CN104498526A - 一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法 - Google Patents

一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN104498526A
CN104498526A CN201510010814.8A CN201510010814A CN104498526A CN 104498526 A CN104498526 A CN 104498526A CN 201510010814 A CN201510010814 A CN 201510010814A CN 104498526 A CN104498526 A CN 104498526A
Authority
CN
China
Prior art keywords
source
bacterium liquid
rhamnolipid
luminous value
carbon
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN201510010814.8A
Other languages
English (en)
Inventor
马艳玲
陈富林
罗娜
薛姝雯
李晶
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Northwest University
Original Assignee
Northwest University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Northwest University filed Critical Northwest University
Priority to CN201510010814.8A priority Critical patent/CN104498526A/zh
Publication of CN104498526A publication Critical patent/CN104498526A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法,包括以下步骤:合成鼠李糖脂产生基因rhlAB的引物,应用PCR进行基因扩增,合成rhlAB基因片段,利用基因工程剪切、拼接技术,将rhlAB基因片段连接到pMS402质粒上的lux发光基因之前,构成重组质粒,然后将上述重组质粒转入铜绿假单胞菌DN1,将重组菌株涂布于含有200mg/L-300mg/LTmp的LB固体平板上,筛选出阳性克隆,命名该菌株为rhlAB-lux菌株,挑选出阳性单克隆菌落在固体LB培养基上富集,4℃冷藏保存备用;取冷藏的rhlAB-lux菌株,过夜富集菌体;营养优化体系筛选;本发明通过多功能酶标仪测定发光值,具有高通量、筛选程序简化、快速的特点。

Description

一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法
技术领域
本发明涉及一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法。
背景技术
近年来,海洋的石油泄漏事件层出不群,给海洋和沿海环境带来了严重的污染问题,石油泄漏污染导致了大量的生物死亡,因此了解如何使用微生物降解烃类是非常重要的。尽管烃类化合物是一种相对稳定的分子,但几百万年来,随着生物的进化,烃类已可以被微生物作为唯一碳源和能源降解利用,据文献报道至今至少有175个种属的微生物可以降解利用烃类化合物。烃类物质中主要的污染物质为芳烃类,低分子量多环芳烃易被多种微生物降解利用,高分子量多环芳烃较低分子量多环芳烃难被微生物降解,然而根据最近几十年的研究,部分微生物在生长的过程中可以分泌表面活性剂,表面活性剂分子由两部分组成,一部分是疏油亲水的极性基团,另一部分是非极性基团,由疏水亲油的碳氢链组成,正是这种特殊的结构,使得表面活性剂具有良好的表/界面活性和乳化活性,能显著降低发酵液的表/界面张力,使发酵液形成胶束溶液,乳化分散烃类物质,降低原油粘度,从而增大烃类的溶解能力,特别是能增加较难溶于水的高分子量多环芳烃类物质的溶解度,从而促进微生物对烃类的摄取,提高微生物对烃类的降解。
表面活性剂的种类有很多,根据功能可划分为乳化剂和分散剂,去垢剂,起泡剂,增稠剂,破乳剂,粘黏剂及分散剂等;根据所带电荷可划分为阳离子表面活性剂,阴离子表面活性剂,非离子表面活性剂及兼性离子表面活性剂,而非离子表面活性剂与其他种类的表面活性剂相比具有更高的表面活性,其水溶液表面张力和临界胶束浓度更低,胶束聚集数更大,增溶作用更强;根据来源可划分为化学合成表面活性剂和生物表面活性剂。化学表面活性剂是人工合成的表面活性剂,这种表面活性剂生产成本较低,生产工艺成熟,在各个领域应用也较早,但化学表面活性剂难被环境中的微生物降解,很容易造成环境的二次污染,由此,生物表面活性剂应用而生。生物表面活性剂是某些微生物在生长后期合成分泌的次级代谢产物,通常由经过筛选的微生物在胞外液体培养获得,常用的生产方法有摇瓶培养,分批培养,流加培养,连续培养,混合微生物培养及酶处理。生物表面活性剂与传统化学类表面活性剂产品相比具有产品稳定性好、适用范围广、绿色环保、可生物降解、不会带来二次污染等优点。
不同种类微生物产生的生物表面活性剂种类各不相同,研究最多的是糖脂类,包括槐糖脂、海藻糖脂、鼠李糖脂、蔗糖酯等,其中鼠李糖脂因为化学结构种类多样,性能独特,应用前景广泛,已成为当前研究的重点。鼠李糖脂是由铜绿假单胞菌合成的一种重要的生物表面活性剂,是一类阴离子微生物糖脂,它的HLB(亲水亲脂平衡指数)在4-6之间,是由L-(+)-鼠李糖和β-羟基烃酸单位组成,鼠李糖脂分子也是由亲水部分和疏水部分两部分组成,因此鼠李糖脂能显著降低界面张力,或吸附在界面上形成紧密的定向排列来改变界面的亲水/亲油性能,使油/水两相得以很好的分散,形成高度稳定的乳化疏水性化合物水溶液。近年来鼠李糖脂由于其特有的生物表面活性剂的优点,已逐渐被各个领域所重视并投入使用,如鼠李糖脂可以促进石油的乳化、消除岩石上的油膜,降低岩层中的石油的粘滞度,从而能够回收一次、二次采油后残留的石油,可清洗储油罐、消除海域中的石油污染,也可应用于生物农药增加有机磷的溶解度,用于生物修复以及运用于医药领域和化妆品领域等。
鼠李糖脂作为生物表面活性剂,其市场具有很强的竞争性,已经形成商品化的产品较少,其最大潜在应用是石油工业,当降低生产成本后可以代替化学表面活性剂用于石油开采。鼠李糖脂的制备主要采用微生物发酵法,该工艺的发酵原料广泛廉价,安全经济,工艺简单,产物可完全被生物降解,对生物体和环境也无危害,然而由于起步晚,鼠李糖脂的生产发展仍存在一些问题和缺陷。从发酵工艺本身来说,生产时具有相对较高的生产成本和较低的产量,并且微生物菌株通常具有致病性或者很难大规模处理,且产生的产品都是混合物,无法达到单一产品,因此加大了下游处理成本,就发酵菌株本身来说,产品产生量较低,对培养基的要求和适应能力较弱,根据文献报道,如果限制某些发酵条件则可增加鼠李糖脂的产量,因此,如能依据此原理研究出一种快速确定铜绿假单胞菌高产鼠李糖脂的营养优化体系,将会省去很多的工作。
发明内容
为克服上述现有技术的不足,本发明的目的在于提供一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法,具有快速高效的优点,可在较短时间内确定多个影响因素,同时还可同时处理多个样品,不仅节省了大量的时间,还节省了大量的人力、物力以及降低了原材料以及实验试剂的损耗,该方法将大大减少菌种营养体系优化的工作量,为以后各种营养物质的筛选和培养基的筛选优化奠定了基础。
为实现上述目的,本发明采用的技术方案是:一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法,包括以下步骤:
1)合成鼠李糖脂产生基因rhlAB的引物,应用PCR进行基因扩增,合成rhlAB基因片段,利用基因工程剪切、拼接技术,将rhlAB基因片段连接到pMS402质粒上的lux发光基因之前,构成重组质粒,然后将上述重组质粒转入铜绿假单胞菌DN1,将重组菌株涂布于含有200mg/L-300mg/LTmp的LB固体平板上,筛选出阳性克隆,命名该菌株为rhlAB-lux菌株,挑选出阳性单克隆菌落在固体LB培养基上富集,4℃冷藏保存备用;
2)取冷藏的rhlAB-lux菌株,在含有200mg/L-300mg/LTmp(甲氧苄氨嘧啶)的LB固体培养基上活化24h,挑取单克隆,在含有100mg/L-200mg/LTmp的LB液体培养基中,pH5-7,摇床转速为170rpm-250rpm,温度为33℃-37℃,过夜富集菌体,将富集过的液体LB菌液8000rpm,4℃离心,去上清,BPLM无机盐基础培养基重悬得菌液;
3)碳源筛选:使用含有100mg/L-200mg/LTmp的BPLM无机盐培养基,添加不同的碳源,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,摇床转速为170rpm-250rpm,温度为33℃-37℃,分别在8-18h之内,50ul-150ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳碳源种类;最佳碳源为棕榈油。
4)氮源确定:依照步骤2)所述富集菌体,使用含有100mg/L-200mg/LTmp的基础BPLM培养基,添加不同的氮源,添加比例均为0.5%,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,摇床转速为170rpm-250rpm,温度为33℃-37℃,分别在8-18h之内,50ul-150ul加样于分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳氮源种类;最佳氮源为NaNO3
5)碳氮比的确定:依照步骤2)所述富集菌体,使用含有100mg/L-200mg/LTmp的基础BPLM培养基,以0.5%的添加量固定一种氮源,按碳氮比为10,20,30,40,50,60,70,80,90,100十个梯度添加不同碳源,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为33℃-37℃,摇床培养,转速为170rpm-250rpm,分别在8-18h之内,50ul-150ul加样于分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳碳氮比;最佳C/N为20;
6)磷源确定:在碳源、氮源及碳氮比确定的前体下,依照步骤2)所述步骤富集菌体,以含有100mg/L-200mg/LTmp的BPLM培养基为基础,配置不含磷源的新型培养基,设置0.03%、0.06%、0.09%、0.12%、0.15%的梯度添加不同类型的磷源,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为33℃-37℃,摇床培养,转速为170rpm-250rpm,分别在8-18h之内,50ul-150ul加样于分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳磷源种类及其浓度;最佳磷源以及磷源的最佳浓度为0.15%的KH2PO4及0.12%的NaH2PO4
7)硫源确定:在碳源、氮源、碳氮比以及磷源确定的前体下,依照步骤2)所述富集菌体,以含有100mg/L-200mg/LTmp的基础BPLM培养基为基础,配置不含硫源的新型培养基,按照0.03%、0.06%、0.09%、0.12%、0.15%的梯度添加不同硫源,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为33℃-37℃,摇床培养,转速为170rpm-250rpm,分别在8-18h之内,50ul-150ul加样于分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳硫源种类及其浓度;最佳硫源以及硫源的最佳浓度为0.06%的MgSO4
8)微量元素确定:在碳源、氮源、磷源、硫源以及碳氮比确定的前提下,依照步骤2)所述富集菌体,以含有100mg/L-200mg/LTmp的基础BPLM培养基为基础,添加或移去Cl、Fe、Mo微量元素,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为33℃-37℃,摇床培养,转速为170rpm-250rpm,分别在8-18h之内,50ul-150ul加样于分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定微量元素的种类,测定结果表明有Fe无Mo时发光值最高。
所述的无机盐培养基包括有以下组分:
磷酸盐缓冲液5.0mL;MgSO4 3.0mL,CaCl2 1.0mL,FeCl3 1.0mL,微量矿质元素 1.0mL。
所述的磷酸盐缓冲液的母液包括以下组分:K2HPO4·3H2O 25.82g/L,KH2PO4 8.7g/L,Na2HPO4·12H2O 33.4g/L,NH4Cl 5.0g。
所述的MgSO4的母液含量为22.5g/L;CaCl2的母液含量为36.4g/L;FeCl3的母液含量为0.25g/L。
所述的微量矿质元素包括以下组分:48mg/L 的Na2MoO4,42.8mg/L的ZnSO4·H2O,34.7mg/L 的(NH4)6Mo4O24·4H2O。
所述的分析板采用康宁公司3603黑色96孔的分析板。
所述的碳源包括豆油、菜籽油、甘油、葡萄糖、荧蒽、己烷、辛烷、柠檬酸钠、蔗糖、棕榈油和乳酸钠,添加比例为0.5%,所述的试剂添加量固体为W/V(质量/体积),液体为V/V(体积/体积)。
所述的氮源包括NH4Cl、NaNO3、NH4NO3、尿素(CON2H4),固体按照W/V(质量/体积)添加。
所述的磷源包括NaH2PO3、Na2HPO3、Na3PO3、KH2PO3、K2HPO3。最佳磷源以及磷源的最佳浓度为0.15%的KH2PO3及0.12%的NaH2PO3
本发明的有益效果
特定微生物分解某种有机物,从而产生目的产物的过程,即为一般的发酵过程。发酵过程中培养基的配方及配比以及培养条件的优化对目的发酵产物的积累有很大的影响,根据传统的方法,一般发酵过程的周期大约7-10天,因此依照传统的培养基优化方法,确定一套适合某种微生物生长的营养优化体系大约要90-150天。本发明利用质粒pMS402上luxBCADE基因的发光特性,通过测定发光值来监测铜绿假单胞菌DN1菌的累计量,从而监测鼠李糖脂的产生量,依据这一原理快速确定铜绿假单胞菌高产鼠李糖脂的最佳培养基配方以及配比,形成了一套营养物质快速、高通量的筛选方法。依据上述方法,可以在18-30小时内,动态检测菌体的累积量,从而监测鼠李糖脂的产生量。本方法与传统方法相比具有快速高效的优点,可在较短时间内确定多个影响因素,同时还可同时处理多个样品,不仅节省了大量的时间,还节省了大量的人力、物力以及降低了原材料以及实验试剂的损耗,该方法将大大减少菌种营养体系优化的工作量,为以后各种营养物质的筛选和培养基的筛选优化奠定了基础。
附图说明
图1为pMS402质粒图谱。
图2为以NaNO3为氮源时不同碳源的发光值比较图。
图3为以棕榈油为碳源时不同氮源的发光值比较图。
图4为棕榈油/NaNO3不同C/N发光值比较图。
图5为不同硫源发光值比较图。
图6为表面张力图。
图7为荧蒽降解气相色谱图:其中图7(a)为未降解的对照组图,图7(b)为降解72h的实验组图。
图8为NBPLM培养基原油降解曲线图示。
具体实施方式
下面结合附图及实施例对本发明作进一步详细说明。
实施例1
一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法,包括以下步骤:
1)在相关基因合成公司合成鼠李糖脂产生基因rhlAB的引物,应用PCR进行基因扩增,合成rhlAB基因片段,利用基因工程剪切、拼接技术,将rhlAB基因片段连接到pMS402质粒上的lux发光基因之前,构成重组质粒,然后将上述重组质粒转入铜绿假单胞菌DN1,将重组菌株涂布于含有300mg/LTmp的LB固体平板上,筛选出阳性克隆,命名该菌株为rhlAB-lux菌株,挑选出阳性单克隆菌落在固体LB培养基上富集,4℃冷藏保存备用;
2)取冷藏的rhlAB-lux菌株,在含有300mg/LTmp(甲氧苄氨嘧啶)的LB固体培养基上活化24h,挑取单克隆,在含有100mg/LTmp的LB液体培养基中,pH7,摇床200rpm,温度为37℃,过夜富集菌体,将富集过的液体LB菌液8000rpm,4℃离心,去上清,用BPLM无机盐培养基重悬得菌液;
3)碳源筛选:使用含有100mg/LTmp的BPLM无机盐培养基,无机盐培养基的组分为:磷酸盐缓冲液5.0mL;MgSO4 3.0mL,CaCl2 1.0mL,FeCl1.0mL,微量矿质元素 1.0mL,所述的磷酸盐缓冲液的母液由K2HPO4·3H2O 25.82g/L,KH2PO4 8.7g/L,Na2HPO4·12H2O 33.4g/L,NH4Cl 5.0g组成,所述的MgSO4的母液含量为22.5g/L;CaCl2的母液含量为36.4g/L;FeCl3的母液含量为0.25g/L,所述的微量矿质元素包括以下组分:48mg/L 的Na2MoO4,42.8mg/L 的ZnSO4·H2O,34.7mg/L 的(NH4)6Mo4O24·4H2O,添加豆油、菜籽油、甘油、葡萄糖、荧蒽、己烷、辛烷、柠檬酸钠、蔗糖、棕榈油和乳酸钠,添加比例为0.5%,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,摇床转速为200rpm,温度为37℃,分别在8h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳碳源种类;最佳碳源为棕榈油;
4)氮源确定:依照步骤2)所述富集菌体,使用含有100mg/LTmp的基础BPLM培养基,添加不同的氮源,氮源包括NH4Cl、NaNO3、NH4NO3和尿素,添加比例均为0.5%,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,摇床转速为200rpm,温度为37℃,分别在18h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳氮源种类;最佳氮源为NaNO3
5)碳氮比的确定:依照步骤2)所述富集菌体,使用含有100mg/LTmp的基础BPLM培养基,以0.5%的添加量固定NaNO3作为氮源,按碳氮比为10,20,30,40,50,60,70,80,90,100十个梯度添加不同碳源,碳源包括豆油、菜籽油、甘油、葡萄糖、荧蒽、己烷、辛烷、柠檬酸钠、蔗糖、棕榈油和乳酸钠,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为37℃,摇床培养,转速为200rpm离心,分别在14h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳碳氮比,最佳碳氮比为20;
6)磷源确定:在碳源、氮源及碳氮比确定的前体下,依照步骤2)所述步骤富集菌体,以含有100mg/L的BPLM培养基为基础,配置不含磷源的新型培养基,设置0.03%、0.06%、0.09%、0.12%、0.15%的梯度添加不同类型的磷源,磷源包括NaH2PO3、Na2HPO3、Na3PO3、KH2PO3、K2HPO3,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为37℃,摇床培养,转速为200rpm,分别在16h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳磷源种类及其浓度;最佳磷源以及磷源的最佳浓度为0.15%的KH2PO3及0.12%的NaH2PO3
7)硫源确定:在碳源、氮源、碳氮比以及磷源确定的前体下,依照步骤2)所述富集菌体,以含有100mg/LTmp的基础BPLM培养基为基础,配置不含硫源的新型培养基,按照0.03%、0.06%、0.09%、0.12%、0.15%的梯度添加不同硫源,硫源包括(NH4)2SO4及MgSO4,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为37℃,摇床培养,转速为200rpm,分别在14h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳硫源种类及其浓度;最佳硫源以及硫源的最佳浓度为0.06%的MgSO4
8)微量元素确定:在碳源、氮源、磷源、硫源以及碳氮比确定的前提下,依照步骤2)所述富集菌体,以含有100mg/LTmp的基础BPLM培养基为基础,添加或移去Cl、Fe、Mo微量元素,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为37℃,摇床培养,转速为200rpm,分别在10h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定微量元素的种类,测定结果表明有Fe无Mo时发光值最高。
实施例2
一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法,包括以下步骤:
1)在相关基因合成公司合成鼠李糖脂产生基因rhlAB的引物,应用PCR进行基因扩增,合成rhlAB基因片段,利用基因工程剪切、拼接技术,将rhlAB基因片段连接到pMS402质粒上的lux发光基因之前,构成重组质粒,然后将上述重组质粒导入铜绿假单胞菌PAO1,将重组菌株涂布于含有200mg/LTmp的LB固体平板上,筛选出阳性克隆,命名该菌株为PAO1-lux菌株,挑选出阳性单克隆菌落在固体LB培养基上富集,4℃冷藏保存备用;
2)取冷藏的PAO1-lux菌株,在含有200mg/LTmp(甲氧苄氨嘧啶)的LB固体培养基上活化24h,挑取单克隆,在含有200mg/LTmp的LB液体培养基中,pH5,摇床转速为250rpm,温度为33℃,过夜富集菌体,将富集过的液体LB菌液8000rpm,4℃离心,去上清,用BPLM无机盐培养基重悬得菌液;
3)碳源筛选:使用含有100mg/LTmp的BPLM无机盐培养基,无机盐培养基的组分为:磷酸盐缓冲液5.0mL;MgSO4 3.0mL,CaCl2 1.0mL,FeCl1.0mL,微量矿质元素 1.0mL,所述的磷酸盐缓冲液的母液由K2HPO4·3H2O 25.82g/L,KH2PO4 8.7g/L,Na2HPO4·12H2O 33.4g/L,NH4Cl 5.0g组成,所述的MgSO4的母液含量为22.5g/L;CaCl2的母液含量为36.4g/L;FeCl3的母液含量为0.25g/L,所述的微量矿质元素包括以下组分:48mg/L 的Na2MoO4,42.8mg/L 的ZnSO4·H2O,34.7mg/L 的(NH4)6Mo4O24·4H2O,添加豆油、菜籽油、甘油、葡萄糖、荧蒽、己烷、辛烷、柠檬酸钠、蔗糖、棕榈油和乳酸钠,添加比例为0.5%,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,摇床转速为200rpm,温度为37℃,分别在10h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳碳源种类;最佳碳源为葡萄糖;
4)氮源确定:依照步骤2)所述富集菌体,使用含有100mg/LTmp的基础BPLM培养基,添加不同的氮源,氮源包括NH4Cl、NaNO3、NH4NO3和尿素,添加比例均为0.5%,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,摇床转速为200rpm,温度为37℃,分别在12h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳氮源种类;最佳氮源为NaNO3
5)碳氮比的确定:依照步骤2)所述富集菌体,使用含有100mg/LTmp的基础BPLM培养基,以0.5%的添加量固定NaNO3作为氮源,按碳氮比为10,20,30,40,50,60,70,80,90,100十个梯度添加不同碳源,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为37℃,摇床培养,转速为200rpm离心,在14h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳碳氮比,最佳碳氮比为40;
6)磷源确定:在碳源、氮源及碳氮比确定的前体下,依照步骤2)所述步骤富集菌体,以含有100mg/L的BPLM培养基为基础,配置不含磷源的新型培养基,设置0.03%、0.06%、0.09%、0.12%、0.15%的梯度添加不同类型的磷源,磷源包括NaH2PO3、Na2HPO3、Na3PO3、KH2PO3、K2HPO3,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为37℃,摇床培养,转速为200rpm,分别在10h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳磷源种类及其浓度;最佳磷源以及磷源的最佳浓度为0.09%的KH2PO3及0.15%的NaH2PO3
7)硫源确定:在碳源、氮源、碳氮比以及磷源确定的前体下,依照步骤2)所述富集菌体,以含有100mg/LTmp的基础BPLM培养基为基础,配置不含硫源的新型培养基,按照0.03%、0.06%、0.09%、0.12%、0.15%的梯度添加不同硫源,硫源包括(NH4)2SO4及MgSO4,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为37℃,摇床培养,转速为200rpm,分别在12h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳硫源种类及其浓度;最佳硫源以及硫源的最佳浓度为0.09%的MgSO4
8)微量元素确定:在碳源、氮源、磷源、硫源以及碳氮比确定的前提下,依照步骤2)所述富集菌体,以含有100mg/LTmp的基础BPLM培养基为基础,添加或移去Cl、Fe、Mo微量元素,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为37℃,摇床培养,转速为200rpm,分别在16h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定微量元素的种类;测定结果表明有Fe无Mo时发光值最高。
表面张力的测定:
使用上述已确定成分及配比的最优BPLM培养基,按照第二步a项所述方法富集菌体,菌液添加量为1%,33℃-37℃,170rpm-250rpm,摇床培养,分别在10h-22h之间,利用表面张力仪,每隔2h测定溶液的表面张力。结果显示随着时间的变化,表面张力呈现先降后升的趋势,最低表面张力可达到21N/m。
原油降解实验:
使用100ml优化培养基,加入5%的原油,按照步骤2)所述方法富集菌体,接入菌液,33℃-37℃,170rpm-250rpm,摇床培养,在不同时间观察原油的乳化及降解情况。结果表明,降解72h后,相比于M9培养基,NB培养基中培养发酵液对原油有明显的乳化和沉降现象。
荧蒽降解实验:
使用100ml优化培养基,加入150mg/L-200mg/L的荧蒽,按照步骤2)所述方法富集菌体,接入菌液,33℃-37℃,170rpm-250rpm,摇床培养,每隔24h利用紫外分光光度计测定荧蒽的降解量,并计算其降解率,同时将提取液进行气相色谱测定。紫外分光光度计测定降解率的测定结果表明,与荧蒽的初始加入量相比,第72小时时荧蒽降解了63.5%;气相色谱图像结果表明,与对照组相比,第72h的峰值明显比对照组低。
鼠李糖脂的提取
使用100ml优化培养基,按照步骤2)所述方法富集菌体,接入菌液,33℃-37℃,170rpm-250rpm,摇床培养7-10天,用硫酸-蒽酮显色法测定鼠李糖脂的含量,用甲醇-氯仿萃取法提取鼠李糖脂,并通过质量差计算提出的鼠李糖脂的含量。硫酸-蒽酮显色法及甲醇-氯仿提取法结果同时表明第九天时发酵液内鼠李糖脂含量达到17.6g/L。
参见图1,图1为本实验所用质粒pMS402,图中该质粒上含有luxCDABE发光基因,BamH1Xho1酶切位点。pMS402质粒:ori1及ori2为复制起始位点;Terminator为终止子;BamH1及Xho1为限制性酶切位点;luxCDABE为发光报道基因;dhfRⅡ为Tmp(甲氧苄氨嘧啶)抗性基因,Kan为卡那霉素抗性基因。图中粗箭头表示多克隆位点MCS,用于外源基因的插入,箭头方向表示外源基因转录的方向,由启动子指向终止子。
参见图2,图2为NaNO3为固定氮源时不同碳源的发光值比较图示,以NaNO3为氮源,棕榈油为碳源时发光值最高,因此最佳碳源为棕榈油。
参见图3,图3为棕榈油作为固定碳源时不同氮源的发光值比较图,以棕榈油为碳源,NaNO3为氮源时发光值最高,因此最佳氮源为NaNO3
参见图4,图4为棕榈油为碳源,NaNO3为氮源时,不同碳氮比的发光值比较图,当棕榈油/NaNO3的C/N为20时,发光值最高,因此最佳碳氮比为20。
参见图5,图5为不同硫源的发光值比较图,M0.03为添加浓度为0.03%的MgSO4,依此类推,N0.03为添加浓度为0.03%的(NH4)2SO4,依此类推,如上图所示,当添加0.06%的MgSO4或0.03%的(NH4)2SO4时发光值最高,因此最佳硫源为0.06%的MgSO4或0.03%的(NH4)2SO4
参见图6,图6为NBPLM培养基表面张力变化图,以优化的BPLM培养基为基础培养基,铜绿假单胞菌DN1为研究菌株,10-34小时内表面张力的变化图示,图示中NB表示优化的BPLM培养基,DZ表示无菌对照,图示表明,与对照组相比,实验组的表面张力有明显的降低。
参见图7,图7 荧蒽降解气相色谱图,图7(a)为未降解的对照组,图7(b)为降解72h的实验组,如图标注所示,与对照组相比,在11.445分钟时荧蒽的最高峰已基本完全降解。
参见图8,图8为NBPLM培养基原油降解曲线图示,如图所示,摇床培养14天后原油降解率达到95.7%。

Claims (10)

1.一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法,其特征在于,包括以下步骤:
1)合成鼠李糖脂产生基因rhlAB的引物,应用PCR进行基因扩增,合成rhlAB基因片段,利用基因工程剪切、拼接技术,将rhlAB基因片段连接到pMS402质粒上的lux发光基因之前,构成重组质粒,然后将上述重组质粒转入铜绿假单胞菌DN1,将重组菌株涂布于含有200mg/L-300mg/LTmp的LB固体平板上,筛选出阳性克隆,命名该菌株为rhlAB-lux菌株,挑选出阳性单克隆菌落在固体LB培养基上富集,4℃冷藏保存备用;
2)取冷藏的rhlAB-lux菌株,在含有200mg/L-300mg/LTmp(甲氧苄氨嘧啶)的LB固体培养基上活化24h,挑取单克隆,在含有100mg/L-200mg/LTmp的LB液体培养基中,pH5-7,摇床转速为170rpm-250rpm,温度为33℃-37℃,过夜富集菌体,将富集过的液体LB菌液8000rpm,4℃离心,去上清,BPLM无机盐基础培养基重悬得菌液;
3)碳源筛选:使用含有100mg/L-200mg/LTmp的BPLM无机盐培养基,添加不同的碳源,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,摇床转速为170rpm-250rpm,温度为33℃-37℃,分别在8-18h之内,50ul-150ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳碳源种类;最佳碳源为棕榈油;
4)氮源确定:依照步骤2)所述富集菌体,使用含有100mg/L-200mg/LTmp的基础BPLM培养基,添加不同的氮源,添加比例均为0.5%,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,摇床转速为170rpm-250rpm,温度为33℃-37℃,分别在8-18h之内,50ul-150ul加样于分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳氮源种类;最佳氮源为NaNO3
5)碳氮比的确定:依照步骤2)所述富集菌体,使用含有100mg/L-200mg/LTmp的基础BPLM培养基,以0.5%的添加量固定一种氮源,按碳氮比为10,20,30,40,50,60,70,80,90,100十个梯度添加不同碳源,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为33℃-37℃,摇床培养,转速为170rpm-250rpm,分别在8-18h之内,50ul-150ul加样于分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳碳氮比;最佳C/N为20;
6)磷源确定:在碳源、氮源及碳氮比确定的前体下,依照步骤2)所述步骤富集菌体,以含有100mg/L-200mg/LTmp的BPLM培养基为基础,配置不含磷源的新型培养基,设置0.03%、0.06%、0.09%、0.12%、0.15%的梯度添加不同类型的磷源,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为33℃-37℃,摇床培养,转速为170rpm-250rpm,分别在8-18h之内,50ul-150ul加样于分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳磷源种类及其浓度;最佳磷源以及磷源的最佳浓度为0.15%的KH2PO4及0.12%的NaH2PO4
7)硫源确定:在碳源、氮源、碳氮比以及磷源确定的前体下,依照步骤2)所述富集菌体,以含有100mg/L-200mg/LTmp的基础BPLM培养基为基础,配置不含硫源的新型培养基,按照0.03%、0.06%、0.09%、0.12%、0.15%的梯度添加不同硫源,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为33℃-37℃,摇床培养,转速为170rpm-250rpm,分别在8-18h之内,50ul-150ul加样于分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳硫源种类及其浓度;最佳硫源以及硫源的最佳浓度为0.06%的MgSO4
8)微量元素确定:在碳源、氮源、磷源、硫源以及碳氮比确定的前提下,依照步骤2)所述富集菌体,以含有100mg/L-200mg/LTmp的基础BPLM培养基为基础,添加或移去Cl、Fe、Mo微量元素,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为33℃-37℃,摇床培养,转速为170rpm-250rpm,分别在8-18h之内,50ul-150ul加样于分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定微量元素的种类,测定结果表明有Fe无Mo时发光值最高。
2.根据权利要求1所述的一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法,其特征在于,所述的无机盐培养基包括有以下组分:磷酸盐缓冲液5.0mL;MgSO4 3.0mL,CaCl2 1.0mL,FeCl3 1.0mL,微量矿质元素1.0mL。
3.根据权利要求1所述的一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法,其特征在于,所述的磷酸盐缓冲液的母液包括以下组分:K2HPO4·3H2O 25.82g/L,KH2PO4 8.7g/L,Na2HPO4·12H2O 33.4g/L,NH4Cl 5.0g。
4.根据权利要求1所述的一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法,其特征在于,所述的MgSO4的母液含量为22.5g/L;CaCl2的母液含量为36.4g/L;FeCl3的母液含量为0.25g/L。
5.根据权利要求1所述的一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法,其特征在于,所述的微量矿质元素包括以下组分:48mg/L 的Na2MoO4,42.8mg/L的ZnSO4·H2O,34.7mg/L 的(NH4)6Mo4O24·4H2O。
6.根据权利要求1所述的一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法,其特征在于,所述的分析板采用康宁公司3603黑色96孔的分析板。
7.根据权利要求1所述的一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法,其特征在于,所述的碳源包括豆油、菜籽油、甘油、葡萄糖、荧蒽、己烷、辛烷、柠檬酸钠、蔗糖、棕榈油和乳酸钠,其添加比例为0.5%,固体按照W/V(质量/体积)添加,液体按照V/V(体积/体积)添加。
8.根据权利要求1所述的一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法,其特征在于,所述的氮源为氯化铵、硝酸钠、硝酸铵和尿素,其添加比例为0.5%,固体按照W/V(质量/体积)添加。
9.根据权利要求1所述的一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法,其特征在于,包括以下步骤:
1)在相关基因合成公司合成鼠李糖脂产生基因rhlAB的引物,应用PCR进行基因扩增,合成rhlAB基因片段,利用基因工程剪切、拼接技术,将rhlAB基因片段连接到pMS402质粒上的lux发光基因之前,构成重组质粒,然后将上述重组质粒转入铜绿假单胞菌DN1,将重组菌株涂布于含有300mg/LTmp的LB固体平板上,筛选出阳性克隆,命名该菌株为rhlAB-lux菌株,挑选出阳性单克隆菌落在固体LB培养基上富集,4℃冷藏保存备用;
2)取冷藏的rhlAB-lux菌株,在含有300mg/LTmp(甲氧苄氨嘧啶)的LB固体培养基上活化24h,挑取单克隆,在含有100mg/LTmp的LB液体培养基中,pH7,摇床200rpm,温度为37℃,过夜富集菌体,将富集过的液体LB菌液8000rpm,4℃离心,去上清,用BPLM无机盐培养基重悬得菌液;
3)碳源筛选:使用含有100mg/LTmp的BPLM无机盐培养基,无机盐培养基的组分为:磷酸盐缓冲液5.0mL;MgSO4 3.0mL,CaCl2 1.0mL,FeCl1.0mL,微量矿质元素 1.0mL,所述的磷酸盐缓冲液的母液由K2HPO4·3H2O 25.82g/L,KH2PO4 8.7g/L,Na2HPO4·12H2O 33.4g/L,NH4Cl 5.0g组成,所述的MgSO4的母液含量为22.5g/L;CaCl2的母液含量为36.4g/L;FeCl3的母液含量为0.25g/L,所述的微量矿质元素包括以下组分:48mg/L 的Na2MoO4,42.8mg/L 的ZnSO4·H2O,34.7mg/L 的(NH4)6Mo4O24·4H2O,添加豆油、菜籽油、甘油、葡萄糖、荧蒽、己烷、辛烷、柠檬酸钠、蔗糖、棕榈油和乳酸钠,添加比例为0.5%,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,摇床转速为200rpm,温度为37℃,分别在8h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳碳源种类;最佳碳源为棕榈油;
4)氮源确定:依照步骤2)所述富集菌体,使用含有100mg/LTmp的基础BPLM培养基,添加不同的氮源,氮源包括NH4Cl、NaNO3、NH4NO3和尿素,添加比例均为0.5%,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,摇床转速为200rpm,温度为37℃,分别在18h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳氮源种类;最佳氮源为NaNO3
5)碳氮比的确定:依照步骤2)所述富集菌体,使用含有100mg/LTmp的基础BPLM培养基,以0.5%的添加量固定NaNO3作为氮源,按碳氮比为10,20,30,40,50,60,70,80,90,100十个梯度添加不同碳源,碳源包括豆油、菜籽油、甘油、葡萄糖、荧蒽、己烷、辛烷、柠檬酸钠、蔗糖、棕榈油和乳酸钠,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为37℃,摇床培养,转速为200rpm离心,分别在14h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳碳氮比,最佳碳氮比为20;
6)磷源确定:在碳源、氮源及碳氮比确定的前体下,依照步骤2)所述富集菌体,以含有100mg/L的BPLM培养基为基础,配置不含磷源的新型培养基,设置0.03%、0.06%、0.09%、0.12%、0.15%的梯度添加不同类型的磷源,磷源包括NaH2PO3、Na2HPO3、Na3PO3、KH2PO3、K2HPO3,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为37℃,摇床培养,转速为200rpm,分别在16h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳磷源种类及其浓度;最佳磷源以及磷源的最佳浓度为0.15%的KH2PO3及0.12%的NaH2PO3
7)硫源确定:在碳源、氮源、碳氮比以及磷源确定的前体下,依照步骤2)所述富集菌体,以含有100mg/LTmp的基础BPLM培养基为基础,配置不含硫源的新型培养基,按照0.03%、0.06%、0.09%、0.12%、0.15%的梯度添加不同硫源,硫源包括(NH4)2SO4及MgSO4,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为37℃,摇床培养,转速为200rpm,分别在14h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳硫源种类及其浓度;最佳硫源以及硫源的最佳浓度为0.06%的MgSO4
8)微量元素确定:在碳源、氮源、磷源、硫源以及碳氮比确定的前提下,依照步骤2)所述富集菌体,以含有100mg/LTmp的基础BPLM培养基为基础,添加或移去Cl、Fe、Mo微量元素,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为37℃,摇床培养,转速为200rpm,分别在10h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定微量元素的种类,测定结果表明有Fe无Mo时发光值最高。
10.根据权利要求1所述的一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法,其特征在于,包括以下步骤:
1)在相关基因合成公司合成鼠李糖脂产生基因rhlAB的引物,应用PCR进行基因扩增,合成rhlAB基因片段,利用基因工程剪切、拼接技术,将rhlAB基因片段连接到pMS402质粒上的lux发光基因之前,构成重组质粒,然后将上述重组质粒转入铜绿假单胞菌PAO1,将重组菌株涂布于含有200mg/LTmp的LB固体平板上,筛选出阳性克隆,命名该菌株为rhlAB-lux菌株,挑选出阳性单克隆菌落在固体LB培养基上富集,4℃冷藏保存备用;
2)取冷藏的PAO1-lux菌株,在含有200mg/LTmp的LB固体培养基上活化24h,挑取单克隆,在含有200mg/LTmp的LB液体培养基中,pH5,摇床转速为250rpm,温度为33℃,过夜富集菌体,将富集过的液体LB菌液8000rpm,4℃离心,去上清,用BPLM无机盐培养基重悬得菌液;
3)碳源筛选:使用含有100mg/LTmp的BPLM无机盐培养基,无机盐培养基的组分为:磷酸盐缓冲液5.0mL;MgSO4 3.0mL,CaCl2 1.0mL,FeCl1.0mL,微量矿质元素 1.0mL,所述的磷酸盐缓冲液的母液由K2HPO4·3H2O 25.82g/L,KH2PO4 8.7g/L,Na2HPO4·12H2O 33.4g/L,NH4Cl 5.0g组成,所述的MgSO4的母液含量为22.5g/L;CaCl2的母液含量为36.4g/L;FeCl3的母液含量为0.25g/L,所述的微量矿质元素包括以下组分:48mg/L 的Na2MoO4,42.8mg/L的ZnSO4·H2O,34.7mg/L 的(NH4)6Mo4O24·4H2O,添加豆油、菜籽油、甘油、葡萄糖、荧蒽、己烷、辛烷、柠檬酸钠、蔗糖、棕榈油和乳酸钠,添加比例为0.5%,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,摇床转速为200rpm,温度为37℃,分别在10h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳碳源种类;最佳碳源为葡萄糖;
4)氮源确定:依照步骤2)所述富集菌体,使用含有100mg/LTmp的基础BPLM培养基,添加不同的氮源,氮源包括NH4Cl、NaNO3、NH4NO3和尿素,添加比例均为0.5%,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,摇床转速为200rpm,温度为37℃,分别在12h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳氮源种类;最佳氮源为NaNO3
5)碳氮比的确定:依照步骤2)所述富集菌体,使用含有100mg/LTmp的基础BPLM培养基,以0.5%的添加量固定NaNO3作为氮源,按碳氮比为10,20,30,40,50,60,70,80,90,100十个梯度添加不同碳源,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为37℃,摇床培养,转速为200rpm离心,在14h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳碳氮比,最佳碳氮比为40;
6)磷源确定:在碳源、氮源及碳氮比确定的前体下,依照步骤2)所述步骤富集菌体,以含有100mg/L的BPLM培养基为基础,配置不含磷源的新型培养基,设置0.03%、0.06%、0.09%、0.12%、0.15%的梯度添加不同类型的磷源,磷源包括NaH2PO3、Na2HPO3、Na3PO3、KH2PO3、K2HPO3,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为37℃,摇床培养,转速为200rpm,分别在10h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳磷源种类及其浓度;最佳磷源以及磷源的最佳浓度为0.09%的KH2PO3及0.15%的NaH2PO3
7)硫源确定:在碳源、氮源、碳氮比以及磷源确定的前体下,依照步骤2)所述富集菌体,以含有100mg/LTmp的基础BPLM培养基为基础,配置不含硫源的新型培养基,按照0.03%、0.06%、0.09%、0.12%、0.15%的梯度添加不同硫源,硫源包括(NH4)2SO4及MgSO4,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为37℃,摇床培养,转速为200rpm,分别在12h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定最佳硫源种类及其浓度;最佳硫源以及硫源的最佳浓度为0.09%的MgSO4
8)微量元素确定:在碳源、氮源、磷源、硫源以及碳氮比确定的前提下,依照步骤2)所述富集菌体,以含有100mg/LTmp的基础BPLM培养基为基础,添加或移去Cl、Fe、Mo微量元素,接入步骤2)所述菌液,菌液添加量为1%,温度为37℃,摇床培养,转速为200rpm,分别在16h之内,100ul加样于康宁公司3603黑色96孔的分析板中,在perkin elmerVICTOR3多功能酶标仪上测定发光值,发光值越大则表明鼠李糖脂产生越多,依此确定微量元素的种类,测定结果表明有Fe无Mo时发光值最高。
CN201510010814.8A 2015-01-09 2015-01-09 一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法 Pending CN104498526A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201510010814.8A CN104498526A (zh) 2015-01-09 2015-01-09 一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201510010814.8A CN104498526A (zh) 2015-01-09 2015-01-09 一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN104498526A true CN104498526A (zh) 2015-04-08

Family

ID=52939977

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201510010814.8A Pending CN104498526A (zh) 2015-01-09 2015-01-09 一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN104498526A (zh)

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104789582A (zh) * 2015-04-14 2015-07-22 西北大学 一种用于抗菌药物筛选的新载体
WO2016179249A1 (en) * 2015-05-05 2016-11-10 Logos Technologies, Llc A semi-continuous process for the production of rhamnolipids at high yield and titer
CN106754609A (zh) * 2017-03-21 2017-05-31 山东大学苏州研究院 一株减毒高产鼠李糖脂的工程菌株及其构建与应用
CN108795834A (zh) * 2018-06-01 2018-11-13 西北大学 一种减毒的铜绿假单胞菌基因工程菌及其构建方法和应用
US11142782B2 (en) 2017-07-31 2021-10-12 Stepan Company Enhanced production of rhamnolipids using at least two carbon sources

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102250790A (zh) * 2011-06-14 2011-11-23 南京农业大学 一株生物表面活性剂高效产生菌s2及其发酵培养基
CN102409016A (zh) * 2011-12-15 2012-04-11 西安瑞捷生物科技有限公司 一株铜绿假单胞菌及其培养方法与应用
CN103589765A (zh) * 2013-11-11 2014-02-19 河北鑫合生物化工有限公司 制备鼠李糖脂发酵液的方法

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102250790A (zh) * 2011-06-14 2011-11-23 南京农业大学 一株生物表面活性剂高效产生菌s2及其发酵培养基
CN102409016A (zh) * 2011-12-15 2012-04-11 西安瑞捷生物科技有限公司 一株铜绿假单胞菌及其培养方法与应用
CN103589765A (zh) * 2013-11-11 2014-02-19 河北鑫合生物化工有限公司 制备鼠李糖脂发酵液的方法

Non-Patent Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
HAIHUA LIANG等: "The YebC Family Protein PA0964 Negatively Regulates the Pseudomonas aeruginosa Quinolone Signal System and Pyocyanin Production", 《JOURNAL OF BACTERIOLOGY》 *
JIRAPORN THANIYAVARN等: "Biosurfactant production by Pseudomonas aeruginosa A41 using palm oil as carbon source", 《J. GEN. APPL. MICROBIOL.》 *
KUANG-YI MA等: "Effects of nutrition optimization strategy on rhamnolipid production in a Pseudomonas aeruginosa strain DN1 for bioremediation of crude oil", 《BIOCATALYSIS AND AGRICULTURAL BIOTECHNOLOGY》 *
URS A. OCHSNER等: "Autoinducer-mediated regulation of rhamnolipid biosurfactant synthesis in Pseudomonas aeruginosa", 《PNAS》 *
时莹: "低于抑制浓度的抗生素对铜绿假单胞菌基因表达的调节", 《中国优秀硕士学位论文全文数据库 医药科技辑》 *
路薇 等: "一株降解荧蒽的铜绿假单胞菌的筛选鉴定及其特性", 《环境科学学报》 *
马歌丽 等: "培养条件对铜绿假单胞菌产鼠李糖脂的影响", 《食品科学》 *
黄翔峰 等: "废弃食用油脂生物合成鼠李糖脂研究进展", 《微生物学通报》 *

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104789582A (zh) * 2015-04-14 2015-07-22 西北大学 一种用于抗菌药物筛选的新载体
CN104789582B (zh) * 2015-04-14 2018-07-31 西北大学 一种用于抗菌药物筛选的新载体
WO2016179249A1 (en) * 2015-05-05 2016-11-10 Logos Technologies, Llc A semi-continuous process for the production of rhamnolipids at high yield and titer
US10144943B2 (en) 2015-05-05 2018-12-04 Logos Technologies, Llc Semi-continuous process for the production of rhamnolipids at high yield and titer
CN106754609A (zh) * 2017-03-21 2017-05-31 山东大学苏州研究院 一株减毒高产鼠李糖脂的工程菌株及其构建与应用
US11142782B2 (en) 2017-07-31 2021-10-12 Stepan Company Enhanced production of rhamnolipids using at least two carbon sources
CN108795834A (zh) * 2018-06-01 2018-11-13 西北大学 一种减毒的铜绿假单胞菌基因工程菌及其构建方法和应用

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN104498526A (zh) 一种快速高效筛选鼠李糖脂产生菌营养体系的方法
Santa Anna et al. Production of biosurfactants from Pseudomonas aeruginosa PA 1 isolated in oil environments
She et al. Investigation of biosurfactant-producing indigenous microorganisms that enhance residue oil recovery in an oil reservoir after polymer flooding
CN103291267B (zh) 一种利用油藏内源微生物提高油井产量的方法
CN104342392B (zh) 一种降解多环芳烃的氧化微杆菌及其应用
CN102250790B (zh) 一株生物表面活性剂高效产生菌s2及其发酵培养基
CN102504789B (zh) 一种提高原油采收率的生物脂肽表面活性剂采油剂
CN102911902B (zh) 嗜热耐盐兼性厌氧芽孢杆菌及其应用
US10196663B2 (en) Methods of producing glycolipids
CN102373258B (zh) 一种脂肽生物表面活性剂的工业化制备方法
CN102587875B (zh) 一种用含解磷和固氮菌的组合菌液协同作用来提高原油产量的方法
Zhao et al. Microbial conversion of agro-processing waste (peanut meal) to rhamnolipid by Pseudomonas aeruginosa: solid-state fermentation, water extraction, medium optimization and potential applications
Auhim et al. Effect of different environmental and nutritional factors on biosurfactant production from Azotobacter chroococcum
Xu et al. Application of Bacillus subtilis strain for microbial-enhanced oil recovery
Camargo-de-Morais et al. Production of an extracellular polysaccharide with emulsifier properties by Penicillium citrinum
CN106811426A (zh) 用于乳化原油的热堆肥芽孢杆菌菌株、培养方法及应用
CN102533602B (zh) 一株铜绿假单孢菌及其培养方法与应用
CN103074243B (zh) 一株伯克霍尔德氏菌qz7及其产生生物表面活性剂的应用
CN108219765A (zh) 一种以无机盐为主的油藏内源微生物激活剂及其驱油方法
Amani et al. Optimization of the production of biosurfactant from iranian indigenous bacteria for the reduction of surface tension and enhanced oil recovery
CN114836186B (zh) 一种生物稠油降黏剂及其应用
CN103865821B (zh) 一种螯合球菌及其制备和应用
CN111286522B (zh) 一种含有鼠李糖脂的发酵液的制备方法
CN109576191A (zh) 一种稠油开发的复合微生物菌剂及其制备方法和应用
CA1125683A (en) Microbiological production of novel biosurfactants

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
RJ01 Rejection of invention patent application after publication
RJ01 Rejection of invention patent application after publication

Application publication date: 20150408