05-04 2018-10-30 昆明理工大学 一种番茄果实成熟基因Sl0658及其应用
CN109266658A (zh) * 2018-10-17 2019-01-25 昆明理工大学 一种鲍曼不动杆菌的特异基因及其引物和应用
CN109321637A (zh) * 2018-10-31 2019-02-12 武汉利恩达医疗科技有限公司 一种病原体核酸捕获扩增检测方法
CN114032316A (zh) * 2021-11-22 2022-02-11 中国医学科学院输血研究所 一种福式志贺氏菌特异基因的引物组及其应用
CN114085917A (zh) * 2021-11-23 2022-02-25 中国医学科学院输血研究所 基于CRISPR/Cas12a-LAMP快速可视化检测福氏志贺氏菌的方法和试剂盒

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105316391A (zh) * 2014-06-23 2016-02-10 北京市理化分析测试中心 一种检测沙门氏菌、志贺氏菌和金黄色葡萄球菌的方法

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105316391A (zh) * 2014-06-23 2016-02-10 北京市理化分析测试中心 一种检测沙门氏菌、志贺氏菌和金黄色葡萄球菌的方法

Non-Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
BENJAMIN RAY WARREN: "IMPROVED SAMPLE PREPARATION FOR THE MOLECULAR DETECTION OF Shigella sonnei IN FOODS", 《互联网文章》 *
M.R. ROMERO ET AL: "An immunomagnetic separation/loop-mediated isothermal amplification method for rapid direct detection of thermotolerant Campylobacter spp. during poultry production", 《JOURNAL OF APPLIED MICROBIOLOGY》 *
TIANYAN SONG ET AL: "Sensitive and rapid detection of Shigella and enteroinvasive Escherichia coli by a loop-mediated isothermal amplification method", 《FEMS MICROBIOLOGY LETTERS》 *
YINGWANG YE ET AL: "IMMUNOCAPTURED-LOOP MEDIATED ISOTHERMAL AMPLIFICATION ASSAY FOR DETECTION OF VIBRIO PARAHAEMOLYTICUS IN SEAFOOD", 《JOURNAL OF FOOD SAFETY》 *
张蕾等: "海产品中副溶血性弧菌免疫磁分离和环介导等温扩增快速检测方法的建立", 《中国食品卫生杂志》 *
曾桂芬等: "LAMP和PCR法检测痢疾志贺菌的特异性和灵敏性比较", 《热带医学杂志》 *

Cited By (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN108715852A (zh) * 2018-05-04 2018-10-30 昆明理工大学 一种番茄果实成熟基因Sl0658及其应用
CN108611402A (zh) * 2018-05-12 2018-10-02 浙江工商大学 基于适配体磁捕获和直接lamp的福氏志贺菌可视化检测方法
CN109266658A (zh) * 2018-10-17 2019-01-25 昆明理工大学 一种鲍曼不动杆菌的特异基因及其引物和应用
CN109266658B (zh) * 2018-10-17 2022-08-19 昆明理工大学 一种鲍曼不动杆菌的特异基因及其引物和应用
CN109321637A (zh) * 2018-10-31 2019-02-12 武汉利恩达医疗科技有限公司 一种病原体核酸捕获扩增检测方法
CN114032316A (zh) * 2021-11-22 2022-02-11 中国医学科学院输血研究所 一种福式志贺氏菌特异基因的引物组及其应用
CN114085917A (zh) * 2021-11-23 2022-02-25 中国医学科学院输血研究所 基于CRISPR/Cas12a-LAMP快速可视化检测福氏志贺氏菌的方法和试剂盒
CN114085917B (zh) * 2021-11-23 2023-08-15 中国医学科学院输血研究所 基于CRISPR/Cas12a-LAMP快速可视化检测福氏志贺氏菌的方法和试剂盒

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN107164475A (zh) 志贺氏菌的ic‑lamp检测引物组及其应用
Bender et al. Characterization of Erysipelothrix species isolates from clinically affected pigs, environmental samples, and vaccine strains from six recent swine erysipelas outbreaks in the United States
CN104007269B (zh) 一种鸭疫里默氏杆菌间接血凝抗体检测试剂盒及其应用
US11505834B2 (en) Method for detecting Brucella infection and application thereof
Hopwood et al. Use of the Pastorex aspergillus antigen latex agglutination test for the diagnosis of invasive aspergillosis.
CN105420379A (zh) 牛支原体的实时荧光定量PCR检测试剂盒及其专用引物、TaqMan探针
CN109266658A (zh) 一种鲍曼不动杆菌的特异基因及其引物和应用
CN104263838B (zh) 单增李斯特菌 lamp-lfd检测试剂盒及其检测方法
CN110229916A (zh) 一种大肠杆菌特异基因的引物及检测大肠杆菌的方法
CN104166000A (zh) 用于鉴定布鲁氏菌自然感染或免疫接种家畜的方法
CN113999921B (zh) 快速可视化检测福氏志贺氏菌的方法和试剂盒
CN104263839A (zh) 布鲁氏杆菌 lamp-lfd检测试剂盒及其检测方法
CN101799470A (zh) 布鲁氏菌病间接酶联免疫吸附试验抗体检测试剂盒
CN107746893A (zh) 沙门氏菌的ic‑lamp检测引物组及其应用
CN104357552A (zh) 幽门螺杆菌血清型分型方法及其生物芯片的构建方法
CN108226495B (zh) 一种基于金纳米探针鉴定单个肺炎衣原体的方法
CN108251547A (zh) 肺炎克雷伯杆菌的ic-pcr检测引物组及其应用
CN106191286A (zh) 布鲁氏菌的检测方法、试剂盒及其应用
CN106755336A (zh) 一种肺炎克雷伯菌特异基因的应用
CN103789442B (zh) 一种实时fret-pcr和巢式pcr检测和分型立克次氏体的引物、探针及试剂盒
CN106093439A (zh) 一种猪链球菌间接血凝检测试剂盒及其应用
CN105866437B (zh) 一种屎肠球菌间接血凝检测试剂盒及其应用
CN106188249B (zh) 用于检测pedv变异株抗体的抗原及方法和试剂盒
CN104862394B (zh) 一种用于检测大肠杆菌的引物及其方法和应用
CN106980017B (zh) 一种兔支气管败血波氏杆菌的检测方法

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
RJ01 Rejection of invention patent application after publication
RJ01 Rejection of invention patent application after publication

Application publication date: 20170915