CN104711244A - 以酪蛋白水解物为氮源发酵生产青霉素g酰化酶的方法 - Google Patents

以酪蛋白水解物为氮源发酵生产青霉素g酰化酶的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN104711244A
CN104711244A CN201510150866.5A CN201510150866A CN104711244A CN 104711244 A CN104711244 A CN 104711244A CN 201510150866 A CN201510150866 A CN 201510150866A CN 104711244 A CN104711244 A CN 104711244A
Authority
CN
China
Prior art keywords
penicillin
enzyme
acylase
bacillus cereus
liquid
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN201510150866.5A
Other languages
English (en)
Inventor
马志安
邵威平
杨富民
李国峰
张永玲
郭临生
颜丽
吴卓颖
杨敏
张忠明
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
LINXIA HUAAN BIOLOGICAL PRODUCTS Ltd Co
Original Assignee
LINXIA HUAAN BIOLOGICAL PRODUCTS Ltd Co
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by LINXIA HUAAN BIOLOGICAL PRODUCTS Ltd Co filed Critical LINXIA HUAAN BIOLOGICAL PRODUCTS Ltd Co
Priority to CN201510150866.5A priority Critical patent/CN104711244A/zh
Publication of CN104711244A publication Critical patent/CN104711244A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N13/00Treatment of microorganisms or enzymes with electrical or wave energy, e.g. magnetism, sonic waves
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/01Preparation of mutants without inserting foreign genetic material therein; Screening processes therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/78Hydrolases (3) acting on carbon to nitrogen bonds other than peptide bonds (3.5)
    • C12N9/80Hydrolases (3) acting on carbon to nitrogen bonds other than peptide bonds (3.5) acting on amide bonds in linear amides (3.5.1)
    • C12N9/84Penicillin amidase (3.5.1.11)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y305/00Hydrolases acting on carbon-nitrogen bonds, other than peptide bonds (3.5)
    • C12Y305/01Hydrolases acting on carbon-nitrogen bonds, other than peptide bonds (3.5) in linear amides (3.5.1)
    • C12Y305/01011Penicillin amidase (3.5.1.11), i.e. penicillin-amidohydrolase

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

本发明涉及一种以酪蛋白水解物为氮源发酵生产青霉素G酰化酶的方法,该方法包括以下步骤:⑴配制装有斜面培养基的试管和装有斜面培养基的平皿;⑵无菌条件下在装有斜面培养基的试管中的斜面培养基上接种蜡状芽孢杆菌21090,经恒温培养得到活化的菌株;⑶制备细胞浓度为108个/mL的菌悬液;⑷紫外诱变选育高产青霉素G酰化酶的突变株;⑸以酪蛋白水解物等制备蜡状芽孢杆菌突变株发酵培养基;⑹青霉素G酰化酶发酵后得到发酵醪液;⑺发酵醪液预处理与酶液浓缩后得到浓缩酶液;⑻制备青霉素G酰化酶液体酶制剂;⑼制备青霉素G酰化酶固体酶粉:在PGA液体酶制剂中依次加入可溶性淀粉、氯化钠、甘油,混合均匀后经喷雾干燥即得PGA酶粉。本发明成本低、产量高。

Description

以酪蛋白水解物为氮源发酵生产青霉素G酰化酶的方法
技术领域
本发明涉及一种青霉素酰化酶的生产方法,尤其涉及以酪蛋白水解物为氮源发酵生产青霉素G酰化酶的方法。
背景技术
青霉素G酰化酶(PGA)是重要的工业用酶,广泛用于催化青霉素G生成6-氨基青霉烷酸(6-APA)和催化头孢霉素G生成7-氨基脱乙酰氧基头孢烷酸(7-ADCA)。6-APA和7-ADCA是抗生素工业上生产半合成青霉素类抗生素和头孢霉素类抗生素的重要原料。
目前,青霉素G酰化酶年需求超过800吨,并且每年大约以10%左右的速度增长,而国内市场上销售的高活力青霉素G酰化酶制剂仍多数依赖于进口。我国自20世纪80年代开始青霉素G酰化酶的研究,主要集中在产青霉素G酰化酶工程菌的构建、青霉素G酰化酶酶分子特性和底物特异性研究、青霉素G酰化酶的分离纯化等方面。发酵生产青霉素G酰化酶虽已初步实现工业化,但产酶菌的产酶活性、工程菌的稳定性、生产工艺技术仍有待于提高。一方面,构建基因工程菌工作复杂而繁琐,所构建的菌株遗传稳定性较差。另一方面,目前国内外用于产青霉素G酰化酶的发酵培养基中的氮源主要为蛋白胨、牛肉膏、酵母膏等,来源有限且成本昂贵,不能够满足大规模工业化生产的需要。因此,获得高产青霉素G酰化酶生产菌株并提高其遗传稳定性,以及降低发酵培养基的生产成本,是国内青霉素G酰化酶工业化生产面临的最大挑战。
酪蛋白是西北藏区牦牛乳中含量最高的蛋白质,由α、β、γ和κ酪蛋白组成。利用酸水解技术制得的酪蛋白水解物,不但成本低,而且可发酵性含氮物质种类多、含量丰富,可作为食品原料或微生物培养基使用。酪蛋白水解物对菌体的生长及产酶能力具有一定的促进作用,是发酵生产青霉素G酰化酶的理想的培养基氮源。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是提供一种成本低、产量高的以酪蛋白水解物为氮源发酵生产青霉素G酰化酶的方法。
为解决上述问题,本发明所述的以酪蛋白水解物为氮源发酵生产青霉素G酰化酶的方法,包括以下步骤:
⑴配制斜面培养基:
将5g酵母粉、10g蛋白胨、10g氯化钠、15g琼脂与1L蒸馏水混合,采用质量浓度为10%~20%的氢氧化钠溶液调pH值至7.0,分别装/倒入20ml试管和直径6cm平皿中,在高压蒸汽灭菌锅中维持1kg(f)/cm2灭菌30min,然后取出,自然冷却凝固,即分别得到装有斜面培养基的试管和装有斜面培养基的平皿;
⑵以蜡状芽孢杆菌 (Bacillus cereus) 21090作为出发菌株,无菌条件下在所述装有斜面培养基的试管中的斜面培养基上接种所述蜡状芽孢杆菌(Bacillus cereus) 21090,置于30℃恒温培养箱中培养48h,得到活化的菌株;
⑶制备蜡状芽孢杆菌(Bacillus cereus) 21090菌悬液:
将5支所述活化的菌株,分别用10ml无菌生理盐水将菌苔洗下,并倒入盛有玻璃珠的小三角瓶中,振荡30min以打碎菌块;然后在3000r/min条件下离心15min,弃去上清液,得到菌体;将该菌体用无菌生理盐水洗涤2~3次,制成细胞浓度为108个/mL的菌悬液;
⑷紫外诱变选育高产青霉素G酰化酶的突变株:
打开15 W紫外线灯开关,预热15~25min;同时,在2套所述装有斜面培养基的平皿中分别加入所述菌悬液5mL,并放入无菌搅拌棒,置于磁力搅拌器上,然后在室温条件下距离紫外灯下30cm搅拌照射15min;最后,经筛选获得一株产青霉素G酰化酶酶活力为352U/L的突变株;
⑸制备蜡状芽孢杆菌突变株发酵培养基:
将16.2g酪蛋白水解物、6.8g牛肉膏、7g葡萄糖、18g苯乙酸、6g氯化钠、0.4 g氯化镁、0.005g氯化铁溶解于1L pH值为7.0的磷酸盐缓冲溶液中,然后在1kg(f)/cm2压强下灭菌30min,经自然冷却至30℃后,即得蜡状芽孢杆菌突变株发酵培养基;
⑹青霉素G酰化酶的发酵生产:
在250ml三角瓶中装入60ml所述蜡状芽孢杆菌突变株发酵培养基,然后置于恒温振荡器上,在30℃下以220 r/min的转速恒温振荡培养72h,得到青霉素G酰化酶酶活力为408U/L的发酵醪液;
⑺发酵醪液预处理与酶液浓缩:
在所述发酵醪液中按其体积的0.05%加入絮凝剂聚丙烯酰胺,搅拌均匀后,再按所述发酵醪液体积的0.01%的加入葡聚糖,继续搅拌,静置1h,在3000r/min条件下离心2 次,每次15min,得到澄清酶液;所述澄清酶液在温度为35℃、真空度为- 100~-90kPa的条件下,经薄膜浓缩50~60min后,得到浓缩酶液;
⑻制备青霉素G酰化酶液体酶制剂:
往所述浓缩酶液中边搅拌边加入研细的固体硫酸铵,当其饱和度为50%时,以8000 r/min的速率离心10 min去除杂蛋白,得到上清液;然后再往所述上清液中继续加入所述研细的固体硫酸铵,当其饱和度为70%时,完全沉淀青霉素G酰化酶,得到沉淀物;将所述沉淀物按5%的比例溶解于pH值为7.0的磷酸盐缓冲液中,随后经孔径为0.01μm的超滤膜处理,脱去硫酸铵,得到酶活力达到13U/ml 的青霉素G酰化酶液体酶制剂;
⑼制备青霉素G酰化酶固体酶粉:
在所述青霉素G酰化酶液体酶制剂中依次加入其体积12%的可溶性淀粉、10%的氯化钠、5%的甘油,混合均匀后经喷雾干燥即得青霉素G酰化酶固体酶粉。
所述步骤⑺中的薄膜规格为0.2μm。
所述步骤⑼中喷雾干燥的条件是指热风进口温度135℃、热风流量5 m3/min、出口温度60℃、进料速度160ml/h、雾化器压力0.4MPa。
本发明与现有技术相比具有以下优点:
1、本发明充分利用牦牛乳酸水解酪蛋白的优良特性,通过紫外诱变选育出一株高产青霉素G酰化酶的突变菌株,以酪蛋白水解液作为培养基的主要氮源,确定了培养基配方、发酵工艺参数和酶制剂制备工艺方法,在降低生产成本的情况下有效提高了产量。
2、本发明所得产品为类白色固体颗粒,无结块、无潮解现象,无异味,有特殊发酵气味。经理化检测,本发明所得产品符合技术指标要求(参见表1)。
表1  PGA的理化与卫生指标检测结果
3、采用本发明后,可显著增加酪蛋白的附加值,增加农牧民收入,同时也增加了青霉素G酰化酶的产品种类和数量,减少了进口,节约了外汇。另外,本发明为甘肃省特色资源酪蛋白的进一步开发利用开辟了一条新的途径,延伸了酪蛋白产业链,可有效带动农牧民增收,降低青霉素G酰化酶生产成本,提高企业经济效益。
具体实施方式
以酪蛋白水解物为氮源发酵生产青霉素G酰化酶的方法,包括以下步骤:
⑴配制斜面培养基:
将5g酵母粉、10g蛋白胨、10g氯化钠、15g琼脂与1L蒸馏水混合,采用质量浓度为10%~20%的氢氧化钠溶液调pH值至7.0,分别装/倒入20ml试管和直径6cm平皿中,在高压蒸汽灭菌锅中维持1kg(f)/cm2灭菌30min,然后取出,自然冷却凝固,即分别得到装有斜面培养基的试管和装有斜面培养基的平皿。
⑵以蜡状芽孢杆菌 (Bacillus cereus) 21090作为出发菌株,无菌条件下在装有斜面培养基的试管中的斜面培养基上接种蜡状芽孢杆菌(Bacillus cereus) 21090,置于30℃恒温培养箱中培养48h,得到活化的菌株。
其中:蜡状芽孢杆菌 (Bacillus cereus) 21090购自中国工业微生物菌种保藏管理中心(CICC)。
⑶制备蜡状芽孢杆菌(Bacillus cereus) 21090菌悬液:
将5支活化的菌株,分别用10ml无菌生理盐水将菌苔洗下,并倒入盛有玻璃珠的小三角瓶中,振荡30min以打碎菌块;然后在3000r/min条件下离心15min,弃去上清液,得到菌体;将该菌体用无菌生理盐水洗涤2~3次,制成细胞浓度为108个/mL的菌悬液。
⑷紫外诱变选育高产青霉素G酰化酶的突变株:
打开15 W紫外线灯开关,预热15~25min;同时,在2套装有斜面培养基的平皿中分别加入菌悬液5mL,并放入无菌搅拌棒,置于磁力搅拌器上,然后在室温条件下距离紫外灯下30cm搅拌照射15min;最后,经筛选获得一株产青霉素G酰化酶酶活力为352U/L的突变株。
⑸制备蜡状芽孢杆菌突变株发酵培养基:
将16.2g酪蛋白水解物、6.8g牛肉膏、7g葡萄糖、18g苯乙酸、6g氯化钠、0.4 g氯化镁、0.005g氯化铁溶解于1L pH值为7.0的磷酸盐缓冲溶液中,然后在1kg(f)/cm2压强下灭菌30min,经自然冷却至30℃后,即得蜡状芽孢杆菌突变株发酵培养基。
其中:酪蛋白水解物由临夏州华安生物制品有限公司提供。
⑹青霉素G酰化酶的发酵生产:
在250ml三角瓶中装入60ml蜡状芽孢杆菌突变株发酵培养基,然后置于恒温振荡器上,在30℃下以220 r/min的转速恒温振荡培养72h,得到青霉素G酰化酶酶活力为408U/L的发酵醪液。
⑺发酵醪液预处理与酶液浓缩:
在发酵醪液中按其体积的0.05%加入絮凝剂聚丙烯酰胺,搅拌均匀后,再按发酵醪液体积的0.01%的加入葡聚糖,继续搅拌,静置1h,在3000r/min条件下离心2 次,每次15min,得到澄清酶液;所述澄清酶液在温度为35℃、真空度为- 100~-90kPa的条件下,经0.2μm的薄膜浓缩50~60min后,得到浓缩酶液。
⑻制备青霉素G酰化酶液体酶制剂:
往浓缩酶液中边搅拌边加入研细的固体硫酸铵,当其饱和度为50%时,以8000 r/min的速率离心10 min去除杂蛋白,得到上清液;然后再往上清液中继续加入研细的固体硫酸铵,当其饱和度为70%时,完全沉淀青霉素G酰化酶,得到沉淀物;将沉淀物按5%的比例溶解于pH值为7.0的磷酸盐缓冲液中,随后经孔径为0.01μm的超滤膜处理,脱去硫酸铵,得到酶活力达到13U/ml 的青霉素G酰化酶液体酶制剂。
⑼制备青霉素G酰化酶固体酶粉:
在青霉素G酰化酶液体酶制剂中依次加入其体积12%的可溶性淀粉、10%的氯化钠、5%的甘油,混合均匀后,在热风进口温度135℃、热风流量5 m3/min、出口温度60℃、进料速度160ml/h、雾化器压力0.4MPa的条件下经喷雾干燥即得青霉素G酰化酶固体酶粉。

Claims (3)

1.以酪蛋白水解物为氮源发酵生产青霉素G酰化酶的方法,包括以下步骤:
⑴配制斜面培养基:
将5g酵母粉、10g蛋白胨、10g氯化钠、15g琼脂与1L蒸馏水混合,采用质量浓度为10%~20%的氢氧化钠溶液调pH值至7.0,分别装/倒入20ml试管和直径6cm平皿中,在高压蒸汽灭菌锅中维持1kg(f)/cm2灭菌30min,然后取出,自然冷却凝固,即分别得到装有斜面培养基的试管和装有斜面培养基的平皿;
⑵以蜡状芽孢杆菌21090作为出发菌株,无菌条件下在所述装有斜面培养基的试管中的斜面培养基上接种所述蜡状芽孢杆菌21090,置于30℃恒温培养箱中培养48h,得到活化的菌株;
⑶制备蜡状芽孢杆菌21090菌悬液:
将5支所述活化的菌株,分别用10ml无菌生理盐水将菌苔洗下,并倒入盛有玻璃珠的小三角瓶中,振荡30min以打碎菌块;然后在3000r/min条件下离心15min,弃去上清液,得到菌体;将该菌体用无菌生理盐水洗涤2~3次,制成细胞浓度为108个/mL的菌悬液;
⑷紫外诱变选育高产青霉素G酰化酶的突变株:
打开15 W紫外线灯开关,预热15~25min;同时,在2套所述装有斜面培养基的平皿中分别加入所述菌悬液5mL,并放入无菌搅拌棒,置于磁力搅拌器上,然后在室温条件下距离紫外灯下30cm搅拌照射15min;最后,经筛选获得一株产青霉素G酰化酶酶活力为352U/L的突变株;
⑸制备蜡状芽孢杆菌突变株发酵培养基:
将16.2g酪蛋白水解物、6.8g牛肉膏、7g葡萄糖、18g苯乙酸、6g氯化钠、0.4 g氯化镁、0.005g氯化铁溶解于1L pH值为7.0的磷酸盐缓冲溶液中,然后在1kg(f)/cm2压强下灭菌30min,经自然冷却至30℃后,即得蜡状芽孢杆菌突变株发酵培养基;
⑹青霉素G酰化酶的发酵生产:
在250ml三角瓶中装入60ml所述蜡状芽孢杆菌突变株发酵培养基,然后置于恒温振荡器上,在30℃下以220 r/min的转速恒温振荡培养72h,得到青霉素G酰化酶酶活力为408U/L的发酵醪液;
⑺发酵醪液预处理与酶液浓缩:
在所述发酵醪液中按其体积的0.05%加入絮凝剂聚丙烯酰胺,搅拌均匀后,再按所述发酵醪液体积的0.01%的加入葡聚糖,继续搅拌,静置1h,在3000r/min条件下离心2 次,每次15min,得到澄清酶液;所述澄清酶液在温度为35℃、真空度为- 100~-90kPa的条件下,经薄膜浓缩50~60min后,得到浓缩酶液;
⑻制备青霉素G酰化酶液体酶制剂:
往所述浓缩酶液中边搅拌边加入研细的固体硫酸铵,当其饱和度为50%时,以8000 r/min的速率离心10 min去除杂蛋白,得到上清液;然后再往所述上清液中继续加入所述研细的固体硫酸铵,当其饱和度为70%时,完全沉淀青霉素G酰化酶,得到沉淀物;将所述沉淀物按5%的比例溶解于pH值为7.0的磷酸盐缓冲液中,随后经孔径为0.01μm的超滤膜处理,脱去硫酸铵,得到酶活力达到13U/ml 的青霉素G酰化酶液体酶制剂;
⑼制备青霉素G酰化酶固体酶粉:
在所述青霉素G酰化酶液体酶制剂中依次加入其体积12%的可溶性淀粉、10%的氯化钠、5%的甘油,混合均匀后经喷雾干燥即得青霉素G酰化酶固体酶粉。
2.如权利要求1所述的以酪蛋白水解物为氮源发酵生产青霉素G酰化酶的方法,其特征在于:所述步骤⑺中的薄膜规格为0.2μm。
3.如权利要求1所述的以酪蛋白水解物为氮源发酵生产青霉素G酰化酶的方法,其特征在于:所述步骤⑼中喷雾干燥的条件是指热风进口温度135℃、热风流量5 m3/min、出口温度60℃、进料速度160ml/h、雾化器压力0.4MPa。
CN201510150866.5A 2015-04-01 2015-04-01 以酪蛋白水解物为氮源发酵生产青霉素g酰化酶的方法 Pending CN104711244A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201510150866.5A CN104711244A (zh) 2015-04-01 2015-04-01 以酪蛋白水解物为氮源发酵生产青霉素g酰化酶的方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201510150866.5A CN104711244A (zh) 2015-04-01 2015-04-01 以酪蛋白水解物为氮源发酵生产青霉素g酰化酶的方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN104711244A true CN104711244A (zh) 2015-06-17

Family

ID=53410962

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201510150866.5A Pending CN104711244A (zh) 2015-04-01 2015-04-01 以酪蛋白水解物为氮源发酵生产青霉素g酰化酶的方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN104711244A (zh)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN112111476A (zh) * 2019-06-21 2020-12-22 联邦制药(内蒙古)有限公司 青霉素g酰基转移酶高量产菌株选育及发酵方法

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN112111476A (zh) * 2019-06-21 2020-12-22 联邦制药(内蒙古)有限公司 青霉素g酰基转移酶高量产菌株选育及发酵方法

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN101838672B (zh) 固定化植物乳杆菌生产γ-氨基丁酸的方法
CN106635934B (zh) 一种嗜热型乳酸杆菌及人工添加该嗜热型乳酸杆菌的玉米浸泡方法
CN107488615B (zh) 一株高产脂肪酶的假单胞菌及其发酵产酶方法
Jiefeng et al. Repeated-batch cultivation of encapsulated Monascus purpureus by polyelectrolyte complex for natural pigment production
CN107267422B (zh) 睾丸酮丛毛单胞菌hhala-001及采用该菌株生产l-丙氨酸的方法
CN102329718B (zh) 多菌株固定化细胞组合物连续发酵制醋方法
CN108203710B (zh) 一种利用纯秸秆固体补料诱导里氏木霉产纤维素酶的方法及其使用的补料器
CN105671115B (zh) 一种构建微生物共培养体系产细菌纤维素的方法
John et al. Production of L (+) lactic acid from cassava starch hydrolyzate by immobilized Lactobacillus delbrueckii
CN107446904B (zh) 一种脂肪酶及其生产方法与应用
CN107245451A (zh) 裂殖壶菌wzyu011及其生产凝乳酶的方法
CN106754486A (zh) 一株高产海藻糖合酶的假单胞菌及其发酵产酶方法
CN104711244A (zh) 以酪蛋白水解物为氮源发酵生产青霉素g酰化酶的方法
CN110734903A (zh) 一种生产耐高温中性蛋白酶的方法
CN106035985A (zh) 一种混菌液态发酵黄酒加工废弃物生产单细胞蛋白的方法
CN103146769A (zh) 一种发酵制备柠檬酸的方法
CN103343151B (zh) 一种细菌纤维素薄膜的液体培养基制备方法
CN107641602B (zh) 一株产朊假丝酵母及其在发酵产蛋白中的应用
CN1524961A (zh) 微生物连续催化法生产丙烯酰胺
CN109136313A (zh) 利用密西根克雷伯氏菌合成2’-脱氧腺苷的方法
CN104673767A (zh) 一种阿魏酸酯酶的生产方法
CN106282145A (zh) 一种腺苷酸脱氨酶的液态发酵方法
CN107904189A (zh) 产酸克雷伯菌及其应用
CN106754829A (zh) 一种利用芽孢杆菌hs17发酵生产壳聚糖酶的方法及其应用
CN108728370A (zh) 一株高效产壳聚糖酶的鲑亚科肾杆菌菌株qd-01及其发酵方法和应用

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
RJ01 Rejection of invention patent application after publication
RJ01 Rejection of invention patent application after publication

Application publication date: 20150617