CN106259940A - 吉林人参低聚肽在制备抗氧化功能的食品或保健食品中的用途 - Google Patents

Abstract

本发明公开了吉林人参低聚肽在制备抗氧化功能的食品或保健食品中的用途。吉林人参低聚肽是从吉林人参中利用生物酶解技术得到的小分子生物活性肽的混合物。吉林人参低聚肽易吸收、吸收快且粘度低，生物利用率高。对氧化模型大鼠灌胃吉林人参低聚肽水溶液45天，结果显示，对于正常大鼠，吉林人参低聚肽可以降低大鼠脂质氧化产物水平，提高大鼠抗氧化酶活力，从而发挥抗氧化功能；对于氧化模型大鼠，吉林人参低聚肽可以显著降低大鼠脂质氧化产物和蛋白质氧化产物水平，提高大鼠抗氧化酶活力，进而发挥抗氧化功能。具备了作为一种新型抗氧化功能制剂的潜力。本发明发现了吉林人参低聚肽具有抗氧化的功能，可用于制备抗氧化功能食品或保健食品，为通过饮食来发挥抗氧化功能提供了一种新途径。

Description

吉林人参低聚肽在制备抗氧化功能的食品或保健食品中的用途

技术领域

本发明涉及吉林人参低聚肽的一种新用途，具体来说是吉林人参低聚肽在抗氧化功能的食品或保健食品中的用途。

背景技术

氧化应激(Oxidative Stress)是指机体在遭受各种有害刺激时，体内高活性分子如活性氧自由基(reactive oxygen species，ROS)和活性氮自由基(reactive nitrogen species，RNS)产生过多，氧化程度超出氧化物的清除，氧化系统和抗氧化系统失衡，从而导致机体组织细胞及蛋白和核酸等生物大分子损伤。研究证实，氧化应激可导致胰岛β细胞功能损伤及外周胰岛素抵抗，从而导致糖尿病的发生；并能引起内皮细胞功能障碍，导致心血管疾病；此外，还可引发自身免疫性疾病、血液系统疾病及癌症等一系列疾病，给人体健康造成极大损害。因此控制氧化应激对于维持机体健康具有极其重要的作用。寻找安全有效的抗氧化物质显得尤为迫切。

目前临床应用的抗氧化药物主要有单胺氧化酶抑制剂、多巴胺受体激动剂、维生素等。这些药物均有不同程度的副作用，不宜长期服用。近年来的大量研究已经证实天然食物成分在抗氧化方面是安全有效的。

生物活性肽是指对生物机体的生命活动有益或具有生理作用的肽类化合物。肽在分子结构上处于氨基酸和蛋白质的中间位置，但它具有氨基酸和蛋白质所不能替代的功能。低聚肽，又称为活性小分子肽，一般由10个或10个以下氨基酸组成。研究发现低聚肽比单个氨基酸的吸收更有效，且能直接参与蛋白质的合成，因此提高了机体对蛋白质的利用率。在氨基酸运输系统出现障碍的情况下，摄入低聚肽却能获得良好的吸收效果。另外，生物活性肽类具有广泛的生物活性，如免疫调节、降胆固醇、降血压、抗血栓、抗癌、抗病毒、抗氧化和清除自由基作用、促进生长等。目前生物活性肽以其高效、安全的特点异军突起，逐渐显示出其在临床营养中的重要作用和广泛的应用前景。

人参为名贵中药材，有关人参的药用已经有四千多年的历史。目前世界上的人参主要有四种：即我国的“吉林人参”、朝鲜的“高丽参”、日本的“东洋参”和加拿大、美国的“西洋参”。我国的人参为五加科植物人参的干燥根及根茎，主要产于吉林省。2012年9月4日，中国卫生部批准人参成为新资源食品，人参的应用将由单一的中药材拓展到食品、饮料及保健产品等领域，范围大幅扩大，这为我国的人参产业发展提供了新的契机。人参具有大补元气、生津止渴、安神等功效。研究发现，人参可通过提高超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)等抗氧化酶活性，降低丙二醛(MDA)等脂质氧化产物的含量来发挥抗氧化作用。对人参提取物人参皂甙的研究也发现，人参皂苷Re、Rg1等具有抗氧化功能。人参低聚肽虽然作为一类重要的化合物存在于人参组织中，但其功能研究较少报道，有关其抗氧化功能的研究尚未见报道。人参低聚肽在人体胃肠道极易消化吸收，因而可避免活性物质的浪费，大大提高其生物活性，可作为一种新型的具有抗氧化功能作用的食品或保健品的配方材料。

发明内容

本发明的目的在于提供一种低粘度、易吸收且吸收快的吉林人参低聚肽在制备抗氧化功能食品或保健食品中的用途，为通过饮食来提高抗氧化功能提供一种新途径。

其中所述的食品为粉剂、片剂、液体饮料、奶粉及奶制品、糖果或烘焙制品。

其中所述的保健食品为粉剂、片剂、胶囊或口服液。

本发明发现了现有物质-吉林人参低聚肽具有抗氧化的功能，发现了其在制备抗氧化功 能的食品或保健食品中的用途。动物实验发现灌胃吉林人参低聚肽水溶液能够有效的提高氧化模型大鼠的抗氧化功能。

具体实施方式

下面结合具体实施例对本发明做进一步说明，这些实例应被理解为仅是举例说明，而非以任何方式限制本发明的范围。

实施例1、对氧化模型大鼠抗氧化功能影响的实验研究

一、材料和方法

1样品：吉林人参低聚肽，由吉林肽谷生物工程有限责任公司提供，淡黄色固体粉末，主要成分为分子量小于1000的小分子低聚肽，含量为97.4％。

2实验动物：健康SPF级成年雄性SD大鼠90只，适应期结束时，体重200±20g，由北京大学医学部实验动物中心提供。实验动物分笼饲养，每笼3只，自由饮食、饮水。动物饲养实验室符合国标SPF级，温度范围为22±2℃，相对湿度为50％～60％，昼：夜明暗交替时间为12h：12h。

3剂量分组及受试样品给予时间：实验设6个剂量组(0.0625g/kg BW、0.125g/kg BW、0.25g/kg BW、0.50g/kg BW、1.00g/kg BW、2.00g/kg BW)、1个空白对照组、1个乳清蛋白组(0.25g/kg BW)和1个模型对照组。受试样品给予时间为45天。

二、实验方法

1动物造模、分组及给受试物

1.1适应期：于屏障系统下大鼠喂饲基础饲料观察5-7天。

1.2造模期

按体重随机分成2组，10只大鼠作为空白对照组，其余80只作为模型组。空白对照组每日腹腔注射灭菌生理盐水，注射量为0.2mL/100g，每日1次。模型组用D-半乳糖125mg/kg BW腹腔注射造模，注射量为0.2mL/100g(将D-半乳糖31.25g溶于500ml生理盐水中配成D-半乳糖-氯化钠注射液，使用前配制常规灭菌后使用)，每日1次，连续造模6周，取血测MDA，按MDA水平分组，随机分为1个模型对照组、1个乳清蛋白组和6个受试样品剂量组。

1.3受试样品给予

分组后，6个剂量组每天灌胃给予不同浓度人参肽，空白对照组、模型对照组给予同体积蒸馏水，乳清蛋白组给予同体积乳清蛋白水溶液。在给受试样品的同时，模型对照组、乳清蛋白组和各剂量组继续给予相同剂量D-半乳糖腹腔注射，空白对照组继续给予相同剂量生理盐水腹腔注射。

实验过程中，每周各鼠称重记录1次，按体质量调整腹腔注射量和灌胃量。每日观察大鼠的皮毛色泽、饮食、饮水、大小便、精神活动情况等。

2氧化应激指标的检测

末次给灌胃及腹腔注射完毕后，大鼠禁食不禁水12h后采血，断头处死大鼠。

2.1血清氧化应激指标的检测

血液3000r/min离心10min，取血清按照试剂盒说明书检测8-表氢氧-异前列腺素(8-Isoprostane)、丙二醛(MDA)、蛋白质羰基、超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)、还原性谷胱甘肽(GSH)水平。

2.2肝脏氧化应激指标的检测

在冰浴剥离肝脏，除去脂肪组织，用预冷的生理盐水漂洗组织至无血色，称取相同部位组织适量，用眼科小剪刀剪碎组织块，加入相应倍数的预冷生理盐水，用匀浆机制成测试所需百分含量(10％)的组织匀浆(匀浆时间10s/次，间隔30s，在冰浴中进行)，3000r/min低温离心10min，取上清，按照试剂盒说明书进行丙二醛(MDA)、蛋白质羰基、超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)、还原性谷胱甘肽(GSH)含量的测定。

三、统计方法

所有实验数据以均数±标准差表示。采用SPSS20.0软件进行单因素方差分析，p＜0.05具有统计学意义。

四、实验结果

1、吉林人参低聚肽对氧化模型大鼠脂质氧化产物的影响

如表1所示，实验结束时，与空白对照组相比，模型对照组大鼠血清8-表氢氧异前列腺素、丙二醛水平和肝脏丙二醛水平均有所增高，其中血清丙二醛水平增高最为显著(p＜0.05)。与模型对照组相比，吉林人参低聚肽C、D剂量组大鼠血清8-表氢氧异前列腺素水平显著降低(p＜0.05)；吉林人参低聚肽A、B、D、F剂量组大鼠血清丙二醛水平显著降低(p＜0.05)；吉林人参低聚肽A、B、D、F剂量组大鼠肝脏丙二醛水平显著降低(p＜0.05)。与乳清蛋白组相比，吉林人参低聚肽各剂量组大鼠血清8-表氢氧异前列腺素水平均无显著变化，差异无统计学意义(p＞0.05)，吉林人参低聚肽A、B、D、F剂量组大鼠血清丙二醛水平显著降低(p＜0.05)；吉林人参低聚肽F剂量组大鼠肝脏丙二醛水平显著降低(p＜0.05)。

表1 人参低聚肽对氧化模型大鼠脂质氧化产物的影响(n＝10)

注：a：与空白对照组比较差异有显著性(p＜0.05)；

b：与模型对照组比较差异有显著性(p＜0.05)；

c：与乳清蛋白组比较差异有显著性(p＜0.05)。

2、吉林人参低聚肽对氧化模型大鼠蛋白质氧化产物的影响

如表2所示，实验结束时，与空白对照组相比，模型对照组大鼠血清蛋白质羰基水平显著增高，差异有统计学意义(p＜0.05)。与模型对照组相比，乳清蛋白组、吉林人参低聚肽A、B、C、D和E剂量组大鼠血清蛋白质羰基水平显著降低(p＜0.05)；吉林人参低聚肽F剂量组大鼠肝脏蛋白质羰基水平显著增高(p＜0.05)。与乳清蛋白组相比，吉林人参低聚肽F剂量组大鼠血清和肝脏蛋白质羰基水平均显著增高(p＜0.05)。

表2 人参低聚肽对氧化模型大鼠蛋白质氧化产物的影响(n＝10)

注：a：与空白对照组比较差异有显著性(p＜0.05)；

b：与模型对照组比较差异有显著性(p＜0.05)；

c：与乳清蛋白组比较差异有显著性(p＜0.05)。

3、吉林人参低聚肽对氧化模型大鼠抗氧化酶活力的影响

如表3所示，实验结束时，与空白对照组相比，模型对照组大鼠血清和肝脏超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)水平均无显著变化，差异无统计学意义(p＞0.05)。与模型对照组相比，吉林人参低聚肽C、E剂量组大鼠血清SOD水平显著增高(p＜0.05)；吉林人参低聚肽B、C、D、F剂量组大鼠肝脏SOD水平显著增高(p＜0.05)；吉林人参低聚肽B、D、F剂量组大鼠肝脏GSH-Px水平显著增高(p＜0.05)；与乳清蛋白组相比，吉林人参低聚肽E剂量组大鼠血清SOD水平显著增高(p＜0.05)；人参低聚肽A、B、C、F剂量组大鼠血清GSH-Px水平显著增高(p＜0.05)；吉林人参低聚肽B、C、D、F剂量组大鼠肝脏SOD水平显著增高(p＜0.05)。

表3 人参低聚肽对氧化模型大鼠抗氧化酶活力的影响(n＝10)

注：a：与空白对照组比较差异有显著性(p＜0.05)；

b：与模型对照组比较差异有显著性(p＜0.05)；

c：与乳清蛋白组比较差异有显著性(p＜0.05)。

4、吉林人参低聚肽对氧化模型大鼠抗氧化物质GSH的影响

如表4所示，实验结束时，与空白对照组相比，模型对照组大鼠血清和肝脏还原性谷胱甘肽(GSH)水平均无显著变化，差异无统计学意义(p＞0.05)。与模型对照组相比，吉林人参低聚肽B和C剂量组大鼠血清GSH水平显著增高(p＜0.05)；吉林人参低聚肽各剂量组 大鼠肝脏GSH水平均无显著变化，差异无统计学意义(p＞0.05)。与乳清蛋白组相比，吉林人参低聚肽B和C齐量组大鼠血清GSH水平显著增高(p＜0.05)；吉林人参低聚肽C剂量组大鼠肝脏GSH水平显著增高(p＜0.05)；其他各组均无显著变化，差异无统计学意义(p＞0.05)。

表4 人参低聚肽对氧化模型大鼠抗氧化物质GSH的影响(n＝10)

注：a：与空白对照组比较差异有显著性(p＜0.05)；

b：与模型对照组比较差异有显著性(p＜0.05)；

c：与乳清蛋白组比较差异有显著性(p＜0.05)。

五、实验结论

本研究通过建立D-半乳糖氧化大鼠模型，设立空白对照组、模型对照组和乳清蛋白组作为对照组，探讨吉林人参低聚肽对大鼠抗氧化作用的影响。

实验结束时，与空白对照组相比，模型对照组大鼠血清8-表氢氧异前列腺素水平、血清和肝脏丙二醛(MDA)水平、血清蛋白质羰基水平均增高，肝脏超氧化物歧化酶(SOD)水平降低，其中血清丙二醛(MDA)和蛋白质羰基水平增高最为显著，表明本实验氧化模型建立成功。

实验结果表明，吉林人参低聚肽可以显著降低大鼠脂质氧化产物和蛋白质氧化产物水平，提高大鼠抗氧化酶活力，从而发挥抗氧化功能，具备了作为一种新型抗氧化功能制剂的潜力，其适宜浓度范围为每天0.0625～1g/kgbw。

Claims (3)

1.吉林人参低聚肽在制备抗氧化功能的食品或保健食品中的用途。

2.根据权利要求1所述的吉林人参低聚肽在制备抗氧化功能的食品或保健食品中的用途，其特征在于：所述抗氧化功能的食品为粉剂、片剂、液体饮料、奶粉及奶制品、糖果或烘焙制品。

3.根据权利要求1所述的吉林人参低聚肽在制备抗氧化功能的食品或保健食品中的用途，其特征在于：所述抗氧化功能的保健食品为粉剂、片剂、胶囊或口服液。