CN105073993B

CN105073993B - 一种棉花钼辅酶因子硫化酶mcsu‑1及其编码基因与应用

Info

Publication number: CN105073993B
Application number: CN201280077920.2A
Authority: CN
Inventors: 陈文华; 孙超; 崔洪志; 詹帅; 祝毅
Original assignee: Biocentury Seed Industry Co Ltd
Current assignee: Biocentury Seed Industry Co Ltd
Priority date: 2012-12-24
Filing date: 2012-12-24
Publication date: 2018-03-16
Anticipated expiration: 2032-12-24
Also published as: WO2014100925A1; CN105073993A

Abstract

提供了一个来源于棉花的钼辅因子硫化酶蛋白MCSU‑1和其编码基因GhMCSU‑1，及其在培育耐旱性提高的转基因植物中的应用。

Description

一种棉花钼辅酶因子硫化酶MCSU-1及其编码基因与应用

技术领域

本发明涉及植物蛋白及其编码基因与应用，特别是涉及一个来源于棉花的钼辅酶因子硫化酶MCSU-1及其编码基因，以及其在培育耐旱性提高的转基因植物中的应用。

背景技术

干旱、盐渍和低温等多种环境胁迫均导致植物细胞的渗透胁迫，影响植物正常的生长发育，导致作物产量降低，品质下降，对作物产量造成极大损失，其中干旱对作物产量的影响，在诸多自然逆境中占首位，其危害相当于其它灾害之和，是许多地区是农业发展的瓶颈。据统计，世界干旱、半干旱地区占陆地面积的34％；我国干旱、半干旱地区约占国土面积的52％，年受旱面积达200-270万公顷，全国灌溉区每年缺水约30亿立方米，因缺水而少收粮食350-400亿公斤；特别是我国主要产粮区如华北、东北和西北，是我国缺水最严重的地区，春旱频繁达到十年九遇。

植物耐旱性大多属于多基因控制的数量性状，利用常规育种方法改良作物的抗旱性受到周期长、优异种质资源缺乏的限制。近年来的转录组学、蛋白组学和基因表达调控的研究初步揭示了植物干旱胁迫的作用分子机理。目前，利用干旱胁迫相关基因提高植物的抗旱能力，已经成为植物抗逆分子生物学的研究热点和植物抗逆基因工程重要的研究方向。

植物受到逆境胁迫时会产生相应的应答反应，以降低或消除逆境胁迫给植物带来的危害。植物的这种应答反应是一个涉及多基因、多信号途径及多基因产物的复杂过程。但就目前的研究状况而言，由于其机制十分复杂，许多植物对逆境下的生物化学和生理学上的响应机制仍有待深入研究。在抗逆应答基因的功能及表达调控方面的研究将对植物抗逆相关的信号传递途径之间的联系以及整个信号传递网络系统的研究提供重要的基础。

发明内容

本发明人利用SSH(抑制差减杂交)与RACE(cDNA末端快速扩增)相结合的方法克隆出了棉花的一个钼辅酶因子硫化酶(本文命名为MCSU-1)的编码基因，并测定了其DNA序列。并发现将其导入植物超量表达后，可明显改善转基因植株的耐旱性，而且这些性状可稳定遗传。

本发明第一方面提供棉花的一个钼辅酶因子硫化酶MCSU-1的编码基因(本文命名为GhMCSU-1)，其序列为SEQ ID NO：2。

本发明第二方面提供一种重组表达载体，其含有本发明第一方面所述的基因并且所述基因的核苷酸序列与所述表达载体的表达控制序列可操作地连接；优选地，所述载体为附图2所示的35S-GhMCSU-1-2300载体。

本发明第三方面提供一种重组细胞，其含有本发明第一方面所述的基因或者本发明第二方面所述的重组表达载体；优选地，所述重组细胞为重组农杆菌细胞。

本发明第四方面提供一种改善植物耐旱性的方法，包括：将本发明第一方面所述的基因或者本发明第二方面所述的重组表达载体导入植物或植物组织并使所述基因表达；优选地，所述植物是拟南芥。

本发明第五方面提供一种制备转基因植物的方法，包括：在有效产生植物的条件下培养含有本发明第一方面所述的基因或者本发明第二方面所述的重组表达载体的植物或植物组织；优选地，所述植物是拟南芥。

本发明第六方面提供本发明第一方面所述的基因、本发明第二方面所述的重组表达载体或者本发明第三方面所述的重组细胞用于改善植物耐旱性以及用于植物育种的用途；优选地，所述植物是拟南芥。

本发明第七方面提供本发明第一方面所述的基因编码的蛋白质，其氨基酸序列如SEQ ID NO：1所示。

附图说明

图1是GhMCSU-1的植物表达载体(35S-GhMCSU-1-2300)的构建流程(图1a-1b)。

图2是GhMCSU-1的植物表达载体(35S-GhMCSU-1-2300)的质粒图。

图3是GhMCSU-1 T1代转基因拟南芥植株(图中，T1A1；T1A3)和作为对照的非转基因拟南芥植株(图中，CK1、CK2)的耐旱模拟实验结果。(图3a为正常生长20天的拟南芥；图3b为正常生长20天后干旱处理14天，然后复水3天的拟南芥)。

图4干旱胁迫和正常生长条件下的T1代转基因拟南芥植株及对照植株ABA含量变化检测结果。1-8依次为株系：T1A1、T1A2、T1A3、T1A4、T1A5、T1A6、CK1、CK2，其中T1A1、T1A2、T1A3、T1A4、T1A5、T1A6为转基因植株，CK1、CK2为对照植株。

图5是转基因T1代拟南芥植株和非转基因对照植株在转录水平上的蛋白表达验证结果。M1、M2为Marker，1-5泳道为不耐旱转基因拟南芥T1代植株，6-9泳道为对照非转基因的拟南芥，10-15泳道为耐旱转基因拟南芥T1代植株(依次为株系：T1A1、T1A2、T1A3、T1A4、T1A5、T1A6)。

具体实施方式

下面结合非限制性实施例对本发明进行进一步说明。

实施例1、干旱胁迫下棉花SSH文库构建：

具体方法为：

利用Clontech公司的PCR-select^TM cDNA Subtraction Kit所示的方法通过抑制差减杂交方法构建差减文库。在实验过程中以干旱处理的棉花幼苗的叶片的mRNA作为样本(tester)，以未处理的棉花幼苗的叶片的mRNA作为对照(driver)。具体步骤简述如下：

(1)供试材料：

石系亚1号(国家棉花中期库，获取单位中国棉花研究所，统一编号：ZM-08050)播种到灭过菌的蛭石上，在25℃、光周期16h光照/8h黑暗(光强2000-3000Lx)条件下培养，每周浇1/2MS培养基(9.39mM KNO₃，0.625mM KH₂PO₄，10.3mM NH₄NO₃，0.75mM MgSO₄，1.5mMCaCl₂，50μM KI，100μM H₃BO₃，100μM MnSO₄，30μM ZnSO₄，1μM Na₂MoO₄，0.1μM CoCl₂，100μMNa₂·EDTA，100μM FeSO₄)一次。当苗株高达25-30cm时用于实验。

(2)材料处理：

将供试幼苗分为2组，每组4盆，每盆1株。第一组为对照组，在25℃、光周期16h光照/8h黑暗光照培养，正常浇灌。第二组为干旱处理组，25℃、光周期16h光照/8h黑暗光照培养，停止浇灌，处理10天，处理完毕后及时剪取两组幼苗顶端1/3的叶片，用液氮迅速冷冻后，于-70℃冰箱中保存。

(3)总RNA提取：

分别取对照组和干旱处理组的棉花叶子0.5g，用植物RNA提取试剂盒(invitrogen)提取棉花的总RNA。用HITACHI公司的紫外分光光度计U-2001测定总RNA在260nm和280nm的吸光度值，OD₂₆₀/OD₂₈₀比值为1.8-2.0，表明总RNA纯度较高，用1.0％的琼脂糖凝胶电泳检测总RNA的完整性，28S条带的亮度约为18S条带的2倍，表明RNA的完整性良好。使用Qiagen公司的Oligotex mRNA纯化试剂盒(purification of polyA+RNA fromtotal RNA)分离mRNA。

(4)抑制差减杂交：

按Clontech公司的PCR-select^TM cDNA Subtraction Kit试剂盒所示的方法进行抑制差减杂交。先将Driver mRNA和Tester mRNA分别反转录，得到双链cDNA，再以2μgTester cDNA和2μg Driver cDNA作为起始材料进行差减杂交。在37℃水浴下分别将TestercDNA和Driver cDNA用Rsa I酶切1.5h，然后将酶切后的Tester cDNA分成两等份，连接上不同的接头，而Driver cDNA不连接头。两种连有不同接头的Tester cDNA分别与过量的Driver cDNA混合，进行第一次正向差减杂交。将两种第一次差减杂交的产物混合，再与新变性的Driver cDNA进行第二次正向差减杂交，然后通过两次抑制性PCR扩增差异表达的片段，使其得到富集。

为了增加获得表达序列标签(Expressed sequence tag，EST)(unigene)的有效性，避免基因无酶切位点及所获得序列在非翻译区，本实验同时用内切酶HaeIII按上述步骤对Tester cDNA和Driver cDNA进行酶切并且进行差减杂交和PCR扩增，最后合并两组正向差减杂交cDNA片段的第二次PCR产物。

(5)cDNA差减文库的构建与初步筛选、克隆、鉴定

依照pGEM-T Easy试剂盒的程序，将上述合并的正向差减杂交cDNA片段的第二次PCR产物(使用QIAquick PCR Purification Kit纯化，购自Qiagen)与pGEM-T Easy(购自Promega试剂盒)载体连接，其具体步骤如下：用200μl PCR管依次加入下列成分：纯化的正向差减杂交cDNA片段的第二次PCR产物3μl，2×T4连接酶缓冲液5μl，pGEM-T Easy载体1μl，T4DNA连接酶1μl，于4℃连接过夜。取10μL连接反应产物，加入到100μL感受态大肠杆菌JM109(购自TAKARA)中，冰浴30min、热休克60s、冰浴2min，另加250μL LB培养液(1％Tryptone购自OXOID，0.5％Yeast Extract购自OXOID，1％NaCl购自国药)置37℃水浴中，以225r/min振荡培养30min，取200μL菌液涂布于含50μg/mL氨苄青霉素的LB(同上)/X-gal/IPTG(X-gal/IPTG购自TAKARA)培养板上，37℃培育18h。计数培养板中直径＞1mm的清晰白色及蓝色菌落数，随机挑取426个白色菌落(编号：Gh-L001至Gh-L426)。将所有白色克隆分别接种于含有50μg/mL氨苄青霉素的LB液体培养基的96孔细胞培养板(CORNING)中，37℃培养过夜后加甘油至终浓度20％，于-80℃保存备用。以巢式PCR引物Primer 1和Primer 2R(Clontech公司的PCR-select^TM cDNA Subtraction Kit试剂盒自带)进行菌液PCR扩增，得到382个阳性克隆，对所有阳性克隆在送英潍捷基(上海)贸易有限公司测序。

(6)差异克隆的cDNA测序分析：

将DNA测序结果去除载体和不明确序列及冗余的cDNA后，共得到263个EST(unigene)。经分析有36个重叠群，有227个单一的序列。经BlastN发现其中133条unigene在GenBank中有同源序列(蛋白同源性50％以上)，57条EST功能未知或者为假定蛋白，另有37条未获得同源匹配，推测可能是处于3’或5’末端非翻译区的较短序列。

实施例2棉花钼辅酶因子硫化酶编码基因的克隆

克隆子Gh-MU056去掉冗余DNA后，序列为SEQ ID No：3，序列分析表明该序列的编码的蛋白质属于钼辅酶因子硫化酶，本文将克隆子Gh-MU056对应的全长编码基因命名为GhMCSU-1，其对应的蛋白命名为MCSU-1。

SEQ ID No：3

GhMCSU-1全长编码基因的克隆

根据已经获得的SEQ ID No：3序列，设计两条特异性引物，作为3’RACE的5’端特异性引物：

Gh-MU056 GSP1：SEQ ID NO：4：

TCGCAAATGAAGCTCAGTTCC

Gh-MU056 GSP2：SEQ ID NO：5：

CGACCTCAACAACAGACTATGC

试剂自带通用引物：

AP：SEQ ID NO：6：

GGCCACGCGTCGACTAGTACTTTTTTTTTTTTTTTTT

AUAP：SEQ ID NO：7：

GGCCACGCGTCGACTAGTAC

实验步骤按试剂盒说明书操作(3’RACE System for Rapid Amplification ofcDNA Ends试剂盒购自invitrogen公司)。

用SEQ ID NO：4与通用引物SEQ ID NO：7(试剂盒自带的AUAP引物)，以SEQ ID NO：6引物(试剂盒自带的AP引物)和棉花mRNA反转录得到的cDNA为模板进行第一轮PCR扩增。具体步骤如下：

50μl PCR反应体系：5μl 10×Ex Buffer，3μl 2.5mM的dNTP，2.0μl mRNA反转录的cDNA，1.0μl Ex Taq(购自TAKARA)、10μM的引物SEQ ID NO：4和SEQ ID NO：7各2.0μl，以及35μl的双蒸水。PCR反应条件：94℃预变性5min，33个循环(94℃变性30s，53℃退火30s，72℃延伸2min)，72℃延伸10min。

所得的PCR产物用双蒸水稀释50倍后取2.0μl作为模板，用SEQ ID NO：5与通用引物SEQ ID NO：7进行第二轮PCR扩增，具体步骤如下：

50μl PCR反应体系：5μl 10×Ex Buffer，3μl 2.5mM的dNTP，2.0μl稀释的第一轮PCR产物，1.0μl Ex Taq、10μM的引物SEQ ID NO：5和SEQ ID NO：7各2.0μl，以及35μl的双蒸水。PCR反应条件：94℃预变性5min，33个循环(94℃变性30s，56℃退火30s，72℃延伸2min)，72℃延伸10min。第二次PCR产物回收片段约为400bp条带(Gel Extraction Kit购自OMEGA)连接于pGEM-T Easy Vector，转化到大肠杆菌JM109(具体方法同上)，随机挑取8个白色菌落于含有50μg/mL氨苄青霉素的LB液体培养基中培养，37℃培养过夜后加甘油至终浓度20％，-80℃保存备用。SEQ ID NO：5与通用引物SEQ ID NO：7进行菌液PCR扩增，得到6个阳性克隆，送英潍捷基(上海)贸易有限公司测序测序，获得该基因的cDNA的3’端。

所得的3’RACE产物克隆子Gh-MU3-2测序获得序列为SEQ ID No：8.

SEQ ID No：8

根据3’RACE获得的基因3’端序列SEQ ID No：8，设计三条特异性引物，作为反转录引物及5’RACE的特异性引物。

Gh-MU3-2 GSP1：SEQ ID NO：9：

TTCTTAACTTGTCCTGTTTGCTG

Gh-MU3-2 GSP2：SEQ ID NO：10：

GTTGCAACCACCTAATGAAC

Gh-MU3-2 GSP3：SEQ ID NO：11：

CAACAGACTATGCTCAAAAACTC

试剂盒自带通用引物：

AAP：SEQ ID NO：12：

GGCCACGCGTCGACTAGTACGGGIIGGGIIGGGIIG

实验步骤按试剂盒说明书操作(5’RACE System for Rapid Amplification ofcDNA Ends试剂盒购自invitrogen公司)。以Gh-MU3-2 GSP1(SEQ ID NO：9)为反转录引物，以棉花mRNA为模板进行反转录，获得cDNA模板按照5’RACE试剂盒中的步骤进行加Poly C尾，以加尾后的产物为模板进行第一轮PCR扩增，用SEQ ID NO：9与通用引物SEQ ID NO：12(试剂盒自带，I为次黄嘌呤修饰的a，c，g，或t)，具体步骤如下：

50μl PCR反应体系：5μl 10×Ex Buffer，3μl 2.5mM的dNTP，2.0μl mRNA反转录的cDNA，1.0μl Ex Taq(购自TAKARA)、10μM的引物SEQ ID NO：9和SEQ ID NO：12各2.0μl，以及35μl的双蒸水。PCR反应条件：94℃预变性5min，33个循环(94℃变性30s，58℃退火30s，72℃延伸2min)，72℃延伸10min。

所得的PCR产物用双蒸水稀释50倍后取2.0μl作为模板，用SEQ ID NO：10与通用引物SEQ ID NO：7进行第二轮PCR扩增，具体步骤如下：

50μl PCR反应体系：5μl 10×Ex Buffer，3μl 2.5mM的dNTP，2.0μl稀释的第一轮PCR产物，1.0μl Ex Taq、10μM的引物SEQ ID NO：10和SEQ ID NO：7各2.0μl，以及35μl的双蒸水。PCR反应条件：94℃预变性5min，33个循环(94℃变性30s，53℃退火30s，72℃延伸2min)，72℃延伸10min。第二次PCR产物回收片段约为700bp条带(Gel Extraction Kit购自OMEGA)连接于pGEM-T Easy Vector，转化到JM109(具体方法同上)，随机挑取10个白色菌落于含有50μg/mL氨苄青霉素的LB液体培养基中培养，37℃培养过夜后加甘油至终浓度20％，-80℃保存备用。SEQ ID NO：10与3’端引物SEQ ID NO：11进行菌液PCR扩增(反应体系及反应条件同上)，得到3个阳性克隆(Gh-MU51-2，Gh-MU51-3；Gh-MU51-5)，送英潍捷基(上海)贸易有限公司测序测序，获得该基因的cDNA的一段5’端序列。

所得的5’RACE产物克隆子Gh-MU51-3测序获得序列为SEQ ID No：13：

SEQ ID No：13

将5’RACE获得的序列SEQ ID No：13，与3’RACE获得的序列SEQ ID No：8拼接，获得SEQ ID NO：14：

经分析序列SEQ ID NO：14非GhMCSU-1基因的完整序列，需进行第二轮5’RACE。根据序列SEQ ID NO：14，设计三条特异性引物，作为反转录引物及5’RACE的特异性引物。

Gh-MU3-2 GSP1：SEQ ID NO：15：

CAGACAATATCTGCAGATTGAG

Gh-MU3-2 GSP2：SEQ ID NO：16：

CCTTCTTTTGTGTAAGAATTTC

Gh-MU3-2 GSP3：SEQ ID NO：17：

AGGGTTCAGTGTGAATAGTTG

具体的操作步骤同上5’RACE步骤。以SEQ ID NO：15与通用引物SEQ ID NO：12进行第一轮扩增，以SEQ ID NO：16与通用引物SEQ ID NO：7进行第二轮扩增得到扩增片段约为1800bp条带，按上述方法进行克隆并鉴定(用SEQ ID NO：16和SEQ ID NO：17引物扩增菌液)后取3个阳性克隆(Gh-MU5-1，Gh-MU5-4；Gh-MU5-6)，送英潍捷基(上海)贸易有限公司测序测序，获得该基因的cDNA的5’端序列。

所得的5’RACE产物克隆子Gh-MU5-6测序获得序列为SEQ ID No：18：

将两次5’RACE获得的序列SEQ ID No：13和SEQ ID No：18，与3’RACE获得的序列SEQ ID No：8拼接，获得SEQ ID NO：19：

根据SEQ ID NO：19序列设计一对引物如下：

GhMCSU-1F：SEQ ID NO：20：

AGTTCTCTGCAAATGGACGG

GhMCSU-1R：SEQ ID NO：21：

CACCTGTTATTCCGAATTTGAA

通过SEQ ID NO：20和SEQ ID NO：21来克隆GhMCSU-1全长编码序列。

采用stratagene的PfuUltra II Fusion HS DNA Polymerase，以棉花的cDNA为模板进行PCR反应。50μl PCR反应体系：5μl 10×PfuUltra II reaction Buffer，0.5μl 25mM的dNTP，2.0μl cDNA，1.0μl PfuUltra II Fusion HS DNA Polymerase、10μM的引物SEQ IDNO：20和SEQ ID NO：21各2.0μl，以及37.5μl的双蒸水。PCR反应条件：95℃预变性2min，35个循环(95℃变性25s，54℃退火30s，72℃延伸1min30s)，72℃延伸5min。

PCR扩增产物加A尾：PCR产物加2.5倍的无水乙醇，-20℃放置10分钟，离心，去上清，晾干，用21μl双蒸水溶解。加入2.5μl 10×Ex Buffer，0.5μl 5mM的dATP，2.5μl 10×ExTaq。反应条件：70℃反应30分钟。将得到约2400bp的DNA片段回收(Omega回收试剂盒)，连接至pGEM T-easy载体上(得到GhMCSU-1-pGEM质粒)，转化JM109(方法同上)，随机挑取10个白色菌落于含有50μg/mL氨苄青霉素的LB液体培养基中培养，37℃培养过夜后加甘油至终浓度20％，-80℃保存备用。SEQ ID NO：20与SEQ ID NO：21进行菌液PCR扩增(反应体系及反应条件同上)，得到4个阳性克隆，送至英潍捷基(上海)贸易有限公司测序，序列为SEQ ID NO：2，其编码的蛋白的氨基酸序列为SEQ ID NO：1。

MCSU-1蛋白的氨基酸序列：SEQ ID NO：1

GhMCSU-1编码基因的核苷酸序列：SEQ ID NO：2

实施例3 GhMCSU-1基因植物表达载体构建

选择植物双元表达载体pCAMBIA2300(购自北京鼎国昌盛生物技术有限责任公司)作为植物表达载体，用Pnos启动子替换NPTII基因含双增强子的35S启动子，以降低NPTII蛋白在植物中的表达。选择含双增强子的35S及终止子Tnos分别作为GhMCSU-1基因的启动子和终止子。

用引物SEQ ID NO：22和SEQ ID NO：23以植物表达载体pBI121(购自北京华夏远洋科技有限公司)为模板扩增Pnos，采用TaKaRa的PrimeSTAR HS DNA聚合酶。50μl PCR反应体系：10μl 5×PS Buffer，3μl 2.5mM的dNTP，1.0μl pBI121，1.0μl PrimeSTAR、10μM的引物SEQ ID NO：22和SEQ ID NO：23各2.0μl，以及31μl的双蒸水。PCR反应条件：94℃预变性5min，33个循环(94℃变性30s，56℃退火30s，72℃延伸30s)，72℃延伸10min。通过EcoRI、BglII酶切连接到pCAMBIA2300(promega，T4连接酶盒)获得pCAMBIA2300-1。

SEQ ID NO：22：

GCACGAATTCATACAAATGGACGAACGGAT

SEQ ID NO：23：

ATCCAGATCTAGATCCGGTGCAGATTATTTG

SEQ ID NO：24和SEQ ID NO：25以pBI121为模板扩增Tnos，采用TaKaRa的PrimeSTAR HS DNA聚合酶。50μl PCR反应体系：10μl 5×PS Buffer，3μl 2.5mM的dNTP，1.0μl pBI121，1.0μl PrimeSTAR、10μM的引物SEQ ID NO：24和SEQ ID NO：25各2.0μl，以及31μl的双蒸水。PCR反应条件：94℃预变性5min，33个循环(94℃变性30s，58℃退火30s，72℃延伸30s)，72℃延伸10min。通过SacI、EcoRI酶切连接到pCAMBIA2300-1(promega T4连接酶盒)获得pCAMBIA2300-2

SEQ ID NO：24：

AAGGAGCTCGAATTTCCCCGATCGTTCAAA

SEQ ID NO：25：

TCAGAATTCCCAGTGAATTCCCGATCTAGTA

SEQ ID NO：26和SEQ ID NO：27以pCAMBIA2300质粒为模板扩增35S启动子。采用TaKaRa的PrimeSTAR HS DNA聚合酶。50μl PCR反应体系：10μl 5×PS Buffer，3μl 2.5mM的dNTP，1.0μl稀释50倍的pCAMBIA2300质粒，1.0μl PrimeSTAR、10μM的引物SEQ ID NO：26和SEQ ID NO：27各2.0μl，以及31μl的双蒸水。PCR反应条件：94℃预变性5min，33个循环(94℃变性30s，50℃退火30s，72℃延伸30s)，72℃延伸10min。通过HindIII、PstI酶切连接到(连接方法同上)pCAMBIA2300-2获得pCAMBIA2300-3。

SEQ ID NO：26：

ACTAAGCTTATGGTGGAGCACGACACTCT

SEQ ID NO：27：

TGACTGCAGAGAGATAGATTTGTAGAGAGAGAC

SEQ ID NO：28和SEQ ID NO：29扩增GhMCSU-1(模板是实施例2所获得的阳性GhMCSU-1-pGEM质粒)，采用stratagene的PfuUltra II Fusion HS DNA Polymerase。50μlPCR反应体系：5μl 10×PfuUltra II reaction Buffer，0.5μl 25mM的dNTP，2.0μlGhMCSU-1-pGEM质粒，1.0μl PfuUltra II Fusion HS DNA Polymerase、10μM的引物SEQ IDNO：28和SEQ ID NO：29各2.0μl，以及37.5μl的双蒸水。PCR反应条件：95℃预变性2min，35个循环(95℃变性25s，56℃退火30s，72℃延伸1min30s)，72℃延伸5min。通过BamHI、SacI酶切连接到(连接方法同上)pCAMBIA2300-3，获得植物表达载体35S-GhMCSU-1-2300。

SEQ ID NO：28：

TGAGGATCCATGGACGGCAAGGAAGAG

SEQ ID NO：29：

AAGGAGCTCCACCTGTTATTCCGAATTTGA

实施例4 35S-GhMCSU-1-2300表达载体转化农杆菌

农杆菌LBA4404(购自Biovector Science Lab，Inc)感受态细胞的制备：提前1-2天将农杆菌LBA4404在含50μg/ml利福平和50μg/ml链霉素的LB固体培养基上划单斑接种，28℃培养1至2天。挑取单菌落接种于5ml含50μg/ml利福平和50μg/ml链霉素的LB液体培养基中，28℃下摇动培养过夜(约12-16h)至OD₆₀₀值为0.4，形成种子菌液。取5ml活化后的菌液(1∶20的比例)接种于100ml同样浓度抗生素的LB液体培养基中，28℃摇动培养2-2.5h至OD₆₀₀＝0.8。冰浴菌液10min，每隔3min摇匀一次，令细菌均匀进入休眠状态。于4℃下4000g离心10min，弃上清液；加入一定量冰预冷10％甘油重悬浮菌体，4℃下4000g离心10min，收集沉淀；用冰预冷的10％甘油重复洗3-4次；加入适量冰浴预冷的10％甘油重新悬浮细菌沉淀，以40μl/管将其分装，于-70℃保存备用。

转化农杆菌：在冰上融化感受态细胞，往40μl的感受态细胞中加入1μl实施例3中所得的阳性35S-GhMCSU-1-2300质粒，混匀后冰浴约10min。将所述感受态细胞和质粒DNA的混合物用移液枪转移到冰预冷的电击杯中，轻敲使悬浮液到达底部，注意不要有气泡。将电击杯(购自bio-rad)放到电击室的滑道上，推动滑道将电击杯放至电击室基座电极处。使用0.1cm规格的电击杯，MicroPuMUer(购自bio-rad)的程序设置为“Agr”，电击一次。立即取出电击杯，加入28℃预热的LB培养基。快速而轻柔的用枪将细胞打匀。将悬浮液转入1.5ml的离心管，28℃，225rpm培养1h。取100-200μl的菌液涂布于相应的抗性筛选培养基平板上(LB固体培养基，含50μg/ml利福平、50μg/ml链霉素、50μg/ml卡那霉素)，28℃培养。筛选阳性转化克隆，并将其菌液于-70℃保存备用。

实施例5利用农杆菌介导的转化法获得转基因拟南芥

待转化植株培养：拟南芥种子(哥伦比亚型，来自美国俄亥俄州立大学的拟南芥生物资源中心)播种在泥炭土中，经4℃低温处理3天后，置于23℃、16h光照/8h黑暗的培养箱中发芽。7-10天后移栽到装有泥炭土和蛭石(体积比3∶1)的口径为7.5cm的塑料钵中，每钵栽种7株，置于23℃、16h光照/8h黑暗的培养箱中生长。移栽前每钵浇营养液40ml，移栽后视土壤湿度及时补充水分。在生长期间适当浇灌营养液。按需要每3-4周一次(或者时间更长)。为了在每个植株上得到较多的花芽，当大多数植株第一个花序形成后剪去第一个花序，解除顶端优势，促使多个次生花序的同步出现。当大多数花序约1-10cm高(剪去第一个花序后4-8d)时准备浸染。

农杆菌的培养：取出实施例4中保种的农杆菌阳性转化克隆的菌液活化后，挑取农杆菌单菌落接种到10mL无菌LB液体培养基中(含75mg/L利福平、100mg/L链霉素和100mg/L卡那霉素)，28℃恒温下250r/min振摇过夜培养。再将所得到的菌液按1％-2％接种到200mL同样含上述抗生素的LB液体培养基中，28℃恒温振摇使农杆菌的浓度达到OD₆₀₀＝1.8，然后在4℃下3000r/min离心15min，弃去上清液后用浸染培养基(该浸染培养基含有5.0％的蔗糖和0.05％(500μL/L)的Silwet L-77)重新悬浮农杆菌，悬浮至OD₆₀₀约0.80。

花序的浸染：将上述含农杆菌的浸染培养基加入大口容器中，每个口径9cm的容器中加入200-300mL所述含农杆菌的浸染培养基用于浸染。将植株倒转，使地上组织全部浸没在农杆菌悬浮液中3-5s，并要轻轻搅动。浸染后植株上应该有一层液体膜。浸染过的植株放在塑料盘中，用干净的塑料或保鲜膜覆盖以保湿，然后放置在弱光或暗处过夜，注意小心防止阳光直射植株。处理后约12-24h去掉覆盖。正常培养植株，植株进一步生长3-5周，直至角果变褐变干。收获种子，并将种子用离心管在4℃下干燥贮存。

转基因种子筛选：配制含1/4MS大量元素的水溶液，加入0.8％琼脂粉，用微波炉加热至琼脂完全溶化，待冷却到50℃左右，加入所需量的终浓度为50mg·L^-1的卡那霉素，摇匀后每培养皿倒25mL，置实验台冷却凝固后即可播种。把称量好的种子倒在一张普通复印纸上，用手指轻敲复印纸，将种子均匀地播种在水琼脂胶上，盖上培养皿盖，置4℃冰箱冷处理72h后，移至23℃、16h光照/8h黑暗的培养箱中发芽，定期统计种子发芽和幼苗生长情况，将抗性幼苗及时移栽到营养土中。移栽后视土壤湿度及时补充水分。在生长期间适当浇灌营养液。取生长20天的拟南芥叶片0.1g，提取DNA，用SEQ ID NO：28和SEQ ID NO：29扩增GhMCSU-1：(50μl PCR反应体系：5μl 10×Ex Buffer，3μl 2.5mM的dNTP，2.0μl DNA，1.0μlEx Taq、10μM的引物SEQ ID NO：28和SEQ ID NO：29各2.0μl，以及35μl的双蒸水。PCR反应条件：94℃预变性5min，33个循环(94℃变性30s，56℃退火30s，72℃延伸2min)，72℃延伸10min)，将PCR鉴定为阳性的植株进行编号(T1A1-T1A15)，并保存。

实施例6过表达GhMCSU-1的转基因拟南芥T1代植株的耐旱模拟实验及功能鉴定

灭过菌的蛭石用1/2MS培养基浸透。T1A1-T1A6及对照拟南芥种子分别播种在蛭石上，每盆播种10颗种子，25℃、10小时光培养/14小时暗培养循环，每7天浇一次1/2MS，培养20天之后，每盆保留大小较一致的4棵苗，用于干旱实验。转基因拟南芥、对照拟南芥干旱14天(不浇水)，25℃、10小时光培养/14小时暗培养循环。T1代转基因植株(T0代转基因植株的种子长成的植株)的抗旱性鉴定表明，对照植株都萎蔫严重，而T1A1、T1A2、T1A3、T1A4、T1A5、T1A6六个株系共24棵(每株系各4棵)拟南芥中有22棵能够存活并继续生长显现出明显的耐旱性(参见图3a和3b，以T1A1、T1A3为例，T1A2、T1A4、T1A5、T1A6的结果与T1A1、T1A3类似，在此未示出)。

实施例7干旱胁迫后ABA变化的测定

ABA是与逆境胁迫相关的一种植物激素，可以作为信号分子调控多个逆境诱导基因的表达，从而提高植物的抗逆能力。我们取干旱胁迫10天和正常生长条件下的转基因植株(T1A1、T1A2、T1A3、T1A4、T1A5、T1A6)及对照植株(CK1、CK2)叶片各0.2g左右，用中国农业大学作物化控研究中心制备的试剂盒测定ABA含量(见图4)。实验结果表明，无论干旱处理还是对照条件下，转基因植株的ABA含量均高于对照(CK1、CK2)，证明GhMCSU-1基因可以正调控植物内源的ABA含量。

实施例8在转录水平上验证GhMCSU-1蛋白表达

分别取对照拟南芥植株、不耐旱转基因拟南芥T1代植株、耐旱转基因拟南芥T1代植株(分别属于T1A1、T1A2、T1A3、T1A4、T1A5、T1A6六个株系)的干旱10天的叶片各0.05g，用植物RNA提取试剂盒(invitrogen)提取的总RNA。用HITACHI公司的紫外分光光度计U-2001测定总RNA在260nm和280nm的吸光度值，计算各个RNA浓度。依照invitrogen反转录试剂盒SuperScript III Reverse Transcriptase所示方法进行反转录(2μg总RNA作为模板，反转录引物SEQ ID NO：6)。通过SEQ ID NO：28和SEQ ID NO：29扩增GhMCSU-1，检测MCSU-1蛋白相对表达情况。

采用TaKaRa的PrimeSTAR HS DNA聚合酶，以反转录的cDNA为模板进行PCR反应。50μl PCR反应体系：10μl 5×PS Buffer，3μl 2.5mM的dNTP，2.0μl cDNA，1.0μl PrimeSTAR、10μM的引物SEQ ID NO：28和SEQ ID NO：29各2.0μl，以及30μl的双蒸水。PCR反应条件：94℃预变性5min，29个循环(94℃变性30s，56℃退火30s，72℃延伸2min)，72℃延伸10min。

产物电泳结果如图5所示：M1为DNA Ladder Marker(Lambda DNA/EcoR I+HindIII Marker，Fermentas)、M2为DNA Ladder Marker(DL2000，TakaRa)；1-5为不耐旱转基因拟南芥T1代植株；6-9为对照非转基因的拟南芥；10-15为耐旱转基因拟南芥T1代植株(分别属于上述六个株系)。图中所示PCR产物电泳条带大小与GhMCSU-1的大小一致(约2.4Kbp)。结果表明，对照拟南芥没有GhMCSU-1转录，耐旱转基因拟南芥T1代植株中GhMCSU-1的转录较强，不耐旱转基因拟南芥T1代植株中没有GhMCSU-1转录或转录很弱。

Claims

1.一种重组表达载体，其含有棉花的一个钼辅酶因子硫化酶编码基因并且所述基因的核苷酸序列与所述表达载体的表达控制序列可操作地连接，所述基因序列为SEQ ID NO:2。

2.权利要求1所述的载体，其为附图2所示的35S-GhMCSU-l-2300载体。

3.一种重组细胞，其含有权利要求1或2所述的重组表达载体，所述重组细胞为重组农杆菌细胞。

4.一种改善植物耐旱性的方法，包括：将权利要求1或2所述的重组表达载体导入植物或植物组织并使所述基因表达。

5.权利要求4的方法，所述植物是拟南芥。

6.一种制备转基因植物的方法，包括：在有效产生植物的条件下培养含有权利要求1或2所述的重组表达载体的植物或植物组织，所述基因序列为SEQ ID NO: 2。

7.权利要求6所述的方法，其中所述植物是拟南芥。

8.权利要求1或2所述的重组表达载体或者权利要求3所述的重组细胞用于改善植物耐旱性以及用于植物育种的用途。

9.权利要求8所述的用途，其中所述植物是拟南芥。