CN106754797B

CN106754797B - 一种氧化酶及其应用

Info

Publication number: CN106754797B
Application number: CN201710006614.4A
Authority: CN
Inventors: 蔡宇杰; 沈天成; 冯佳婷; 白亚军; 郑晓晖
Original assignee: Jiangnan University
Current assignee: Zhuohong Chaoyuan Biotechnology Zhengzhou Co ltd
Priority date: 2017-01-05
Filing date: 2017-01-05
Publication date: 2019-11-15
Anticipated expiration: 2037-01-05
Also published as: CN106754797A

Abstract

本发明涉及一种来源于Kerstersia gyiorums的L‑α‑羟酸氧化酶基因的获得及其克隆表达，属于生物工程领域。公开了其底物特异性，同时该L‑α‑羟酸氧化酶可以氧化(S)‑α‑羟酸酯，可应用于光学纯(R)‑α‑羟酸酯的制备。

Description

一种氧化酶及其应用

技术领域

本发明克隆表达了一种L-α-羟酸氧化酶，并公开了其核苷酸序列和氨基酸序列及酶学性质和应用，属于工业微生物领域。

背景技术

L-α-羟酸氧化酶(L-α-hydroxyacid oxidase)是一种以FMN(FAD)为辅酶的脱氢酶(Aliphatic l-α-hydroxyacid oxidase from rat livers purification andproperties. Biochimica et Biophysica Acta(BBA)-Enzymology 1968,167:9-22)，通常包含有乙醇酸氧化酶(glycolate oxidase)(Preparation and some properties ofcrystalline glycolic acid oxidase of spinach.J.Biol.Chem.1958,231(1):135–57)、L-乳酸氧化酶(L-lactate oxidase)(Conversion of L-lactate oxidase to a longchain alpha- hydroxyacid oxidase by site-directed mutagenesis of alanine 95toglycine.J Biol Chem.19968；271(45):28300-28305)。可用于生物传感器中测定乳酸的含量，或氧化L-乳酸生产丙酮酸。也有被用于光学纯α-羟酸的制备(中国专利201210109290.4)

目前为止，已经在恶臭假单胞菌(Pseudomonas putida)，绿色气球菌(Aerococcus viridians)，链球菌属(Streptococcus sp.)，片球菌属 (Pediococcussp.)，乳酸乳球菌(Lactococus lactis)，迟钝爱德华菌 (Edwardsiella tarda)，耻垢分枝杆菌(Mycobacterium smegmatis),运动发酵单胞菌(Zymomonas mobilis)和过氧化醋杆菌(Acetobacter peroxidans)等细菌中克隆表达得到了L-乳酸氧化酶。L-乳酸氧化酶也在一些真菌中检测到，例如白地霉(Geotrichum candidum)和解脂耶氏酵母(Yarrowialipolytica)。 (Search for Lactate Oxidase Producer Microorganisms，AppliedBiochemistry and Microbiology,2007,43(2)178–181)

本发明首次从Kerstersia gyiorum DSM 16618中克隆表达出一种新型的L- α-羟酸氧化酶，该酶不仅可以氧化(S)-α-羟酸，而且可以氧化(S)-α-羟酸酯，可应用于光学纯(R)-α-羟酸酯和(R)-α-羟酸的制备。

发明内容

本发明从Kerstersia gyiorum中克隆得到了一种L-α-羟酸氧化酶的基因，利用大肠杆菌工程菌异源表达，公开了其相关的酶学特性，并进行了应用研究。

本发明的技术方案如下：

1、菌株

本发明L-α-羟酸氧化酶基因的来源菌株为：Kerstersia gyiorum DSM 16618，购自DSMZ-德国微生物菌种保藏中心。

2、L-α-羟酸氧化酶基因的克隆

提取Kerstersia gyiorum DSM 16618菌体基因组总DNA。设计特异性引物，应用PCR方法，扩增出L-α-羟酸氧化酶基因全长编码框序列。并构建重组质粒。

3、L-α-羟酸氧化酶表达与纯化

将重组质粒导入E.coli BL21(DE3)中，诱导表达。菌体破碎后得到粗酶液，纯化后冷冻干燥备用。

4、L-α-羟酸氧化酶的酶学性质分析

以L-乳酸为底物研究pH对本发明所述L-α-羟酸氧化酶酶活的影响。

以L-乳酸为底物研究温度对本发明所述L-α-羟酸氧化酶酶活的影响。

L-α-羟酸氧化酶的底物特异性分析：所用的底物有L-乳酸、乙醇酸、L-苯乳酸、L-酒石酸、L-苹果酸、L-对羟基苯乳酸、L-丹参素、L-扁桃酸。

酶活测定方法为：根据Characterization of a Lactate Oxidase from aStrain of Gram Negative Bacterium from Soil，Applied Biochemistry andBiotechnology,56, 1996,278-288。所述方法进行。

5、L-α-羟酸氧化酶拆分混旋的α-羟酸酯

拆分α-羟酸酯(alpha-hydroxy esters)的方法为：取纯化好的酶0.1克于50 mL三角瓶中，加入溶有α-羟酸酯5mM的pH 7的磷酸盐缓冲液中，于30℃， 150rpm水浴摇床中转化16h，转化后液相色谱分析上清液。(S)-α-羟酸酯中的α-羟基被脱氢氧化成对应的α-酮酸酯，(R)-α-羟酸酯不被氧化。

产物(R)-α-羟酸酯的光学纯度通过对映体过量值(％e.e)来评价：

对映体过量值％e.e＝[(S_R-S_S)/(S_R+S_S)]×100％

(R)-α-羟酸酯得率(％)＝(S_R/S₀)×100％

式中S_R为反应后(R)-对映体的峰面积，S_S为反应后(S)-对映体的液相色谱峰面积，S₀为反应前(R)-和(S)-对映体的液相色谱峰面积之和。

产物测定液相色谱条件为：Chiralcel OD-H手性柱(4.6×250mm)，流动相体积比为正己烷：异丙醇：三氟乙酸＝80:20:0.1，流速为0.5mL/min，柱温 25℃，检测波长210nm，进样量20μL。

所述的α-羟酸酯为下列之一：丹参素冰片酯、丹参素异丙酯、苯乳酸冰片酯、苯乳酸异丙酯、对羟基苯乳酸冰片酯、对羟基苯乳酸异丙酯、扁桃酸冰片酯、扁桃酸异丙酯、丹参素细辛醇酯、乳酸冰片酯、苯乳酸细辛醇酯、对羟基苯乳酸细辛醇酯。

所述的α-羟酸酯，根据中国专利200610042787.3、201410180490.8、201410175950.8和20140699506.6公布的方法合成。

本发表明的有益之处：从Kerstersia gyiorum DSM 16618中克隆得到了一种 L-α-羟酸氧化酶，该酶可以氧化(S)-α-羟酸和(S)-α-羟酸酯，可用于规模化制备手性纯(R)-α-羟酸酯，具有重要的工业应用价值。

具体实施方式

实施例1

本实施例为本发明所述L-α-羟酸氧化酶基因的克隆与大肠杆菌工程菌构建。

1、Kerstersia gyiorum DSM 16618DNA的提取

将Kerstersia gyiorum DSM 16618菌株在LB培养基中培养12h，12,000 rmp/min离心10min得到菌体，应用细菌基因组DNA抽提试剂盒(TaKaRa公司)按照其操作提取菌体基因组总DNA，放冰箱备用。

2、大肠杆菌感受态制备

(1)接种E.coli DH5α和BL21(DE3)分别于含有20mL LB培养基的250mL 摇瓶中，37℃、200rpm/min培养过夜。

(2)按1％接种量接种于50mL LB培养基中，37℃培养至OD₆₀₀约0.6(约 2～3h)。

(3)将菌液转移到50mL预冷的离心管中，冰上放置30min，8000 rpm/min、4℃离心5min。

(4)弃上清，加入5mL预冷的0.1mol/L CaCl₂溶液，使菌体悬浮，冰上放置20min，8000rpm/min、4℃离心5min。重复2次。

(5)弃上清，加入1.5mL预冷的0.1mol/L CaCl₂溶液(含15％甘油)，轻轻悬浮菌体，然后按每个离心管(1.5mL)加入100μL菌液分装，-70℃冰箱保藏备用。

3、L-α-羟酸氧化酶基因的克隆

(1)引物设计

设计引物序列为：

引物1：5'AGCCGGGATCCATGATCATCTCTTCTCCCTCCGACT 3'

引物2：5'GCCGTCTAGAGCGAGTCCCTCCTTGACCAGC 3'

(2)PCR扩增

用以上合成的两条引物，以Kerstersia gyiorum DSM 16618的基因组DNA 为模板进行PCR扩增。

本步骤中扩增体系为：

扩增程序为：

98℃，10min

98℃，10sec；55℃，15sec；72℃，2min反应30个循环

72℃，10min

PCR产物送华大基因测序后得到该酶的基因序列，如SEQ ID NO:1所示。根据该基因序列得到的氨基酸序列如SEQ ID NO:2所示。

(3)双酶切和连接

将pColdⅡ质粒和PCR产物进行双酶切，酶切体系为：10×cut buffer 3μl, DNA 4μl，酶BamHI和XbaI各0.5μl，无菌水2μl共30μl。37℃水浴下双酶切1h。将DNA片段克隆到pColdⅡ载体上，并转化到E.coli DH5α感受态细胞中。连接体系：10×DNA ligase buffer2.5μl，DNA片段8μl，载体DNA 2μl， T4DNA ligase 1μl，无菌水11.5μl共25μl。16℃水浴下连接12h-16h。

(4)转化

步骤：

1在连接体系中加入100μl DH5α感受态细菌，轻混匀，冰浴30min。

2放入预热的42℃水浴中，放置90s进行热休克处理。

3立即冰浴2min。

4加入1ml不含抗生素的LB培养液，37℃培养1h使菌体复苏。

5将菌体均匀涂布在含抗生素的LB平板上。

6培养24h长势良好。挑单菌落进行菌落PCR，核酸电泳验证，提取重组质粒。将重组质粒导入BL21大肠杆菌感受态中，保存备用。

实施例2

本实施例为本发明所述L-α-羟酸氧化酶的诱导表达及分离纯化。

1、加500μl重组菌液到50ml LB培养液中。37℃培养2.5h，15℃下静置0.5h。再加20μl 0.5M的IPTG，15℃下冷诱导培养24h。将发酵液进行离心(8000rmp/min，10min)得到菌体，用磷酸氢二钠-磷酸二氢钠缓冲溶液 (20mmol/L，pH 7.0)复溶菌体，超声破碎仪破碎，离心(8000rmp/min，10 min)收集上清得到粗酶液。

2、将步骤1得到的粗酶液采用AKTA avant 150蛋白纯化系统操作进行镍柱纯化，洗脱方法为：将A1、A2、B1、B2四根管路都放进水里，设置system flow 20ml/min流速，进行排气。然后设置system flow 1ml/min、flow path (column position 3)、delta pressure0.3、pre-pressure 0.5、Gradient 0、inset A1，待水滴均匀流出后装柱子，平衡十分钟之后把A1放进结合液中，B1放进洗脱液中，再进行排气一次，平衡二十分钟，然后上样粗酶液，用500mM的高浓度咪唑缓冲液(B1所处溶液)梯度洗脱目的蛋白，将吸附在离子柱上的蛋白洗脱下来得到纯化的酶。纯化后的酶经冷冻干燥备用。

实施例3

本实施例为本发明所述L-α-羟酸氧化酶的最适温度。以L-乳酸为底物，将底物与pH为9.0的磷酸缓冲液在30-60℃不同的温度条件下水浴15min，测定 L-α-羟酸氧化酶的酶活，确定酶的最适反应温度为45℃。

实施例4

本实施例为本发明所述L-α-羟酸氧化酶的最适pH值。以L-乳酸为底物，将底物在pH 3-9，45℃水浴15min测定酶的酶活，结果发现在pH 9.0条件下 L-α-羟酸氧化酶酶活最高。

实施例5

本实施例为本发明所述L-α-羟酸氧化酶与不同底物的反应特性列于表1 。

表1 L-α-羟酸氧化酶对不同底物的活性

实施例6

根据发明内容中的方法拆分各种外消旋α-羟酸酯，结果如下表所示：

表2 拆分各种外消旋α-羟酸酯的效果

由上表可以看出，当在反应时间充分时，可以得到各类高光学纯的(R)-α- 羟酸酯，该酶的光学专一性非常好。

SEQUENCE LISTING

<110> 江南大学

<120> 一种氧化酶及其应用

<130> No

<160> 2

<170> PatentIn version 3.5

<210> 1

<211> 1146

<212> DNA

<213> Kerstersia gyiorum DSM16618

<400> 1

atgatcatct cttctccctc cgactaccgc ctggccgcca agaaacgcct gccgcccttc 60

ctgttccact acatcgacgg cggcgcgtat tccgaagaca ccctgcgcca caatgtcagc 120

gacctgtcag agatcctgct gcgccagcgc atcctgaaag acacggccac cctggacctg 180

agcacccggc tgttcgacga aacgctgtcc atgccgctgg cgctctcgcc cgtcggcctg 240

accggcatgt atgcgcgccg tggcgaagtc caggccgcac gcgcggcgga tgccaagggc 300

atccccttca ccatgtccag cgtttcggtc tgcccgatcg aggaagtaac gcccaagatc 360

aagcgcccca tgtggttcca gctgtatgtc ctgaaagacc gcggcttcat gcgcaatgtg 420

ctggaacgcg cccgcgatgc cggttgctcg acgctggtct tcacggtgga catgcccatc 480

cccggcgcac gctaccgcga cgcccattca ggcatgagcg gccccaatgc caacctgcgc 540

cgttatctgc aggccgtcac ccgcccgggc tggtcctggg acgtcggcct gtttggccgt 600

ccccatgatc tgggcaacat ctcggcctac ctgggcaagc ccaccggcct ggaagactac 660

atgggctacc tgggcgccaa cttcgacccc accatttcct ggaaagacct ggaatggata 720

cgcgatttct ggcaaggccc catggtcatc aagggcattc ttgatcctga agacgcgcgc 780

gacgccgtcc gtttcggcgc cgatggcatc gtcgtgtcca accatggcgg ccgccagctc 840

gacggcgtgc tctccgccgc caaggcactg cctcccattg ccgacgcagt caaggggcaa 900

ctgaagatcc tggtcgattc cggcgtacgc agcggcctgg atgtggtccg catgatggcg 960

ctgggcgcag acctggccat gataggccgc gcctatatct acgcgctggc tgccggcggc 1020

caggaagctg tggcaaactt gctgaacctg ttcgacaagg aaatccgcgt cgccatgacc 1080

ctgaccggcg cgcggaatat cggtgaaatc acttccgacc tgctggtcaa ggagggactc 1140

gcatga 1146

<210> 2

<211> 381

<212> PRT

<213> Kerstersia gyiorum DSM16618

<400> 2

Met Ile Ile Ser Ser Pro Ser Asp Tyr Arg Leu Ala Ala Lys Lys Arg

1 5 10 15

Leu Pro Pro Phe Leu Phe His Tyr Ile Asp Gly Gly Ala Tyr Ser Glu

20 25 30

Asp Thr Leu Arg His Asn Val Ser Asp Leu Ser Glu Ile Leu Leu Arg

35 40 45

Gln Arg Ile Leu Lys Asp Thr Ala Thr Leu Asp Leu Ser Thr Arg Leu

50 55 60

Phe Asp Glu Thr Leu Ser Met Pro Leu Ala Leu Ser Pro Val Gly Leu

65 70 75 80

Thr Gly Met Tyr Ala Arg Arg Gly Glu Val Gln Ala Ala Arg Ala Ala

85 90 95

Asp Ala Lys Gly Ile Pro Phe Thr Met Ser Ser Val Ser Val Cys Pro

100 105 110

Ile Glu Glu Val Thr Pro Lys Ile Lys Arg Pro Met Trp Phe Gln Leu

115 120 125

Tyr Val Leu Lys Asp Arg Gly Phe Met Arg Asn Val Leu Glu Arg Ala

130 135 140

Arg Asp Ala Gly Cys Ser Thr Leu Val Phe Thr Val Asp Met Pro Ile

145 150 155 160

Pro Gly Ala Arg Tyr Arg Asp Ala His Ser Gly Met Ser Gly Pro Asn

165 170 175

Ala Asn Leu Arg Arg Tyr Leu Gln Ala Val Thr Arg Pro Gly Trp Ser

180 185 190

Trp Asp Val Gly Leu Phe Gly Arg Pro His Asp Leu Gly Asn Ile Ser

195 200 205

Ala Tyr Leu Gly Lys Pro Thr Gly Leu Glu Asp Tyr Met Gly Tyr Leu

210 215 220

Gly Ala Asn Phe Asp Pro Thr Ile Ser Trp Lys Asp Leu Glu Trp Ile

225 230 235 240

Arg Asp Phe Trp Gln Gly Pro Met Val Ile Lys Gly Ile Leu Asp Pro

245 250 255

Glu Asp Ala Arg Asp Ala Val Arg Phe Gly Ala Asp Gly Ile Val Val

260 265 270

Ser Asn His Gly Gly Arg Gln Leu Asp Gly Val Leu Ser Ala Ala Lys

275 280 285

Ala Leu Pro Pro Ile Ala Asp Ala Val Lys Gly Gln Leu Lys Ile Leu

290 295 300

Val Asp Ser Gly Val Arg Ser Gly Leu Asp Val Val Arg Met Met Ala

305 310 315 320

Leu Gly Ala Asp Leu Ala Met Ile Gly Arg Ala Tyr Ile Tyr Ala Leu

325 330 335

Ala Ala Gly Gly Gln Glu Ala Val Ala Asn Leu Leu Asn Leu Phe Asp

340 345 350

Lys Glu Ile Arg Val Ala Met Thr Leu Thr Gly Ala Arg Asn Ile Gly

355 360 365

Glu Ile Thr Ser Asp Leu Leu Val Lys Glu Gly Leu Ala

370 375 380

Claims

1.一种拆分α-羟酸酯(alpha-hydroxy esters)的方法，其特征在于，所述方法为：取纯化好的酶0.1克于50mL三角瓶中，加入溶有α-羟酸酯5mM的pH 7的磷酸盐缓冲液中，于30℃，150rpm水浴摇床中转化16h，转化后液相色谱分析上清液；所述酶为来源于Kerstersiagyiorum的L-α-羟酸氧化酶，其氨基酸序列为SEQ ID NO:2所示；所述的α-羟酸酯为下列之一：丹参素冰片酯、丹参素异丙酯、苯乳酸冰片酯、苯乳酸异丙酯、对羟基苯乳酸冰片酯、对羟基苯乳酸异丙酯、乳酸冰片酯、扁桃酸冰片酯、扁桃酸异丙酯、丹参素细辛醇酯、苯乳酸细辛醇酯、对羟基苯乳酸细辛醇酯。

2.根据权利要求1所述的方法，其特征在于，所述L-α-羟酸氧化酶的核苷酸序列为SEQID NO:1所示。