CN104254243A - 产生纤维素酶的新真菌株以及用其进行糖化的方法 - Google Patents
产生纤维素酶的新真菌株以及用其进行糖化的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN104254243A CN104254243A CN201380021450.2A CN201380021450A CN104254243A CN 104254243 A CN104254243 A CN 104254243A CN 201380021450 A CN201380021450 A CN 201380021450A CN 104254243 A CN104254243 A CN 104254243A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- cellulase
- sku714
- saccharification
- cellulose
- generation
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
- C12N1/145—Fungal isolates
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
- C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
- C12N9/2405—Glucanases
- C12N9/2434—Glucanases acting on beta-1,4-glucosidic bonds
- C12N9/2437—Cellulases (3.2.1.4; 3.2.1.74; 3.2.1.91; 3.2.1.150)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
- C12P19/02—Monosaccharides
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
- C12P19/14—Preparation of compounds containing saccharide radicals produced by the action of a carbohydrase (EC 3.2.x), e.g. by alpha-amylase, e.g. by cellulase, hemicellulase
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y302/00—Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
- C12Y302/01—Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
- C12Y302/01004—Cellulase (3.2.1.4), i.e. endo-1,4-beta-glucanase
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
- C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
- C12R2001/645—Fungi ; Processes using fungi
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Mycology (AREA)
- Botany (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Virology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
本发明涉及新真菌株黄伞(Pholiota adiposa)SKU714;用于从所述真菌株生产纤维素酶的方法;以及使用所产生的纤维素酶用于糖化纤维素的方法。由本发明的真菌株产生的纤维素酶显示出比现有的糖化酶更好的糖化产量,因此所述纤维素酶可用在各种应用中,包括生物能源生产、纺织工业、造纸工业、洗涤剂工业、动物饲料工业和食品工业。
Description
技术领域
本发明涉及新菌株黄伞(Pholiota adiposa)SKU714,用于从所述菌株产生纤维素酶的方法,以及使用所产生的纤维素酶用于糖化纤维素的方法。
背景技术
纤维素是地球上最丰富的有机物质。它是可再生资源,因而无需担心像石油或煤一样枯竭。然而,纤维素多数作为农林废弃物被丢弃,这被视为是环境污染的主要原因。每年在世界范围内产生超过三十亿吨的农林废弃物,仅在亚洲就产生多于8亿吨。
因为农林废弃物主要由纤维素和半纤维素组成,如果它们可以通过糖化被转化为包括葡萄糖在内的单糖,这可能对于解决食品、燃料和环境问题有极大的帮助。
作为从农林废弃物中回收单糖的普通方法,已知加入硫酸并在高温高压下进行糖化的方法。然而,这种方法的问题在于:必须使用能够耐受强酸和高压的昂贵的设备;因为产生各种副产品而难以分离和回收单糖;因需要处理副产品而生产成本高以及相关的过程是环境不友好的。因为普通糖化方法被限制用于商业应用,所以已经在可以取代普通糖化方法的更加环境友好的纤维素糖化方法上进行了研究。在这方面,已经开发出各种糖化酶并将其商业化用于各种工业领域。此外,正在积极研究其应用。作为糖化酶,纤维素酶广泛用于纺织、造纸、洗涤剂和饲料工业。另外,其用于低热量食品的生产、食品废物的发酵等。
植物的细胞壁是由诸如纤维素(不溶性β-1,4-葡聚糖纤维)、半纤维素(非纤维素基的多糖)和木质素(复合多酚多糖)的聚合物所组成。在这些成分中,纤维素以最高量存在,其次是半纤维素和木聚糖作为主要组份。两种成分占总的植物生物量的50%以上。纤维素是由β-1,4键连接的葡萄糖单元的均聚物。为将其分解为单糖,三种类型的酶是必要的,即内切β-1,4-葡聚糖酶(内切β-1,4-)[EC 3.2.1.4]、外切β-1,4-葡聚糖酶[EC 3.2.1.91]和β-葡糖苷酶。内切葡聚糖酶随机地从内侧切割β-1,4葡萄糖键,以及外切葡聚糖酶在非还原端进行切割将葡聚糖分解成二糖纤维二糖。纤维二糖最终通过β-葡糖苷酶分解为葡萄糖。
纤维素酶大多数使用霉菌(真菌)生产。具体地,使用曲霉属(Aspergillus)和木霉属(Trichoderma)进行工业化生产纤维素酶。虽然里氏木霉ZU-02(Trichoderma reesei ATCC 56764)已作为代表性的产生纤维素酶的菌株被深入地研究,其酶浓度和活性都不足以充分满足工业需求。例如,虽然从生物质来生产乙醇的过程在资源的回收利用、生产燃料的环境友好等方面具有许多优势,从木质纤维素物质生产乙醇与汽油生产相比更加昂贵。在乙醇生产过程中,产生糖化酶的成本占了总生产成本的大约60%。
因此,对纤维素的有效糖化过程存在强烈的需求,特别是对使用新菌株的环境友好的纤维素糖化过程。
发明内容
技术问题
为解决上述现有技术的问题进行本发明。
本发明针对提供显示高活性的产生纤维素酶的新菌株。
本发明还针对提供使用所述菌株来产生纤维素酶的方法。
本发明还针对提供使用所述纤维素酶用于糖化纤维素的方法。
技术方案
在一方面,本发明提供产生纤维素酶的黄伞SKU714(登记号KCCM 11187P)菌株。
另一方面,本发明提供用于产生纤维素酶的方法,包括培养黄伞SKU714(登记号KCCM 11187P)。
在根据本发明的用于产生纤维素酶的方法中,可使用含有玉米浆粉(5~10g/L)、酵母提取物(1~5g/L)、磷酸二氢钾(3~7g/L)、磷酸氢钾(3~7g/L)、七水硫酸酶(1~5g/L)、盐酸硫胺素(0.01~0.03g/L)和碳源(10~30g/L)的pH 4.5~5.5的介质来进行培养。
在根据本发明的用于产生纤维素酶的方法中,碳源可选自纤维素、纤维二糖、稻草和微晶纤维素。
在根据本发明的用于产生纤维素酶的方法中,可在100-200rpm的搅拌速率、0.8~1.2vvm的通气速率和25至30℃的培养温度的条件下进行培养。
在另一方面,本发明提供使用由黄伞SKU714菌株产生的纤维素酶来糖化纤维素的方法。
在根据本发明的用于糖化纤维素的方法中,可在5~25wt%的基质浓度、1~45FPU/g基质的纤维素酶浓度、pH 4~7和50~80℃的温度的条件下进行糖化。
在根据本发明的用于糖化纤维素的方法中,白杨、稻草或其混合物可用作纤维素源或基质。
有益效果
根据本发明的新菌株黄伞SKU714,其从伞菌中分离出,产生高活性的纤维素酶。
因为由根据本发明的新菌株所产生的纤维素酶显示出比现有的糖化酶更好的糖化产量,其可用在各种应用中,包括生物能源生产、纺织工业、造纸工业、洗涤剂工业、饲料工业、食品工业、低热量食品的生产、食品废物的发酵等。
附图说明
图1显示对本发明菌株的ITS-5.8S rDNA序列和类似物种之间的遗传关系进行分析的结果。
图2a显示随着培养时间推移,通过每单位酶量的黄伞SKU714菌株分解滤纸来测量β-葡糖苷酶活性(-●-)、纤维二糖水解酶活性(-○-)、内切葡聚糖酶活性(-▲-)和葡萄糖产量(-Δ-)的结果。
图2b显示随着培养时间推移,测量黄伞SKU714菌株的木聚糖酶活性(-●-)、漆酶活性(-○-)、甘露聚糖酶活性(-▲-)和木质素过氧化物酶活性(-Δ-)的结果。
图3a显示黄伞SKU714菌株产生的β-葡糖苷酶的活性依赖于pH。
图3b显示由黄伞SKU714菌株产生的β-葡糖苷酶的活性依赖于温度。
具体实施方式
本发明通过实施例得以更详细地描述。然而,本发明的范围不为实施例限制。
实施例1:筛选产生纤维素酶的菌株
为筛选产生纤维素酶的菌株,将10μL的伞菌培养物悬浮在10mL的生理盐水中。将10μL的所得悬浮物(1x104cfu mL-1)平铺在含2%的羧甲基纤维素的马铃薯葡萄糖琼脂,并在27℃孵育3天。在固体琼脂培养基上形成菌落后,使用0.1%的刚果红将平皿染色,然后用1M氯化钠进行脱色。然后,通过选择具有由水解纤维素而在菌落周围产生晕圈的菌落来筛选生产纤维素酶的伞菌菌株。
通过这种方法来筛选初步菌株(S1-S6)。使用现有的生产菌株里氏木霉ZU-02作为对照(C),在含有羧甲基纤维素的固体琼脂培养基上进行测试之后,从筛选出菌株中选择出显示最好纤维素降解能力的S4菌株。
实施例2:鉴定菌株
为鉴定在实施例1中筛选出的S4菌株,由韩国微生物培养中心对ITS-5.8S rDNA序列进行分析。S4菌株的ITS-5.8S rDNA序列命名为SEQ ID NO:1。
作为分析S4菌株的ITS-5.8S rDNA序列与类似物种之间遗传关系的结果,所述S4菌株鉴定为黄伞(图1)。
所述S4菌株命名为“黄伞SKU714(Pholiota adiposa SKU714)”并在布达佩斯条约下于2011年4月20日以登记号KCCM 11187P保藏在韩国微生物培养中心。
实施例3:介质的最优化以生产纤维素酶
(1)纤维素酶的活性依赖于碳源
在7-L发酵罐中测试黄伞SKU714菌株产生纤维素酶的活性依赖于碳源。纤维素、葡萄糖、乳糖、麦芽糖、纤维二糖、羧甲基纤维素、蔗糖、木聚糖、稻秆和微晶纤维素用作碳源。
将黄伞SKU714菌株接种在含有50mL全培养介质(马铃薯淀粉4g/L、右旋糖20g/L)的50mL烧瓶中后,将菌株在摇床中以150rpm在25℃培养5天。将50mL培养物接种在含有生长介质(玉米浆粉为8g/L、酵母提取物2g/L、磷酸二氢钾5g/L、磷酸氢钾5g/L、七水硫酸镁3g/L、盐酸硫胺素0.02g/L和碳源为20g/L、pH5)的50ml的烧瓶中,在150rpm、25℃和pH5中培养7天。
对每种碳源测量黄伞SKU714菌株的β-葡糖苷酶活性和葡萄糖生产的结果示于表1中。
表1
从表1可见,当纤维素、纤维二糖、稻秆和微晶纤维素用作碳源时取得优异的纤维素酶活性。当纤维素用作碳源时取得最大的纤维素酶活性。
(2)纤维素酶活性依赖于氮源
在7-L发酵罐中测试黄伞SKU714菌株产生纤维素酶的活性依赖于氮源。酵母提取物、蛋白胨、玉米浆粉、尿素、硫酸铵、硝酸钾、硝酸钠和胰蛋白胨用作氮源。
对在5g/L浓度的每种碳源测量黄伞SKU714菌株的β-葡糖苷酶活性和葡萄糖生产的结果显示在表2中。
表2
如从表2可见,当酵母提取物、玉米浆粉和胰蛋白胨用作氮源时,取得优异的纤维素酶活性。当酵母提取物用作氮源时,取得最大的纤维素酶活性。
实施例4:最优化培养条件用于产生高活性的酶
(1)当白杨被用作基质时培养条件的最优化
使用含有玉米浆粉(8g/L)、酵母提取物(2g/L)、磷酸二氢钾(5g/L)、磷酸氢钾(5g/L)、七水硫酸镁(3g/L)、盐酸硫胺素(0.02g/L)和白杨(20g/L)的介质在7L发酵罐中,最优化培养条件。在pH由3变化至7以及培养温度从20变化至35℃时比较纤维素酶活性。在pH 5和25-30℃时取得最大的纤维素酶活性。
此外,在最优化的培养条件下(pH5,25℃)中在含有白杨基质的介质中测量随着培养时间推移的每种纤维素酶的活性(图2a和2b)。图2a显示,通过随着培养时间推移,测量通过每单位酶量分解滤纸的β-葡糖苷酶、纤维二糖水解酶和内切葡聚糖酶的活性和葡萄糖生产的结果。图2b显示,随着培养时间推移,测量木聚糖酶、漆酶、甘露聚糖酶和木质素过氧化物酶中活性变化的结果。
(2)当稻草用作基质时纤维素酶生产和活性的最优化
使用含有玉米浆粉(8g/L)、酵母提取物(2g/L)、磷酸二氢钾(5g/L)、磷酸氢钾(5g/L)、七水硫酸镁(3g/L)、盐酸硫胺素(0.02g/L)和稻草(20g/L)的介质在7L发酵罐中对培养条件进行最优化。在pH由3改变至7以及培养温度从20改变至35℃时比较纤维素酶生产。在pH 5和25~30℃时取得最大的纤维素酶生产。
此外,在pH由3变化至7.5和温度从40改变至85℃时比较β-1,4-葡糖苷酶活性。结果显示在图3a和3b中。由图3a和3b可见,在pH 5和65℃取得最大纤维素酶的活性。
实施例5:糖化产量的分析
一般而言,包含在植物中的木质纤维素仅使用酶促水解不可能以高产量被糖化。出于这个原因,为增加通过纤维素酶的纤维素水解效率,在酶促水解之前通过预处理方法将木质素和半纤维素片段化。在实施例5中,对于预处理,将10g稻草加入到含有40ml的2wt%的氢氧化钠溶液的烧瓶中,在85℃下反应1小时。然后,通过0.45uM的过滤器将稻草过滤,在65℃干燥。
为了找到最优化的糖化条件,在改变酶浓度、基质浓度、反应温度和反应pH时进行实验。
首先,将在各种浓度经预处理的稻草和各种浓度的纤维素酶加入到20mL的0.1M的醋酸钠缓冲液(pH5.0)中。在15-55℃中以150rpm反应72小时后,将反应混合物在100℃煮沸3分钟以除去变性的酶,然后将其冷却至室温,在4000rpm下离心15分钟。从上清液中通过还原糖法测量酶活性。
通过测量在105℃干燥24小时后每克稻草的重量减少,根据式1来确定糖化产量。
【式1】
糖化产量(%)=[(产生的还原糖的重量/g基质)x0.9/稻草中碳水化合物的重量]x100
(1)糖化产量依赖于酶浓度
当改变酶浓度时,在65℃和pH 6时使用黄伞SKU714菌株进行糖化。结果显示在表3中。
表3
酶浓度(FPU/g基质) | 糖化产量(%) |
1 | 9.7 |
5 | 23.9 |
17.5 | 83.0 |
30 | 81.2 |
42.5 | 80.6 |
由表3可见,在酶浓度为15-45FPU/g基质时取得最佳糖化产量。
(2)糖化产量依赖于基质浓度
对基质浓度在由黄伞SKU714菌株产生的糖化酶进行的白杨糖化上的效果进行调查。当白杨基质的初始浓度从1变化至27wt%时测量糖化产量。结果显示在表4中。
表4
基质浓度(wt%) | 糖化产量(%) |
1 | 43.0 |
2 | 63.5 |
11 | 81.2 |
20 | 83.1 |
27 | 51.0 |
由表4可见,当白杨基质的初始浓度是10~25wt%时取得优异的糖化产量。当白杨浓度是20wt%时取得最佳糖化产量。
(3)糖化产量依赖于温度
对温度在通过由黄伞SKU714菌株产生的糖化酶进行的白杨糖化上的效果进行调查。在20、35、50、65和80℃的不同反应温度下测量糖化产量。结果显示在表5中。
表5
反应温度(℃) | 糖化产量(%) |
20 | 33.2 |
35 | 45.0 |
50 | 75.8 |
65 | 82.1 |
80 | 71.2 |
由表5可见,当糖化温度是50~80℃时取得优异的糖化产量。在65℃时取得最佳糖化产量。
(4)糖化产量依赖于pH
对pH在由黄伞SKU714菌株产生的糖化酶进行的白杨糖化上的效果进行调查。在1、3、5、7和9的不同反应pH处测量糖化产量。结果显示在表6中。
表6
pH | 糖化产量(%) |
1 | 20.0 |
3 | 62.6 |
5 | 81.4 |
7 | 84.0 |
9 | 39.4 |
由表6可见,在pH 4~7时取得优异的糖化产量。在pH 7时取得最佳糖化产量。
实施例6:在最优化的条件下糖化
(1)使用黄伞纤维素酶进行的白杨糖化
使用由黄伞SKU714菌株产生的纤维素酶在最优化条件下进行白杨的糖化。在基质浓度10wt%、酶浓度25FPU/g基质、pH6和温度65℃的条件下进行糖化。由黄伞SKU714菌株产生的纤维素酶的糖化产量与源自里氏木霉的诺维信纤维素酶(Celluclast 1.5L)的糖化产量在表7中进行比较。
表7
纤维素酶 | 糖生产(mg/g白杨) | 糖化产量(%) |
黄伞SKU714 | 672 | 84 |
Celluclast 1.5L | 242 | 35 |
(2)使用黄伞纤维素酶的稻草糖化
使用由黄伞SKU714菌株产生的纤维素酶在最优化的条件下进行稻草的糖化。在基质浓度10wt%、酶浓度16FPU/g基质、pH6和温度65℃的条件下进行糖化24小时。由黄伞SKU714菌株产生的纤维素酶的糖化产量与源自里氏木霉的诺维信纤维素酶(Celluclast 1.5L)的糖化产量以及源自滑菇(Pholiota nameko)KTCC26163菌株的纤维素酶的糖化产量在表8中进行比较。
表8
纤维素酶 | 糖生产(mg/g稻草) | 糖化产量(%) |
黄伞SKU714 | 690 | 88 |
里氏木霉 | 582 | 76 |
滑菇 | 420 | 56 |
虽然滑菇和黄伞菌株属于相同伞菌属(Pholiotasp.),它们显示出完全不同的纤维素糖化效果。然而由于低蛋白生产力和低酶活性,对于用作糖化酶,滑菇菌株则受到限制,由于生产各种生物质降解酶包括纤维素酶、高蛋白质生产力、高酶活性和良好的热稳定性,根据本发明的黄伞菌株适用于商业应用。
【登记号】
保藏机构:韩国微生物培养中心(国外)
登记号:KCCM 11187P
等级日期:20110420
国际承认用于专利程序的微生物保存布达佩斯条约
国际表格
保藏机构证明
遵照细则7.1
致:李正杰
地址:韩国,首尔143-701,华阳洞,广津区,化学工程部门
BP/4(KCTC表格17)
Claims (8)
1.一种产生纤维素酶的黄伞(Pholiota adiposa)SKU714,其以登记号KCCM 11187P保藏。
2.一种用于产生纤维素酶的方法,其包括通过培养根据权利要求1所述的黄伞(Pholiota adiposa)SKU714来产生纤维素酶。
3.根据权利要求2所述的用于产生纤维素酶的方法,其中在含有玉米浆粉(5~10g/L)、酵母提取物(1~5g/L)、磷酸二氢钾(3~7g/L)、磷酸氢钾(3~7g/L)、七水硫酸镁(1~5g/L)、盐酸硫胺素(0.01~0.03g/L)和碳源(10~30g/L)的pH 4.5~5.5的介质中进行培养。
4.根据权利要求3所述的用于产生纤维素酶的方法,其中碳源选自纤维素、纤维二糖、稻草和微晶纤维素。
5.根据权利要求2或3所述的用于产生纤维素酶的方法,其中在100至200rpm的搅拌速率、0.8~1.2vvm的通气速率和25~30℃的培养温度的条件下进行培养。
6.一种用于糖化纤维素的方法,其包括使用通过培养根据权利要求1所述的黄伞(Pholiota adiposa)SKU714所产生的纤维素酶来糖化纤维素基质。
7.根据权利要求6所述的用于糖化纤维素的方法,其中纤维素基质是白杨、稻草或其混合物。
8.根据权利要求6所述的用于糖化纤维素的方法,其中在5~25wt%的基质浓度、1~45 FPU/g基质的纤维素酶浓度、pH 4~7和50~80℃的温度的条件下进行糖化。
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
KR20120019335A KR20130097582A (ko) | 2012-02-24 | 2012-02-24 | 셀룰라아제를 생산하는 신균주 및 이를 이용한 당화방법 |
KR10-2012-0019335 | 2012-02-24 | ||
PCT/KR2013/001406 WO2013125886A1 (ko) | 2012-02-24 | 2013-02-21 | 셀룰라아제를 생산하는 신균주 및 이를 이용한 당화방법 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN104254243A true CN104254243A (zh) | 2014-12-31 |
CN104254243B CN104254243B (zh) | 2017-04-26 |
Family
ID=49005996
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201380021450.2A Expired - Fee Related CN104254243B (zh) | 2012-02-24 | 2013-02-21 | 产生纤维素酶的新真菌株以及用其进行糖化的方法 |
Country Status (7)
Country | Link |
---|---|
US (2) | US20150203808A1 (zh) |
EP (1) | EP2829173B1 (zh) |
JP (1) | JP6022606B2 (zh) |
KR (1) | KR20130097582A (zh) |
CN (1) | CN104254243B (zh) |
ES (1) | ES2618730T3 (zh) |
WO (1) | WO2013125886A1 (zh) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN113637594A (zh) * | 2021-10-18 | 2021-11-12 | 山东蓬勃生物科技有限公司 | 一种多脂鳞伞菌株yx1、培养方法及其应用 |
CN116334111A (zh) * | 2023-03-03 | 2023-06-27 | 上海市农业科学院 | 一种草菇纤维二糖水解酶及其用途 |
Families Citing this family (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR20150117599A (ko) * | 2014-04-09 | 2015-10-20 | 에스케이이노베이션 주식회사 | 바이오매스의 연속당화 반응기 |
KR101883628B1 (ko) * | 2018-06-28 | 2018-08-30 | 건국대학교 산학협력단 | 2차 바이오매스 기질을 이용한 라카아제의 무독화 활성 증진 방법 |
CN109439574B (zh) * | 2018-11-08 | 2022-09-02 | 唐山师范学院 | 纤维素酶产生菌及其应用 |
WO2023189639A1 (ja) * | 2022-03-29 | 2023-10-05 | 三菱ケミカル株式会社 | ハロゲン化炭化水素系樹脂の分解方法及びハロゲン化炭化水素系樹脂分解能を有する微生物 |
CN115181676B (zh) * | 2022-07-01 | 2023-09-01 | 无锡赞匠生物科技有限公司 | 一株通过紫外诱变获得的黄伞菌株及其应用 |
CN115261238A (zh) * | 2022-07-14 | 2022-11-01 | 大理大学 | 一种高产纤维素酶的菌株的发酵方法 |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101735952A (zh) * | 2008-11-04 | 2010-06-16 | 中国农业科学院农业资源与农业区划研究所 | 黄伞新菌株 |
EP2286664A1 (en) * | 2001-08-28 | 2011-02-23 | Meiji Seika Kaisha Ltd. | Process for producing plant disease resistance-inducing composition |
Family Cites Families (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR101056952B1 (ko) * | 2009-03-05 | 2011-08-17 | 박정헌 | 단목재배를 이용한 검은비늘버섯의 대량생산방법 |
-
2012
- 2012-02-24 KR KR20120019335A patent/KR20130097582A/ko not_active Application Discontinuation
-
2013
- 2013-02-21 JP JP2014558680A patent/JP6022606B2/ja not_active Expired - Fee Related
- 2013-02-21 WO PCT/KR2013/001406 patent/WO2013125886A1/ko active Application Filing
- 2013-02-21 EP EP13752441.9A patent/EP2829173B1/en not_active Not-in-force
- 2013-02-21 US US14/380,818 patent/US20150203808A1/en not_active Abandoned
- 2013-02-21 CN CN201380021450.2A patent/CN104254243B/zh not_active Expired - Fee Related
- 2013-02-21 ES ES13752441.9T patent/ES2618730T3/es active Active
-
2017
- 2017-04-10 US US15/483,337 patent/US10196661B2/en not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP2286664A1 (en) * | 2001-08-28 | 2011-02-23 | Meiji Seika Kaisha Ltd. | Process for producing plant disease resistance-inducing composition |
CN101735952A (zh) * | 2008-11-04 | 2010-06-16 | 中国农业科学院农业资源与农业区划研究所 | 黄伞新菌株 |
Non-Patent Citations (3)
Title |
---|
G. Q. ZHANG ET.AL.,: "A novel lectin with antiproliferative activity from the medicinal mushroom Pholiota adiposa", 《ACTA BIOCHIMICA POLONICA》 * |
刘靖宇等: "三种培养料对黄伞胞外酶活性的影响", 《食用菌学报》 * |
刘靖宇等: "三种培养料对黄伞胞外酶活性的影响", 《食用菌学报》, vol. 13, no. 1, 31 December 2006 (2006-12-31) * |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN113637594A (zh) * | 2021-10-18 | 2021-11-12 | 山东蓬勃生物科技有限公司 | 一种多脂鳞伞菌株yx1、培养方法及其应用 |
CN113637594B (zh) * | 2021-10-18 | 2022-01-07 | 山东蓬勃生物科技有限公司 | 一种多脂鳞伞菌株yx1、培养方法及其应用 |
CN116334111A (zh) * | 2023-03-03 | 2023-06-27 | 上海市农业科学院 | 一种草菇纤维二糖水解酶及其用途 |
CN116334111B (zh) * | 2023-03-03 | 2024-02-09 | 上海市农业科学院 | 一种草菇纤维二糖水解酶及其用途 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
ES2618730T3 (es) | 2017-06-22 |
US20170226548A1 (en) | 2017-08-10 |
EP2829173B1 (en) | 2016-12-28 |
CN104254243B (zh) | 2017-04-26 |
JP6022606B2 (ja) | 2016-11-09 |
KR20130097582A (ko) | 2013-09-03 |
EP2829173A1 (en) | 2015-01-28 |
JP2015508660A (ja) | 2015-03-23 |
US10196661B2 (en) | 2019-02-05 |
WO2013125886A1 (ko) | 2013-08-29 |
US20150203808A1 (en) | 2015-07-23 |
EP2829173A4 (en) | 2015-10-28 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
López-Mondéjar et al. | Lignocellulolytic systems of soil bacteria: a vast and diverse toolbox for biotechnological conversion processes | |
CN104254243B (zh) | 产生纤维素酶的新真菌株以及用其进行糖化的方法 | |
Waghmare et al. | Production and characterization of cellulolytic enzymes by isolated Klebsiella sp. PRW-1 using agricultural waste biomass. | |
KR101333731B1 (ko) | 셀룰라아제를 생산하는 갈색 뽕나무버섯 및 당화에의 이용 | |
Kumar | UV mutagenesis treatment for improved production of endoglucanase and β-glucosidase from newly isolated thermotolerant actinomycetes, Streptomyces griseoaurantiacus | |
KR101150280B1 (ko) | 셀룰라아제를 생산하는 넥트리아 시나바리나 및 이를 이용한 셀룰로오스의 당화방법 | |
Ja’afaru et al. | Optimization studies on cellulase enzyme production by an isolated strain of Aspergillus niger YL128 | |
El-Ghonemy et al. | Improvement of Aspergillus oryzae NRRL 3484 by mutagenesis and optimization of culture conditions in solid-state fermentation for the hyper-production of extracellular cellulase | |
Rodríguez et al. | KH2PO4 improves cellulase production of Irpex lacteus and Pycnoporus sanguineus | |
Barapatre et al. | Isolation of fungi and optimization of pH and temperature for cellulase production | |
Manivannan et al. | Response surface optimization for co-production of cellulase and xylanase enzymes by Trichoderma reesei NRRL–3652 | |
Kumar et al. | Cellulolytic enzymes production from submerged fermentation of different substrates by newly isolated Bacillus spp. FME | |
KR20150138998A (ko) | 높은 활성의 셀룰로스 분해 효소를 가지는 신규 균주 아칸소피지움 속 kmf001 | |
Kamble et al. | Isolation, identification and screening of potential cellulase-free xylanase producing fungi and its production | |
El-Baroty et al. | Optimization and characterization of extracellular cellulase produced by native Egyptian fungal strain | |
WO2011133111A1 (en) | Trichoderma viride strain for cellulolytic enzyme production | |
Sujatha et al. | Isolation, Screening And Identification Of Cellulolytic Streptomyces corchorusii (Mn244066) From Soil Sample of Visakhapatnam.(2020) | |
Costa et al. | Making the process of enzyme production in solid-state cultivation cleaner and more sustainable—reuse of raw materials and a syringe-type bioreactor enter in the scene | |
Agarwal et al. | Ethanol production from paddy straw using partially purified fungal cellulase | |
KR101135178B1 (ko) | 셀룰라아제를 생산하는 스키조필럼 코뮨 및 당화에의 이용 | |
Beheraꜜ et al. | Bioprospecting the cellulases and xylanases thermozymes for the production of biofuels | |
Wang et al. | Screening and characterization of a low-temperature-resistant cellulose-degrading strain, Trichoderma harzianum L-8, from a primitive forest | |
Sreeremya et al. | Optimization of conditions and production of carboxy methyl cellulase by bacteria isolated from higher termite soil | |
KR20100042547A (ko) | 셀룰라아제를 생산하는 트라메테스 허수타 및 그 이용 | |
Chandra et al. | Indian Journal of Advances in Chemical Science |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20170426 Termination date: 20210221 |
|
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |