CN104212786A - 一种对香豆酸脱羧酶blpad及其编码基因和应用 - Google Patents

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CN104212786A CN201410426053.XA CN201410426053A CN104212786A CN 104212786 A CN104212786 A CN 104212786A CN 201410426053 A CN201410426053 A CN 201410426053A CN 104212786 A CN104212786 A CN 104212786A
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decarboxylase
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acid decarboxylase
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丁少军
胡宏飞
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Abstract

本发明公开了一种对香豆酸脱羧酶BLPAD及其编码基因和应用,所述对香豆酸脱羧酶BLPAD的氨基酸序列如SEQIDNO.1所示。本发明的对香豆酸脱羧酶BLPAD是从本实验室于堆肥中筛选得到的地衣芽孢杆菌CGMCC7172中克隆得到的新的对香豆酸脱羧酶,其最适温度为37℃,最适pH为6.0,具有良好的温度和pH稳定性,对多种有机溶剂有较好的耐受性,在进行两相体系转化对香豆酸及阿魏酸生产4-乙烯基酚类物质时,当底物浓度分别达到500mM时,摩尔转化率仍能分别达到97.02%和70.96%,最终产物4-乙烯基苯酚及4-乙烯基愈创木酚分别达到60.63g/L及58.30g/。因此其在生物法生产4-乙烯基酚类物质的工业化应用中具有良好的应用前景。

Description

一种对香豆酸脱羧酶BLPAD及其编码基因和应用
技术领域
本发明属于基因工程技术领域,具体涉及一种对香豆酸脱羧酶BLPAD及其编码基因和应用。
背景技术
4-乙烯基苯酚(4-vinylphenol)和4-乙烯基愈创木酚(4-vinylguaiacol)均为酚酸类物质的4-乙烯基衍生物,具有挥发性,有独特的气味,嗅觉识别度较高。4-乙烯基苯酚具有苯酚,药物和辛香风味,可用于食品添加剂及香精的配制,它作为一种单体可用于合成聚4-乙烯基苯酚并可应用于光刻胶技术及合成树脂M等。4-乙烯基愈创木酚具有强烈香辛料、丁香和发酵似香气,有炒花生气息,无色至淡稻草黄色油状液体,是决定多种食品饮料以及酒类的主要香味成分,同时还是一种香水,香精以及医药等行业不可多得的高档香料,其市场价格约为阿魏酸的20倍左右。4-乙烯基愈创木酚与4-乙烯基苯酚均为高附加值产品。
市场上的4-乙烯基苯酚与4-乙烯基愈创木酚多为化学法合成,需要较多的前体物质,有些还需要较为剧烈的条件。这两种物质很大一部分用于香精,医药及食品工业,而化学合成品用于这些方面有很大的不安全性,所以,寻找一条快速,高效生产这两种物质的生物合成途径是很有必要的。目前已有利用一些菌株通过利用阿魏酸(Ferulic acid)生成4-乙烯基愈创木酚的报道,如汉逊德巴氏酵母(Debaryomyces hansenii),假丝酵母(Genus Candida),香肠乳杆菌(Lactobacillusfarciminus),肠杆菌(Enterobacter)等,其中4-乙烯基愈创木酚的市场价格约为底物阿魏酸(Ferulic acid)的40倍左右。也有报道利用大肠杆菌表达外源的酚酸脱羧酶,再通过重组大肠杆菌全细胞或固定化细胞利用对香豆酸(p-Coumaricacid)或阿魏酸分别来生产4-乙烯基苯酚和4-乙烯基愈创木酚。还有通过代谢工程途径在大肠杆菌内共表达真核与原核基因由葡萄糖为原料生物合成4-乙烯基苯酚。但底物对香豆酸和阿魏酸或产物4-乙烯基苯酚和4-乙烯基愈创木酚对大多数菌株都有毒性,浓度过高会抑制菌株的生长或酚酸脱羧酶的活性,从而导致4-乙烯基酚类物质产量的降低及生产效率低下,这对工业化大生产来说是极其不利的。为了解决这些问题,我们使用了一个由水相和水不溶性有机溶剂组成的两相反应体系,在这个反应体系中,4-乙烯基酚类物质会选择性的进入有机相而酚酸类物质和酶却会保留在水相中,从而减缓酶的失活速度并提高产物的产量及回收率,提高转化率。因此,找到具有较好的有机溶剂耐受性和催化效率,并能很好应用于两相反应体系的酚酸脱羧酶是很有必要的。
酚酸脱羧酶是一类能够催化酚酸发生非氧化脱羧(Nonoxidative decarboxylation)反应的酶,这一途径对于菌株利用酚酸,解除酚酸对自身细胞的毒性有重要的作用,已有报道发现多种菌株能利用酚酸类物质并有多篇文献对多种菌株的酚酸脱羧酶进行了报道,且一些菌株,如枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis),植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum),肠杆菌等的酚酸脱羧酶基因已经在大肠杆菌中超表达,并进行了一系列酶学性质的研究,但未见有地衣芽孢杆菌酚酸脱羧酶的报道。另外,酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)的酚酸脱羧酶PAD1需要有辅酶因子FMN的存在才能发挥作用,且催化活性较低。另一种来自真菌季也蒙假丝酵母(Candida guilliermondii)的酚酸脱羧酶CgPAD酶活受一个内源因子的调节,该内源因子是一个硫醇类物质,在体外向反应体系中添加DL-同型半胱氨酸(DL-Homologous cysteine)时,该酶的比酶活增加了近5倍左右。
酚酸脱羧酶的活性受底物和产物的影响很大,因为在自然界中,无论是酚酸还是酚酸的代谢产物,对微生物来说都是有毒性的,而在反应体系中加入水不溶性有机溶剂可以及时将产物萃取进入有机相,从而降低产物抑制作用,因此,找到具有较好的有机溶剂耐受性和催化效率,并能很好应用于两相反应体系的酚酸脱羧酶是很有必要的。
发明内容
发明目的:针对现在工业化生产4-乙烯基酚类物质均为化学法,在香精香料及医药行业中应用的不安全性等问题,本发明的目的在于提供一种对香豆酸脱羧酶BLPAD,有较好的热稳定性,且对有机溶剂有较高的耐受性,能很好的满足生物法工业化生产4-乙烯基酚类物质的要求。本发明的另一目的是提供所述对香豆酸脱羧酶的编码基因。本发明还有一目的是提供上述对香豆酸脱羧酶的应用。
技术方案:为了实现上述发明目的,本发明采用的技术方案为:
一种对香豆酸脱羧酶BLPAD,其氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示。
所述对香豆酸脱羧酶BLPAD的编码基因,其核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示。
含有所述的对香豆酸脱羧酶BLPAD的编码基因的表达体系。
所述的表达体系在表达对香豆酸脱羧酶BLPAD中的应用。
所述的对香豆酸脱羧酶BLPAD在催化对香豆酸及阿魏酸生产4-乙烯基酚类物质中的应用。
所述的应用,包括以下步骤:
1)在反应容器中加入Na2HPO4-citric acid缓冲液和底物,37℃恒温震荡水浴锅中预热5min;
2)加入对香豆酸脱羧酶BLPAD,并立即加入预先用pH6.0的Na2HPO4-citric acid缓冲液饱和并预热的有机溶剂,200rpm,37℃震荡反应6h,加入50μL50%三氯乙酸溶液终止反应;
3)转移反应体系至离心管,10000rpm,10min离心分离水相及有机相,分离获得产物4-乙烯基酚类物质。
酶与底物的用量关系为每1μmol底物对应使用1μg的酶。
所述的底物为对香豆酸,有机溶剂为甲苯。
所述的底物为阿魏酸,有机溶剂为环己烷。
有机溶剂与底物的用量关系为1:1(v/v)。
本发明从地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)7172中克隆获得对香豆酸脱羧酶BLPAD基因,并实现了其在大肠杆菌(BL21)中的高效异源表达并研究了其酶学特性,具有较好的热稳定性及有机溶剂耐受性,是一种工业化应用的优质酶源。
有益效果:与现有技术相比,本发明的对香豆酸脱羧酶是一种从地衣芽孢杆菌7172中克隆得到的新的对香豆酸脱羧酶,其最适温度为37℃,最适pH为6.0,具有良好的温度和pH稳定性,并且具有很好的有机溶剂耐受性,因此其在工业化应用中具有良好的应用前景。另外用其生产的4-乙烯基酚类物质为天然产品,能安全应用于食品及香精香料等行业,弥补了化学法生产的不足。
附图说明
图1是纯化得到的对香豆酸脱羧酶BLPAD的12%SDS-PAGE电泳图;图中,M:Marker;1:细胞破碎后上清液;2:细胞破碎后沉淀;3:BLPAD
图2是对香豆酸脱羧酶BLPAD最适pH测定结果图;
图3是对香豆酸脱羧酶BLPAD pH耐受性测定结果图;
图4是对香豆酸脱羧酶BLPAD最适温度测定结果图;
图5是对香豆酸脱羧酶BLPAD温度耐受性测定结果图。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明作进一步的说明。
以下实施例所使用的材料和试剂如下:
菌株及载体:地衣芽孢杆菌(Bacillus lichenformis)7172为本实验室从堆肥中筛选获得的菌株(CN103255084A),大肠杆菌(E.coli DH5α及E.coli BL21)及表达载体pET28b+购自Novagen公司。
酶类及其它生化试剂:限制性内切酶、DNA聚合酶、连接酶和dNTP购自TaKaRa公司;对香豆酸、阿魏酸、4-乙烯基苯酚和4-乙烯基愈创木酚购自Sigma公司;其它都为国产试剂(均可从普通生化试剂公司购买得到)。
LB培养基:Peptone 10g,Yeast extract 5g,NaCl 10g,加蒸馏水至1000mL,pH自然(约为7)。固体培养基在此基础上加2.0%(w/v)琼脂。
以下实施例中未作具体说明的分子生物学实验方法,均参照《分子克隆实验指南》(第三版)J.萨姆布鲁克一书中所列的具体方法进行,或者按照试剂盒和产品说明书进行。
实施例1基因的克隆
地衣芽孢杆菌总基因组的提取:从长好的地衣芽孢杆菌7172 LB平板上挑取单菌落接种于含3mL LB液体培养基的灭菌试管中,37℃,200rpm震荡培养至饱和状态。取1.2mL培养物12000rpm,离心5min,去上清;加入570μL无菌水(或TE buffer),用吸管反复吹打使之重悬。加入10%的SDS和10μL 20mg/mL蛋白酶K,混匀,37℃温育1h(可加入3μL溶菌酶);加入100μL 5mol/L NaCl,充分混匀,再加入80μL CTAB/NaCl溶液(CTAB/NaCl溶液:称取2.922g NaCl,加60mL蒸馏水于磁力搅拌器上搅拌溶解,待完全溶解后加入5g CTAB,加热到65℃继续搅拌至完全溶解,蒸馏水定容至100mL),混匀,于60℃温育10min,上下颠倒混匀,12000rpm,离心5min;将上清转移至新的2mL离心管中,加入等体积(约800μL)的酚:氯仿:异戊醇=25:24:1混匀,12000rpm,离心5min,将上层溶液转移至新的离心管中,重复之前的酚仿抽提步骤一次;加入五分之三体积的异丙醇,轻轻混合直至DNA沉淀下来,静止10min,12000rpm,离心10min,去上清;沉淀用1mL 75%乙醇洗涤,12000rpm,离心5min,去上清,重悬于30μL的无菌水(或TE buffer)中,—20℃保存。
以提取好的地衣芽孢杆菌总基因组稀释100倍为模板,采用以下引物对进行PCR扩增获得基因序列,引物对序列为:
上游引物:CATGCCATGGTTATGAATCAAGATGTAAAAGAGTTTGTAGG,
下游引物:CCGCTCGAGTACCCGCTTTCCTGCCCTGATGT,
PCR体系:10×Pfu buffer 2.5μL,dNTP(2.5mM)2μL,模板1μL,上游引物0.5μL,下游引物0.5μL,Pfu DNA polymerase(10U/μL)0.5μL,ddH2O18μL。
PCR反应参数设置为:94℃预变性2min;94℃变性30s,55℃退火30s,72℃延伸2min;30cycles;72℃10min。
PCR产物经1.0%的琼脂糖凝胶电泳检测。使用思普金公司快速PCR产物纯化试剂盒回收纯化扩增得到的含有双酶切位点的blpad基因片段。将该基因片段与载体pET28b+进行连接,转入大肠杆菌E.coli DH5α扩增,然后送南京思普金生物科技有限公司测序。测序结果显示,该基因全长501bp,命名为对香豆酸脱羧酶BLPAD基因,DNA序列见SEQ ID NO.2,所表达的对香豆酸脱羧酶BLPAD氨基酸序列见SEQ ID NO.1,其阅读框包含166个氨基酸。理论分子量为19.521kDa,理论等电点(pI)为5.02。
实施例2对香豆酸脱羧酶BLPAD在大肠杆菌E.coli BL21中的表达及纯化
将测序正确的阳性克隆DH5α接种于3mL LBK液体培养基中,37℃,200rpm过夜培养。重组表达质粒pET28b+-blpad的小量提取使用北京全式金生物技术有限公司的质粒小提试剂盒(EasyPure Plasmid MiniPrep Kit)进行提取。将提取好的重组表达质粒pET28b+-blpad转入大肠杆菌E.coli BL21,涂布含有30ug/mL的卡那霉素的平板筛选阳性克隆,挑取阳性克隆接种于含有3mL LBK液体培养基的试管中,37℃,200rpm过夜培养;将过夜培养的菌液按1:50接入含有50mL灭菌的LBK液体培养基中,37℃,200rpm培养至OD600为0.6左右;加入IPTG至终浓度为0.5mM,28℃,200rpm诱导表达;诱导表达10小时后,将菌液10000rpm,10min离心,去上清液;加入4mL Lysis buffer重新悬浮;利用超声破碎法进行菌体破碎,功率200-300W,超声时间为8秒,间隔为8秒,重复100次,10000rpm,离心10min,取上清;将上清液装入透析袋中,4℃下在Lysis buffer中透析24小时,其间更换2-3次透析液。酶液的纯化参照Ni-NTA Agarose(Qiagen)的方法。将纯化得到的蛋白利用SDS-PAGE进行检测。结果如图1所示,可见重组对香豆酸脱羧酶在大肠杆菌中得到了表达,经Ni-NTA Agarose纯化后为一条带,分子量约为20kDa。
实施例3对香豆酸脱羧酶BLPAD的活性分析
对香豆酸脱羧酶酶活的测定方法:将不加酶的反应体系(900μL的反应液,包含5mM的对香豆酸(PCA)、pH6.0的200mM Na2HPO4-citric acid缓冲液)置于37℃恒温水浴锅中预热5 min,加入经过适当稀释的100μL的纯化的对香豆酸脱羧酶BLPAD(约1-2μg,实施例2制备)于反应液中,反应5min后,加入2mL甲醇终止反应,0.22μm微孔滤膜过滤后进行HPLC分析。一个酶活单位:每分钟产生1μmol 4-乙烯基苯酚(4-VP)所需的酶量。
1)对香豆酸脱羧酶BLPAD的最适pH和pH稳定性的测定
酶的最适pH测定:将实施例2纯化得到的酶液在37℃下,以PCA为底物,在37℃下分别测量酶在Na2HPO4-citric acid缓冲液pH4.0-8.0中反应的活力。结果如图2所示,表明BLPAD的最适pH为6.0。
pH的耐受性测定:将纯化好的酶液(实施例2制备)在不同的pH条件下(广泛缓冲液pH3.0-12.0)室温℃保存1小时,然后在37℃及pH 6.0下进行酶促反应,以未处理的酶液作为对照。以PCA为底物,反应5min测定对香豆酸脱羧酶BLPAD的酶活。经pH5.0-9.0的缓冲液处理24h,酶活剩余80%以上,如图3所示。
2)对香豆酸脱羧酶BLPAD的最适温度和热稳定性的测定
酶的最适温度测定:以对香豆酸(PCA)为底物,pH6.0的Na2HPO4-citricacid缓冲液,分别在10-60℃的条件下测活力。酶的热稳定性测定:将同样酶量的酶液置于设定的温度中(35℃、45℃、55℃下)保温0-90min。以PCA为底物,在最适温度和pH下测它们的剩余活力,以未处理的酶液作为对照。结果表明:BLPAD的最适最适温度为37℃(图4),在35℃下放置90min还能保持90%以上的活性(图5)。
3)对香豆酸脱羧酶BLPAD的有机溶剂耐受性
酶的有机溶剂耐受性测定:将纯化好的酶液(实施例2制备)在不同浓度的有机溶剂(20%,30%,50%)中25℃,200rpm振摇12小时,将酶液稀释以去除有机溶剂影响后在37℃及pH 6.0下进行酶促反应,以相同条件处理但未加有机溶剂的酶液作为对照。以PCA为底物,反应5min测定对香豆酸脱羧酶BLPAD的酶活。经九种有机溶剂处理后,除正癸烷外经其余有机溶剂处理后酶活均能保留90%以上,如表1所示。
表1对香豆酸脱羧酶BLPAD的有机溶剂耐受性结果
4)对香豆酸脱羧酶BLPAD的动力学常数的测定
重组对香豆酸脱羧酶BLPAD动力学常数测定:动力学常数(Vmax和Km)的测定在37℃,pH6.0的条件下,添加不同浓度的对香豆酸(PCA)及阿魏酸(FA)(0.1-5mM)为底物,反应2.5min,测定其活性。数据利用Graphpad Prism5.0软件进行非线性回归分析计算该酶的动力学常数。结果表明:在37℃,pH6.0,BLPAD对对香豆酸,阿魏酸及咖啡酸的Vmax分别为268.43IU/mg、216.8IU/mg和119.07IU/mg。Km分别为1.64mM、1.55mM及1.93mM。
实施例4对香豆酸脱羧酶BLPAD降解底物生产4-乙烯基酚类物质
对香豆酸脱羧酶底物降解方法:反应体系采用有机相/水相两相反应体系,反应容器为10mL玻璃瓶,瓶盖垫片为特氟龙材料,保证瓶体的密封性。将不加酶的反应体系(900μL的反应液,分别包含200、300、400、500mM的对香豆酸(PCA)或阿魏酸(FA)、pH6.0的200mM Na2HPO4-citric acid缓冲液)置于37℃恒温震荡水浴锅中预热5min,加入不同浓度的100μL的纯化的对香豆酸脱羧酶BLPAD(酶与底物的用量关系为每1μmol底物对应使用1μg的酶,实施例2制备)于反应液中,立即加入相应事先用pH6.0的200mM Na2HPO4-citric acid缓冲液饱和并预热的有机溶剂(底物为对香豆酸则有机溶剂为甲苯,底物为阿魏酸则有机溶剂为环己烷)1mL,200rpm,37℃震荡反应6h,加入50μL 50%三氯乙酸终止反应,转移至2mL离心管,10000rpm,10min离心分离水相及有机相,分别用甲醇稀释50倍后进行HPLC分析,计算不同浓度底物下底物的摩尔转化率。
表2不同浓度底物下底物的摩尔转化率
结果如表2所示,在进行两相体系转化对香豆酸及阿魏酸生产4-乙烯基酚类物质时,当底物浓度分别达到500mM时,摩尔转化率仍能分别达到97.02%和70.96%,最终产物4-乙烯基苯酚及4-乙烯基愈创木酚分别达到60.63g/L及58.30g/L,因此其在工业化应用中具有良好的应用前景。另外用其生产的4-乙烯基酚类物质为天然产品,能安全应用于食品及香精香料等行业,弥补了化学法生产的不足。
                         SEQUENCE LISTING
 
<110>  南京林业大学
 
<120>  一种对香豆酸脱羧酶BLPAD及其编码基因和应用
 
<130>  100
 
<160>  4    
 
<170>  PatentIn version 3.3
 
<210>  1
<211>  166
<212>  PRT
<213>  Bacillus lichenformis
 
<400>  1
 
Met Asn Gln Asp Val Lys Glu Phe Val Gly Ser His Met Ile Tyr Thr
1               5                   10                  15     
 
 
Tyr Glu Asn Gly Trp Glu Tyr Glu Ile Tyr Ile Lys Asn Asp His Thr
            20                  25                  30          
 
 
Ile Asp Tyr Arg Ile His Ser Gly Met Val Gly Gly Arg Trp Val Arg
        35                  40                  45             
 
 
Asp Gln Lys Ala Asp Ile Val Lys Leu Thr Glu Gly Val Tyr Lys Val
    50                  55                  60                  
 
 
Ser Trp Thr Glu Pro Thr Gly Thr Asp Val Ser Leu Asn Phe Met Pro
65                  70                  75                  80 
 
 
Asn Glu Lys Arg Met His Gly Ile Ile Phe Phe Pro Lys Trp Val His
                85                  90                  95     
 
 
Glu Arg Pro Asp Ile Thr Val Cys Tyr Gln Asn Asp His Ile Asp Leu
            100                 105                 110        
 
 
Met Glu Glu Ser Arg Glu Lys Tyr Glu Thr Tyr Pro Lys Tyr Val Val
        115                 120                 125            
 
 
Pro Glu Phe Ala Asp Ile Thr Phe Ile Glu Asn Ala Gly Ile Asp Asn
    130                 135                 140                
 
 
Glu Asp Leu Ile Ser Lys Ala Pro Tyr Pro Gly Met Thr Asp Asp Ile
145                 150                 155                 160
 
 
Arg Ala Gly Lys Arg Val
                165    
 
 
<210>  2
<211>  501
<212>  DNA
<213>  Bacillus lichenformis
 
<400>  2
atgaatcaag atgtaaaaga gtttgtagga agccatatga tctatacgta tgaaaacgga     60
 
tgggaatatg aaatctacat taaaaatgac cataccatcg attaccgcat tcacagcgga    120
 
atggttgggg gacgctgggt tcgcgatcaa aaagccgata tcgtcaagct gactgaaggc    180
 
gtctataaag tatcctggac agaaccgaca gggactgacg tttccttgaa cttcatgccg    240
 
aatgaaaagc ggatgcacgg catcatcttc ttccctaaat gggttcatga acgccctgat    300
 
attacagtct gctatcaaaa tgaccatatc gacttaatgg aggaatcgcg cgaaaaatat    360
 
gagacgtatc caaaatatgt cgtaccggaa ttcgccgata tcacatttat tgaaaatgcc    420
 
ggaatcgata atgaagatct gatttcaaaa gccccttatc ccggaatgac ggatgacatc    480
 
agggcaggaa agcgggtata a                                              501
 
 
<210>  3
<211>  41
<212>  DNA
<213>  Artificial
 
<220>
<223>  上游引物序列
 
<400>  3
catgccatgg ttatgaatca agatgtaaaa gagtttgtag g                         41
 
 
<210>  4
<211>  32
<212>  DNA
<213>  Artificial
 
<220>
<223>  下游引物序列
 
<400>  4
ccgctcgagt acccgctttc ctgccctgat gt                                   32
 
 

Claims (10)

1.一种对香豆酸脱羧酶BLPAD,其氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示。
2.权利要求1所述对香豆酸脱羧酶BLPAD的编码基因,其核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示。
3.含有权利要求2所述的对香豆酸脱羧酶BLPAD的编码基因的表达体系。
4.权利要求3所述的表达体系在表达对香豆酸脱羧酶BLPAD中的应用。
5.权利要求1所述的对香豆酸脱羧酶BLPAD在转化对香豆酸及阿魏酸生产4-乙烯基酚类物质中的应用。
6.根据权利要求5所述的应用,其特征在于,包括以下步骤:
1)在反应容器中加入Na2HPO4-citric acid缓冲液和底物,37℃恒温震荡水浴锅中预热5min;
2)加入对香豆酸脱羧酶BLPAD,并立即加入预先用pH6.0的Na2HPO4-citric acid缓冲液饱和并预热的有机溶剂,200rpm,37℃震荡反应6h,加入50μL 50%三氯乙酸溶液终止反应;
3)转移反应体系至离心管,10000rpm,10min离心分离水相及有机相,分离获得产物4-乙烯基酚类物质。
7.根据权利要求6所述的应用,其特征在于,酶与底物的用量关系为每1μmol底物对应使用1μg的酶。
8.根据权利要求6所述的应用,其特征在于,所述的底物为对香豆酸,有机溶剂为甲苯。
9.根据权利要求6所述的应用,其特征在于,所述的底物为阿魏酸,有机溶剂为环己烷。
10.根据权利要求6所述的应用,其特征在于,有机溶剂与底物的体积用量关系为1:1。
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