TrkA基因作为绵羊产羔数性状的分子标记及其应用
技术领域
本发明属于绵羊分子标记筛选技术领域,具体涉及TrkA基因作为绵羊产羔性状的分子标记及其应用。本发明的分子标记克隆自绵羊TrkA基因。
背景技术
传统育种方法中,对家畜性状选择的方法多依赖于家畜的表型,这种方法在大家畜选育中需要丰富的经验和长达几十年时间。对于一些由微效多基因控制的低遗传力的数量性状,例如绵羊产羔性状,不仅由母羊自身遗传因素决定,且受到不同环境和饲养条件的影响,常规育种方法遗传改良进展缓慢。形态学标记、细胞学标记、生物化学标记以及免疫学标记虽然已经在优良种畜选育中进行应用,但由于这些标记的多态性低和信息量小,且是对基因的间接反映,受到基因与环境互作的影响比较大,在生产实践中有很大的局限性。随着分子生物学技术的发展,尤其是分子遗传标记技术的发展和完善,利用与目标性状紧密连锁的分子遗传标记,对目标性状进行跟踪性选择,减少育种过程中选择的盲目性,并可以进行早期选育,极大提高育种效率。
TrkA(Tyrosine Kinase A)是由原癌基因trk编码的酪氨酸蛋白激酶受体,神经生长因子(NGF)以二聚体的形式与其相结合,诱导TrkA酪氨酸残基处磷酸化,通过激活磷脂酶Cγ(PLCγ)→磷脂酶肌醇激酶(PI3K)→衔接蛋白(Shc)信号通路将胞外信号传递到细胞核(马永和,2010)。TrkA不仅介导NGF对神经系统中胆碱能神经元的分化和发育的调控(Counts S等,2005),而且在生殖系统也发挥功能,已经发现在人、鼠、金仓鼠、绵羊和山羊等动物卵泡均有TrkA基因表达(马永和等,2010)。不同发育阶段卵泡中TrkA表达丰度不同,猪的原始卵泡和初级卵泡的卵泡细胞和卵母细胞不表达TrkA,但在二级卵泡和三级卵泡的卵泡细胞及卵母细胞中有大量表达(Levanti MB等,2005)。NGF与TrkA参与早期卵泡的装配、颗粒细胞的增殖、卵母细胞的成熟及排卵等过程(Dissen GA等,2001)。在体外,NGF还可以促进牛腔前卵泡的发育(李海等,2005)和猪卵母细胞成熟(陆晨等,2013)。NGF-TrkA复合物对输卵管和子宫发育亦发挥重要作用,TrkA在子宫内膜细胞、腺细胞、基质细胞、输卵管黏膜上皮细胞均有表达,且卵泡期,输卵管中表达量显著高于卵巢(马永和等,2010)。
现有文献表明,TrkA基因参与了动物繁殖调控过程,尤其是卵子发生和卵泡发育。因此,寻找该基因中变异位点,通过与产羔性状间的关联分析,是进行分子遗传标记辅助选择的基础。此发明开展了绵羊TrkA基因部分基因组序列克隆和SNP筛查、检测及与产羔数性状关联分析,以提高繁殖力母羊选择的准确性,可望绵羊加快育种进程。
发明内容
本发明的目的在于克服现有技术的缺陷,特别是现有绵羊育种周期长、选择准确性低、无法进行早期选育等技术缺陷,提供一种提高绵羊产羔数性状关联的分子标记作为辅助选择的手段。本发明的核心在于通过PCR-RFLP技术对候选个体的TrkA基因部分序列进行基因型分析,为绵羊产羔数性状检测提供一种辅助选择的遗传标记。
本发明的技术方案如下所述:
申请人筛选得到一种绵羊产羔性状的分子标记,其核苷酸序列如下所述:
CTCCCGACTCTCACCGCCACCCCCTCCGGCCCACAGTCCCGGCCAGCGTGCATCTGCAGCCCGCCGTGGAGCAGCACCACTGGTGCATCCCCTTCTCGGTGGACGGGCAGCCGGCGCCCTCTCTGCGCTGGCTCTTCAATGGCTCCGCGCTCAACGAGACCAGCTTCATCTTCACCGAGTTCCTGGAGCTGGCGGCCAACGAGACGGTGCGCCACGGCTGCCTGCGCCTCAACCAGCCCACCCACGTCAACAACGGCAACTACACGCTGCTGGCGACCAACCCGCTGGGCCGGGCCGCCGCTTGGGTCATGGCTGCCTTCATGGACAACCCTTTCGAATTCAACCCTGAGGACCCCATTCCTGGTGTGAGGGCCACCCTGAACCCTGCTCCCGCTCCCTGGGCCCCAGCCGGGTGCAGATCCAGGTATCCGY(C/T)GGAGGCCTGGCCCACTTCCCACTGAGATCCTGACCCTGGAACCTGGAGGGCCTGGTCCCAGATGGAAAGTAGCCTGGAGTTCTGGTGTCCAGCTCTGTGCTGGCTTCCTCG,
在该序列的432碱基位处的Y是C或T,该突变导致RFLP-SacⅡ多态性。
申请人得到一种扩增TrkA基因片段或检测所述分子标记SNP的引物对,该引物对的DNA序列如下所示:
正向引物F:CTCCCGACTCTCACCGCC,
反向引物R:CGAGGAAGCCAGCACAGA。
申请人提供了一种筛选绵羊产羔性状分子标记的方法,所述的方法包括以下步骤:
从绵羊外周血液全血中提取基因组DNA,在位于Gene Bank登陆号ID:101109763所述的绵羊TrkA基因序列的突变位点附近设计一对引物,该引物对的DNA序列如SEQ ID NO:2和SEQ ID NO:3所示,对绵羊基因组DNA进行PCR扩增和序列测定,得到如SEQ ID NO:1所示的核苷酸序列,通过序列比对,筛查SNP,再利用SEQ ID NO:2和SEQ ID NO:3所示的引物对进行PCR扩增,将扩增获得片段利用限制性内切酶SacⅡ进行酶切分型及检测。
本发明的具体步骤如下:
采集湖羊和小尾寒羊外周血液,提取基因组DNA;设计了一种扩增上述TrkA基因(Gene Bank ID:101109763)片段和用于检测该基因片段的分子标记的引物对,该引物对DNA序列如下所示:
正向引物F:CTCCCGACTCTCACCGCC,
反向引物R:CGAGGAAGCCAGCACAGA。
申请人应用上述所得的引物对克隆得到绵羊(品种为湖羊和小尾寒羊)TrkA基因片段,其核苷酸序列如SEQ ID NO:1所述,在该序列的432位碱基处发生一个等位基因突变,即碱基C与碱基T替换,该突变导致PCR-SacⅡ-RFLP多态性。
更为详细的发明方案见《具体实施方式》所述。
本发明筛选的分子标记可在绵羊产羔性状辅助选择中应用。
附图说明
序列表SEQ ID NO:1是绵羊产羔性状相关的分子标记的核苷酸序列(也是扩增TrkA基因寻找SNP突变位点的部分核苷酸序列),序列长度为543bp,在该序列的第432位碱基处存在一个等位基因突变(C>T)。
序列表SEQ ID NO:2和SEQ ID NO:3是扩增SEQ ID NO:1所示序列引物对的DNA序列,也是实现绵羊C>T突变的PCR-ScaⅡ-RFLP基因型分型方法的引物对的序列。
图1:是绵羊TrkA基因(如SEQ ID NO:1所述的序列)部分测序结果和SNP位点。
图2:是绵羊TrkA基因(如SEQ ID NO:1所述的序列)PCR-ScaⅡ-RFLP检测结果。琼脂糖浓度为1%。附图标记说明:泳道M为DL2000DNA Marker(包含100bp、250bp、500bp、750bp、1000bp和2000bp共6种带型),其中:TT基因型片段大小为543bp,CC基因型片段大小为432bp,CT基因型片段大小分别为543bp和432bp。
图3:是本发明筛选的与绵羊产羔性状相关的分子标记的核苷酸序列。该序列的432碱基位处的Y是C或T,该突变导致RFLP-SacⅡ多态性。
具体实施方式
以下实施例用于对本发明作进一步说明,但不理解为对本发明的限制。在不背离本发明精神和实质的前提下,对本发明所做的修饰或替换,均属于本发明保护的范围。
1、血样采集
采集具有头胎产羔记录的绵羊(品种为湖羊和小尾寒羊)外周血液样品,血样采自甘肃省金昌中天羊业有限公司。
2、基因组DNA提取
采用传统DNA抽提方法(即酚/氯仿法)提取所采集绵羊血样中基因组DNA。具体步骤如下:
(1)取1mL采集的绵羊全血加入等体积的PBS缓冲液,温和震荡10min;
(2)4℃下,12000g离心10min后,弃上清;
(3)重复步骤(1)和步骤(2)至上清液透明,沉淀变为白色;
(4)加入700μL DNA抽提液(1M Tris-Cl(pH=8.0)25mL、0.5M EDTA(pH=8.0)100mL、10%SDS 50mL、2M NaCl 25mL,定容至500mL,常规高压灭菌),悬浮沉淀物,并于37℃水浴1h;
(5)加入3μL蛋白酶K(20mg/mL)溶液,混匀,55℃水浴消化过夜,至细胞沉淀被全部消化;
(6)冷却步骤(5)溶液至室温,加入等体积的Tris饱和酚溶液,冰水浴并温和摇动15min;
(7)4℃下,12000g离心10min,将上清液转移到另一干净离心管中;
(8)加入0.5倍体积的饱和酚溶液和0.5倍体积的氯仿,冰水浴并温和摇动15min;
(9)4℃下,12000g离心10min,将上清液转移到另一干净离心管中;
(10)加入等体积的氯仿,冰水浴并温和震荡15min;
(11)4℃下,12000g离心10min,将上清液转移到另一干净离心管中;
(12)加入2倍体积的预冷无水乙醇(-20℃),颠倒混匀多次至DNA沉淀析出,然后-20℃下静置30min;
(13)4℃下,12000g离心10min,弃上清;
(14)加入1mL 70%的乙醇,温和震荡10min;
(15)4℃下,12000g离心10min,弃上清;
(16)重复步骤(14)和(15)一次;
(17)待乙醇挥发干净后加入200μL超纯水溶解DNA,并检测质量。
3、引物设计
根据绵羊TrkA基因(Gene Bank登陆号ID:101109763)突变位点附近序列(SEQ IDNO:1),利用Oligo 7软件设计一对特异性引物,所述的引物的DNA序列如下所示:
扩增SEQ ID NO:1的正向引物F:CTCCCGACTCTCACCGCC,
扩增SEQ ID NO:1的反向引物R:CGAGGAAGCCAGCACAGA。
4、PCR程序
采用PCR方法,以湖羊和小尾寒羊的基因组DNA为模板扩增目的片段。
PCR扩增反应总体系为25μL:其中DNA模板(50ng/μL)1μL,2×Easy Taq PCR SuperMix 12.5μL(TranGen),上述制备的正向引物0.4μL(10μM),反向引物0.4μL(10μM),ddH2O10.7μL。
PCR扩增反应条件:94℃预变性5min;94℃变性30s,61℃退火30s,72℃延伸30s,35个循环后;72℃延伸5min,4℃保存。
对扩增得到PCR产物利用1%琼脂糖凝胶进行电泳检测。将不同绵羊个体得到的长度为543bp PCR产物混合测序,得到如SEQ ID NO:1所述的核苷酸序列,其测序峰图部分结果见图1。位于该序列的432位碱基处的C>T突变引起了SacⅡ酶切位点(CCG[C/T]↓GG)多态性。
5、限制性酶切片段多态性(RFLP)检测
采用SacⅡ-RFLP方法对绵羊TrkA基因SNP位点进行基因分型,酶切反应体系为10μL:其中PCR产物4μL,限制性内切酶(SacⅡ)0.5μL,10×buffer 1μL,用灭菌水补足10μL,样品混匀后离心,37℃孵育40min。
取5μL酶切产物用1%琼脂糖凝胶电泳,进行基因分型和鉴定,结果如图2所示。此扩增片段大小为543bp,该酶切多态位点位于该片段的432位碱基处,当该变异位点为C碱基时,会产生限制性内切酶SacⅡ的酶切位点(CCGC↓GG),SacⅡ酶切PCR产物后会产生2个大小为432bp和111bp的条带,鉴定基因型为CC型;当该位点为T碱基时,则不能产生SacⅡ的限制酶酶切位点,SacⅡ酶切PCR产物后任然为一条543bp的条带,鉴定基因型为TT型;当该位点处为C/T杂合型时,由于同时存在C碱基和T碱基,则SacⅡ酶切PCR产物后产生3条大小分别为543bp、432bp和111bp的条带,鉴定基因型为CT型。由于1%琼脂糖凝胶对111bp大小条带分离效果不明显,故图2中为显示111bp的条带。
6、绵羊TrkA基因片段在产羔数性状关联分析中的应用
本试验共检测了963只绵羊,包括526只湖羊和437只小尾寒羊的多态性,确定其基因型后,进行了基因型与产羔数性状之间的关联性分析。利用SPSS 19.0软件中的广义线性模型(General Linear Model,GLM)程序,并采用方差分析的最小二乘分析法进行分析的。
具体的线性模型如下:
Yijk=μ+Genotypei+Combinationj+εijk
其中,Yijk是性状观察值,μ为总体均数,Genotypei为基因型效应,Combinationj为组合的效应,εijk为随机误差,假定εij相互独立,服从N(0,σ2)分布。
基因型检测结果见表1.
表1TrkA基因不同基因型与产羔数的相关性
表1的说明:具有相同字母肩标的平均值间差异不显著(P>0.05),具有不同字母肩标的平均值间差异显著(P<0.05)。
表1数据说明在963只绵羊个体中CC基因型有156只(其中湖羊98只,小尾寒羊58只),CT型有541只(其中湖羊287只,小尾寒羊254只),TT型有266只(其中湖羊141只,小尾寒羊125只)。基因型与产羔数性状分析结果见表1,绵羊TrkA基因多态性与产羔数性状呈显著相关(p<0.05),在湖羊中,TT基因型(2.57±0.08)和CT基因型(2.38±0.06)产羔数显著高于CC基因型(1.67±0.10)。在小尾寒羊中,CT基因型(2.11±0.05)和TT基因型(2.21±0.07)显著高于CC基因型(1.83±0.11)。
主要参考文献:
李海,周虚,安铁洙.神经生长因子对牛腔前卵泡体外培养的影响.中国兽医科技,2005,35:139-142.
陆晨,李万宏,陈树雄,吕岩,周虚.神经生长因子对猪卵丘细胞扩散及卵母细胞体外成熟的影响.吉林农业大学学报,2013,35:351-354.
马永和.神经营养因子及其受体在母牛神经系统中的表达与功能研究.博士论文,2010,吉林大学,长春.
马永和,孙永峰,李纯锦,周虚.神经生长因子受体TrkA在母牛性腺及性腺外生殖器官中的表达研究.吉林农业大学学报,2010,32:330-334.
Counts S,Mufson EJ.The role of nerve growth factor receptors incholinergic basal forebrain degeneration in prodromal Alzheimerdisease.Neuropathol Exp Neurol,2005,64:263-272.
Dissen GA,Romero C,Hirshfield AN,Ojeda SR.Nerve growth factor isrequired for early follicular development in the mammalianovary.Endocrinology,2001,142:2078-2086.
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