CN105153184A - 一种用于治疗慢性粒细胞性白血病的新的黄烷酮类化合物 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一种用于治疗慢性粒细胞性白血病的新的黄烷酮类化合物,属于药物技术领域。该化合物为首次报道,是一种结构新颖的黄烷酮类化合物,可以从刺五加的干燥根及根茎中提取、分离纯化得到。体外试验证明该化合物能抑制K562细胞的增殖,抑制能力随浓度的增加和作用时间的延长而增强。同时,其还可诱导K562细胞凋亡,且这种促凋亡的效应随着浓度和时间的增加而增加。该化合物为慢性粒细胞白血病的治疗提供一种潜在的手段,可以用来开发成治疗慢性粒细胞白血病的药物。

Description

一种用于治疗慢性粒细胞性白血病的新的黄烷酮类化合物
技术领域
本发明属于药物技术领域,具体涉及从刺五加的干燥根及根茎中分离得到的一种黄烷酮类化合物,含其的药物组合物及其制备方法和应用。
背景技术
刺五加Acanthopanaxsenticosu(Rupr.EtMaxim)Harms的干燥根及根茎入药,其茎、叶也可药用。刺五加与人参同属于五加科植物,是一种落叶植物,因小枝密生针刺而得名。主产于中国东北部(黑龙江、吉林、辽宁、河北)、俄罗斯远东地区及日本北海道等地,刺五加是我国东北地区典型的药用植物,味辛、微苦、性温、无毒。刺五加具有益气健脾、补肾安神、益精壮骨之功效。本草纲目称刺五加为“本经上品”,能“补中益气,坚筋骨强意志,久服轻身耐老”。民间有“宁得一把五加,不用金玉满车”的说法。以刺五加为原料的中成药种类繁多,如刺五加片、刺五加注射液、安神补脑胶囊、脑安片等;另外中医处方对刺五加需求量也较大,刺五加全国年需求量500万公斤以上,使刺五加的市场供应日趋紧张。
刺五加化学成分复杂,根和根茎的主要成分为酚苷类化合物,实验证明刺五加总苷是其生物活性成分之一。已分离出七种刺五加苷(A、B、C、D、E、F、G)含量比例8:30:10:12:4:2:l,分别为胡萝卜苷(A),紫丁香酚苷(B),乙基半乳糖普(C),紫丁香树脂酚二糖苷(D),此外还有E、F和G,以及L。近些年对刺五加茎叶的研究不断深入,从叶中分离得到齐墩果酸为配基的五加叶苷I、K、L和M等。
现代药理研究表明刺五加可增强机体非特异性防御能力,除具有免疫调节、抗肿瘤、抗衰老、抗辐射、抗损伤及抗疲劳作用外,还可治疗心脑血管疾病、糖尿病、神经衰弱等症。近年来,经过对刺五加生理活性和化学成分方面的研究,表明刺五加有效成分为苷类,其中刺五加苷B、E是主要有效成分。
发明内容
本发明的目的是提供一种从刺五加的干燥根及根茎中分离得到的一种黄烷酮类化合物,含其的药物组合物及其制备方法和应用。
本发明的上述目的是通过下面的技术方案得以实现的:
具有下述结构式的化合物(Ⅰ):
所述的化合物(Ⅰ)的制备方法,包含以下操作步骤:(a)将刺五加的干燥根及根茎粉碎,用70~80%乙醇热回流提取,合并提取液,浓缩至无醇味,依次用石油醚、乙酸乙酯和水饱和的正丁醇萃取,分别得到石油醚萃取物、乙酸乙酯萃取物和正丁醇萃取物;(b)步骤(a)中乙酸乙酯萃取物用大孔树脂除杂,先用10%乙醇洗脱6个柱体积,再用70%乙醇洗脱8个柱体积,收集70%洗脱液,减压浓缩得70%乙醇洗脱浓缩物;(c)步骤(b)中70%乙醇洗脱浓缩物用正相硅胶分离,依次用体积比为85:1、50:1、25:1、10:1和1:1的二氯甲烷-甲醇梯度洗脱得到5个组分;(d)步骤(c)中组分4用正相硅胶进一步分离,依次用体积比为15:1、10:1和5:1的二氯甲烷-甲醇梯度洗脱得到3个组分;(e)步骤(d)中组分2用十八烷基硅烷键合的反相硅胶分离,用体积百分浓度为70%的甲醇水溶液等度洗脱,收集8~12个柱体积洗脱液,洗脱液减压浓缩得到纯的化合物(Ⅰ)。
进一步地,步骤(a)中,用75%乙醇热回流提取,合并提取液。
进一步地,所述大孔树脂为D101型大孔吸附树脂。
一种药物组合物,其中含有治疗有效量的所述的化合物(Ⅰ)和药学上可接受的载体。
所述的化合物(Ⅰ)在制备治疗慢性粒细胞白血病的药物中的应用。
所述的药物组合物在制备治疗慢性粒细胞白血病的药物中的应用。
本发明化合物用作药物时,可以直接使用,或者以药物组合物的形式使用。
该药物组合物含有治疗有效量的本发明化合物(Ⅰ),其余为药物学上可接受的、对人和动物无毒和惰性的可药用载体和/或赋形剂。
所述的可药用载体或赋形剂是一种或多种选自固体、半固体和液体稀释剂、填料以及药物制品辅剂。将本发明的药物组合物以单位体重服用量的形式使用。本发明药物可通过口服或注射的形式施用于需要治疗的患者。用于口服时,可将其制成片剂、缓释片、控释片、胶囊、滴丸、微丸、混悬剂、乳剂、散剂或颗粒剂、口服液等;用于注射时,可制成灭菌的水性或油性溶液、无菌粉针、脂质体或乳剂等。
附图说明
图1为化合物(Ⅰ)结构式;
图2为化合物(Ⅰ)计算ECD和实验ECD图。
具体实施方式
下面结合实施例进一步说明本发明的实质性内容,但并不以此限定本发明保护范围。尽管参照较佳实施例对本发明作了详细说明,本领域的普通技术人员应当理解,可以对本发明的技术方案进行修改或者等同替换,而不脱离本发明技术方案的实质和范围。
主要材料、试剂来源及仪器类型:
乙醇、石油醚、乙酸乙酯、正丁醇、二氯甲烷为分析纯,购自上海凌峰化学试剂有限公司,甲醇,分析纯,购自江苏汉邦化学试剂有限公司。
实施例1:化合物(Ⅰ)分离制备及结构确证
(a)刺五加的干燥根及根茎(10kg)粉碎,用75%乙醇热回流提取(30L×3次),合并提取液,浓缩至无醇味(6L),依次用石油醚(6L×3次)、乙酸乙酯(6L×3次)和水饱和的正丁醇(6L×3次)萃取,分别得到石油醚萃取物、乙酸乙酯萃取物(381g)和正丁醇萃取物;(b)步骤(a)中乙酸乙酯萃取物用D101大孔树脂除杂,先用10%乙醇洗脱6个柱体积,再用70%乙醇洗脱8个柱体积,收集70%洗脱液,减压浓缩得70%乙醇洗脱浓缩物(131g);(c)步骤(b)中70%乙醇洗脱浓缩物用正相硅胶分离,依次用体积比为85:1(8个柱体积)、50:1(8个柱体积)、25:1(8个柱体积)、10:1(10个柱体积)和1:1(8个柱体积)的二氯甲烷-甲醇梯度洗脱得到5个组分;(d)步骤(c)中组分4(27g)用正相硅胶进一步分离,依次用体积比为15:1(8个柱体积)、10:1(8个柱体积)和5:1(6个柱体积)的二氯甲烷-甲醇梯度洗脱得到3个组分;(e)步骤(d)中组分2(18g)用十八烷基硅烷键合的反相硅胶分离,用体积百分浓度为70%的甲醇水溶液等度洗脱,收集8~12个柱体积洗脱液,洗脱液减压浓缩得到纯的化合物(Ⅰ)(30mg)。
结构确证:黄色无定形粉末;HR-ESIMS显示[M+Na]+为m/z387.0800,结合核磁特征可得分子式为C21H16O6,不饱和度为14。核磁共振氢谱数据δH(ppm,DMSO-d6,800MHz):H-2(5.84,s),H-5(7.91,d,J=8.5),H-6(6.63,d,J=8.5),H-2’,6’(7.28,m),H-3’,5’(7.33,m),H-4’(7.29,m),H-2”(6.47,d,J=6.4),H-6”(3.87,d,J=6.4),4”-Me(1.01,s),4”-Me(1.31,s);核磁共振碳谱数据δC(ppm,DMSO-d6,200MHz):94.2(CH,2-C),196.6(C,3-C),190.4(C,4-C),115.1(C,4a-C),129.2(CH,5-C),104.5(CH,6-C),164.2(C,7-C),112.3(C,8-C),157.0(C,8a-C),137.4(C,1’-C),125.3(CH,2’,6’-C),129.3(CH,3’,5’-C),127.6(CH,4’-C),89.6(CH,2”-C),88.2(C,4”-C),211.4(C,5”-C),55.3(CH,6”-C),24.2(CH3,4”-Me),26.2(CH3,4”-Me);碳原子标记参见图1。红外光谱表明该化合物含有羰基(1746cm-1)和苯环(1600和1580cm-1)基团。1HNMR谱显示了典型的黄酮类化合物信号δH5.84(s,H-2),7.28(m,H-2’,6’),7.33(m,H-3’,5’),7.29(m,H-4’),7.91(d,J=8.5Hz,H-5),6.63(d,J=8.5Hz,H-6)。13CNMR光谱显示21个碳信号,包含两个甲基(δC24.2,4”-Me和26.2,4”-Me),十个次甲基(δC94.2,2-C;129.2,5-C;104.5,6-C;125.3,2’,6’-C;129.3,3’,5’-C;127.6,4’-C;89.6,2”-C;55.3,6”-C;),九个季碳(δC196.6,3-C;190.4,4-C;115.1,4a-C;164.2,7-C;112.3,8-C;157.0,8a-C;137.4,1’-C;88.2,4”-C;211.4,5”-C;)。通过观察H-2”和H-6”的化学位移(δH6.41和δH3.85),以及与报道的类似化合物的核磁数值比较,最终确定两者均为α构型。综合氢谱、碳谱、HMBC谱和NOESY谱,以及文献关于相关类型核磁数据,可基本确定该化合物如图1所示,立体构型进一步通过ECD试验确定,理论值与实验值基本一致(图2)。
实施例2:化合物(Ⅰ)药理作用试验
一、材料和仪器
K562细胞由中科院上海生物细胞所提供。化合物(Ⅰ)为自制,HPLC归一化纯度大于98%。RPMI-1640干粉培养基购于Gibco公司。小牛血清购于杭州四季青生物工程材料研究所。青霉素、链霉素购于华北制药厂。Glutamine、MTT、DMSO购于AMRESCO。Annexinv-FITC细胞凋亡检测试剂盒购于南京凯基生物科技发展有限公司。MOPS,Rnasin、琼脂糖、嗅乙锭、溴酚兰华美生物工程公司华美生物工程公司。
CO2孵箱(美国Thermo公司),超净工作台(苏州净化设备厂),磁力搅拌器(上海南汇电讯器材厂),倒置显微镜(日本OLYMPUS公司),水平式离心机(上海安亭科学仪器厂),电子分析天平(德国Sartorius公司),自动酶标仪(德国Humareader公司),U-3010型紫外分光光度计(日本HITACHI公司),流式细胞仪(美国BECKMAN公司),EppendorfCentrifuge5417R离心机(德国Eppendorf公司)。
二、试验方法
1、K562细胞的培养
将新购买的细胞株的培养瓶表面用75%酒精擦拭3遍。将细胞悬液吸入离心管,1000rpm离心10min。弃去上清,滴加含10%NBS的RPMI-1640完全培养基,轻轻吹打制备成细胞悬液。接种于培养瓶中,置于37℃,5%CO2培养箱中培养,每天换液传代。
2、实验分组
正常对照组:10%NBS的RPMI-1640;实验组:D1:10%NBS的RPMI-1640+终浓度100mg/L化合物(Ⅰ);D2:10%NBS的即RPMI-1640+终浓度200mg/L化合物(Ⅰ);D3:10%NBS的即RPMI-1640+终浓度400mg/L化合物(Ⅰ);D4:10%NBS的即RPMI-1640+终浓度800mg/L化合物(Ⅰ)。
3、MTT法检测化合物(Ⅰ)对K562细胞增殖的影响
(l)取生长状态良好的细胞,用含10%NBS的RPMI-1640培养液将细胞配制成细胞悬液,以5×103细胞/孔接种于无菌96孔培养板中。(2)依实验分组,每组加入不同浓度的药物50μL,设无细胞孔为空白对照组,每组设8个复孔,将96孔培养板放入CO2培养箱中培养;(3)24、48和72h后取出96孔培养板,每孔加入20μLMTT(5mg/mL),放入CO2培养箱中孵育4h,即有紫蓝色结晶物生成,在一定细胞数范围内,结晶物的生成量与细胞数成正比。(4)每孔加入酸化的SDS100μL放入CO2培养箱中过夜。(5)用酶标仪测定OD,比色时以空白孔调零。
4、AnnexinV-FITC/PI双染流式细胞术检测细胞凋亡
(1)取生长状态好的细胞,用含10%NBS的RPMI-1640培养液将细胞配制成细胞悬液,并调整细胞浓度为5×105/mL,接种于无菌6孔培养板,每孔2mL细胞。(2)依实验分组加入不同浓度药物,2mL/孔,将6孔培养板放入CO2培养箱中培养。(3)48h和72h后收集各孔细胞于离心管中,1000rpm离心5min,弃上清。(4)用4℃预冷的PBS洗涤细胞两次,(1500rpm,离心5min),弃上清,用200μLBindingBuffer悬浮细胞,并移入流式管中。(5)每管加入5μLAnnexinv-FITC混合后,加入5μLPI,混匀。(6)室温,避光反应10min,用流式细胞仪检测。
5、统计学处理
实验组和对照组均重复3次操作,结果用(x±s表示,P<0.05示有显著性差异。组间比较采用单因素方差分析。所有数据用SPSS13.0统计软件进行统计学分析。
三、结果及结论
1、MTT法检测化合物(Ⅰ)对K562细胞的增殖抑制作用
化合物(Ⅰ)作用K562细胞24h、48h、72h后,用酶标仪检测OD490显示:作用24h后D1和D2实验组对细胞K562细胞抑制作用不明显(P>0.05,P>0.05),D3和D4可明显抑制562结果(P<0.05,P<0.01),作用48h和72h后,不同浓度的化合物(Ⅰ)均可抑制K562细胞增殖,且随剂量和时间的增加抑制细胞增殖的作用增强。结果见表1(*:和对照比P<0.05;**:和对照比P<0.01)。
2、Annexinv-FITC/PI双染流式细胞仪分析结果
磷脂酞丝氨酸(PhosphotidylSerine,PS)外翻是细胞凋亡的早期事件。AnnexinV是一种Ca2+依赖性磷脂结合蛋白,能与PS高亲和力特异性结合。先后标记了FITC和PI(PropidiumIodide)的双染细胞,可通过流式细胞仪将活细胞、早期凋亡细胞(双参数散点图右下象限)、晚期凋亡细胞及坏死细胞区分开。结果表明不同浓度的化合物(Ⅰ)作用K562细胞48h和72h均可明显诱导K562细胞早期凋亡,这种效应随化合物(Ⅰ)的浓度增加和作用时间延长而明显增强。结果见表2(*:和对照比P<0.05;**:和对照比P<0.01)。
结论,化合物(Ⅰ)可直接抑制K562细胞的增殖,抑制能力随浓度的增加和作用时间的延长而增强。同时,化合物(Ⅰ)可诱导K562细胞凋亡,且这种促凋亡的效应随着浓度和时间的增加而增加。研究结果显示,化合物(Ⅰ)可能为慢性粒细胞白血病的治疗提供一种潜在的手段。
表1不同浓度的化合物(Ⅰ)作用K562细胞后的MTT值(x±s,N=8)
表2不同浓度化合物(Ⅰ)作用K562细胞后早期凋亡率(x±s,N=3)
实施例3
片剂的制备:按实施例1方法先制得化合物(I),以及利用有机酸如酒石酸、或柠檬酸或甲酸或乙二酸等、无机酸如盐酸或硫酸或磷酸制成的盐,按其与赋形剂重量比为1:7的比例加入赋形剂,制粒压片。
实施例4
口服液的制备:按实施例1方法先制得化合物(I),以及利用有机酸如酒石酸、或柠檬酸或甲酸或乙二酸等、无机酸如盐酸或硫酸或磷酸制成的盐,按常规口服液制法制成口服液。
实施例5
胶囊剂或颗粒剂的制备:按实施例1方法先制得化合物(I),以及利用有机酸如酒石酸、或柠檬酸或甲酸或乙二酸等、无机酸如盐酸或硫酸或磷酸制成的盐,按其与赋形剂重量比为1:9的比例加入赋形剂,制成胶囊或颗粒剂。
实施例6
注射液的制备:按实施例1方法先制得化合物(I),以及利用有机酸如酒石酸、或柠檬酸或甲酸或乙二酸等、无机酸如盐酸或硫酸或磷酸制成的盐,按常规加注射用水,精滤,灌封灭菌制成注射液。
实施例7
无菌粉针的制备:按实施例1方法先制得化合物(I),以及利用有机酸如酒石酸、或柠檬酸或甲酸或乙二酸等、无机酸如盐酸或硫酸或磷酸制成的盐,将其溶于无菌注射用水中,搅拌使溶,用无菌抽滤漏斗过滤,再无菌精滤,分装于安瓿中,低温冷冻干燥后无菌熔封得粉针剂。

Claims (7)

1.具有下述结构式的化合物(Ⅰ):
2.权利要求1所述的化合物(Ⅰ)的制备方法,其特征在于包含以下操作步骤:(a)将刺五加的干燥根及根茎粉碎,用70~80%乙醇热回流提取,合并提取液,浓缩至无醇味,依次用石油醚、乙酸乙酯和水饱和的正丁醇萃取,分别得到石油醚萃取物、乙酸乙酯萃取物和正丁醇萃取物;(b)步骤(a)中正丁醇取物用大孔树脂除杂,先用10%乙醇洗脱6个柱体积,再用70%乙醇洗脱8个柱体积,收集70%洗脱液,减压浓缩得70%乙醇洗脱浓缩物;(c)步骤(b)中70%乙醇洗脱浓缩物用正相硅胶分离,依次用体积比为85:1、50:1、25:1、10:1和1:1的二氯甲烷-甲醇梯度洗脱得到5个组分;(d)步骤(c)中组分4用正相硅胶进一步分离,依次用体积比为15:1、10:1和5:1的二氯甲烷-甲醇梯度洗脱得到3个组分;(e)步骤(d)中组分2用十八烷基硅烷键合的反相硅胶分离,用体积百分浓度为70%的甲醇水溶液等度洗脱,收集8~12个柱体积洗脱液,洗脱液减压浓缩得到纯的化合物(Ⅰ)。
3.根据权利要求2所述的化合物(Ⅰ)的制备方法,其特征在于:步骤(a)中,用75%乙醇热回流提取,合并提取液。
4.根据权利要求2所述的化合物(Ⅰ)的制备方法,其特征在于:所述大孔树脂为D101型大孔吸附树脂。
5.一种药物组合物,其特征在于:其中含有治疗有效量的权利要求1所述的化合物(Ⅰ)和药学上可接受的载体。
6.权利要求1所述的化合物(Ⅰ)在制备治疗慢性粒细胞白血病的药物中的应用。
7.权利要求5所述的药物组合物在制备治疗慢性粒细胞白血病的药物中的应用。
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