CN105384751A

CN105384751A - 一种新的贝壳杉烷类二萜化合物及其制备方法和医药用途

Info

Publication number: CN105384751A
Application number: CN201510677445.8A
Authority: CN
Inventors: 高忠青
Original assignee: Zibo Kuake Pharmaceutical Technology Co Ltd
Current assignee: Zibo Kuake Pharmaceutical Technology Co Ltd
Priority date: 2015-10-17
Filing date: 2015-10-17
Publication date: 2016-03-09

Abstract

本发明公开了一种新的贝壳杉烷类二萜化合物及其制备方法和医药用途，提供了该化合物结构，含其的药物组合物及其制备方法和应用。该化合物为首次报道，是一种结构新颖的贝壳杉烷类二萜化合物，可以从南方红豆杉的干燥枝叶中提取、分离纯化得到。体外试验证明该化合物对H₂O₂氧化损伤的血管内皮细胞具有保护作用，具有清除自由基和活性氧的抗氧化特性，可以用来开发成血管保护的药物。

Description

一种新的贝壳杉烷类二萜化合物及其制备方法和医药用途

技术领域

本发明属于药物技术领域，具体涉及从南方红豆杉的干燥枝叶中分离得到的一种具有血管保护作用的贝壳杉烷类二萜化合物及其制备方法。

背景技术

南方红豆杉(Taxuschinensisvar.mairei)又称美丽红豆杉，系红豆杉目(Taxales)红豆杉科(TaxaceaeS.F.Gery)红豆杉属(TaxusLinn)植物，特产于我国，主要分布于长江流域、南岭山脉山区以及河南、陕西(秦岭)、甘肃等省的山地或溪谷，是红豆杉属中生长最快、分布最广的植物。南方红豆杉为常绿乔木，叶螺旋状着生，基部扭转呈二列状，条形，微弯或近镰刀状，长2～3cm，宽3～4mm，先端渐尖，边缘不卷曲，上面中脉突起，雌雄异株，球花单生叶腋；雌球花的胚珠单生于花轴上部侧生短轴的顶端，基部托以圆盘状假种皮。种子倒卵形或宽卵形，长约5～6mm，径4～5mm，微扁，生于红色肉质杯状假种皮中，成熟时假种皮红色。外种皮骨质坚硬，种脐椭圆形。在我国传统中医药中以红豆杉植物的枝叶入药，处方名为紫杉、赤柏松，具有通经止痛、利尿、降血糖和治疗肾脏病的效用。《本草推陈》中记载“紫杉”可入药，“用皮易引起呕吐，用木部及叶则不吐”。民间用红豆杉果实和枝叶煎汤可润燥、通经、利尿和驱虫。

南方红豆杉主要化学成分为二萜类化合物、甾体类化合物、木脂素以及黄酮类化合物等，其中最重要的化学成分是其二萜类化合物紫杉醇(taxol)。抗肿瘤药物紫杉醇最初从红豆杉属植物短叶红豆杉(TaxusbrevifoliaNutt)树皮中分离得到。紫杉醇的临床研究于1981年展开，1992年美国FDA批准了紫杉醇用于对晚期卵巢癌的治疗，1994年又批准了对乳腺癌的治疗。目前，紫杉醇的临床应用范围已经扩展到肺癌、前列腺癌等，被誉为是“晚期癌症的最后一道防线”，是临床应用的最为优秀的天然抗肿瘤药物。由于其显著的抗癌活性和独特的抗癌作用机制，紫杉醇及红豆杉属植物引起了全世界广泛关注。

发明内容

本发明的目的是提供一种从南方红豆杉的干燥枝叶中分离得到的一种具有血管保护作用的贝壳杉烷类二萜化合物及其制备方法。

本发明的上述目的是通过下面的技术方案得以实现的：

具有下述结构式的化合物(Ⅰ)，

所述的化合物(Ⅰ)的制备方法，包含以下操作步骤：(a)将南方红豆杉的干燥枝叶粉碎，用75～85％乙醇热回流提取，合并提取液，浓缩至无醇味，依次用石油醚、乙酸乙酯和水饱和的正丁醇萃取，分别得到石油醚萃取物、乙酸乙酯萃取物和正丁醇萃取物；(b)步骤(a)中乙酸乙酯萃取物用大孔树脂除杂，先用15％乙醇洗脱8个柱体积，再用75％乙醇洗脱12个柱体积，减压浓缩得75％乙醇洗脱物浸膏；(c)步骤(b)中75％乙醇洗脱浸膏用正相硅胶分离，依次用体积比为80:1、55:1、35:1、10:1和1:1的二氯甲烷-甲醇梯度洗脱得到5个组分；(d)步骤(c)中组分4用正相硅胶进一步分离，依次用体积比为15:1、10:1和5:1的二氯甲烷-甲醇梯度洗脱得到3个组分；(e)步骤(d)中组分2用十八烷基硅烷键合的反相硅胶分离，用体积百分浓度为75％的甲醇水溶液等度洗脱，收集8～10个柱体积洗脱液，洗脱液减压浓缩得到纯的化合物(Ⅰ)。

进一步地，所述大孔树脂为AB-8型大孔吸附树脂。

进一步地，所述用乙醇热回流提取采用的乙醇浓度为80％。

一种药物组合物，其中含有治疗有效量的所述的化合物(Ⅰ)和药学上可接受的载体。

所述的化合物(Ⅰ)在制备血管保护的药物中的应用。

所述的药物组合物在制备血管保护的药物中的应用。

本发明化合物用作药物时，可以直接使用，或者以药物组合物的形式使用。

该药物组合物含有治疗有效量的本发明化合物(Ⅰ)，其余为药物学上可接受的、对人和动物无毒和惰性的可药用载体和/或赋形剂。

所述的可药用载体或赋形剂是一种或多种选自固体、半固体和液体稀释剂、填料以及药物制品辅剂。将本发明的药物组合物以单位体重服用量的形式使用。本发明药物可通过口服或注射的形式施用于需要治疗的患者。用于口服时，可将其制成片剂、缓释片、控释片、胶囊、滴丸、微丸、混悬剂、乳剂、散剂或颗粒剂、口服液等；用于注射时，可制成灭菌的水性或油性溶液、无菌粉针、脂质体或乳剂等。

附图说明

图1为化合物(Ⅰ)结构式；

图2为化合物(Ⅰ)理论ECD值与实验ECD值比较。

具体实施方式

下面结合实施例进一步说明本发明的实质性内容，但并不以此限定本发明保护范围。尽管参照较佳实施例对本发明作了详细说明，本领域的普通技术人员应当理解，可以对本发明的技术方案进行修改或者等同替换，而不脱离本发明技术方案的实质和范围。

实施例1：化合物(Ⅰ)分离制备及结构确证

药材和试剂来源：乙醇、石油醚、乙酸乙酯、正丁醇、二氯甲烷为分析纯，购自上海凌峰化学试剂有限公司，甲醇，分析纯，购自江苏汉邦化学试剂有限公司。红豆杉的枝叶购自安徽亳州中药材市场。

制备方法：(a)南方红豆杉的干燥枝叶(10kg)粉碎，用80％乙醇热回流提取(25L×3次)，合并提取液，浓缩至无醇味(6L)，依次用石油醚(6L×3次)、乙酸乙酯(6L×3次)和水饱和的正丁醇(6L×3次)萃取，分别得到石油醚萃取物、乙酸乙酯萃取物(355g)和正丁醇萃取物；(b)步骤(a)中乙酸乙酯萃取物用AB-8型大孔树脂除杂，依次用15％乙醇(8L)和75％(12L)乙醇洗脱，收集75％乙醇洗脱液，减压浓缩得75％乙醇洗脱物浸膏(154g)；(c)步骤(b)中75％乙醇洗脱浸膏用正相硅胶分离，依次用体积比为80:1(8个柱体积)、55:1(8个柱体积)、35:1(6个柱体积)、10:1(8个柱体积)和1:1(5个柱体积)的二氯甲烷-甲醇梯度洗脱得到5个组分；(d)步骤(c)中组分4(46g)用正相硅胶进一步分离，依次用体积比为15:1(8个柱体积)、10:1(10个柱体积)和5:1(6个柱体积)的二氯甲烷-甲醇梯度洗脱得到3个组分；(e)步骤(d)中组分2(27g)用十八烷基硅烷键合的反相硅胶分离，用体积百分浓度为75％的甲醇水溶液等度洗脱，收集8-10个柱体积洗脱液，洗脱液减压浓缩得到纯的化合物(Ⅰ)(35mg)。

结构确证：HR-ESIMS显示[M+Na]⁺为m/z387.1816，结合核磁特征可得分子式为C₂₀H₂₈O₆，不饱和度为7。核磁共振氢谱数据δ_H(ppm，DMSO-d₆，500MHz)：H-1(4.78，dd，J＝10.8，6.2)，H-2(1.79，m)，H-3(1.25，m)，H-5(3.07，br，s)，H-6(5.65，br，s)，H-9(3.74，d，J＝9.7)，H-11(4.33，m)，H-12(2.61，m)，H-12(2.14，dd，J＝14.5，6.3)，H-13(2.39，overlap)，H-14(3.37，overlap)，H-14(2.06，d，J＝10.3)，H-15(5.55，s)，H-17(1.67，s)，H-18(0.98，s)，H-19(0.97，s)，H-20(4.38，d，J＝8.6)，H-20(4.09，d，J＝8.6)；核磁共振碳谱数据δ_C(ppm，DMSO-d₆，125MHz)：76.1(CH，1-C)，24.0(CH₂，2-C)，36.9(CH₂，3-C)，31.3(C，4-C)，54.2(CH，5-C)，206.0(CH，6-C)，175.6(C，7-C)，55.7(C，8-C)，45.3(CH，9-C)，50.8(C，10-C)，63.1(CH，11-C)，36.9(CH₂，12-C)，46.0(CH，13-C)，34.1(CH₂，14-C)，83.8(CH，15-C)，80.4(C，16-C)，23.1(CH₃，17-C)，33.0(CH₃，18-C)，23.1(CH₃，19-C)，72.9(CH₂，20-C)；碳原子标记参见图1。¹³CNMR和DEPT谱显示20个碳信号，包括三个甲基，五个亚甲基(一个连氧亚甲基)，七个次甲基(三个连氧碳以及一个醛基碳)，五个季碳(一个连氧碳以及一个内酯羰基碳)。HMBC谱中，H-15(δH5.55)与C-8(δC55.7)，C-9(δC45.3)和C-16(δC80.4)的相关性表明C-15位上连有羟基。ROESY谱中，H-15与H-13β的相关性表明C-15-OH为α构型。HMBC谱中，H₂-14(δH3.37和2.06)，H-13(δH2.39)，H₂-12(δH2.61和2.14)和Me-17(δH1.67)与连氧季碳C-16(δC80.4)的相关性表明C-16位上连有一个羟基基团。ROESY谱中，H-9与Me-17和H-12α的相关性表明C-16-OH为β构型。综合氢谱、碳谱、HMBC谱和ROESY谱，以及文献关于相关类型核磁数据，可基本确定该化合物如图1所示，立体构型进一步通过ECD试验确定，理论值与实验值基本一致(图2)。

实施例2：化合物(Ⅰ)药理作用试验

一、材料和仪器

血管内皮细胞(ECV-304)由山东大学医学院免疫教研室馈赠。化合物(Ⅰ)自制，制备方法见实施例1，HPLC归一化纯度大于98％。RPMI-1640干粉培养基、胰蛋白酶购于美国Gibeo公司。胎牛血清购于天津TBD公司。MTT、琼脂糖、AnnexinV-FITC购于美国Sigma公司。LDH、MDA、SOD、GSH-Px测定试剂盒购于南京建成生物工程研究所。DMSO购于中国医药(集团)上海化学试剂有限公司。苏木素购于福州迈新生物技术有限公司。Rhodamine123购于美国Solarbic公司。阳性药川芎嗪购自上海源叶生物科技有限公司。

倒置光学显微镜(日本OlymPus公司)，二氧化碳培养箱(美国FormaScientific公司)，电子分析天平(ER-182A型)(日本A&D公司)，超净工作台(ZHJH-1209型)(上海智城分析仪器制造有限公司)，流式细胞仪(FACSVantage型)(美国BeetonDiehnson公司)，恒温振荡器(江苏太仓市实验设备厂)，1420Vietor³多标记分析仪(美国PerkinElmerLifescience公司)，721型可见紫外光栅分光光度计(上海精密科学有限公司)，电热恒温水浴箱(上海医疗仪器三厂生产)，酶联免疫检测仪(MK3Multiskan)(上海ThermoLabsystem分析仪器公司)。

二、试验方法

1、细胞培养

ECV-304细胞以RPMI-1640培养基于37℃，5％CO₂培养箱中传代培养。镜下观察，待细胞汇合率达到70％以上时用胰蛋白酶消化传代，以生长稳定的第3-5代细胞制备细胞悬液。

2、细胞分组及处理

取生长良好的ECV-304细胞制成细胞悬液，接种于96孔、24孔、6孔细胞培养板或培养皿中，37℃，5％CO₂培养24h。随机分为六组：①正常组；②H₂O₂模型组(150μmol/L)；③川芎嗪(TMP)(50μmol/L)+H₂O₂组；④化合物(Ⅰ)(10μmol/L)+H₂O₂组；⑤化合物(Ⅰ)(50μmol/L)+H₂O₂组；⑥化合物(Ⅰ)(100μmol/L)+H₂O₂组。

3、实验项目及检测指标

3.1MTT法检测细胞活力

将生长良好的ECV-304细胞制备成5×10⁴/mL的细胞悬液，按每孔100μL接种于96孔板，置37℃，5％CO₂孵育24h。细胞分组及处理上。继续培养6h和12h后，每孔加入10μLMTT溶液(终浓度0.5mg/L)置37℃，5％CO₂培养箱孵育4h后，每孔加入100μLDMSO，静置10min后振荡60s，30min内置酶联免疫检测仪上检测570nm处吸光度值(OD₅₇₀)。

按公式：细胞损伤抑制率＝(用药组OD₅₇₀-模型组OD₅₇₀)/(正常组OD₅₇₀-模型组OD₅₇₀)×100％，计算细胞损伤抑制率。

3.2LDR释放率测定

取生长良好的ECV-304细胞制成l×10⁵/mL的细胞悬液接种于24孔板，置37℃，5％CO₂孵育24h。细胞分组及处理同上。继续培养6h和12h，收集培养上清液。PBS洗涤2次后，每孔加入0.5mL细胞裂解液(150mmol/LNaCl，150mmol/LTris-HCI，lmmol/LEDTA，1％TritonX-100)，于4℃静置15min后振荡数分钟，10000rpm，4℃离心10min收集细胞裂解液，参照LDH试剂盒说明书分别测定上清液和细胞裂解液中的LDH活性。

按公式：LDH释放率＝上清液中LDH活性/(上清液中LDH活性+细胞裂解液中LDH活性)`×100％，计算LDH释放率。

3.3酶生化法测定MDA含量、SOD活力、GSH-Px活力

取生长良好的ECV-304细胞制成1×10⁵/mL的细胞悬液接种于24孔板，置37℃，5％CO₂孵育24h。细胞分组及处理同上。继续培养12h，收集培养上清液。按MDA、SOD、GSH-Px检测试剂盒说明书测定细胞MDA含量、SOD活力、GSH-Px活力。

4、数据处理

MicrosoftExcel自带的统计软件进行处理，实验数据以表示，组间差异用t检验。

三、结果及结论

1、化合物(Ⅰ)对H₂O₂损伤ECV-304细胞生存率的影响

正常活细胞线粒体能量代谢过程中产生琥珀酸脱氢酶，可将淡黄色MTT还原成不溶于水的蓝紫色的甲腊结晶，结晶数量与活细胞数成正比。本实验结果显示：ECV-304细胞经H₂O₂(150μmol/L)氧化损伤6h和12h后，细胞OD值明显降低且与正常组相比具有统计学意义(P<0.01)，表明细胞活力下降。而化合物(Ⅰ)对细胞具有保护作用，能显著抑制H₂O₂对细胞的氧化损伤，提高存活率。作用6h，50、100μmol/L化合物(Ⅰ)对细胞损伤抑制率分别为16.67％(P<0.05)和28.21％(P<0.01)。作用12h，10、50、100μmol/L化合物(Ⅰ)对细胞损伤抑制率提高为24.85％(P<0.05)，29.64％(P<0.01)和38.47％(P<0.01)。见表1(**P<0.01vsNormal；^#P<0.05，^#P<0.01vsH₂O₂group；^▲P<0.05，^▲▲P<0.01vsTMPgroup，下同)。

2、化合物(Ⅰ)对H₂O₂损伤ECV-304细胞LDH释放率的影响

乳酸脱氢酶能催化乳酸生成丙酮酸，丙酮酸与2,4-二硝基苯肼反应生成丙酮酸二硝基苯腙，在碱性溶液中呈棕红色，通过比色测定反应产物可间接求出乳酸脱氢酶活力。结果表明：与正常组相比，模型组ECV-304细胞LDH释放率显著增高(P<0.01)。与模型组比，化合物(Ⅰ)各组细胞LDH释放率均减少：10、50、100μmol/L化合物(Ⅰ)作用6h，细胞的LDH释放率降为20.54％(P<0.01)和21.22％(P<0.01)；50、100μmol/L化合物(Ⅰ)作用12h，细胞的LDH释放率降为33.64％(P<0.01)和29.53％(P<0.01)。化合物(Ⅰ)随浓度的增加，对氧化损伤ECV-304细胞的保护作用也逐渐增强，呈现出一定的量效关系。结果见表2。

3、化合物(Ⅰ)对H₂O₂损伤ECV-304细胞MDA含量、SOD、GSH-Px活力的影响

实验结果表明：与正常组比模型组ECV-304细胞培养液中MDA含量显著增高(P<0.01)。与模型组相比，10、50、100μmol/L化合物(Ⅰ)组细胞MDA生成量均明显减少，分别为3.00±0.79nmol/mL(P<0.05)，2.86±0.75nmol/mL(P<0.05)和2.69±0.45nmol/mL(P<0.01)。化合物(Ⅰ)各浓度组组间对照显示，随浓度的增加，化合物(Ⅰ)对ECV-304细胞脂质过氧化损伤的保护作用也逐渐增强，呈现一定的量效关系。结果见表3。

实验结果表明：与正常组相比，模型组ECV-304细胞SOD活性显著降低(P<0.01)。与模型组相比，50、100μmol/L化合物(Ⅰ)均可增强ECV-304细胞的SOD活性，SOD活性分别提高为17.9±l.34U/mL(P<0.05)和19.25±0.81U/mL(P<0.01)。且随浓度的增加，细胞的SOD活性也逐渐提高，表明化合物(Ⅰ)可增强ECV-304细胞的抗氧自由作用，具一定量效关系；10μmol/L化合物(Ⅰ)虽也可提高SOD活性，但不具有显著统计学意义。见表3。

实验结果表明：与正常组相比，模型组ECV-304细胞培养液中GSH-Px活性显著降低(P<0.01)。与模型组相比，10、50、100μmol/L化合物(Ⅰ)组细胞GSH-Px活性均显著提高，分别为73.8±10.3U/mL(P<0.05)，92.2±8.5U/mL(P<0.01)和102.5±10.3U/mL(P<0.01)。且随化合物(Ⅰ)浓度的增加，ECV-304细胞的GSH-Px活性也逐渐提高，表明细胞抗氧化作用的能力也逐渐增强，呈现一定的量效关系。结果见表3。

总结：本实验采用H₂O₂作为外源性自由基生成系统，能够诱导血管内皮细胞(ECV-304)氧化应激损伤，促进细胞凋亡。通过MTT法和LDH活性检测证实化合物(Ⅰ)对H₂O₂氧化损伤细胞具有保护作用；通过细胞上清液MDA含量、SOD活性、GSH-Px活性的测定，证实化合物(Ⅰ)有清除自由基和活性氧的抗氧化特性。

表1化合物(Ⅰ)对H₂O₂损伤ECV-304细胞生存率的影响(n＝8)

表2化合物(Ⅰ)对H₂O₂损伤ECV-304细胞LDH释放率的影响(n＝8)

表3化合物(Ⅰ)对H₂O₂损伤ECV-304细胞MDA含量、SOD、GSH-Px活力的影响(n＝8)

实施例3

片剂的制备：按实施例1方法先制得化合物(Ⅰ)，以及利用有机酸如酒石酸、或柠檬酸或甲酸或乙二酸等、无机酸如盐酸或硫酸或磷酸制成的盐，按其与赋形剂重量比为1:9的比例加入赋形剂，制粒压片。

实施例4

口服液的制备：按实施例1方法先制得化合物(Ⅰ)，以及利用有机酸如酒石酸、或柠檬酸或甲酸或乙二酸等、无机酸如盐酸或硫酸或磷酸制成的盐，按常规口服液制法制成口服液。

实施例5

胶囊剂或颗粒剂的制备：按实施例1方法先制得化合物(Ⅰ)，以及利用有机酸如酒石酸、或柠檬酸或甲酸或乙二酸等、无机酸如盐酸或硫酸或磷酸制成的盐，按其与赋形剂重量比为1:9的比例加入赋形剂，制成胶囊或颗粒剂。

实施例6

注射液的制备：按实施例1方法先制得化合物(Ⅰ)，以及利用有机酸如酒石酸、或柠檬酸或甲酸或乙二酸等、无机酸如盐酸或硫酸或磷酸制成的盐，按常规加注射用水，精滤，灌封灭菌制成注射液。

实施例7

无菌粉针的制备：按实施例1方法先制得化合物(Ⅰ)，以及利用有机酸如酒石酸、或柠檬酸或甲酸或乙二酸等、无机酸如盐酸或硫酸或磷酸制成的盐，将其溶于无菌注射用水中，搅拌使溶，用无菌抽滤漏斗过滤，再无菌精滤，分装于安瓿中，低温冷冻干燥后无菌熔封得粉针剂。

上述实施例的作用在于说明本发明的实质性内容，但并不以此限定本发明的保护范围。本领域的普通技术人员应当理解，可以对本发明的技术方案进行修改或者等同替换，而不脱离本发明技术方案的实质和保护范围。

Claims

1.具有下述结构式的化合物(Ⅰ)，

2.权利要求1所述的化合物(Ⅰ)的制备方法，其特征在于包含以下操作步骤：(a)将南方红豆杉的干燥枝叶粉碎，用75～85％乙醇热回流提取，合并提取液，浓缩至无醇味，依次用石油醚、乙酸乙酯和水饱和的正丁醇萃取，分别得到石油醚萃取物、乙酸乙酯萃取物和正丁醇萃取物；(b)步骤(a)中乙酸乙酯萃取物用大孔树脂除杂，先用15％乙醇洗脱8个柱体积，再用75％乙醇洗脱12个柱体积，减压浓缩得75％乙醇洗脱物浸膏；(c)步骤(b)中75％乙醇洗脱浸膏用正相硅胶分离，依次用体积比为80:1、55:1、35:1、10:1和1:1的二氯甲烷-甲醇梯度洗脱得到5个组分；(d)步骤(c)中组分4用正相硅胶进一步分离，依次用体积比为15:1、10:1和5:1的二氯甲烷-甲醇梯度洗脱得到3个组分；(e)步骤(d)中组分2用十八烷基硅烷键合的反相硅胶分离，用体积百分浓度为75％的甲醇水溶液等度洗脱，收集8～10个柱体积洗脱液，洗脱液减压浓缩得到纯的化合物(Ⅰ)。

3.根据权利要求2所述的化合物(Ⅰ)的制备方法，其特征在于：所述大孔树脂为AB-8型大孔吸附树脂。

4.根据权利要求2所述的化合物(Ⅰ)的制备方法，其特征在于：所述用乙醇热回流提取采用的乙醇浓度为80％。

5.一种药物组合物，其中含有治疗有效量的权利要求1所述的化合物(Ⅰ)和药学上可接受的载体。

6.权利要求1所述的化合物(Ⅰ)在制备血管保护的药物中的应用。

7.权利要求5所述的药物组合物在制备血管保护的药物中的应用。