CN105486823A - 一种检测丙草胺的酶联免疫试剂盒及其检测方法 - Google Patents

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刘静
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Abstract

本发明为检测丙草胺的酶联免疫试剂盒及其检测方法,其检测灵敏、准确、快速,操作简便、特异性强,适用于大批样品的检测。所述试剂盒包括:包被丙草胺抗原的酶标板、丙草胺标准品、丙草胺抗体工作液、丙草胺酶标二抗工作液、底物液A、底物液B、终止液、浓缩稀释液和浓缩洗涤液。检测丙草胺的酶联免疫试剂盒的原理是固相间接竞争酶联免疫反应,把提取的样品、酶标二抗工作液和抗体工作液加入对应的酶标板微孔中,孵育一段时间后,洗板加入底物液A、底物液B,在酶的作用下显色剂呈现蓝色,加入终止液,颜色由蓝色变为黄色。显色的深浅与标准品或样品中丙草胺的含量成反比例关系。该方法可直接用于检测大米中丙草胺的残留量。

Description

一种检测丙草胺的酶联免疫试剂盒及其检测方法
技术领域
本发明涉及兽药残留检测技术领域,特别是检测大米中丙草胺的酶联免疫试剂盒。
背景技术
丙草胺是具有高温选择性的水稻田专用除草剂。对水稻安全,杀草谱广。杂草种子在发芽过程中吸收药剂,根部吸收较差。该品为芽前除草剂,主要用于防除禾本科杂草。产品属2-氯化乙酰替苯胺类除草剂,是细胞分裂抑制剂,用于土壤处理可防除稻田稗草、异型莎草、牛毛毡、鸭舌草、窄叶泽泻等。具有一定的毒性,因此安全问题受到高度重视。国标中规定大米中为0.1mg/kg。
酶联免疫吸附法是一种准确、可靠、快速、特异的检测方法,适合于大批样品的快速筛选,近年来已广泛应用于食品安全检测行业。本发明旨在建立一种检测丙草胺的酶联免疫试剂盒及其检测方法。
发明内容
为了克服色谱法的不足,本发明提供一种检测丙草胺的酶联免疫试剂盒及其检测方法。该方法灵敏、准确、快速,操作简便、特异性强,适用于大批样品的快速检测。
本发明检测丙草胺的酶联免疫试剂盒,包括酶标板、丙草胺标准品、丙草胺抗体工作液、丙草胺酶标二抗工作液、底物液A、底物液B、终止液、浓缩稀释液和浓缩洗涤液。
本发明检测丙草胺的酶联免疫试剂盒的制备,包括以下步骤:酶标板的制备、丙草胺标准品的制备、丙草胺抗体工作液的制备、丙草胺酶标二抗工作液的制备、底物液A的制备、底物液B的制备、终止液的制备、浓缩稀释液的制备和浓缩洗涤液的制备。
其进一步特征在于:所述的酶标板经由丙草胺抗原包被制备,具体步骤是将丙草胺半抗原与载体蛋白牛血清白蛋白(BSA)偶联得到包被抗原,用0.05mol/LpH9.6的碳酸盐(CBS)缓冲液作为包被液,将丙草胺包被抗原稀释成1:40000比例,100μL/孔,37℃避光孵育2h,取出酶标板甩掉板内液体,加入经稀释的浓缩洗涤液300μL/孔,洗板2次,30s/次,然后加入0.5%牛血清白蛋白(BSA)封闭液,150μL/孔,37℃放置1.5h,甩掉封闭液直接拍干,拍干后的酶标板放置恒温间(25℃)晾干,抽检合格后将酶标板真空密封于4℃条件下保存。
丙草胺标准品浓度分别为0mg/kg、0.1mg/kg、0.3mg/kg、0.9mg/kg、2.7mg/kg、8.1mg/kg。
所述丙草胺抗体工作液是采用丙草胺人工抗原免疫小鼠得到单克隆抗体,用抗体稀释液稀释成1:60000比例制备。
所述丙草胺酶标二抗工作液由酶标二抗加稀释液稀释成1:2000比例,所述底物液A为含有0.5mmol/L的过氧化氢脲的柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲溶液,所述底物液B为四甲基联苯二胺的乙醇溶液,所述终止液为2mol/L的硫酸,所述浓缩稀释液是10倍浓缩稀释液,为0.1mol/L的PBS,pH值范围7.0-7.5之间,所述浓缩洗涤液是10倍浓缩洗涤液,为含0.5%吐温-20,0.1mol/L的PBST,pH值范围7.0-7.5之间。
检测丙草胺的酶联免疫试剂盒及其检测方法,基于抗原抗体的间接竞争酶联免疫反应原理,该方法包括以下步骤:
(1)预处理待测样品,即将待测试的样品处理为液体样品,或者用有机溶剂提取待测样品,并将其复溶于样品稀释液中;
(2)将所需试剂从冷藏环境中取出,置于室温(20~25℃)平衡30min以上,注意每种液体试剂使用前均须摇匀;
(3)取包被有丙草胺抗原的酶标板,加标准品/样本50μL/孔到对应的微孔中,加入丙草胺酶标二抗工作液,50μL/孔,然后加入丙草胺抗体工作液,50μL/孔,轻轻振荡混匀,用盖板膜盖板后置室温25℃避光环境中反应30min;
(4)小心揭开盖板膜,将孔内液体甩干,用洗涤工作液260μL/孔,充分洗涤4~5次,每次间隔10s,用吸水纸拍干(拍干后未被清除的气泡可用未使用过的枪头戳破);
(5)加入底物液A50μL/孔,底物液B50μL/孔,轻轻振荡混匀,用盖板膜盖板后置25℃避光环境中反应15~20min;
(6)加入终止液50μL/孔,轻轻振荡混匀,设定酶标仪于450nm处或双波长450/630nm检测,测定每孔吸光度值(请在5min内读完数据);
(7)以的标准品浓度(ppb)的对数为横坐标,标准品百分吸光度值为纵坐标,绘制标准曲线,对照标准曲线计算样品中丙草胺的含量。
其中,所述待测样品用以下方法进行预处理:
a.研磨代表性样品(使50%的样品可以通过一个20目的滤网);
b.称量5g研磨过滤后的样品加入50mL离心管中,加入3g氯化钠,10mL水和20mL正己烷-丙酮溶液(体积比为2:1);
c.在密封的容器里混合,震荡涡旋1min;
d.室温离心4000r/min以上,10min;取离心后的上清液或过滤后的滤液1mL,50~60℃水浴氮气吹干;
e.加入标准品稀释液1mL并充分混匀,4000r/min离心5min或用定量分析滤纸过滤,取离心后的上清或过滤后的滤液进行分析。
本发明检测丙草胺的酶联免疫试剂盒及其检测方法的测定原理:样品中的丙草胺与酶标板上固定的抗原特异性竞争抗体,加入酶标二抗,与抗体反应,通过酶催化显色剂显色,根据显色的深浅来判断样品中丙草胺的含量。如果样品中的丙草胺含量少,显色深;反之,则显色浅。本发明的试剂盒检测方法操作简便,检测灵敏、准确、快速,适用于大批量样品的快速检测。
具体实施方式
丙草胺蛋白质偶联物的制备:
采用琥珀酸酐法得到带羧基的丙草胺半抗原衍生物,之后取0.05mmol与载体蛋白BSA按10:1的结合比混合在0.05mol/LpH9.6的碳酸盐缓冲液(CBS)中,然后加入0.15mmol碳二亚胺,搅拌置室温反应24h,最后于0.2mol/LpH7.6的PBS缓冲液中透析两天,除去未反应的半抗原,将得到的蛋白质偶联物溶液于-20℃保存备用。
丙草胺抗体的制备:
选用健康成年纯种BALA/C小鼠,取与蛋白质偶联制备的免疫抗原50μg与等量完全弗氏佐剂混合采用腹腔注射进行初次免疫,之后每隔3周用相同剂量免疫抗原加等量不完全弗氏佐剂采用腹腔注射进行二次、三次免疫,每次免疫6天后尾静脉采血测定抗血清效价至一定滴度后,用相同剂量不加佐剂进行末次免疫,3天后取脾制备脾细胞悬浮液与骨髓瘤细胞进行细胞融合,筛选出所需要的杂交瘤细胞系进行克隆化,选择处于对数生长期的杂交瘤细胞进行冻存,用于腹水制备,先腹腔注射0.5ml液体石蜡于BALB/C鼠致敏,2周后腹腔注射1×106个杂交瘤细胞,接种细胞7-10天后可产生腹水,待腹水尽可能多时用注射器抽取腹水,反复收集数次,4000rpm离心15min,收集上清,采用辛酸-硫酸铵法纯化腹水对单克隆抗体进行纯化,冷冻干燥得冻干粉后于-20℃保存备用。
制备包被有丙草胺包被抗原的酶标板:
包被抗原是将丙草胺半抗原与载体蛋白牛血清白蛋白(BSA)偶联得到的,用0.05mol/LpH9.6的碳酸盐(CBS)缓冲液作为包被液,将丙草胺抗原稀释成1:40000比例,100μL/孔,37℃放置2h,取出酶标板甩掉板内液体,用稀释后的浓缩洗涤液300μL/孔,洗板2次,30s/次,然后加入0.5%牛血清白蛋白(BSA)封闭,150μL/孔,37℃放置1.5h,弃去封闭液,拍干后的酶标板放置恒温间(25℃)晾干,抽检合格后将酶标板真空密封后置4℃下保存。
丙草胺标准品配制浓度分别为0mg/kg、0.1mg/kg、0.3mg/kg、0.9mg/kg、2.7mg/kg、8.1mg/kg。
丙草胺抗体工作液的制备:采用丙草胺人工抗原免疫小鼠得到单克隆抗体,用抗体稀释液稀释成1:60000比例制备。
丙草胺酶标二抗工作液由酶标二抗加稀释液稀释成1:2000比例,底物液A为含有0.5mmol/L的过氧化氢脲的柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲溶液,底物液B为四甲基联苯二胺的乙醇溶液,终止液为2mol/L的硫酸,浓缩稀释液是10倍浓缩稀释液,为0.1mol/L的PBS,pH值范围7.0-7.5之间,浓缩洗涤液是10倍浓缩洗涤液,为含0.5%吐温-20,0.01mol/L的PBST,pH值范围7.0-7.5之间。
基于上述制备的试剂,本发明用于检测丙草胺的酶联免疫试剂盒包括如下材料:
(1)96孔酶标板×1块;
(2)标准液×6瓶:(1mL/瓶)0mg/kg、0.1mg/kg、0.3mg/kg、0.9mg/kg、2.7mg/kg、8.1mg/kg;
(3)抗体工作液7mL;
(4)酶标二抗工作液7mL;
(5)底物液A7mL;
(6)底物液B7mL;
(7)终止液7mL;
(8)10×浓缩稀释液40mL;
(9)10×浓缩洗涤液40mL;
本发明的试剂盒用于检测大米样本中丙草胺残留量时,通过以下步骤实施:样品预处理、用本发明试剂盒进行检测、分析结果。
(1)样品预处理
a.准确称取2.0±0.02g匀浆样品至50mL离心管中;
b.先加入5mL乙酸乙酯,涡旋仪充分振荡混匀10min;
c.5000r/min离心10min;
d.取上清液1mL于50~60℃氮气流下吹干;
e.加入1mL正己烷(脂肪含量高的样品可加入2mL正己烷),充分涡动10s,再加入1mL样品稀释液,低速涡动10s;4000r/min,离心5min,完全弃去上层正己烷及中间层杂质;
f.取下层50μL用于分析。
(2)用本发明试剂盒检测待测样品中丙草胺残留量
取包被有丙草胺抗原的酶标板,加标准品/样本50μL/孔到对应的微孔中;加入酶标二抗工作液,50μL/孔,然后加入丙草胺抗体工作液,50μL/孔,轻轻振荡混匀,用盖板膜盖板后置室温25℃避光环境中反应30min;小心揭开盖板膜,将孔内液体甩干,用洗涤工作液300μL/孔,充分洗涤4次,浸泡15-30s,用吸水纸拍干;加入底物液A50μL/孔,底物液B50μL/孔,轻轻振荡混匀,用盖板膜盖板后置25℃避光环境中反应15min;加入终止液50μL/孔,轻轻振荡混匀,设定酶标仪于450nm处或双波长450/630nm检测,测定每孔吸光度值(请在5min内读完数据);对比待测样品与标准品的吸光度值大小,定量分析待测样品中丙草胺残留量。
(3)分析结果
百分吸光度值的计算,标准品或样本的百分吸光度值等于标准品或样本的吸光度值的平均值(双孔)除以第一个标准(0标准)的吸光度值,再乘以100%,即
百分吸光度值(%)=B/B0×100%
其中B—标准溶液或样本溶液的平均吸光度值,B0—0ppb标准溶液的平均吸光度值。
以丙草胺的标准品浓度(ppb)的对数为横坐标,标准品百分吸光度值为纵坐标,绘制标准曲线,求出直线方程。将样本的百分吸光度值代入标准曲线中,从标准曲线上读出样本所对应的浓度,乘以其对应的稀释倍数即为样本中丙草胺的实际浓度。

Claims (8)

1.检测丙草胺的酶联免疫试剂盒及其检测方法,包括酶标板、丙草胺标准品、丙草胺抗体工作液、丙草胺酶标二抗工作液、底物液A、底物液B、终止液、浓缩稀释液和浓缩洗涤液。
2.检测丙草胺的酶联免疫试剂盒及其检测方法,包括以下步骤:酶标板的制备、丙草胺标准品的制备、丙草胺抗体工作液的制备、丙草胺酶标二抗工作液的制备、底物液A的制备、底物液B的制备、终止液的制备、浓缩稀释液的制备和浓缩洗涤液的制备。
3.根据权利要求2所述的检测丙草胺的酶联免疫试剂盒及其检测方法,其特征在于:所述的酶标板制备方法为将丙草胺半抗原与载体蛋白牛血清白蛋白(BSA)偶联得到丙草胺包被抗原,用0.05mol/LpH9.6的碳酸盐(CBS)缓冲液作为包被液,将包被抗原稀释成1:40000比例,100μL/孔,37℃孵育2h,取出酶标板甩掉板内液体,加入稀释后的浓缩洗涤液300μL/孔,洗板2次,30s/次,然后加入0.5%牛血清白蛋白(BSA)封闭,150μL/孔,37℃放置1.5h,弃去封闭液直接拍干,拍干后的酶标板放置恒温间(25℃)晾干,抽检合格后将酶标板真空密封于4℃条件下保存。
4.根据权利要求2所述的检测丙草胺的酶联免疫试剂盒及其检测方法,其特征在于:丙草胺标准品的浓度分别为0mg/kg、0.1mg/kg、0.3mg/kg、0.9mg/kg、2.7mg/kg、8.1mg/kg。
5.根据权利要求2所述的检测丙草胺的酶联免疫试剂盒及其检测方法,其特征在于:所述的丙草胺抗体工作液是采用丙草胺人工抗原免疫小鼠得到单克隆抗体,用抗体稀释液稀释成1:60000比例制备。
6.根据权利要求2所述的一种检测丙草胺的酶联免疫试剂盒及其检测方法,其特征在于:所述的丙草胺酶标二抗工作液由酶标二抗加稀释液稀释成1:2000比例,所述底物液A为含有0.5mmol/L的过氧化氢脲的柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲溶液,所述底物液B为四甲基联苯二胺的乙醇溶液,所述终止液为2mol/L的硫酸,所述浓缩稀释液是10倍浓缩稀释液,其为0.1mol/L的PBS,pH值范围7.0-7.5之间,所述浓缩洗涤液是10倍浓缩洗涤液,其为含0.5%吐温-20,0.01mol/L的PBST,pH值范围7.0-7.5之间。
7.权利要求2所述的检测丙草胺的酶联免疫试剂盒及其检测方法,基于抗原抗体的间接竞争酶联免疫反应原理,该方法的特征在于:预处理待测样品,取包被有丙草胺抗原的酶标板,按序分别加入标准品/样本、丙草胺酶标二抗工作液、丙草胺抗体工作液各50μL/孔到对应的微孔中,轻轻振荡混匀,用盖板膜盖板后置室温25℃避光环境中反应30min,将孔内液体甩干,用洗涤工作液充分洗涤4~5次,每次间隔10s,拍干后加入底物液A50μL/孔,底物液B50μL/孔,轻轻振荡混匀,用盖板膜盖板后置25℃避光环境中反应15~20min,加入终止液50μL/孔,轻轻振荡混匀,设定酶标仪于450nm处或双波长450/630nm检测,测定每孔吸光度值(请在5min内读完数据),以的标准品浓度(ppb)的对数为横坐标,标准品百分吸光度值为纵坐标,绘制标准曲线,对照标准曲线计算样品中丙草胺的含量。
8.根据权利要求7所述的方法,其中,所述待测样品用以下方法进行预处理:
a.准确称取2.0±0.02g匀浆样品至50mL离心管中;
b.先加入5mL乙酸乙酯,涡旋仪充分振荡混匀10min;
c.5000r/min离心10min;
d.取上清液1mL于50~60℃氮气流下吹干;
e.加入1mL正己烷(脂肪含量高的样品可加入2mL正己烷),充分涡动10s,再加入1mL样品稀释液,低速涡动10s;4000r/min,离心5min,完全弃去上层正己烷及中间层杂质;
f.取下层50μL用于分析。
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN108226476A (zh) * 2016-12-15 2018-06-29 镇江亿特生物科技发展有限公司 一种检测马杜霉素的酶联免疫试剂盒及其检测方法

Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1609618A (zh) * 2004-11-25 2005-04-27 南京农业大学 农药速灭威残留量检测方法
CN1811437A (zh) * 2006-02-16 2006-08-02 中国农业大学 一种检测磺胺喹噁啉的方法及其专用酶联免疫试剂盒
CN2869867Y (zh) * 2005-12-06 2007-02-14 万积成 快速检测异丙草胺、异丙甲草胺残留的胶体金试纸
CN101477123A (zh) * 2009-01-13 2009-07-08 华南农业大学 检测二乙氧基硫代磷酸酯类有机磷农药的酶联免疫试剂盒
CN101477116A (zh) * 2008-12-18 2009-07-08 孙家隆 多种有机磷通用抗体及通用包被抗原的制备
CN101477119A (zh) * 2008-12-18 2009-07-08 孙家隆 同时分析甲萘威和甲基对硫磷的酶联免疫吸附测定试剂盒
CN202870093U (zh) * 2012-09-20 2013-04-10 湖北出入境检验检疫局检验检疫技术中心 氯霉素化学发光酶联免疫检测试剂盒
CN103575878A (zh) * 2012-08-09 2014-02-12 湖北出入境检验检疫局检验检疫技术中心 一种水产品中氯霉素化学发光酶联免疫检测试剂盒及其检测方法
CN103823067A (zh) * 2014-03-17 2014-05-28 河南工业大学 2,4-二氯苯氧乙酸酶联免疫检测试剂盒

Patent Citations (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1609618A (zh) * 2004-11-25 2005-04-27 南京农业大学 农药速灭威残留量检测方法
CN2869867Y (zh) * 2005-12-06 2007-02-14 万积成 快速检测异丙草胺、异丙甲草胺残留的胶体金试纸
CN1811437A (zh) * 2006-02-16 2006-08-02 中国农业大学 一种检测磺胺喹噁啉的方法及其专用酶联免疫试剂盒
CN101477116A (zh) * 2008-12-18 2009-07-08 孙家隆 多种有机磷通用抗体及通用包被抗原的制备
CN101477119A (zh) * 2008-12-18 2009-07-08 孙家隆 同时分析甲萘威和甲基对硫磷的酶联免疫吸附测定试剂盒
CN101477123A (zh) * 2009-01-13 2009-07-08 华南农业大学 检测二乙氧基硫代磷酸酯类有机磷农药的酶联免疫试剂盒
CN103575878A (zh) * 2012-08-09 2014-02-12 湖北出入境检验检疫局检验检疫技术中心 一种水产品中氯霉素化学发光酶联免疫检测试剂盒及其检测方法
CN202870093U (zh) * 2012-09-20 2013-04-10 湖北出入境检验检疫局检验检疫技术中心 氯霉素化学发光酶联免疫检测试剂盒
CN103823067A (zh) * 2014-03-17 2014-05-28 河南工业大学 2,4-二氯苯氧乙酸酶联免疫检测试剂盒

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ZHEN-JIANG LIU等: "Development of an enzyme-linked immunosorbent assay for determination of pretilachlor in water and soil", 《ECOTOXICOLOGY AND ENVIRONMENTAL SAFETY》 *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN108226476A (zh) * 2016-12-15 2018-06-29 镇江亿特生物科技发展有限公司 一种检测马杜霉素的酶联免疫试剂盒及其检测方法

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